Диаграма на резервоар за скрининг за дизентерия. Лабораторна диагностика на дизентерия (литературен преглед)

Дизентерията е тежка чревна инфекция, характеризираща се с остро начало. Микробиологична диагностикадизентерия се състои в изолиране на патогена от фекалните маси на пациента чрез засяване в специална хранителна среда. Заболяването трябва да се диференцира от други чревни заболявания и отравяния. Ранната диагностика и навременното лечение ще помогнат да се избегнат усложнения.

Значението на навременната диагностика

Разпознаването на дизентерия на практика не е толкова лесно, тъй като има инфекциозни и неинфекциозни заболявания с подобни клинични прояви. Характерна особеност на причинителите на дизентерия (шигела) е способността да променят резистентността към антибактериални лекарства. Ненавременно диагностицирано заболяване ще доведе до инфекция Голям бройот хора. Злоупотребата с антибиотици е причина за появата на резистентност на бактериите, което води до масови инфекции и епидемии с смъртни случаи. Източник на инфекция са пациенти и носители на бактерии, които отделят патогенни микроорганизми с фекални маси. Инкубационен периоддизентерия - 2-3 дни.

Клинични симптоми на заболяването

• Внезапна треска с телесна температура от 40 градуса или повече.
• Диария повече от 10 пъти на ден.
• Появата в изпражненията на кръв, слуз, в редки случаигной.
• Загуба на апетит до пълна липса.
• Гадене и повръщане.
• Порязване в корема и десния хипохондриум.
• Болка в ректума.
• Дехидратация.
• Сух език с бял налеп.
• аритмия.
• Намалено кръвно налягане.
• Нарушения на съзнанието.

Диагностични процедури

Лекарят поставя диагнозата дизентерия само след проведените изследвания.

Диагностиката на заболяването включва общоприети и специални методи, които установяват не само окончателна диагноза, но и оценка на нивото на нарушения на храносмилателните органи. При дизентерия диагнозата се поставя въз основа на епидемиологичната картина на заболяването, клинични симптомии проведени изследвания. Основната лабораторна диагностика е анализът на изпражненията за микробиология, засяване до 80% от патогените.Серологичният метод се провежда не по-рано от 5-ия ден от заболяването, този вид изследване допълва, но не замества микробиологичния анализ. Други методи:

• Копрологичното изследване е прост и достъпен клиничен метод, който открива слуз, кръвни ивици, еритроцити, неутрофили (до 50 на зрително поле) и променени епителни клетки.
• Сигмоидоскопия - ви позволява да наблюдавате лечебния процес. Не се прилага при деца.
• Метод за тестване за алергия - помощен метод, въз основа на вземането на кожен алергичен тест с дизентерия (метод на Цуверкалов).

Общ кръвен анализ

Клетките на имунитета унищожават патогените на дизентерия дори в червата, а тежките случаи на заболяването възникват, когато бактериите навлязат в лимфните възли, последвани от навлизане в кръвния поток. Кръвният тест за дизентерия оценява състоянието на пациента и ви позволява да реагирате навреме възможни усложнения. Увеличаването на скоростта на утаяване на еритроцитите е лабораторен показател, който характеризира степента на възпаление. Също така дизентерията причинява повишаване на концентрацията на прободени неутрофили и моноцити.

Как да дарите изпражнения за копрограма?

За потвърждаване на заболяването се извършва изследване на изпражненията. Копрограма - подробно лабораторно изследване, което оценява работата на стомашно-чревния тракт, скоростта и ефективността на храносмилането и функцията на червата. Лабораторните методи за изследване на изпражненията разкриват физически и Химични свойстваизпражнения, състав, наличие на чужди организми и включвания. Изисквания за събиране на изпражненията:

• Материалът се взема след естествения акт на дефекация.
• Събирането се извършва в специален контейнер.
• Забранено е вземането на биологичен материал, получен в резултат на клизма, за изследване на изпражненията за дизентерия.
• Преди изследването е забранено да се използват препарати, съдържащи желязо, да се поставят ректални супозитории, да се приемат лаксативи и да се пият алкохолни напитки.

Микробиологична диагностика

Сеитбата в резервоар за дизентерия точно определя вида на патогена.

Бактериологична диагностика - събиране на фекална материя и последващо засяване на изпражнения в специална хранителна среда. Появата на колонии от патогенни бактерии (шигела) след засяване потвърждава предложената диагноза. Бактериологичен анализза дизентерия точно определя патогена, неговия тип, подвид и чувствителност към антибактериални средства, което ви позволява да изберете правилното лекарство за лечение.

Изследваният материал - изпражнения с получени чужди примеси естественоили специална тръба за сигмоидоскопия. При деца се взема натривка със специален тампон (тампон за ВД или тампон за чревна група). Установете чувствителността към лекарства чрез поставяне на колонии от Shigella заедно с различни антибиотици. Ако жизнената активност на микроорганизмите продължава в близост до антибиотичната таблетка, тогава лекарството не се използва за лечение, ако микроорганизмите умрат, се предписва лечение с такъв антибиотик.

Серологични тестове за дизентерия

При отрицателни или съмнителни резултати от бактериологично изследване се използва серологичен метод. IN изпражненияпациентът се открива от бактериален антиген, а в плазмата - специфични антитела. За да установите титъра на антителата, можете да използвате метода RIGA, понякога - RPGA или RA. Като антигени се използва суспензия от дневна колония от shegella. Минус метода - надеждни резултатиполучават само 5 дни след началото на заболяването, когато концентрацията на антитела достигне желаното ниво.

Сигмоидоскопия

Поради факта, че причинителят на дизентерията засяга дебелото черво, сигмоидоскопията е значим диагностичен метод, но не и определящ. Диагнозата се състои в въвеждането на ректоскоп, оборудван с устройство за подаване на въздух, в ануса. Подуване, чревната кухина става достъпна за изследване. Този метод помага да се оцени степента на увреждане на чревния епител. При дизентерия чревните стени са хиперемирани в резултат на вазодилатация. На някои сегменти се образуват ерозии и кръвоизливи. Сигмоидоскопията не изисква подготовка, но процедурата не се извършва, ако има анални фисури или патологии на ануса.

Методически указания за студенти за практическо занятие № 28.

Тема на урока:

Мишена: Изучаване на методите за микробиологична диагностика, етиотропна терапия и профилактика на шигелоза.

Модул 2 . Специална, клинична и екологична микробиология.

Тема 5: Методи за микробиологична диагностика на дизентерия.

Уместност на темата:Шигелозата е повсеместно разпространена и е сериозен проблемв страни с ниско санитарно културно ниво и висока честота на недохранване и лошо хранене. В развиващите се страни разпространението на инфекцията се благоприятства от лошите санитарни условия, лошата лична хигиена, пренаселеността и големия дял на децата в населението. В Украйна огнищата на шигелоза са по-чести в затворени общности с лоши санитарни и хигиенни условия, като детски ясли и градини, туристически корабчета, психиатрични клиники или приюти за хора с увреждания. Shigella е причината за диарията на пътниците и туристите.

Причината за групови заболявания може да се счита за употребата на хранителни продукти, замърсени от небрежност на търговски работници, които са носители на шигела. Има огнища, свързани с употребата на питейна вода, а плуването в замърсени водоеми също доведе до инфекция. Въпреки това, хранителният и водният път на предаване изглежда играят по-малка роля в разпространението на шигелозата в сравнение с холерата и коремния тиф, при които обикновено са необходими големи дози патогени, за да заразят човек. В развиващите се страни, където разпространението на болестта е предимно от човек на човек, носителите могат да бъдат важен резервоар на инфекциозния агент. При пациенти, които не са приемали антибактериални лекарства, отделянето на шигела с изпражненията обикновено продължава 14 седмици, но в малка част от случаите продължава много по-дълго.

Шигелозата е остра бактериална инфекция на червата, причинена от един от четирите вида Shigella. Спектърът от клинични форми на инфекция варира от лека водниста диария до тежка дизентерия, характеризираща се с коремни спазми, тенезми, треска и признаци на обща интоксикация.

Етиология.

Родът Shigella (наречен на К. Шига, който през 1898 г. подробно изучава и описва изолирания причинител на бактериална дизентерия от А. В. Григориев) от семейство Enterobacteriaceae се състои от група от тясно свързани бактериални видове със следните свойства:

аз Морфологичен: шигела - малки клечкисъс заоблени краища. Те се различават от другите представители на семейство Enterobacteriaceae по липсата на флагели (неподвижни), нямат спори и капсули и са грам-отрицателни.

II. Културен: шигелите са аероби или факултативни анаероби; оптимални условиятемпература на култивиране 37°C, pH 7.2-7.4. Развиват се върху прости хранителни среди (MPA, MPB) под формата на малки, лъскави, полупрозрачни, сивкави, кръгли колонии с размер 1,52 mm.С форма. Изключение правят Shigella на Sonne, които често се дисоциират, образувайки големи, плоски, мътни колонии с назъбени ръбове.Р форми (колониите приличат на „гроздов лист“). В течни хранителни среди Shigella дават равномерна мътност,Р форми образуват утайка. Течната среда за обогатяване е селенитен бульон.

III. Ензимна: основните биохимични характеристики, необходими за идентифициране на шигела при изолиране на чиста култура, са следните:

1. липса на образуване на газ по време на ферментация на глюкоза;
2. няма производство на сероводород;
3. липса на ферментация на лактоза в рамките на 48 часа.

Общо четирите вида са допълнително подразделени на приблизително 40 серотипа. Според характеристиките на основните соматични (О) антигени и биохимични свойства се разграничават следните четири вида или групи: S. dysenteriae (група А, включва: Grigoriev-Shigi, Stutzer-Schmitz, Large-Sachs), S. flexneri (група B), S. boydii (група C) и S. sonnei (група D).

По отношение на манитола, всички шигели се разделят на разцепващи (Flexner, Boyd, Sonne shigella) и неразделящи се (Grigoriev-Shiga, Stutzer-Schmitz, Large-Sachs shigella) манитол.

IV. Патогенни фактори:

1. Плазмидна инвазияосигурява способността на шигелите да предизвикват инвазия с последващо междуклетъчно разпространение и размножаване в епитела на лигавицата на дебелото черво;
2. образуване на токсини: Shigella имат липополизахарид ендотоксин, който е химически и биохимично подобен на ендотоксините на други членове на семейство Enterobacteriaceae. В допълнение, S. dysenteriae тип I (бацилът на Shiga) произвежда екзотоксин. След откриването на последния е установено, че той има ентеротоксинова активност и може да предизвика чревна секреция, както и да има цитотоксичен ефект срещу чревните епителни клетки; има невротоксичен ефект, който се отбелязва при деца с шигелоза. Шига токсинът, попадайки в кръвта, заедно с увреждането на субмукозния ендотел, засяга и гломерулите на бъбреците, в резултат на което в допълнение към кървавата диария се развива хемолитично-уремичен синдром с развитието на бъбречна недостатъчност.

V. Антигенна структура:Всички Shigella имат соматичен О-антиген, в зависимост от структурата на който се разделят на серовари.

VI. Съпротивление:Температура 100 0 C убива незабавно шигела. Shigella са устойчиви на ниски температури в речна водате се съхраняват до 3 месеца, върху зеленчуци и плодове - до 15 месеца.При благоприятни условия шигелите могат да се размножават в хранителни продукти(салати, винегрети, варено месо, мляно месо, варена риба, мляко и млечни продукти, компоти и желе), особено Shigella Sonne.

Епидемиология.

1. Източник на инфекция:Лице, страдащо от остри и хронични форми на шигелоза; бактерионосител.

2. Начини на предаване:

• Храна (главно за S. sonnei)
• Водни (главно за S. flexneri)
• Контактно домакинство (главно за S. dysenteriae)

3. входна порта инфекция обслужва стомашно-чревния тракт.

Патогенеза и патологични промени.

След поглъщане Shigella колонизират горните области тънко червои се размножават там, като вероятно причиняват повишена секреция ранна фазаинфекции. След това шигелите проникват през М клетките в субмукозата, където се поглъщат от макрофаги. Това води до смърт на част от шигелите, което води до освобождаване на възпалителни медиатори, които инициират възпаление в субмукозата. Апоптозата на фагоцитите позволява на друга част от Shigella да оцелее и да проникне в епителните клетки на лигавицата през базалната мембрана. Вътре в ентероцитите шигелите се възпроизвеждат и междуклетъчно се разпространяват, което води до развитие на ерозии. При смъртта на шигела се отделят шига и шигаподобни токсини, чието действие води до интоксикация. Поражението на лигавицата е придружено от подуване, некроза и кръвоизлив, което причинява появата на кръв в изпражненията. В допълнение, токсинът засяга централната нервна система, което води до трофични нарушения.

Клинични проявления.

Спектърът на клиничните прояви на шигелозата е много широк от лека диария до тежка дизентерия със спазми в корема, тенезъм, треска и обща интоксикация.

Инкубационен периодварира от няколко часа до 7 дни, най-често 2-3 дни.Първоначално пациентите имат воднисти изпражнения, треска (до 41 ° C), дифузна болка в корема, гадене и повръщане. Заедно с това пациентите се оплакват от миалгия, втрисане, болки в гърба и главоболие. В следващите дни от началото на заболяването се появяват признаци на дизентерия - тенезми, чести, оскъдни, кърваво-лигавични изпражнения. Телесната температура постепенно намалява, болката може да бъде локализирана в долни квадрантикорема. Интензивността на диарията достига максимум в края на първата седмица на заболяването. Дизентерия с кървави изпражнения е по-честа и се проявява по-рано в заболяването, причинено от S. dysenteriae тип I, отколкото при други форми на шигелоза.

За Shigellosis Sonne характерен е по-лек ход на заболяването (гастроентеричен или гастроентероколитичен вариант). Фебрилният период е по-кратък, ефектите от интоксикацията са краткотрайни, деструктивните промени в чревната лигавица не са характерни.

Шигелоза ФлекснерОсновно са характерни два варианта на клиничното протичане - гастроентероколитичен и колитен.

Екстраинтестинални усложнения при шигелозаредки:

1. Усложнение на шигелозата може да бъде развитието на чревна дисбактериоза.
2. Наред с главоболието може да има признаци на менингит и конвулсивни припадъци.
3. Описани са случаи на периферна невропатия при инфекция с S. dysenteriae тип I и случаи на синдром на Guillain-Barré (полиневрит) са докладвани по време на огнище на гастроентерит с S. boydii.
4. С изключение на децата, страдащи от дистрофия, хематогенното разпространение на патогена е сравнително рядко, а също така са описани случаи на шигелозни абсцеси и менингит.
5. При шигелоза е възможно развитието на синдром на Reiter с артрит, стерилен конюнктивит и уретрит, това обикновено се случва след 1-4 седмици от началото на диарията при пациентите.
6. При деца шигелозата е придружена от хемолитичен уремичен синдром, често свързан с реакции, подобни на левкемия, тежък колит и циркулиращ ендотоксин, но бактериемия обикновено не се открива.
7. Много рядко гноен кератоконюнктивит се причинява от шигела, попаднала в очите в резултат на самоинфекция със замърсени пръсти.
8. Хиповолемичен шок и DIC.
9. Перитонит, чревна гангрена, чревно кървене.

Имунитет: Хората имат естествена резистентност към шигелозата. След минало заболяванеимунитетът не е стабилен и след шигелоза Sonne практически отсъства. При заболяване, причинено от Shigella Grigoriev Shigi, се развива по-стабилен антитоксичен имунитет. Основната роля в защитата срещу инфекция принадлежи на секреторите IgA , предотвратяване на адхезията и зависимата от цитотоксичните антитела активност на интраепителните лимфоцити, които заедно със секреторните IgA убийте шигела.

Диагностика и лабораторни изследвания.

Цел на изследването: откриване и идентифициране на шигели за диагностика; откриване на бактериални носители; откриване на шигела в храни.

Изследователски материал: екскременти, секционен материал, хранителни продукти.

Диагностични методи:микробиологични (бактериологични, микроскопски (луминисцентни); серологични; биологични; тест за алергия.

Напредък на изследванията:

1 учебен ден:Културите трябва да се правят от прясно отделени изпражнения или с помощта на ректални тампони (ректална сонда); при липса на подходящи условия материалът трябва да се постави в транспортна среда. За това трябва да се използва ентеричен агар (среда MacConkey или Shigella-Salmonella), умерено селективен ксилоза-лизин-дезоксихолатен агар, KLD) и хранителен бульон (селенитен бульон). Ако времето между събирането и инокулацията надвишава 2 часа, трябва да се използват консервиращи разтвори: 20% жлъчен бульон, комбинирана среда на Кауфман.

• Екскрементите в глицериновата смес се емулгират, капка от емулсията се нанася върху средата и се разтрива с шпатула. Диференциални среди за Shigella са среди Ploskirev, Endo и EMS (еозинметиленово синьо агар). Средата на Ploskirev (съставът на средата включва: MPA, лактоза, жлъчни соли и индикаторът брилянтно зелено) също е елективна среда за шигела, т.к. инхибира растежа на Escherichia coli.
• Успоредно с директната сеитба, събраният материал се засява върху обогатителна среда - селенитов бульон.
• Всички култури се поставят в термостат.

Ден 2 от изследването:

• Чашите се изваждат от термостата, подозрителните колонии се изследват върху среда на Ressel (хранителна среда, която включва: агар-агар, индикатор Andrede, 1% лактоза, 0,1% глюкоза) и манитол. Засяването се извършва чрез щрихи върху наклонена повърхност и инжектиране в колона с агар. Инокулираната Ressel среда се поставя в термостат за 18-24 часа (успоредно с това се извършва повторно засяване от селенитна среда към диференциално диагностична среда).
• Направете петна (оцветяване по Грам), микроскоп.
• Подгответе препарати "висящи" или "натрошени" капка.
• Изявление за показателен RA с поливалентни диагностични серуми за шигелоза.
• Посяване на подозрителни колонии върху наклонен агар.

Ден 3 от изследването:

• Микроскопия на материал от агар.
• Култури, които не са ферментирали лактоза върху среда на Ressel, се подлагат на по-нататъшно изследване: правят се петна (оцветяване по Грам), проверява се чистотата на културата. При наличие на грам-отрицателни пръчици, инокулацията се извършва върху среда на Hiss, бульон с индикаторни хартии (за откриване на индол и сероводород) и лакмусово мляко.
• Инокулираните среди се поставят в термостат за 18-24 часа.

Ден 4 от изследването:

• Отчитане на кратка "пъстра серия".
• Култури, подозрителни за техните ензимни и културни свойства срещу Shigella, се подлагат на серологична идентификация. Отчет за RA върху стъкло (типични и групови диагностични серуми). Настройка на разгърнатия RA.

Като ускорени методи за шигелоза, прилагайтефлуоресцентна микроскопияИ биологична проба(въвеждане на вирулентни щамове на Shigella в конюнктивалния сак (под долния клепач) на морските свинчета, конюнктивитът се развива до края на 1-ия ден).

Алергичен тест Zuverkalovинтрадермален алергичен тест с дизентерия (въвеждане на 0,1 ml дизентерия в предмишницата положителна реакция в случай на инфилтрация и хиперемия). Алергологичната диагностика в момента практически не се използва. Тестът на Цървекалов не се отличава със специфичност, положителни реакции се регистрират не само при шигелоза, но и при салмонелоза, ешерихиоза, йерсиниоза и други остри чревни инфекции, а понякога и при здрави индивиди.

Лечение и профилактика.Бактериофагът се използва за лечение и профилактика по епидемиологични показания. перорално приложение, антибиотици след определяне на антибиограмата; при дисбактериоза препарати от пробиотици за корекция на микрофлората. За попълване на загубата на течности и електролити - въвеждането на глюкозо-електролитен разтвор вътре.

Конкретни цели:

Интерпретирайте биологичните свойства на патогените на шигелозата.

Запознайте се с класификацията на Shigella.

Научете се да интерпретирате патогенетичните модели на инфекциозния процес, причинен от шигела.

Да се ​​определят методите за микробиологична диагностика, етиотропна терапия и профилактика на шигелоза.

Умейте да:

• Инокулирайте тестовия материал върху хранителни среди.
  • Подгответе петна и оцветете по Грам.
  • Извършете микроскопия на препаратите с помощта на имерсионен микроскоп.
  • Анализирайте морфологичните, културните и ензимните характеристики на Shigella.

Теоретични въпроси:

1. Характеристики на патогени на шигелоза. биологични свойства.

2. Класификация на шигелите. Основните принципи.

3. Епидемиология, патогенеза и клинични характеристикишигелоза.

4. Лабораторна диагностика.

5. Принципи на лечение и профилактика на шигелоза.

Практически задачикоито се изпълняват в клас:

1. Микроскопия на демонстрационни препарати от чисти култури на патогени на шигелоза.

2. Работа по бактериологична диагностика на шигелоза: изследване на фекални култури върху средата на Ploskirev.

3. Субкултивиране на подозрителни колонии върху среда на Ressel и върху BCH за определяне на образуването на индол и H 2 S .

4. Скициране на демонстрационни препарати и схема за микробиологична диагностика на шигелоза в протокола на урока.

5. Регистрация на протокола.

Литература:

1. Коротяев А.И., Бабичев С.А., Медицинска микробиология, имунология и вирусология / Учебник за медицинските университети, Санкт Петербург "Специална литература", 1998. - 592с.

2. Тимаков В.Д., Левашев В.С., Борисов Л.Б. Микробиология / Учебник.-2-ро изд., прер. И допълнително - М .: Медицина, 1983, -512s.

3. Пяткин К.Д. Кривошеин Ю.С. Микробиология с вирусология и имунология.- Киев: In and shcha school, 1992. - 431s.

4. Медицинска микробиология / Под редакцията на V.I. Покровски.-M .: GEOTAR-MED, 2001.-768s.

5. Ръководство за практическо обучениепо микробиология, имунология и вирусология. Изд. М.П. Зиков. М. "Медицина". 1977. 288 стр.

6. Черкес Ф.К., Богоявленская Л.Б., Белскан Н.А. микробиология. / Ед. Ф.К. черкезки. М.: Медицина, 1986. 512 с.

7. Записки от лекции.

Допълнителна литература:

1. Макияров К.А. Микробиология, вирусология и имунология. Алма-Ата, "Казахстан", 1974. 372 с.

2. Титов М.В. Инфекциозни заболявания. – К., 1995. 321с.

3. Шувалова Е.П. инфекциозни заболявания. - М .: Медицина, 1990. - 559 с.

4. BME, том 1, 2, 7.

5. Павлович С.А. Медицинска микробиология в графики: Proc. надбавка за медицински по-другар. Мн.: Виш. училище, 1986. 255 с.

Накратко насокиза работа в практическото занятие.

В началото на урока се проверява нивото на подготовка на учениците за урока.

Самостоятелната работа се състои в изучаване на класификацията на шигела, анализ на схемата на патогенетичните и клинични признаци на шигелоза. Проучване на методите за лабораторна диагностика на шигелоза. Студентите извършват засяване на биоматериал върху хранителни среди. След това се изготвят микропрепарати, оцветяват се по Грам, извършва се микроскопия, скицират се микропрепарати и се дават необходимите пояснения. Съставът на самостоятелната работа включва и микроскопиране на демонстрационни препарати и тяхното скициране в протокола на урока.

В края на урока се провежда тестов контрол и анализ на крайните резултати от самостоятелната работа на всеки студент.

Технологична карта на практическото занятие.

п/п	Етапи	Време в минути	Начини на обучение	Оборудване	Местоположение
	Проверка и коригиране на началното ниво на подготовка за урока		Тестови задачи от начално ниво	Таблици, атлас	стая за учене
	Самостоятелна работа		Графика на логическата структура	Имерсионен микроскоп, багрила, предметни стъкла, бактериологични бримки, хранителни среди, среда на Плоскирев, среда на Ресел, "пъстра серия на Хис"
	Самопроверкаи корекция на усвояването на материала		Целеви учебни задачи
	Тестови контрол		Тестове
	Анализ на резултатите от работата

Целеви учебни задачи:

1. Изпражненията са получени от дете с остри чревни инфекции (събирането на изпражненията е извършено с ректална сонда), съдържащи слуз и гной. Какъв метод за експресна диагностика трябва да се използва?

А. ELISA.

b. РИФ.

° С. RA.

Д. RSK.

д. АПИ.

1. Причинителят на дизентерия е изолиран от болно дете с остра чревна инфекция. Какви морфологични особености са характерни за патогена?

А . Грам-отрицателна неподвижна пръчка.

б . Грам-положителна подвижна пръчка.

° С . Образува капсула върху хранителна среда.

д . Образува спори във външната среда.

д . Грам-положителни стрептобацили.

3. Пациент, който се разболя преди три дни и се оплаква от температура 38 ° C, болки в корема, чести течни изпражнения, наличие на кръв в изпражненията, лекарят клинично диагностицира бактериална дизентерия. Какъв метод за микробиологична диагностика трябва да се използва в този случай и какъв материал трябва да се вземе от пациента за потвърждаване на диагнозата?

А. Бактериоскопски кал.

Б. Бактериологична кал.

В. Бактериоскопска кръв.

D. Бактериологична урина.

E. Серологична кръв.

4. Shigella Sonne е изолирана от изпражненията на пациента. Какви допълнителни изследвания са необходими за установяване на източника на инфекцията?

А . Извършете фаготипизиране на изолираната чиста култура.

б . Определете антибиограма.

° С . Настройте реакцията на утаяване.

д . Настройте реакцията на фиксиране на комплемента.

д . Настройте реакция на неутрализация.

5. Сред групата туристи (27 души), които пият вода от езерото, след два дни 7 души развиват симптоми на остра диария. Какъв материал трябва да бъде изпратен в бактериологичната лаборатория, за да се установи етиологията на това заболяване?

А. Вода, изпражнения на пациенти.

Б. Вода, кръвта на болните.

В. Хранителни продукти.

Д. Урина.

E. Храчки.

6. Съществен недостатък на микроскопския диагностичен метод за остри чревни инфекции е недостатъчното му информативно съдържание поради морфологичната идентичност на бактериите от семейството Enterobacteriaceae . Какво прави този метод по-информативен?

А . Радиоимуноанализ.

б . Реакция на Кумбс.

° С . Свързан имуносорбентен анализ.

д . реакция на опсонизация.

д . Реакция на имунофлуоресценция.

7. 29-годишен пациент е хоспитализиран с пристъпи на повръщане, диария и тенезми. Изпражнения с парчета слуз и примес на кръв. Бактериологичното изследване на бактерии от колонии върху средата на Ploskirev разкрива неподвижни, грам-отрицателни пръчки, които не ферментират лактоза. Посочете причинителя на инфекциозния процес.

А. Shigella flexneri.

b. Вибрио елтор.

C. E. Coli.

D. Proteus mirabilis.

д. Salmonella enteritidis.

8. В микробиологичната лаборатория е доставена маруля, за която се предполага, че е причинител на остра чревна инфекция. Какви хранителни среди се използват за първична инокулация?

А . Жълтъчно-солев агар, MPB.

b. MPA, MPB.

° С . Селенит бульон, Ендо, Плоскирева.

д . Бульон от черен дроб, средно ру.

д . Кръвен агар, алкален агар.

9. При микробиологично изследване каймаизолирани бактерии, принадлежащи към род Shigella. Изследването на какви свойства на микробите доведе до такова заключение?

А . Културен, тинкториален.

б . Антигенен, културен.

° С . Захаролитичен, протеолитичен.

д . Антигенен, имуногенен.

д . Морфологични, антигенни.

10. При микроскопско изследване на повърнат материал от пациент със симптоми на остра чревна инфекция се установяват неподвижни пръчици. В каква цитонамазка или препарат може да се изследва бактериалната подвижност?

А . В цитонамазка, оцветена по Грам.

б . В намазка, оцветена по Tsil - Nelsen.

° С . В подготовката "дебела капка".

д . В цитонамазка, оцветена по Neisser.

д . В подготовката "натрошена капка".

Алгоритъм лабораторна работа :

1. Изследване на биологичните свойства на Shigella.

2. Запознаване с класификацията на шигелите.

3. Анализ на схемата на патогенетичните и клинични прояви на шигелоза.

4. Проучване на методите за лабораторна диагностика на шигелоза.

5. Изучаване на основните принципи на терапия и профилактика на шигелоза.

1. Приготвяне на фиксирани препарати от бактериална култура.
2. Оцветяване микропрепаратиот Грам.
3. Микроскопия на микропрепаратис с помощта на имерсионен микроскоп, техния анализ и скициране в протокола от урока.
4. Ми хромоскопия и анализ на демонстрационни препарати от чисти култури на Shigella.
5. Скициране на демонстрационни препарати и схема на лабораторна диагностика на шигелоза в протокола.
6. Формулиране на протокола.

Класификация на шигели, техните свойства. Патогенезата на шигелозата.

Бактериалната дизентерия или шигелозата е инфекциозно заболяване, причинено от бактерии от рода Shigella, протичащо с преобладаващо увреждане на дебелото черво. Името на рода се свързва с К. Шиги, който открива един от патогените

дизентерия.

Таксономия и класификация. Причинителите на дизентерия принадлежат към отдел Gracilicutes, семейство Enterobacteriaceae, род Shigella.

Морфология и тинкториални свойства. Shigella - грам-отрицателни пръчици със заоблени краища, дълги 2-3 микрона, дебелина 0,5-7 микрона (виж фиг. 10.1); не образуват спори, нямат флагели, неподвижни са. При много щамове се откриват власинки от общ тип и генитални пили. Някои Shigella имат микрокапсула.

Култивиране.Дизентерийните пръчки са факултативни анаероби. Те не са взискателни към хранителните среди, растат добре при температура 37 ° C и рН 7,2-7,4. В плътна среда те образуват малки прозрачни колонии, в течна среда -

дифузна мъгла. Селенитният бульон най-често се използва като обогатителна среда за култивиране на Shigella.

Ензимна активност. Shigella имат по-слаба ензимна активност от другите ентеробактерии. Те ферментират въглехидратите с образуването на киселина. Важна характеристика, която прави възможно разграничаването на Shigella, е връзката им с манитола: S. dysenteriae не ферментира манитол, представителите на групи B, C, D са манитол-положителни. Най-биохимично активни са S. sonnei, които бавно (в рамките на 2 дни) могат да ферментират лактозата. Въз основа на връзката на S. sonnei с рамнозата, ксилозата и малтозата се разграничават 7 негови биохимични варианта.

Антигенна структура. Shigella имат О-антиген, неговата хетерогенност позволява разграничаване на серовари и субсеровари в групи; в някои членове на рода се открива К-антигенът.

фактори на патогенност. Всички дизентерийни бацили образуват ендотоксин, който има ентеротропен, невротропен, пирогенен ефект. В допълнение, S. dysenteriae (серовар I) - Shigella Grigoriev-Shigi - отделят екзотоксин, който има ентеротоксичен, невротоксичен, цитотоксичен и нефротоксичен ефект върху тялото, което съответно нарушава водно-солевия метаболизъм и дейността на централната нервна система, води до смърт на епителните клетки на дебелото черво, увреждане на бъбречните тубули. Повече от тежко протичанедизентерия, причинена от този патоген. Други видове Shigella могат да отделят екзотоксин. Открит е факторът RF пропускливост, в резултат на който се засягат кръвоносните съдове. Факторите на патогенност също включват инвазивен протеин, който улеснява проникването им в епителните клетки, както и протеини на пили и външна мембрана, отговорни за адхезията, и микрокапсула.

съпротива. Shigella имат ниска устойчивост на действие различни фактори. S. sonnei са по-устойчиви, които се задържат в чешмяна вода до 2 "/2 месеца, във водата на открити резервоари оцеляват до V / 2 месеца. S. sonnei може не само да се задържи дълго време, но и се размножават в продуктите, особено в млечните продукти.

Епидемиология. Дизентерията е антропонозна инфекция: източник са болни хора и носители. Механизмът на предаване на инфекциите е фекално-орален. Пътищата на предаване могат да бъдат различни - при дизентерия на Зоне преобладава хранителният път, при дизентерия на Флекснер - вода, за дизентерия на Григориев-Шига е характерен контактно-битовият път. Дизентерия се среща в много страни по света. През последните

години се наблюдава рязко покачване на заболеваемостта от тази инфекция. Боледуват хора от всички възрасти, но най-податливи на дизентерия са децата от 1 до 3 години. Броят на заболелите нараства през юли - септември. Различни видове шигела по индивид

регионите са неравномерно разпределени.

Патогенеза. Шигелите навлизат в стомашно-чревния тракт през устата и достигат до дебелото черво. Притежавайки тропизъм към своя епител, патогените се прикрепят към клетките с помощта на пили и протеини на външната мембрана. Благодарение на инвазивния фактор те проникват вътре в клетките, размножават се там, в резултат на което клетките умират. В чревната стена се образуват язви, на мястото на които след това се образуват белези. Ендотоксинът, отделен по време на унищожаването на бактериите, причинява обща интоксикация, повишена чревна подвижност и диария. Кръвта от образуваните язви навлиза в изпражненията. В резултат на действието на екзотоксина се наблюдава по-изразено нарушение на водно-солевия метаболизъм, дейността на централната нервна система и увреждане на бъбреците.

клинична картина.Инкубационният период продължава от 1 до 5 дни. Заболяването започва остро с повишаване на телесната температура до 38-39 ° C, появяват се болки в корема, диария. В изпражненията се открива примес на кръв, слуз. Най-тежката дизентерия е Григориев-Шига.

Имунитет. След заболяване имунитетът е не само видово-специфичен, но и вариантно-специфичен. Той е краткотраен и нестабилен. Често заболяването става хронично.

Микробиологична диагностика.Като материал за изследване се вземат изпражненията на пациента. Основата на диагнозата е бактериологичният метод, който позволява да се идентифицира патогенът, да се определи неговата чувствителност към

антибиотици, провеждане на вътреспецифична идентификация (определяне на биохимичния вариант, серовар или колициногеновар). При продължителен курс на дизентерия може да се използва като спомагателен серологичен метод, който се състои в стадиране на RA, RNHA (чрез повишаване на титъра на антителата по време на повторна реакция, диагнозата може да бъде потвърдена).

Лечение.Пациентите с тежки форми на дизентерия Grigoriev-Shiga и Flexner се лекуват с широкоспектърни антибиотици със задължителното отчитане на антибиограмата, тъй като сред Shigella често има не само резистентни към антибиотици

chivy, но също и антибиотик-зависими форми. При леки форми на дизентерия не се използват антибиотици, тъй като употребата им води до дисбактериоза, което я затруднява. патологичен процес, и нарушаване на възстановителните процеси в лигавицата на дебелото черво.

Предотвратяване. Единственото лекарство, което може да се използва в огнищата на инфекцията за профилактични цели, е дизентеричният бактериофаг. Основна роля играе неспецифичната профилактика.

11. Йерсинии – причинителите на чумата. Имоти. Патогенеза, имунитет, лабораторна диагностика, епидемиология, профилактика, лечение. Ролята на местните учени в изследването на чумата.

Таксономия: Y.pestis причинява чума; отдел Gracilicutes, семейство Enterobacteriaceae, род Yersinia. Причинителят е Yersinia pestis.

Морфологични свойства:Грам-отрицателни пръчки, яйцевидни, оцветени биполярни. Те са подвижни, имат капсула, не образуват спори.

културни ценности.

факултативни анаероби. Температурен оптимум + 25С. Добре се култивира върху прости хранителни среди. Повечето въглехидрати ферментират без образуване на газ. Психофили - способни да променят метаболизма си в зависимост от температурата и да се размножават при ниски температури. Вирулентните щамове образуват грапави (R) колонии, преходни (RS) и сивкаво лигави гладки авирулентни (S) форми.

Два вида колонии - млади и зрели. Ювенил с неравни ръбове. Зрелите колонии са големи, с кафяв гранулиран център и назъбени ръбове. Върху наклонен агар в продължение на два дни при +28 C се образува сивкав - бяло покритие, нарастващи в околната среда, върху бульона - деликатен повърхностен филм и памучна утайка.

Биохимични свойства:висока ензимна активност: ферментация до кисела ксилоза, синтез на плазмокоагулаза, фибринолизин, хемолизин, лецитиназа, сероводород. Рамноза, урея не ферментира.

Антигенна структура.

Група протеиново-полизахаридни и липополизахаридни антигени: термостабилен соматичен О-антиген и термолабилни капсулни V, W антигени. Вирулентността на бактериите е свързана с W антигена. Той произвежда фактори на патогенност: фибринолизин, плазмокоагулаза, ендотоксин, екзотоксин, капсула, V, W антигени.

Съпротивление:чувствителни към антибиотици (особено стрептомицин), нестабилни към околната среда при високи температури.

патогенни свойства.

Притежава патогенен потенциал, потиска функциите фагоцитна система, потиска оксидативния взрив във фагоцитите и се размножава свободно в тях. Факторите на патогенност се контролират от три класа плазмиди. В патогенезата се различават три основни етапа - лимфогенен дрифт, бактериемия, генерализирана септицемия. Те имат адхезини и инвазини, нискомолекулни протеини (инхибират бактерицидните фактори), ентеротоксин. Някои фактори се контролират от вирулентни плазмиди.

Клинични характеристики:Инкубационният период е от няколко часа до 8 дни. Разграничаване на местно - кожно-бубонна, бубонна; външно дисеминирани - първични белодробни, вторични белодробни и чревни; генерализирани - първично септични, вторично септични форми на чума. Регионална лимфаденопатия, ентероколит, реактивен артрит, спондилит, треска.

Епидемиология:Чумата е класическа природно-огнищна зооноза по дивите животни. Основни преносители в природата са мармоти, земни катерици, в градски условия - плъхове. При предаването на патогена - бълхи от животни, които могат да заразят хората.

Имунитет:клетъчно-хуморален, ограничен по продължителност и интензитет.

Микробиологична диагностика:

Бактериоскопско изследване. Натривки се приготвят от тестовия материал, оцветен по Грам и воден разтвор на метиленово синьо. Чумните бактерии са грам-отрицателни пръчици с яйцевидна форма. бактериологично изследване.Тестовият материал се инокулира върху плаки с хранителен агар. Културите се инкубират при 25°С. Първичното изследване на посевите се извършва след 10 часа. По това време се появяват колонии, които се образуват от вирулентни R-форми. Ниските и авирулентни бактерии образуват S-образни колонии. Идентифицирането на чиста култура се извършва според морфологията на бактериалните клетки, естеството на растеж, антигенни и биохимични свойства, чувствителност към специфичен фаг и биоанализ.

Бактериите образуват филм върху бульона; ферментират много захари до киселина, не образуват индол, не втечняват желатина. Те съдържат групов термостабилен соматичен антиген и специфичен термолабилен капсулен антиген.

Биологичен анализ.Извършва се за изолиране на чиста култура от материал, заразен с чужда микрофлора. Най-чувствителните лабораторни животни са морските свинчета, на които материалът се инжектира подкожно. Интраперитонеално, материалът се инжектира, ако не е заразен с други бактерии. След смъртта на животните се отбелязват патологични промени в органите и се извършва бактериологично изследване.

Експресни методи за лабораторна диагностика:

2.RPGA - за откриване на бактериални антигени в материала се използва стандартен противочумен серум, чиито антитела се зареждат върху еритроцитите.

Лечение:антибиотици - стрептомицин, тетрациклинови лекарства.

Предотвратяване:специфична профилактика - жива атенюирана EV ваксина срещу чума. Предлага се ваксина под формата на суха таблетка за перорално приложение. За оценка на имунитета към чума (естествен постинфекция и ваксина) може да се използва интрадермален алергичен тест с пестин.

Чумен бактериофаг– при идентифициране на Y.pestis.

Суха ваксина срещу чума -изсушена жива култура на Y. pestis ваксинален щам EV, използван за профилактика на чума.

Микробиология на дизентерия

Дизентерията е инфекциозно заболяване, характеризиращо се с обща интоксикация на тялото, диария и специфично увреждане на лигавицата на дебелото черво. Това е едно от най-честите остри чревни заболявания в света. Заболяването е известно от древността под името "кървава диария", но природата му се оказва друга. През 1875 г. руският учен Ф. А. Леш изолира амеба от пациент с кървава диария Entamoeba histolytica, през следващите 15 години се установява самостоятелността на това заболяване, за което се запазва името амебиаза.

Причинителите на същинската дизентерия са голяма група биологично сходни бактерии, обединени в рода Шигела. Патогенът е открит за първи път през 1888 г. от A. Chantemes и F. Vidal; през 1891 г. той е описан от А. В. Григориев, а през 1898 г. К. Шига, използвайки серума, получен от пациент, идентифицира патогена при 34 пациенти с дизентерия, като най-накрая доказва етиологичната роля на тази бактерия. Въпреки това, в следващите години са открити и други причинители на дизентерия: през 1900 г. - от S. Flexner, през 1915 г. - от K. Sonne, през 1917 г. - от K. Stutzer и K. Schmitz, през 1932 г. - от J. Boyd. , през 1934 г. - от Д. Лардж, през 1943 г. - от А. Сакс. В момента род Шигелавключва повече от 40 серотипа. Всички те са къси неподвижни грам-отрицателни пръчици, които не образуват спори и капсули, които растат добре на обикновени хранителни среди, не растат на хранителна среда с цитрат или малонат като единствен източник на въглерод; не образуват H 2 S, нямат уреаза; реакцията на Voges-Proskauer е отрицателна; глюкозата и някои други въглехидрати се ферментират, за да образуват киселина без газ (с изключение на някои биотипове Shigella flexneri: С. МанчестърИ С. Нюкасъл); като правило не ферментират лактоза (с изключение на Shigella Sonne), адонит, салицин и инозитол, не втечняват желатин, обикновено образуват каталаза, нямат лизин декарбоксилаза и фенилаланин деаминаза. Съдържанието на G + C в ДНК е 49 - 53 mol%. Шигелите са факултативни анаероби, температурният оптимум за растеж е 37 °C, не се развиват при температури над 45 °C, оптималното pH на средата е 6,7 - 7,2. Колониите върху плътна среда са кръгли, изпъкнали, полупрозрачни, в случай на дисоциация се образуват груби колонии с форма на R. Растежът върху BCH под формата на равномерна мътност, грапавите форми образуват утайка. Прясно изолирани култури от Sonne Shigella обикновено образуват колонии от два вида: малки кръгли изпъкнали (I фаза), големи плоски (II фаза). Естеството на колонията зависи от наличието (I фаза) или отсъствието (II фаза) на плазмид с m.m.120 MD, което също определя вирулентността на Shigella Sonne.

Международна класификация Shigella е изградена, като се вземат предвид техните биохимични характеристики (манитол-неферментираща, манитол-ферментираща, бавно ферментираща лактоза Shigella) и характеристиките на антигенната структура (Таблица 37).

В Shigella са открити О-антигени с различна специфичност: общи за семейството Enterobacteriaceae, генерични, видови, групови и типоспецифични, както и К-антигени; Те нямат H антигени.

Таблица 37

Класификация на бактериите от рода Шигела

Класификацията взема предвид само групови и типоспецифични О-антигени. Според тези характеристики, Шигеласе подразделя на 4 подгрупи или 4 вида и включва 44 серотипа. В подгрупа А (вид Shigella dysenteriae) включва шигели, които не ферментират манитол. Видът включва 12 серотипа (1 - 12). Всеки серотип има свой специфичен тип антиген; антигенните връзки между серотипове, както и с други видове шигели, са слабо изразени. Към подгрупа Б (вид Shigella flexneri) включват Shigella, обикновено ферментиращи манитол. Shigella от този вид са серологично свързани помежду си: те съдържат типоспецифични антигени (I - VI), според които се разделят на серотипове (1 - 6) и групови антигени, които се намират в различни състави във всеки серотип и според които серотиповете се разделят на субсеротипове. В допълнение, този вид включва два антигенни варианта, X и Y, които нямат типични антигени; те се различават по набори от групови антигени. Серотип S. flexneri 6няма субсеротипове, но се разделя на 3 биохимични типа според характеристиките на ферментацията на глюкоза, манитол и дулцит (Таблица 38).

Таблица 38

Биотипове S. flexneri 6

Забележка. К - ферментация с образуване само на киселина; KG - ферментация с образуване на киселина и газ; (-) - без ферментация.

Липополизахаридният антиген О във всички Shigella Flexner съдържа групов антиген 3, 4 като основна първична структура, неговият синтез се контролира от хромозомен ген, локализиран близо до his-локуса. Типоспецифичните антигени I, II, IV, V и груповите антигени 6, 7, 8 са резултат от модификация на антигени 3, 4 (гликозилиране или ацетилиране) и се определят от гените на съответните конвертиращи профаги, мястото на интегриране на който се намира в lac-pro региона на хромозомата Shigella.

Появява се на територията на страната през 80-те години. 20-ти век и широко използван нов субсеротип S. flexneri 4(IV:7, 8) се различава от субсеротип 4a (IV:3, 4) и 4b (IV:3, 4, 6), възникнал от варианта S. flexneri Y(IV: 3, 4) поради лизогенизация от неговите конвертиращи профаги IV и 7, 8.

Към подгрупа С (вид Shigella boydii) включват Shigella, обикновено ферментиращи манитол. Членовете на групата са серологично различни един от друг. Антигенните връзки в рамките на вида са слабо изразени. Видът включва 18 серотипа (1 - 18), всеки от които има свой собствен основен тип антиген.

В подгрупа D (вид Shigella sonnei) включва Shigella, които обикновено ферментират манитол и са в състояние бавно (след 24 часа инкубация и по-късно) да ферментират лактоза и захароза. Преглед S. sonneiвключва един серотип, но колониите във фази I и II имат свои собствени специфични за типа антигени. Предложени са два метода за вътрешноспецифична класификация на Shigella на Sonne:

1) разделянето им на 14 биохимични типа и подтипа според способността им да ферментират малтоза, рамноза и ксилоза; 2) разделяне на типове фаги според чувствителността към набор от съответни фаги.

Тези методи за типизиране имат главно епидемиологично значение. В допълнение, шигелите на Sonne и шигелите на Flexner се подлагат на типизиране за същата цел чрез способността да синтезират специфични колицини (колициногенотипиране) и чрез чувствителност към известни колицини (колицинотипиране). За да се определи вида на колицините, продуцирани от шигела, J. ​​Abbott и R. Shannon предложиха набори от типични и индикаторни щамове на шигела и за определяне на чувствителността на шигела към известни видове колицини, набор от референтни колициногенни щамове от P. Frederick се използва.

съпротива. Shigella имат доста висока устойчивост на фактори на околната среда. Върху памучен плат и върху хартия издържат до 30-36 дни, в изсъхнали изпражнения - до 4-5 месеца, в почва - до 3-4 месеца, във вода - от 0,5 до 3 месеца, върху плодове и зеленчуци - до 2 седмици, в мляко и млечни продукти - до няколко седмици; при температура 60 ° C те умират за 15 - 20 минути. Чувствителен към разтвори на хлорамин, активен хлор и други дезинфектанти.

фактори на патогенност.Най-важното биологично свойство на Shigella, което определя тяхната патогенност, е способността да проникват в епителните клетки, да се размножават в тях и да причиняват смъртта им. Този ефект може да бъде открит с помощта на кератоконюнктивен тест (въвеждането на една бримка от Shigella култура (2-3 милиарда бактерии) под долния клепач на морско свинче причинява развитието на серозен гноен кератоконюнктивит), както и чрез инфекция на клетките култури (цитотоксичен ефект) или пилешки ембриони (тяхната смърт) или интраназално при бели мишки (развитие на пневмония). Основните фактори за патогенност на шигела могат да бъдат разделени на три групи:

1) фактори, които определят взаимодействието с епитела на лигавицата;

2) фактори, които осигуряват устойчивост на хуморалните и клетъчните защитни механизми на макроорганизма и способността на Shigella да се размножава в неговите клетки;

3) способността да произвежда токсини и токсични продукти, които определят развитието на действителния патологичен процес.

Първата група включва фактори на адхезия и колонизация: тяхната роля се играе от пили, протеини на външната мембрана и LPS. Ензими, разрушаващи слуз, като невраминидаза, хиалуронидаза и муциназа, насърчават адхезията и колонизацията. Втората група включва фактори на инвазия, които насърчават проникването на Shigella в ентероцитите и тяхното възпроизвеждане в тях и в макрофагите с едновременното проявление на цитотоксичен и (или) ентеротоксичен ефект. Тези свойства се контролират от гените на плазмида с m.m.140 MD (той кодира синтеза на протеини на външната мембрана, които причиняват инвазия) и хромозомните гени на Shigella: kcp A (причинява кератоконюнктивит), cyt (отговорен за разрушаването на клетките), както и други гени, които все още не са идентифицирани. Защитата на Shigella от фагоцитоза се осигурява от повърхностен К-антиген, антигени 3, 4 и липополизахарид. В допълнение, Shigella endotoxin lipid A има имуносупресивен ефект: той потиска активността на клетките на имунната памет.

Третата група фактори на патогенност включва ендотоксин и два вида екзотоксини, открити в Shigella - Shiga екзотоксини и Shiga-подобни екзотоксини (SLT-I и SLT-II), чиито цитотоксични свойства са най-силно изразени в S. dysenteriae 1. Shiga- и Shiga-подобни токсини, открити и в други серотипове S. dysenteriae, те също се образуват S. flexneri, S. sonnei, S. boydii, EHEC и малко салмонела. Синтезът на тези токсини се контролира от токсичните гени на конвертиращите фаги. Тип LT ентеротоксини са открити във Flexner, Sonne и Boyd Shigella. Синтезът на LT в тях се контролира от плазмидни гени. Ентеротоксинът стимулира активността на аденилат циклазата и е отговорен за развитието на диария. Шига токсинът или невротоксинът не реагира с аденилатциклазната система, но има директен цитотоксичен ефект. Shiga и Shiga-подобните токсини (SLT-I и SLT-II) имат MW от 70 kD и се състоят от A и B субединици (последната от 5 идентични малки субединици). Рецепторът за токсините е гликолипидът на клетъчната мембрана.

Вирулентността на Shigella Sonne също зависи от плазмида с m.m.120 MD. Той контролира синтеза на около 40 полипептида на външната мембрана, седем от които са свързани с вирулентност. Shigella Sonne с този плазмид образува фаза I колонии и е вирулентна. Култури, които са загубили плазмида, образуват колонии фаза II и нямат вирулентност. Плазмиди с m.m.120 - 140 MD са открити в Shigella Flexner и Boyd. Липополизахаридът на Shigella е мощен ендотоксин.

Характеристики на епидемиологията.Единственият източник на инфекция е човекът. Нито едно животно в природата не боледува от дизентерия. При експериментални условия дизентерия може да се възпроизведе само при маймуни. Методът на заразяване е фекално-орален. Начини на предаване - вода (предимно за Shigella Flexner), храна, особено важна роля имат млякото и млечните продукти (преобладаващ път на заразяване за Shigella Sonne), и контактно-битови, особено за вида S. dysenteriae.

Характеристика на епидемиологията на дизентерия е промяната във видовия състав на патогените, както и биотипове Sonne и серотипове Flexner в определени региони. Така например до края на 30-те години на ХХ в 20-ти век споделям S. dysenteriae 1представляват до 30 - 40% от всички случаи на дизентерия, а след това този серотип започва да се среща все по-рядко и почти изчезва. Въпреки това през 60-те - 80-те години на ХХ век. S. dysenteriaeсе появи отново на историческата арена и предизвика поредица от епидемии, довели до образуването на три хиперендемични огнища от него - в Централна Америка, Централна Африка и Южна Азия (Индия, Пакистан, Бангладеш и други страни). Причините за промяната във видовия състав на патогените на дизентерия вероятно са свързани с промяна в колективния имунитет и с промяна в свойствата на дизентерийните бактерии. По-специално връщането S. dysenteriae 1и широкото му разпространение, което причинява образуването на хиперендемични огнища на дизентерия, се свързва с придобиването на плазмиди от него, което причинява множество лекарствена резистентности повишена вирулентност.

Характеристики на патогенезата и клиниката.Инкубационният период на дизентерия е 2-5 дни, понякога по-малко от един ден. Формиране инфекциозен фокусв лигавицата на низходящата част на дебелото черво (сигмоида и ректума), където причинителят на дизентерия прониква, е цикличен: адхезия, колонизация, въвеждане на шигела в цитоплазмата на ентероцитите, тяхното вътреклетъчно възпроизвеждане, разрушаване и отхвърляне на епителните клетки, освобождаването на патогени в чревния лумен; след това започва следващият цикъл - адхезия, колонизация и др. Интензитетът на циклите зависи от концентрацията на патогени в париеталния слой на лигавицата. В резултат на повтарящи се цикли възпалителният фокус нараства, получените язви, свързващи се, увеличават експозицията чревна стена, в резултат на което в изпражненията се появяват кръв, мукопурулентни бучки, полиморфонуклеарни левкоцити. Цитотоксините (SLT-I и SLT-II) причиняват разрушаване на клетките, ентеротоксинът - диария, ендотоксините - обща интоксикация. Клиниката на дизентерия до голяма степен се определя от това какъв тип екзотоксини се произвежда в по-голяма степен от патогена, степента на неговия алергизиращ ефект и имунния статус на организма. Въпреки това, много въпроси на патогенезата на дизентерията остават неизяснени, по-специално: хода на дизентерия при деца от първите две години от живота, причините за прехода на остра дизентерия към хронична, значението на сенсибилизацията, механизма на местния имунитет. на чревната лигавица и др. Най-типичните клинични прояви на дизентерията са диария, чести позиви: в тежки случаи до 50 и повече пъти на ден, тенезми (болезнени спазми на ректума) и обща интоксикация. Естеството на изпражненията се определя от степента на увреждане на дебелото черво. Най-тежката дизентерия се причинява от S. dysenteriae 1, най-лесно - дизентерия на Зоне.

Постинфекциозен имунитет.Както показват наблюдения върху маймуни, след прекарана дизентерия остава силен и доста дълготраен имунитет. Причинява се от антимикробни антитела, антитоксини, повишена активност на макрофаги и Т-лимфоцити. Значителна роля играе локалният имунитет на чревната лигавица, медииран от IgAs. Имунитетът обаче е типоспецифичен по природа, силен кръстосан имунитет не възниква.

Лабораторна диагностика.Основният метод е бактериологичен. Материалът за изследването са изпражненията. Схема за изолиране на патогени: инокулация върху среди за диференциална диагностика на Endo и Ploskirev (успоредно върху средата за обогатяване, последвано от инокулация върху среди на Endo и Ploskirev) за изолиране на изолирани колонии, получаване на чиста култура, изследване на нейните биохимични свойства и, като се вземат предвид последното, идентификация с помощта на поливалентни и моновалентни диагностични аглутиниращи серуми. Произвеждат се следните търговски серуми.

1. Шигели, които не ферментират манитол:

Да се S. dysenteriae 1И 2

Да се S. dysenteriae 3–7(многовалентни и едновалентни),

Да се S. dysenteriae 8 – 12(многовалентни и едновалентни).

2. Към манитол, ферментиращ от шигела:

към типичните антигени S. flexneri I, II, III, IV, V, VI,

за групиране на антигени S. flexneri 3, 4, 6, 7, 8- поливалентен,

към антигени S.boydii 1–18(многовалентни и едновалентни), към антигени S. sonnei I фаза, II фаза,

към антигени S. flexneri I–VI+ S. sonnei- поливалентен.

За бързо идентифициране на Shigella се препоръчва следният метод: подозрителна колония (лактозонегативна върху среда Endo) се субкултивира върху среда TSI (англ. тройна захар желязо) - тризахарен агар (глюкоза, лактоза, захароза) с желязо за определяне на производството на H 2 S; или върху среда, съдържаща глюкоза, лактоза, захароза, желязо и урея. Всеки организъм, който разгражда уреята след 4 до 6 часа инкубация, най-вероятно принадлежи към рода Протейи могат да бъдат изключени. Може да се изключи микроорганизъм, произвеждащ H 2 S или имащ уреаза или произвеждащ киселина в ставата (ферментира лактоза или захароза), въпреки че щамовете, произвеждащи H 2 S, трябва да бъдат изследвани като възможни членове на рода Салмонела. Във всички останали случаи културата, отгледана върху тези среди, трябва да се изследва и ако ферментира глюкоза (промяна на цвета на лентата), да се изолира в чист вид. В същото време може да се изследва в теста за аглутинация върху стъкло с подходящи антисеруми към рода Шигела. При необходимост се извършват и други биохимични изследвания за проверка на принадлежността към рода Шигелаи учебна мобилност.

Следните методи могат да се използват за откриване на антигени в кръвта (включително като част от CEC), урината и изпражненията: RPHA, RSK, реакция на коаглутинация (в урина и изпражнения), IFM, RAGA (в кръвен серум). Тези методи са високоефективни, специфични и подходящи за ранна диагностика.

За серологична диагностика могат да се използват: RPGA със съответните еритроцитни диагностикуми, имунофлуоресцентен метод (в индиректна модификация), метод на Coombs (определяне на титъра на непълните антитела). Алергичен тест с дизентерия (разтвор на протеинови фракции на Shigella Flexner и Sonne) също има диагностична стойност. Реакцията се отчита след 24 ч. Счита се за положителна при наличие на хиперемия и инфилтрация с диаметър 10-20 mm.

Лечение.Основното внимание се обръща на възстановяването на нормалния водно-солев метаболизъм, рационално хранене, детоксикация, рационална антибиотична терапия (като се вземе предвид чувствителността на патогена към антибиотици). Добър ефект се постига чрез ранното използване на поливалентен дизентериен бактериофаг, особено таблетки с пектиново покритие, което предпазва фага от действието на HCl на стомашния сок; в тънките черва пектинът се разтваря, фагите се освобождават и проявяват своето действие. За профилактични цели фагът трябва да се прилага поне веднъж на всеки три дни (периода на неговото оцеляване в червата).

Проблемът със специфичната превенция.За създаване на изкуствен имунитет срещу дизентерия бяха използвани различни ваксини: от убити бактерии, химикали, алкохол, но всички те се оказаха неефективни и бяха преустановени. Ваксини срещу дизентерия на Flexner са създадени от жива (мутантна, стрептомицин-зависима) Shigella Flexner; рибозомни ваксини, но те също не са широко използвани. Следователно проблемът със специфичната профилактика на дизентерия остава нерешен. Основният начин за борба с дизентерията е подобряването на водоснабдителната и канализационната система, осигуряването на строги санитарно-хигиенни режими в хранителните предприятия, особено в млечната промишленост, в детските заведения, обществените места и личната хигиена.

UDC 616.935-074(047)

А.М.Садикова

Казахски национален медицински университет

на името на S.D. Асфендияров, Алмати

Катедра по инфекциозни и тропически болести

Надеждната диагноза на дизентерия е една от спешните задачи на наблюдението на AEI. Точната диагноза на бациларна дизентерия е важностза правото и своевременно лечениепациент и за прилагане на необходимите противоепидемични мерки. Данните, представени в прегледа, показват, че като се има предвид широкото разпространение на дизентерия, липсата на чувствителност и късно появяванеположителни резултати от много диагностични методи, препоръчително е да се развие диагностичният потенциал за откриване на тази инфекция.

Ключови думи: диагностика, дизентерия, метод на антиген-свързващи лимфоцити.

Разпознаването на инфекция с шигелоза в клиничната практика среща значителни трудности поради обективни фактори, които включват клиничния патоморфизъм на дизентерия, увеличаване на броя атипични формизаболявания, наличието на значителен брой заболявания от инфекциозен и неинфекциозен характер, имащи клинични прояви, подобни на дизентерия. Под диагнозата "клинична дизентерия" в половината от случаите се крият неразпознати заболявания с различна етиология.

Най-големите трудности възникват пред лекаря по време на първоначалния преглед на пациента преди получаване на резултатите от параклиничните диагностични методи. Разпознаването на дизентерия също е трудно при наличие на съпътстващи заболяваниястомашно-чревния тракт.

От началото на използването на етиологичната лабораторна диагностика на дизентерия са предложени и тествани доста методи. Има много класификации на методите за етиологична диагностика на инфекциите. Методологически класификацията, предложена от B.V. Наказание. По отношение на диагнозата дизентерия, принципите на методологично обоснована класификация са използвани от B.V. Каралник, Н.М. Нуркина, Б.К. Еркинбекова..

От лабораторните методи за диагностициране на дизентерия са известни бактериологични (изолиране и идентифициране на патогена) и имунологични. Последните включват имунологични методи in vivo (алергологичен тест Zuverkalov) и in vitro. Имунологичните методи in vitro имат едно несъмнено предимство пред теста Zuverkalov - те не са свързани с въвеждането на чужди антигени в тялото.

Повечето изследователи все още смятат, че бактериологичните изследвания, които включват изолиране в чиста културапричинителят на заболяването с последващото му идентифициране чрез морфологични, биохимични и антигенни характеристики е най-надеждният метод за диагностициране на инфекция с шигелоза. Честотата на изолиране на шигела от изпражненията на пациенти с клинична диагноза "остра дизентерия", според различни автори, варира от 30,8% до 84,7% и дори 91,1%. Такъв значителен диапазон за различни автори зависи не само от обективни фактори, влияещи върху ефективността на бактериологичното изследване, но и от задълбочеността на диагнозата (или изключването) на "клиничната дизентерия". Ефективността на бактериологичните изследвания се влияе от такива обективни фактори, като характеристики на хода на заболяването, метода на вземане на проби и доставяне на материал в лабораторията, качеството на хранителните среди, квалификацията на персонала, времето на контакт на пациента със здравни работници, употребата антимикробни средствапреди вземане на материал за изследване. количествен микробиологични изследванияизпражненията при остра дизентерия показват, че при всяка клинична форма на инфекция най-масивното освобождаване на патогени се наблюдава в първите дни на заболяването и започвайки от 6-ия и особено от 10-ия ден на заболяването, концентрацията на шигела в фекалиите са значително намалени. Т.А. Авдеева установи, че ниското съдържание на шигела и рязкото преобладаване на непатогенни микроорганизми в изпражненията практически изключват възможността за бактериологично откриване на дизентерийни бактерии.

Известно е, че бактериологичното потвърждение на инфекцията с шигелоза е най-често успешно при изследване на пациенти в първите дни на заболяването - копрокултурата на патогена в по-голямата част от случаите първо се изолира по време на първото изследване. Положителните резултати от бактериологичното изследване се отбелязват само през първите 3 дни от заболяването при 45-49% от пациентите, през първите 7 дни - при 75%. Tillet и Thomas също считат времето за изследване на пациентите като важен фактор при определяне на ефективността на бактериологичния метод за диагностициране на дизентерия. Според Т.А. Авдеева, в първите дни на заболяването, най-интензивното освобождаване на патогена се наблюдава при дизентерия на Sonne, по-малко интензивно при дизентерия на Flexner и най-малко при дизентерия на Flexner VI; в по-късните стадии на заболяването най-високата концентрация се поддържа най-дълго време при дизентерия на Flexner, по-малко дълго - Shigella Sonne и най-малко дълго - Shigella Flexner VI.

По този начин, въпреки че бактериологичното изследване на изпражненията е най-надеждният метод за диагностициране на инфекция с шигелоза, ограниченията на неговата ефективност, изброени по-горе, са значителни недостатъци. Също така е важно да се посочат ограниченията на ранната диагностика чрез бактериологичен метод, при който продължителността на анализа е 3-4 дни. Във връзка с тези обстоятелства използването на други методи за лабораторна диагностика е от голямо практическо значение. Друг микробиологичен метод за диагностициране на дизентерия също се основава на откриването на живи шигели. Това е реакция на повишаване на титъра на фагите (RNF), базирана на способността на специфични фаги да се размножават изключително в присъствието на хомоложни живи микроорганизми. Увеличаването на титъра на индикаторния фаг показва наличието на съответните микроби в средата. Диагностичната стойност на RNF при инфекция с шигелоза е тествана от B.I. Хаймзон, Т.С. Вилкомирская. RNF има доста висока чувствителност. Картографиране минимална концентрация Shigella в изпражненията, уловени чрез бактериологичен метод (12,5 хиляди бактерии в 1 ml) и RNF (3,0 - 6,2 хиляди), показва превъзходството на RNF.

Тъй като честотата на положителните резултати от RNF е в пряка зависимост от степента на замърсяване на изпражненията, използването на метода също дава най-голям ефект в първите дни на заболяването и при по-тежки форми на инфекциозния процес. По-високата чувствителност на метода обаче обуславя неговите специални предимства пред бактериологичното изследване в късните стадии на заболяването, както и при изследване на пациенти с леки, асимптоматични и субклинични форми на инфекция, с ниска концентрация на патогена в изпражнения. RNF се използва и при изследване на пациенти, приемащи антибактериални средства, тъй като последните драстично намаляват честотата на положителните резултати от бактериологичния метод на изследване, но в много по-малка степен влияят върху ефективността на RNF. Чувствителността на RNF не е абсолютна поради съществуването на фагорезистентни щамове на шигела: делът на фагорезистентните щамове може да варира в много широк диапазон - от 1% до 34,5%.

Голямото предимство на RNF е неговата висока специфичност. При изследване на здрави хора, както и пациенти с инфекциозни заболявания с различна етиология, положителни резултати от реакцията се наблюдават само в 1,5% от случаите. RNF е ценен допълнителен метод за диагностициране на шигелозна инфекция. Но днес този метод се използва рядко поради неговата техническа сложност. Други методи са имунологични. С тяхна помощ се регистрира специфичен имунен отговор по отношение на патогена или се определят антигените на патогена чрез имунологични методи.

Поради тежестта на процесите на специфична инфекциозна алергия при инфекция с шигелоза, за първи път са използвани алергологични диагностични методи, които включват интрадермален алергичен тест с дизентерия (VPD). Лекарството "дизентерия", което е специфичен алерген на Shigella, лишен от токсични вещества, е получено от D.A. Цуверкалов и за първи път е използван в клинични условия при поставяне на интрадермален тест от L.K. Коровицки през 1954 г. Според E.V. Голюсова и М.З. Трохименко, при наличие на предишна остра дизентерия или свързани алергични заболявания с кожни прояви (екзема, уртикария и др.). много по-често се наблюдават положителни резултати от VPD (параалергия). Анализ на резултатите от ВПД в различни периодиостра дизентерия показва, че специфична алергия се появява още в първите дни на заболяването, достига максималната си тежест на 7-15-ия ден и след това постепенно изчезва. Положителни резултати от реакцията са получени при изследване на здрави хора на възраст от 16 до 60 години в 15 - 20% от случаите и на възраст от 3 до 7 години - в 12,5% от случаите. Още по-често неспецифични положителни резултати от VPD се наблюдават при пациенти със стомашно-чревни заболявания - в 20 - 36% от случаите. Въвеждането на алергена е придружено от развитие на локална реакция при 35,5 - 43,0% от пациентите със салмонелоза, при 74 - 87% от пациентите с коли-0124-ентероколит. Сериозен аргумент срещу широкото използване на VPD в клиничната практика беше неговият алергизиращ ефект върху тялото. Като се има предвид горното, можем да кажем, че този метод не е много специфичен. Тестът на Цуверкалов също не е видоспецифичен. Положителните резултати от реакцията са еднакво чести при различни етиологични форми на дизентерия.

В допълнение към VPD се използват и други диагностични реакции с различна степен на валидност, считани за алергични, например реакцията на алергенна левкоцитолиза (ALC), чиято същност е специфичното увреждане или пълното унищожаване на активно или пасивно сенсибилизирани неутрофили при контакт със съответния АГ. Но тази реакция не може да се припише на методите за ранна диагностика, тъй като максималната честота на положителните резултати се наблюдава на 6-9-ия ден от заболяването и възлиза на 69%. Предложена е и реакция на алергенна левкергия (ALE). Основава се на способността на левкоцитите на сенсибилизиран организъм да се агломерират, когато са изложени на хомоложен алерген (дизентерия). Поради липсата на доказателства за точните механизми на такива тестове, недостатъчното съответствие на техните резултати с етиологията на заболяването, тези методи, след кратък период на тяхното използване в СССР, впоследствие не са получили широко разпространение.

Откриването на антигени на Shigella в организма е диагностично еквивалентно на изолирането на патогена. Основните предимства на методите за откриване на антигени пред бактериологичното изследване, обосновавайки ги клинично приложение, е възможността за откриване не само на жизнеспособни микроорганизми, но и на мъртви и дори унищожени, което придобива специално значениепри изследване на пациенти по време на или малко след курс на антибиотична терапия.

Един от най-добрите методи за бърза диагностика на дизентерия е имунофлуоресцентното изследване на изпражненията (метод на Кунс). Същността на метода се състои в откриването на шигела чрез третиране на тестовия материал със серум, съдържащ специфични антитела, маркирани с флуорохроми. Комбинацията от белязани антитела с хомоложни антигени е придружена от специфичен блясък на комплексите, открити във флуоресцентен микроскоп. На практика се използват два основни варианта на метода на Кунс: директен, при който се използва серум, съдържащ белязани антитела срещу антигени на Shigella, и индиректен (двуетапен), като на първия етап се използва серум, който не е белязан с флуорохром (или глобулинова фракция). серум против шигела). На втория етап се използва белязан с флуорохром серум срещу глобулини на антишигелозния серум, използван на първия етап. Сравнителното изследване на диагностичната стойност на два варианта на имунофлуоресцентния метод не разкрива големи разлики в тяхната специфичност и чувствителност. В клиничната практика използването на този метод е най-ефективно при изследване на пациенти в ранни датизаболявания, както и при по-тежки форми на инфекция. Съществен недостатък на имунофлуоресцентния метод е липсата на специфичност. Най-важната причинанедостатъчна специфичност на реакцията на имунофлуоресценция е антигенната връзка на ентеробактериите от различни родове. Поради това този метод се счита за показателен при разпознаването на шигелозна инфекция.

Използват се различни реакции за откриване на антигени на шигела без микроскопия. Тези методи позволяват да се открият патогенни антигени в изпражненията при 76,5 - 96,0% от пациентите с бактериологично потвърдена дизентерия, което показва тяхната доста висока чувствителност. Най-препоръчително е тези методи да се използват в късните стадии на заболяването. Спецификата на тези диагностични методи е високо оценена от повечето автори. Въпреки това, F.M. Иванов, който използва RSK за откриване на антигени на шигелоза в изпражненията, получи положителни резултати при изследване на здрави хора и пациенти с чревни инфекции с друга етиология в 13,6% от случаите. Според автора използването на метода е по-подходящо за откриване на специфични антигени в урината, тъй като честотата на неспецифичните положителни реакции в последния случай е много по-ниска. Използването на различни методи за изследване позволява да се открият антигени на Shigella в урината на по-голямата част от пациентите с бактериологично потвърдена дизентерия. Динамиката на екскрецията на антигени в урината има някои характеристики - откриването на антигенни вещества в някои случаи е възможно още от първите дни на заболяването, но с най-голяма честота и постоянство успява на 10-15-ия ден и дори по-късна дата. Според Б.А. Godovanny et al., делът на положителните резултати за антигени на шигела в урината (RSK) след 10-ия ден от заболяването е 77% (съответстващата цифра за бактериологично изследване на изпражненията е 47%). Във връзка с това обстоятелство изследването на урината за наличие на патогенни антигени има стойността на ценен допълнителен метод при дизентерия, предимно с цел късна и ретроспективна диагностика.

Според Н.М. Nurkina, ако имунореагентът на антитялото е получен от поликлонални серуми, положителни резултати при индикация са възможни, ако в пробата присъстват свързани антигени. Например, с еритроцитен диагностикум от силно активен серум срещу S.flexneri VI, антигенът на S.flexneri I-V също се открива, тъй като Shigella на двата подвида имат общ видов антиген. Антигените на Shigella могат да бъдат определени по време на заболяването както в кръвния серум, така и в секретите.

Лий Уон Хо и др. доказано е, че честотата на откриване на антигените на Shigella и тяхната концентрация в кръвта и урината са по-високи в първите дни на заболяването и че концентрацията на откритите антигени е по-висока при умерено заболяване, отколкото при леко заболяване.

СМ. Омирбаева предложи метод за определяне на антигена на Shigella, основан на използването на формализирани еритроцити като сорбент за антигени от изследвания фекален екстракт, последвано от тяхната аглутинация с имунни серуми. Оценката на спецификата на този метод според нас се нуждае от допълнителни изследвания, тъй като фекалните екстракти съдържат значителни количестваантигени на други бактерии, които не са причинител на това чревно заболяване.

Редица изследователи предлагат имуноензимен анализ като метод за бърза диагностика на остра дизентерия, който според много автори се счита за високочувствителен и високоспецифичен. В същото време най високо нивоантиген се открива на 1-4 ден от заболяването. Въпреки очевидните предимства на ELISA, които включват висока чувствителност, възможност за строго инструментално количествено отчитане и простота на настройка на реакцията, широкото използване на този метод е ограничено поради необходимостта от специално оборудване.

Моноклонални антитела, имуноглобулинови фрагменти, синтетични антитела, LPS оцветяване със сребро и други технологични постижения се препоръчват за подобряване на чувствителността и специфичността на различни серологични методи за откриване на антигени.

Често не е възможно да се открие антигенът на инфекциозен агент, дори когато се използват високочувствителни реакции за откриване на AG на патогена в биологичните субстрати на тялото, тъй като значителна част от антигенните вещества, очевидно, е в биоанализа в формата на имунните комплекси в тялото. При изследване на пациенти с бактериологично потвърдена остра дизентерия, положителни резултати от определянето на антигена чрез CSC са отбелязани, според някои доклади, само в 18% от случаите.

Т.В. Ремнева и др. предлагат да се използва ултразвук за разграждане на комплекси от антитела с патогенни частици и след това да се определи патогенният антиген в CSC на студено. Методът е използван за диагностициране на дизентерия, като материал за изследване са използвани проби от урина на пациенти с остри чревни инфекции.

Използването на реакцията на утаяване за откриване на антиген при остра дизентерия не е оправдано поради ниската чувствителност и специфичност. Ние вярваме, че специфичността на всеки метод за индикиране на Shigella антигени може да бъде значително увеличена чрез използване на моноклонални антитела към Shigella.

Реакцията на коаглутинация също е един от методите за бърза диагностика на шигелоза, както и антигени на патогени на редица други инфекции. При шигелозата антигените на патогените могат да бъдат определени от първите дни на заболяването през целия остър период, както и в рамките на 1-2 седмици след спиране на бактериалната екскреция. Предимствата на реакцията на коаглутинация са лекотата на създаване на диагностикуми, настройка на реакцията, икономичност, скорост, чувствителност и висока специфичност.

При провеждане на диагностика чрез определяне на антигени на Shigella от самото начало на заболяването, според много автори е най-ефективно да се изследват изпражненията на пациентите. С развитието на заболяването възможността за откриване на антигени на Shigella в урината и слюнката намалява, въпреки че те се откриват във фекалиите с почти същата честота, както в началото на заболяването. Трябва да се има предвид, че през първите 3-4 дни от заболяването изпражненията за антиген се изследват малко по-ефективно в RPHA. В средата на заболяването RPHA и RNAb са еднакво ефективни, а от 7-ия ден RNAb е по-ефективен при търсенето на антигена на Shigella. Тези особености се дължат на постепенното разрушаване на клетките на Shigella и техните антигени в червата на пациента по време на заболяването. Антигените на Shigella, екскретирани в урината, са относително по-малки от антигените във фекалиите. Поради това е препоръчително да се изследва урината в RNAt. В урината на жените, за разлика от урината на мъжете, поради вероятно фекално замърсяване, антигените на Shigella се откриват еднакво често с помощта на TPHA и RNAb.

Въпреки че антигенът се открива значително по-често (94,5 - 100%) в тези проби от изпражнения, от които е възможно да се изолира Shigella, отколкото в тези проби, от които Shigella не е изолирана (61,8 - 75,8%), с паралелни бактериологични и серологични ( за антиген) при изследване на фекални проби от пациенти с дизентерия като цяло, шигела е изолирана само от 28,2 - 40,0% от пробите, а антигенът е открит в 65,9 - 91,5% от пробите. Важно е да се подчертае, че видовата специфичност на открития антиген винаги съответства на специфичността на серумните антитела, чийто титър нараства до максимум в динамика. Когато се фокусирате върху условен диагностичен титър на антитела, понякога могат да се наблюдават несъответствия в специфичността на такива антитела и открития антиген. Това несъответствие се дължи на недостатъчна диагностична надеждност на еднократно определяне на активността на серумните антитела. В такъв случай етиологична диагнозатрябва да се настрои според спецификата на открития антиген.

PCR методът за задачата за директно откриване на признаци на патогена е близък до методите за индикация на антигени. Тя ви позволява да определите ДНК на патогена и се основава на принципа на естествената репликация на ДНК, включително развиването на двойната спирала на ДНК, разминаването на ДНК вериги и допълващото добавяне на двете. Репликацията на ДНК може да не започне в която и да е точка, а само в определени начални блокове – къси двойноверижни участъци. Същността на метода се състои в това, че чрез маркиране с такива блокове на сегмент от ДНК, специфичен само за даден вид (но не и за други видове), е възможно многократното възпроизвеждане (усилване) на този конкретен регион. Тест системите, базирани на принципа на ДНК амплификация, в повечето случаи позволяват да се открият бактерии и вируси, патогенни за хората, дори когато не могат да бъдат открити с други методи. Специфичността на PCR тест системите (с правилен избор на таксон-специфични праймери, изключване на фалшиви положителни резултати и липса на инхибитори на амплификацията в биотестовете) по принцип избягва проблеми, свързани с кръстосано реагиращи антигени, като по този начин осигурява много висока специфичност. Определянето може да се извърши директно в клиничен материал, съдържащ жив патоген. Но въпреки факта, че чувствителността на PCR може да достигне математически възможна граница (откриване на 1 копие на ДНК шаблона), методът не се използва в практиката за диагностициране на шигелоза поради относително високата му цена.

В широката клинична практика най-широко използваните сред серологичните методи за изследване са методите, базирани на определяне на нивото и динамиката на серумните антитела към предполагаемия причинител на заболяването.

Някои автори са определили антитела срещу Shigella в копрофилтрати. Копроантителата се появяват много по-рано от серумните антитела. Активността на антителата достига максимум на 9-12 дни, а до 20-25 дни те обикновено не се откриват. R. Laplane и др., предполагат, че това се дължи на разрушаването на антителата в червата под действието на протеолитични ензими. Копроантителата не могат да бъдат открити при здрави хора.

W. Barksdale et al, T.H. Николаев и др. съобщават за повишаване на ефективността на дешифриране на диагнозата и откриване на реконвалесценти чрез едновременно определяне на серум и копроантитела.

Откриването на аглутинини в диагностични титри е възможно при бактериологично потвърдена дизентерия само при 23,3% от пациентите. Ограничената чувствителност на RA се проявява и в недостатъчно високи титри на аглутинини, открити с негова помощ. Има данни за нееднаква чувствителност на RA при различни етиологични форми на шигелозна инфекция. Според А.А. Klyucharev, антитела в титър 1: 200 и по-високи се откриват с помощта на RA само при 8,3% от пациентите с дизентерия на Flexner и още по-рядко с дизентерия на Sonne. Положителните резултати от реакцията са не само по-чести, но и в по-високи титри се наблюдават при дизентерия Flexner I-V и Flexner VI, отколкото при дизентерия Sonne. Положителните резултати от RA се появяват от края на първата седмица на заболяването и най-често се записват през втората или третата седмица. Първите 10 дни от заболяването представляват 39,6% от всички положителни реакции. Според A.F. Podlevsky et al., аглутинините в диагностични титри се откриват през първата седмица на заболяването при 19% от пациентите, през втората седмица - при 25% и през третата - при 33% от пациентите.

Честотата на положителните резултати от RA и височината на титрите на антителата, открити с негова помощ, са в пряка зависимост от тежестта на хода на инфекцията с шигелоза. Според V.P. Zubareva, използването на антибиотична терапия не намалява честотата на положителните резултати от RA, но когато антибиотиците се предписват през първите 3 дни от заболяването, аглутинините се откриват в по-ниски титри.

RA има ограничена специфичност. При изследване на здрави хора положителни резултати от RA са получени в 12,7% от случаите, в 11,3% от случаите са наблюдавани групови реакции. Поради антигенната връзка на бактериите Flexner I-V и Flexner VI, особено често се наблюдават кръстосани реакции при съответните етиологични форми на шигелозна инфекция.

С появата на по-модерни методи за серодиагностика на инфекция с шигелоза, RA постепенно губи своето значение. Диагностичната стойност на реакцията на аглутинация („реакция на дизентерия на Видал“) (RA) при дизентерия се оценява от различни изследователи двусмислено, но резултатите от работата на повечето автори показват ограничена чувствителност и специфичност на този метод.

Най-често, за да се определят антителата, се използва индиректна (пасивна) реакция на хемаглутинация (RPHA). Подробни изследвания на диагностичната стойност на реакцията на пасивна хемаглутинация (RPHA) при шигелозна инфекция са извършени от A.V. Лулу, Л. М. Шмутер, Т. В. Влохом и редица други изследователи. Техните резултати ни позволяват да заключим, че RPHA е един от най-ефективните методи за серологична диагностика на дизентерия, въпреки че не е лишен от някои общи недостатъци, присъщи на методите от тази група.

Сравнително изследване на чувствителността при дизентерийна RPHA и реакция на аглутинация показва голямо превъзходство на първия метод. Според A. V. Lullu, средните титри на RPHA при това заболяване надвишават средните титри на RA с 15 пъти (в разгара на заболяването с 19-21 пъти), антитела във високи (1: 320 - RPHA) се откриват при използване на 4,5 пъти по-често, отколкото в титъра (1:160 при настройка на реакцията на аглутинация). При бактериологично потвърдена остра дизентерия се отбелязва положителна реакция на RPHA в диагностични титри по време на изследване на 53-80% от пациентите.

Хемаглутинините се откриват от края на първата седмица на заболяването, честотата на откриване и титърът на антителата се увеличават, достигайки максимум в края на втората и третата седмица, след което титърът им постепенно намалява.

Има ясна зависимост на честотата на положителните резултати от RPHA и титрите на хемаглутинин от тежестта и естеството на хода на инфекцията с шигелоза. Съответните проучвания показват, че при изтрити и субклинични форми на инфекция положителните резултати от RPHA са получени по-рядко, отколкото при остра клинично изразена дизентерия (съответно 52,9 и 65,0%), докато при титри от 1: 200 - 1: 400 само 4 отговорили, 2% от серумите (с клинично изразена форма - 31,2%), а при продължителни и хронични форми, положителни резултати от RPHA са отбелязани при 40,8% от пациентите, включително само 2,0% в титър 1: 200. Има и съобщения за различна чувствителност на RPHA при определени етиологични форми на шигелозна инфекция. Според Л.М. Schmuter, най-високите титри на хемаглутинин се наблюдават при дизентерия на Sonne и значително по-ниски титри при дизентерия Flexner I-V и Flexner VI. Антибактериалното лечение, започнало в ранните стадии на заболяването, поради намаляване на продължителността и интензивността на антигенното дразнене, може да доведе до появата на хемаглутинини в кръвния серум в по-ниски титри.

Подобно на реакцията на аглутинация, RPGA не винаги дава възможност за точно разпознаване на етиологичната форма на инфекция с шигелоза, която е свързана с възможността за групови реакции. Кръстосани реакции се наблюдават главно при Flexner дизентерия - между Flexner I-V и Flexner VI дизентерия. Хуморалният имунен отговор при много пациенти е слабо изразен. Не е изключена и възможността за кръстосана аглутинация поради общи антигени. Въпреки това, предимствата на този метод включват простотата на настройка на реакцията, възможността за бързо получаване на резултати и относително висока диагностична ефективност. Значителен недостатък този методе, че диагнозата може да бъде установена не по-рано от 5-ия ден от заболяването, максималните диагностични титри на антитела могат да бъдат определени до 3-та седмица от заболяването, така че методът може да се класифицира като "ретроспективен".

За да се диагностицира дизентерия, се предлага също така да се определи нивото на специфични циркулиращи имунни комплекси, представени от S.sonnei O-антиген, свързан със специфично антитяло, като се използва индиректна „сандвич версия“ на ензимен имуноанализ поради високата му чувствителност Въпреки това, методът се препоръчва да се използва само при 5-дневно заболяване.

При пациенти с дизентерия от самото начало на заболяването се установява специфично повишаване на бактериофиксиращата активност на кръвта поради антиген-свързващата активност на еритроцитите. През първите 5 дни от AII определянето на антиген-свързващата активност на еритроцитите позволява да се установи етиологията на заболяването в 85-90% от случаите. Механизмът на това явление не е добре разбран. Може да се предположи, че неговата основа е свързването от еритроцитите, дължащо се на техните C3v рецептори (при примати, включително хора) или Fcγ рецептори (при други бозайници) на имунния комплекс антиген-антитяло.

Сред сравнително новите методи за регистриране на специфичен имунен отговор на клетъчно ниво се обръща внимание на определянето на антиген-свързващи лимфоцити (ASL), които реагират със специфичен, таксономично значим антиген. Откриването на ASL се извършва чрез различни методи - сдвоена аглутинация на лимфоцити с антиген, имунофлуоресценция, RIA, адсорбция на лимфоцити върху колони, съдържащи антиген, адхезия на мононуклеарни клетки върху стъклени капиляри, индиректна розетна реакция (RNRO). Трябва да се отбележи, че такива високочувствителни методи за регистрация на ASL като ELISA и RIA, адсорбция на лимфоцити върху колони, съдържащи антиген, са технически относително сложни и не винаги са достъпни за широко приложение. Работите на редица автори показват високата чувствителност и специфичност на PHPR за откриване на ASL при различни заболявания. Редица изследователи разкриха тясна връзка между съдържанието на ASL в кръвта на пациенти с различни патологии и форми, тежестта и периода на заболяването, прехода му към продължително или хронична форма.

Някои автори смятат, че чрез определяне на нивото на ASL в динамиката на заболяването може да се прецени ефективността на терапията. Повечето автори смятат, че ако е успешно, броят на ASL пада, а ако ефективността на лечението е недостатъчна, се регистрира увеличение или стабилизиране на този показател. Съобщава се, че ASL може да се използва за количествено определяне на сенсибилизация към тъкани, бактериални антигени и антибиотици, което е важно. диагностична стойност. Методът ASL ​​се използва в ограничена степен за диагностициране на дизентерия.

Възможност ранно откриване ASL, още в първите дни след инфекцията, е много важен за ранната диагностика и навременното лечение, което е необходимо на клинициста.

По този начин данните, представени в прегледа, показват, че като се има предвид широкото разпространение на дизентерия, недостатъчната чувствителност и късното появяване на положителни резултати от много диагностични методи, е препоръчително да се развие диагностичният потенциал за откриване на тази инфекция. Данните, получени при много инфекциозни заболявания за високата ефективност на метода ASL, ранното появяване на неговия положителен резултат, определят перспективата за изучаване и прилагане на този метод при шигелоза.

Библиография

1 Юшчук Н.Д., Бродов Л.Е. Диференциална диагноза и лечение на остри чревни инфекции // Рос. и. гастроентерол., хепатол., колопроктол. - 2000. - 10, № 5. - С. 13 - 16. - Рус. – ISSN 1382-4376. – RU.

2 Шувалова Е.П., Змушко Е.И. Синдромна диагностика на инфекциозни заболявания. // Учебник. - Санкт Петербург: Питър, 2001. - С. 138-141.

3 Каралник Б.В., Амиреев С.А., Сиздиков М.С. Принципи и възможности на методите за лабораторна диагностика и интерпретация на техните резултати в работата на епидемиолог // Метод. препоръчително - Алмати. - 1997. - 21 с.

4 Каралник Б.В. Серологична диагностика на бактериални чревни инфекции. // Метод. препоръки. - Алмати, 1973. - 3-20 с.

5 5. Нуркина Н.М. Сравнителна ефективност на методите за серологична диагностика на дизентерия с използване на сенсибилизирани еритроцити: Резюме на дисертацията. дис. канд. - Алмати, 1984. - 22 с.

6 Каралник Б.В., Нуркина Н.М. Комплексна серологична диагностика на дизентерия. // Метод. препоръки. - Алмати, 1983. - 24 с.

7 Еркинбекова Б.К. Метод за индикация на антигени на Shigella в санитарно-епидемиологични изследвания при дизентерия: Резюме на дисертацията. дис. ...кандидат на медицинските науки. - Алмати, 1995. - 18 с.

8 Никитин В.М., Георгита Ф.И., Плугару С.В. и т.н. Ускорени методидиагностика на инфекциозни заболявания. // Кишинев. - 1987. - 106 с.

9 Неверов В.А. Стратегия и тактика на диагностика и лечение на остри чревни инфекции. // Санкт Петербург - 1996. - 12 с.

10 Воробьов А.А. Медицинска микробиология, вирусология и имунология. // М.- 2004.- С. 7-8.

11 Иванов К.С., Иванов А.И. Диагностика на остри диарийни инфекции // Клин. пчелен мед. - 1992. - № 7-8 - С. 64-69.

12 Ciudin L., Pencu E., Mihai, I. et al. Серологична идентификация на щамове Shigella flex neri чрез реакцията на коаглутинация // Roum. Арх. Microbiol.Immunol. -1995/ - том/ 54(4). - С. 295 - 311.

13 Lindberg A.A., Cam P.D., Chan N. et al. Шигелоза във Виетнам: сероепидни миологични изследвания с използване на липополизахаридни антигени в ензимни имуноанализи // Rev. заразявам. дис.- 1991. - кн. 13, Suppl 4. - P.231 - 237.

14 Sloper S. Shigella. // В: Enterobacteriaceae инфекция. Лайпциг.- 1968.- P. 375-441.

15 Jacobs J., Rudensky B., Dresner J. et al. Сравнение на четири лабораторни теста за диагностика на диария, свързана с Clostridium difficile // Eur. J. Clin Microbiol. Infect.Dis. - 1996. - кн. 15 (7). - С. 561-566.

16 Ключарев А.А., Полешко Д.В., Вершеня М.И. Клинични и епидемиологични характеристики на хода на дизентерия през последните години. // Здравеопазване на Беларус. - 1973. - № 11. - С. 54-56.

17 Гусарская И.Л. Характеристики на клиничния ход на дизентерия на Sonne на съвременния етап и някои въпроси на нейната превенция. // В кн.: Проблеми на инфекциозните болести. - Вологда. - 1970. -С. 23-27.

18 Шитов И.А., Тринитацкая М.И. Продължителност на бактериоотделянето при пациенти с остра дизентерия. // В книгата: Чревни инфекции.- Част 2.- L. 1972.- S. 161-163.

19 Авдеева Т.А. Количествено микробиологично изследване на дизентерия (резултати от разработването и прилагането на метода за изследване на клиничните, микробиологични и епидемиологични модели на дизентерия). Резюме дис. за състезанието учен стъпка. д-р мед. науки. Л., 1964, 28 с.

20 Tillet H., Thomas M. Култура на фекалиите при диагностицирането на дизентерия на Sonne: статистически метод за оценка на истинската степен на изолация. // Качване. J. Epidemiol.- 1974.- том 3.- Р. 177-181.

21 Khaimzon B.I. Реакция на повишаване на фаговия титър при диагностицирането на остра дизентерия при възрастни. Резюме дис. за състезанието учен стъпка. мога. медицински науки Воронеж, 1965, 16 с.

22 Вилкомирская Т.С. Материали за изследване на чувствителността и специфичността на реакцията на повишаване на титъра на фагите (RNF) при диагностицирането на дизентерия. // В книгата: Въпроси на имунологията на инфекциозните и алергичните заболявания. Уфа.- 1970.- С. 48-49.

23 Иванов Ф.М. Сравнителна стойност на методите за посяване, растеж на титрафаги и откриване на антигенни вещества на различни етапи от дизентерийния процес. Резюме дис. за състезанието учен стъпка. мога. медицински науки Оренбург, 1963, 10 с.

24 Вилкомирская Т.С. Относно клиничното и епидемиологичното значение на реакцията на повишаване на титъра на фагите (RNF) при диагностицирането на дизентерия в Уфа. Резюме дис. за състезанието учен стъпка. мога. пчелен мед. науки. Уфа, 1971, 24 с.

25 Мазурин Н.Д., Розина-Ицкина Ц.С. Реакция на повишаване на фаговия титър при диагностицирането на дизентерия. // JMPEI.- 1963. - No 1.- С. 113-116.

26 Голюсова Е.В., Трохименко М.З. За значението на пробата Цуверкалов в диагностиката на острата дизентерия при деца. // Чревни инфекции (Киев) - 1972. - бр. 5. - С. 97-99.

27 Фрадкин В.А., Лодинова Л.М. Използването на алергени за диагностика на хронични чревни инфекции. // В книгата: Бактерионосителство и хронични форми на инфекциозни заболявания. - част 2. - М.-1975.- С. 213-215.

28 Лукашевич К.К. Алергичен методдиагноза дизентерия. // В книгата: Някои въпроси на клиниката и алергиите в инфекциозната патология Куйбишев - 1970 г. - С. 41-43.

29 Чечелницки В.М. Значението на реакцията на Цуверкалов в диагностиката на остра дизентерия. // В книгата: Имунология и чревни инфекции Воронеж - 1970 г. - С. 110-114.

30 Богданов И.Л. Алергията в патогенезата, клиниката и лечението на инфекциозни заболявания. // М.- 1974.- 245 с.

31 Горчакова Г.А. Дизентерин (лекарство за интрадермално изследване при диагностициране на дизентерия). Резюме дис. за състезанието учен стъпка. д-р медицински науки Одеса, 1969, 19 с.

32 Любицкая Н.А., Поляк А.И. Имунодиагностика на дизентерия при деца // VI All-Union. конф. според клиничните биохимия, морфология и имунол.инфекции. Бол.: Резюмета на доклади. - Рига, 1983. - С. 106-107.

33 Фурман А.А. Сравнително изследваненякои ускорени методи за лабораторна диагностика на дизентерия и колиентерит. Резюме дис. помпа учен стъпка. мога. пчелен мед. науки. Киев, 1970, 19 с.

34 Михайлов И.Ф., Перс И.Ф. Идентифициране на антигенни връзки между бактерии чревна групаметод на флуоресцентни антитела. ЖМЕИ, 1975, № 5, С. 97-103.

35 Шмутер Л.М. Реакции на индиректна хемаглутинация и неутрализиране на антитела при диагностициране на дизентерия. Резюме дис. за състезанието учен стъпков канал пчелен мед. науки. Харков, 1968, 19 с.

36 Евдокимова Т.В., Подлевски А.Ф., Яфаев Р.Х. Клинични и лабораторни паралели при остра дизентерия при възрастни. - JMPEI, 1974, № 6, С. 82-85.

37 Могилев V.E. Пасивна хемаглутинация при дизентерия. Резюме на дипломната работа за състезанието учен стъпка. мога. пчелен мед. науки. Куйбишев, 1968, 20 с.

38 Рибакова Н.А. Използването на реакция на инхибиране на пасивната хемаглутинация за диагностика на дизентерия на Sonne в практическа лаборатория. - Лаборатория. дело, 1975, № 3, стр. 168-170.

39 Иванов Ф.М. Сравнителна стойност на методите за посяване, растеж на титрафаги и откриване на антигенни вещества на различни етапи от дизентерийния процес. Резюме дис. за състезанието учен стъпка. мога. пчелен мед. науки. Оренбург, 1963, 10 с.

40 Godovanny B.A., Litinsky Yu.I., Bodisko V.P. Количествено определяне на антигена на Shigella Sonne в урината на пациенти и носители. – Лаборатория. дело, 1974, № 6, стр. 360-363.

41 Кашкин Г.С. Изследване на динамиката на микробните антигени в кръвта и пикочните пътища при остра дизентерия. – В кн.: Проблеми на инфекциозните болести. Вологда, 1970, с. 47-50.

42 Нуркина Н.М. Сравнителна ефективност на методите за серологична диагностика на дизентерия с използване на сенсибилизирани еритроцити: Резюме на дисертацията. дис. канд. - Алмати, 1984. - 22 с.

43 Ли Ван Хо., Рубцов И.В., Трегуб А.В., Ремнева Т.В. Сравнителна диагностична стойност на някои методи за откриване на дизентерийни антигени в субстратите на тялото на пациента. // J. microbiol. - 1989. - № 1. - С. 57-61.

45 Сакал Н.Н. Приложение и оценка на ефективността на ензимния имуноанализ в ранната диагностика и прогноза на хода на дизентерия на Зоне: Резюме на дисертацията. дис. … канд. пчелен мед. науки. - Санкт Петербург, 1993. - 21 с.

46 Рубцов И.В., Пименова Г.Н., Кулакова В.Н. Към статистическата оценка на клиничните и лабораторните данни на ELISA // Сборник на юбилейните научни и практически. конференции, посв 80-годишнината от създаването на Катедрата по инфекциозни болести на ВМА, кръстена на. И. М. Сеченов (22-23 май 2003 г.). - М.: ВМА им. И. М. Сеченов. - 2003. - С. 152-153.

47 Downes F.P., Green J.K. et al. Разработване и оценка на ензим-свързан имуносорбентен анализ за откриване на Shiga – подобен токсин I и Shiga – liketoxin II // J. Clin. микробиол. - 1989. - Т. 27, № 6. - С. 1292-1297.

48 Барбан П.С., Пантюхина А.Н. Метод за получаване и наблюдение на флуоресцентни Fav - фрагменти от антитела срещу серумни протеини на хора, които са имали коремен тиф // J. microbiol., epidemiol. и имунобиол. - 1984. - № 2. - С. 102-105.

49 Използването на синтетични антигени за диагностика на инфекциозни заболявания //Techn.ser/WHO. - 1989. - № 784. - С. 1-74.

50 Ekwall E., Norberg T., Swensons S.B. et al. специфична идентификация на салмонела серогрупа E антиген O3 чрез имунофлуоресценция и коаглутинация с антисерум, предизвикан 1 от синтетичен тризахарид – говежди серумен албуминг гликоконюгат // J. Clin.Microb. - 1994. - 19, № 5. – С. 699-702.

51 Лий Куо-Ка, Елис А.Е. Бързо и чувствително оцветяване със сребърен липополисахарид с помощта на Phast System при бърза хоризонтална електрофореза с полиакриламиден гел //Електрофореза. - 1989. - Т. 10, № 10. - С. 729-731.

52 Темпиева Т.В., Юдицкая Н.М., Литински Ю.И., Лий Вам Хо. Ултразвукова дезинтеграция на имунни комплекси за откриване на антигени на Shigella в урината на пациенти с дизентерия // Lab. случай. - 1988. - № 9. - С. 64-66.

53 Чайка Н.А. Изследване на чревни инфекции и техните патогени с помощта на съвременни имунологични методи // Остри чревни инфекции. - Л .: Ленинград. изследователски институт епид. и микрофон. - 1987. - бр. II. - С.3-8.

54 Khazenson L.B., Chaika N.A. Имунологични основи за диагностика и епидемиологичен анализ на чревни инфекции. – М.: Медицина. –1987. - 112 стр.

55 Кашкин Г.С. Изследване на динамиката на микробните антигени в кръвта и урината на деца с остра дизентерия. // В кн.: Проблеми на инфекциозните болести. - Вологда. – 1970.- С. 47-50.

56 Godovannyy B.A., Litinsky Yu.I., Bodisko V.P. Количествено определяне на антигена на Shigella Sonne в урината на пациенти и бактерионосители. // Lab. случай. - 1970. - № 6. - С. 360-363.

57 Рибакова Н.А., Рибаков Д.А. Използването на RNGA и RNAt в епидемиологичното изследване на заболявания с етиология на дизентерия. – Сборници на Ленинградския изследователски институт по епидемиология. и микробиол. името на Пастьор. -T. 56. - Л., 1981. - С. 58-61.

58 Василиева А.В. Сравнителна оценка на различни методи за серологична диагностика на дизентерия на Sonne. // Чревни инфекции. - 1972. - Бр. № 5. - С. 129-132.

59 Дубинина И.Г., Щербо С.Н., Макаров В.Б. Методи на полимеразна верижна реакция в лабораторната практика. // Клинична лабораторна диагностика. - 1997, № 7. - С. 4 - 6.

60 Туркадзе К.А., Подколзин Т.А., Кокорева Л.Н. Сравнителна ефективност на използването на PCR и бактериологичен метод в диагностиката на салмонелоза и шигелоза // Сборник на юбилейните научни и практически. конференции, посв 80-годишнината от създаването на Катедрата по инфекциозни болести на ВМА, кръстена на. И. М. Сеченов (22-23 май 2003 г.). - М.: ВМА им. И. М. Сеченов. - 2003. - С. 172-173.

61 Ахтамов М.А., Ахмедов А.А. Сравнително изследване на ефективността на някои серологични реакциив лабораторната диагностика на остра дизентерия // Med. Вестник на Узбекистан. - 1984. -№1. - С. 29-31.

62 Борисов В.А. Към сравнителна оценка на някои серологични методи за диагностициране на дизентерия. – Лаборатория. дело, 1972, № 9, стр. 564-566.

63 Laplane R., Be, gue P., Omanga V. Anticorps seriques et copro-anticorps dansles infections bacteriennes digestives de l, infant. // Бик. акад. нац. мед. - 1975. - кн. 159. - № 7. - С. 596-600.

64 Barksdale W., Ghoda A. Аглутиниращи антитела в серум и фекалии.// J. Immunol. - 1951. - кн. 66. – С. 395 – 401.

65 Николаева Т.А., Кукаин Е.М., Хазенсон Л.Б. Имунохимична природа на копро- и серумни антитела при пациенти с дизентерия на Sonne и други ICD. - Тез. отчет Към научно-практ. конф., посв 50-годишнината на LeningrNIIEM им. Пастьор. Л., 1973, с. 53-54.

66 Lullu A.V. Приложение на реакцията на непряка хемаглутинация за диагностика и изследване на имунологията на остра дизентерия. // Резюме. дис. за състезанието учен стъпка. мога. пчелен мед. науки. - Тарту. - 1963. - 10 с.

67 Ключарев А.А. Материали за изследване на дизентерия в Беларус. Полешко Д.В., Вершеня М.И. Клинични и епидемиологични характеристики на хода на дизентерия през последните години. // Резюме. дис. за състезанието академична стъпка. д-р пчелен мед. науки. - Каунас. - 1970. - 32 с.

68 Podlevsky A.F., Tselinskaya N.M., Zhuravleva L.V., Buchel N.E. Реакцията на индиректна хемаглутинация при дизентерия при пациенти от различни възрасти. // В книгата: Въпроси на епидемиологията и профилактиката на чревни и естествени фокални инфекции. Л., 1971, С. 93-99.

69 Zaitlenok M.A., Eremina A.M., Subbotina Yu.L. Серологични изследвания при остри чревни инфекции, които не са потвърдени бактериологично // Имунология и имунопатология. - Воронеж, 1983. - С. 35-37.

70 Борисов В.А., Орлик Н.С., Кирилюк М.А. Имунен отговор при пациенти с дизентерия с продължително отделяне на шигела. // Всесъюз. конф. по клинична биохимия, морфология и имунология на инфекциозните заболявания. Тез. отчет - Рига - 1977 г. - С. 377-378.

71 Чилингарян А.В. Резултатите от паралелното приложение на белодробния модел, теста за индиректна хемаглутинация и теста за аглутинация за откриване на антидизентерийни антитела в кръвта на здрави хора. // В кн.: Остри чревни инфекции. Дизентерия, ешерихиоза, салмонелоза. - Л. - 1970. - С. 93-101.

72 Patton C.M., Gangorosa E.J., Weissman J.B. et al. Диагностична стойност на неправилната хемаглутинация в сероепидемиологията на инфекциите с Shigella. // J.ofClin. Microb. - 1976. - кн. - 23. - С. 143-148.

73 Martinez J. Епидемиологично изследване на бактериална дизентерия. // Бол. ofic. санитарен панамер. - 1973. - кн. 75. - С. 213-224.

74 Мусабаев И.К., Абубакирова Ф.З. Бактериална дизентерия. - Ташкент - 1973. - 258 с.

75 Дулатова М.В., Головачева С.Н., Савицкая О.В. Принципът на RPGA при експресна диагностика на инфекции и имунитет. // В кн.: Препарати за експресна диагностика. - Л., 1981. - С. 31-42.

76 Сафонова Н.В. Прилагане на реакцията на индиректна хемаглутинация в огнищата на остра чревна инфекция за идентифициране на заразени хора и търсене на източници. - Л., 1974. - 11с.

77 Солодовников Ю.П., Калашникова Г.К., Суботина Ю.Л., Бобкин С.В. Реакцията на непряка хемаглутинация при изследване на антитела при здрави, болни и възстановени дизентерия на Зоне. - ЖМЕИ, 1971, № 1. - С.13-18.

78 Провоторов В.Я. Към въпроса за лечението на пациенти с дизентерия. - В кн.: Общински грижи за инфекциозно болни и проблеми на лечението на инфекциозно болните. Саратов, 1973. - С. 153-155.

79 Каралник Б.В. Методология и тактика на имунодиагностиката на инфекциозната патология. - В кн.: Въпроси на клиничната имунология и имунологичната диагностика. Алма-Ата, 1988. - 10 с.

80 Каплин В.И., Клевцова Г.А., Корюхина И.П. и др. Специфична реакция на кръвта в начален периоддизентерия и салмонелни инфекции и нови възможности за ранна специфична диагностика на остри чревни инфекции // VI All-Union. конф. според клиничните биохимия, морфология и имунол. инфекциозен Бол.: Резюмета на доклади. – Рига, 1983. – С.76-77.

81 Савилов Е. Д., Астафиев В. А., Мамонтова Л. М., Володин Ю. Ф. Епидемиологични характеристики на дизентерия в Източен Сибир. //Новосибирск "Наука", 1994. - С.42-43.

82 Иванов К.С., Иванов А.И. Диагностика на остри диарийни инфекции // Клин. пчелен мед. - 1992. - № 7-8 - С. 64-69.

83 Каралник Б.В. Еритроцитите, техните рецептори и имунитет. // Успехът на съвременната биол., М. - 1992. - т. 112, № 1. - С.52-61.

84 Гариб Ф.Ю., Залялиева М.В. Методи за изследване на субпопулацията на лимфоцитите при хора при различни патологични състояния // Method.commendations. - Ташкент, 1989. - 17с.

85 Bahrg. Modabber F.Z. // J. Immunol.Meth. - 1980. - Т. 38, № 3-4. - С. 203-216.

86 Тяготин Ю.А. // Въпроси на прегледа и лечението на пациенти със заболявания на кръвоносната система. - Л., 1975. - С. 21-25.

87 Новиков Д.К., Новикова В.И. Клетъчни методи за имунодиагностика. // Минск, 1979. - 222 с.

88 Смирнов Б.Н., Торопова Н.И., Мохова Г.А. и други // Сборник на Всесъюзната научна конференция "Проблеми на медицинската биотехнология". окт. 1988. - Л., 1990. - С. 114-116.

89 Славко Е.А., Дерябин П.Н., Каралник Б.В. Определяне на антиген-свързващи лимфоцити като метод за ранна диагностика на салмонелоза и дизентерия // Здравеопазване на Казахстан.-Алмати.- 1999. - № 5-6.-C.43-45.

90 Каралник Б.В., Кожагелдиева А.А., Карабеков А.Ж., Денисова Т.Г., Райпов О.Р. Проследяване на ефективността на лечението на йерсиниоза, причинена от Yersinia enterocolitica // Медицина. - Алмати - 2004. - № 4. - С. 51-53.

91 Каралник Б.В., Денисова Т.Г., Плазун А.А. Антиген-свързващи лимфоцити на туберкулинова специфичност при зайци, заразени с M. bovis в динамиката на лечението на туберкулоза // Проблеми на туберкулозата и белодробните заболявания. -М.-2006.- № 5.-С.48-53.

92 Каралник Б.В., Карабеков А.Ж., Денисова Т.Г., Кожагелдиева А.А., Жунусова Г.Б. Диференциална диагноза на бруцелоза и чревна йерсиниоза, причинена от Yersinia enterocolitica серовар О9 // Медицина.-Алмати.-2004.- № 3.- С.155-157.

93 Каралник Б.В., Денисова Т.Г., Жунусова Г.Б., Федосов С.А., Жанкин А.А., Оспанов К.С., Мизанбаева С.У. Ефективността на различни тестове за антитела и теста за антиген-свързващи лимфоцити при диагностицирането на бруцелоза при хора. // Медицинска имунология. – С.-П. - 2006. - Т. 8. - № 4. - С. 567 - 572.

94 Каралник Б.В., Денисова Т.Г., Грушина Т.А., Тугамбаев Т.И. Анализ на имунния отговор на морски свинчета, заразени с Brucella melitensis // Zh.

95 Каралник Б.В., Березин В.Е., Денисова Т.Г., Дерябин П.Н., Славко Е.А. Динамика на съдържанието на лимфоцити с рецептори за вируса Сендай по време на имунизация с вирус и имуностимулиращ комплекс от неговите гликопротеини // Известия. Мин.наука и висше образованиеРК. Ser.biol. и медицински-Алмати.-1999.- № 3.- С.50-51.

96 Гариб Ф.Ю., Гурарий Н.И., Алиев Ш.Р. Характеристики на антиген-свързващи лимфоцити при хроничен хепатит при деца // Имунология - 1988. - № 5. стр. 91-93.

97 Finlay B.B., Falkow S.A. Сравнение на микробните стратегии на видовете Salmonella, Shigella и Jersinia // Взаимодействие бактерия – клетка гостоприемник, Alban R. Liss. Inc. - 1988. - С. 227-243.

98 Каралник Б.В., Денисова Т.Г., Кешилева З.Б., Пшеничная Л.А. и др.. Антиген-свързващи лимфоцити и антитела при диагностицирането на сифилис // Инфекции, предавани по полов път. - М. - 1999. - № 5. — стр. 34–36.

99 Саканова Л.М., Каралник Б.В., Укбаева Т.Д. и др.. Имунореагенти за откриване на антиген-свързващи лимфоцити и апробацията им в диагностиката. менингококова инфекция// Хигиена, епидемиология и имунобиология - Алмати. -2002.- № 1-2.-С.69-72.

100 Славко Е.А., Дерябин П.Н., Каралник Б.В., Карабеков А.Ж. Относно специфичността на антиген-свързващите лимфоцити, открити при пациенти с остри възпалителни заболявания на стомашно-чревния тракт. // Хигиена, епидемиология и имунобиология. - Алмати. - 1999. - № 2. - С. 102 - 105.

А.М.Садикова

Лабораторна диагностика на дизентерия

Tү ин: Zhedel іshek infectionalaryn bakylauda, ​​​​дизентерия naқty диагностика en özu maselesi bolyp tabylady. Бактериална дизентерия dұrys қoyylғan диагностицира nauқaska vaқytynda em zhүrgizuge zhane epidemica қarsy sharalardy өtkіzu үshіn manyzdy. Obzordagy kөrsetіlgen mәlіmetter, дизентерия ken taraluyn negіzdey otyryp, sezіmtaldyғynyn zhetkіlіksіzdіgі zhane kөp degen diagnosticslyқ аdіsterdіn оң nәtizhesіnің kesh anyқtaluyna baylanysty, оси в fektsionny anyktauda diagnostikalyk potencialdy maksatty turde damytu kerek ekenin korsetedі.

Tү кошути отө zder:диагностика, дизентерия, antigenbaylanystyrushy adis.

А.М.Садикова

Лабораторна диагностика на дизентерия

Резюме:Надеждната диагноза на диарията е един от най-важните въпроси за контрол на острата чревна инфекция. Точната диагноза на бактериозните диарии има жизненоважно значение за правилното и точно лечение на пациента, както и за предприемане на необходимите противоепидемични мерки. Членовете, дадени в анкетата, като се има предвид широко разпространената диария, показват липсата на чувствителност и късното появяване на положителни резултати от много диагностични методи. Важно е целенасочено да се развие диагностичният потенциал за проектиране на инфекцията.

ключови думи:диагностика, дизентерия, метод на антиген-свързващи лимфоцити.