A vérhas elleni tartályszűrés diagramja. Dizentéria laboratóriumi diagnosztikája (irodalmi áttekintés)

A vérhas egy súlyos bélfertőzés, amelyet akut megjelenés jellemez. Mikrobiológiai diagnosztika A vérhas abban áll, hogy a kórokozót külön tápközegbe vetve elkülönítik a beteg székletéből. A betegséget meg kell különböztetni más bélbetegségektől és mérgezésektől. A korai diagnózis és az időben történő kezelés segít elkerülni a szövődményeket.

Az időben történő diagnózis fontossága

A vérhas felismerése a gyakorlatban nem olyan egyszerű, mert vannak hasonló klinikai megnyilvánulású fertőző és nem fertőző betegségek. A dizentéria (shigella) kórokozóinak jellemző vonása az antibakteriális gyógyszerekkel szembeni rezisztencia megváltoztatásának képessége. A nem időben diagnosztizált betegség fertőzéshez vezet egy nagy szám emberek. Az antibiotikumokkal való visszaélés az oka a baktériumok rezisztenciájának kialakulásának, ami tömeges fertőzésekhez és járványokhoz vezet. halálozások. A fertőzés forrása a betegek és a baktériumok hordozói, amelyek széklettel választják ki a patogén mikroorganizmusokat. Lappangási időszak vérhas - 2-3 nap.

A betegség klinikai tünetei

• Hirtelen fellépő láz 40 fokos vagy magasabb testhőmérséklettel.
• Hasmenés naponta több mint 10 alkalommal.
• A székletben vér, nyálka, in ritka esetek genny.
• Étvágytalanság a teljes hiányig.
• Hányinger és hányás.
• Vágás a hasban és a jobb hypochondriumban.
• Fájdalom a végbélben.
• Kiszáradás.
• Száraz nyelv fehér bevonattal.
• Szívritmuszavar.
• Csökkent vérnyomás.
• Tudatzavarok.

Diagnosztikai eljárások

Az orvos csak az elvégzett kutatások után állapítja meg a vérhas diagnózisát.

A betegség diagnosztizálása magában foglalja az általánosan elfogadott és speciális módszereket, amelyek nemcsak végső diagnózis, hanem az emésztőszervek zavarainak szintjének felmérése is. Dizentéria esetén a diagnózis a betegség epidemiológiai képe alapján történik, klinikai tünetekés kutatást végzett. A fő laboratóriumi diagnosztika a széklet mikrobiológiai elemzése, amely a kórokozók 80% -át veti el. A szerológiai módszert legkorábban a betegség 5. napján végezzük, ez a fajta vizsgálat kiegészíti, de nem helyettesíti a mikrobiológiai elemzést. Egyéb módszerek:

• A koprológiai vizsgálat egy egyszerű és megfizethető klinikai módszer, amely nyálkát, vércsíkokat, eritrocitákat, neutrofileket (látómezőnként legfeljebb 50-et) és megváltozott hámsejteket mutat ki.
• Szigmoidoszkópia - lehetővé teszi a gyógyulási folyamat nyomon követését. Gyermekekre nem vonatkozik.
• Allergia vizsgálati módszer - segítő módszer, allergiás bőrpróba felvétele alapján vérhas esetén (Tsuverkalov módszere).

Általános vérvizsgálat

Az immunsejtek még a belekben is elpusztítják a vérhas kórokozóit, és a betegség súlyos esetei akkor fordulnak elő, amikor a baktériumok bejutnak a nyirokcsomókba, majd bejutnak a véráramba. A dizentéria vérvizsgálata felméri a beteg állapotát, és lehetővé teszi, hogy időben reagáljon lehetséges szövődmények. Az eritrociták ülepedési sebességének növekedése olyan laboratóriumi mutató, amely a gyulladás mértékét jellemzi. Ezenkívül a vérhas a stab neutrofilek és a monociták koncentrációjának növekedését okozza.

Hogyan lehet ürüléket adományozni egy koprogramhoz?

A betegség megerősítésére székletvizsgálatot végeznek. Coprogram - részletes laboratóriumi vizsgálat, amely értékeli a gyomor-bél traktus munkáját, az emésztés sebességét és hatékonyságát, valamint a bélműködést. A széklet vizsgálatának laboratóriumi módszerei feltárják a fizikai és Kémiai tulajdonságok széklet, összetétel, idegen organizmusok és zárványok jelenléte. A székletgyűjtés követelményei:

• Az anyagot a természetes székletürítés után veszik.
• A gyűjtés speciális tartályban történik.
• Tilos a beöntés eredményeként kapott biológiai anyagot a széklet vérhas vizsgálatára venni.
• A vizsgálat előtt tilos vaskészítményeket használni, rektális kúpokat helyezni, hashajtókat szedni és alkoholos italokat inni.

Mikrobiológiai diagnosztika

A dizentéria tartályos vetése pontosan meghatározza a kórokozó típusát.

Bakteriológiai diagnosztika - a széklet összegyűjtése és az azt követő széklet vetése speciális tápközegben. A kórokozó baktériumok (shigella) telepeinek megjelenése a vetés után megerősíti a javasolt diagnózist. Bakteriológiai elemzés vérhas esetén pontosan meghatározza a kórokozót, annak típusát, alfaját és az antibakteriális szerekre való érzékenységet, ami lehetővé teszi a megfelelő gyógyszer kiválasztását a kezeléshez.

A vizsgált anyag - széklet idegen szennyeződésekkel nyert természetesen vagy speciális cső szigmoidoszkópiához. Gyermekeknél egy speciális tampont (tampon a VD-hez vagy tampont a bélcsoporthoz) vesznek. Állítsa be a gyógyszerekkel szembeni érzékenységet a Shigella kolóniák és különböző antibiotikumok elhelyezésével. Ha a mikroorganizmusok létfontosságú tevékenysége az antibiotikum tabletta közelében folytatódik, akkor a gyógyszert nem használják kezelésre, ha a mikroorganizmusok elpusztulnak, ilyen antibiotikummal történő kezelést írnak elő.

Szerológiai vizsgálatok vérhasra

A bakteriológiai vizsgálat negatív vagy kétes eredménye esetén szerológiai módszert alkalmazunk. NÁL NÉL ürülék a beteget bakteriális antigén észleli, a plazmában pedig specifikus antitestek. Az antitest titer meghatározásához használhatja a RIGA módszert, néha - RPHA vagy RA. Antigénként a shegella napi telepének szuszpenzióját használjuk. Mínusz a módszer - megbízható eredményeket csak 5 nappal a betegség kezdete után kapja meg, amikor az antitestek koncentrációja eléri a kívánt szintet.

Szigmoidoszkópia

Tekintettel arra, hogy a dizentéria kórokozója a vastagbelet érinti, a szigmoidoszkópia jelentős diagnosztikai módszer, de nem meghatározó. A diagnózis abból áll, hogy levegőellátó készülékkel ellátott rektoszkópot helyezünk a végbélnyílásba. Duzzanat, a bélüreg elérhetővé válik a kutatás számára. Ez a módszer segít felmérni a bélhám károsodásának mértékét. Dizentéria esetén a bélfalak az értágulat következtében hiperémiásak. Egyes szegmenseken eróziók és vérzések képződnek. A szigmoidoszkópia nem igényel előkészítést, de az eljárást nem végzik el, ha anális repedések vagy a végbélnyílás patológiái vannak.

Módszertani utasítások tanulóknak a 28. számú gyakorlati órához.

Az óra témája:

Cél: Mikrobiológiai diagnosztika, etiotróp terápia és shigellosis megelőzés módszereinek tanulmányozása.

2. modul . Speciális, klinikai és ökológiai mikrobiológia.

5. téma: A vérhas mikrobiológiai diagnosztikájának módszerei.

A téma aktualitása:A Shigellosis mindenütt jelen van, és az komoly probléma olyan országokban, ahol alacsony a higiéniai kultúra szintje, és magas az alultápláltság és a rossz táplálkozás előfordulása. A fejlődő országokban a fertőzés terjedésének kedvez a rossz higiénia, a rossz személyi higiénia, a túlzsúfoltság és a gyermekek nagy aránya a lakosságon belül. Ukrajnában a shigellózis kitörése gyakrabban fordul elő zárt közösségekben, ahol rossz a higiénia és a higiénia, például bölcsődék és óvodák, turistahajók, pszichiátriai klinikák vagy fogyatékkal élők menedékhelyei. A Shigella okozta az utazók és turisták hasmenését.

A csoportos megbetegedések okának a shigella-hordozó kereskedők hanyagsága miatt szennyezett élelmiszerek használata tekinthető. Vannak járványok az ivóvíz használatával kapcsolatban, és a szennyezett tározókban való úszás is fertőzéshez vezetett. A shigellózis terjedésében azonban úgy tűnik, hogy a táplálékkal és a vízzel történő átviteli útvonal kisebb szerepet játszik, mint a kolera és a tífusz, amelyekben általában nagy dózisú kórokozó szükséges az ember megfertőzéséhez. A fejlődő országokban, ahol a betegség túlnyomórészt emberről emberre terjed, a hordozók a fertőző kórokozók fontos tározói lehetnek. Azoknál a betegeknél, akik nem szedtek antibakteriális szereket, a széklettel történő shigella ürítés általában 14 hétig tart, de az esetek kis hányadában sokkal tovább is.

A shigellózis a bél akut bakteriális fertőzése, amelyet a Shigella négy típusának egyike okoz. A fertőzés klinikai formáinak spektruma az enyhe, vizes hasmenéstől a súlyos vérhasig terjed, amelyet hasi görcsök, tenezmus, láz és általános mérgezés jelei jellemeznek.

Etiológia.

Az Enterobacteriaceae családhoz tartozó Shigella nemzetség (K. Shiga, aki 1898-ban részletesen tanulmányozta és leírta a bakteriális vérhas izolált kórokozóját A. V. Grigoriev által) a következő tulajdonságokkal rendelkező, közeli rokon baktériumfajok csoportjából áll:

ÉN. Morfológiai: shigella - kis pálcikák lekerekített végekkel. Az Enterobacteriaceae család többi képviselőjétől flagella (nem mozgó) hiányában különböznek, nincsenek spóráik és kapszulák, és gram-negatívak.

II. Kulturális: a shigella aerob vagy fakultatív anaerob; optimális feltételeket tenyésztési hőmérséklet 37°C, pH 7,2-7,4. Egyszerű táptalajokon (MPA, MPB) nőnek kicsi, fényes, áttetsző, szürkés, kerek, 1,52 mm méretű telepek formájában. S forma. A kivétel a Sonne's Shigella, amely gyakran disszociál, és nagy, lapos, felhős, szaggatott szélű telepeket képez. R formák (a telepek „szőlőlevélnek” tűnnek). Folyékony tápközegben a Shigella egyenletes zavarosságot ad, R formák csapadékot képeznek. A dúsító folyékony közeg szelenitleves.

III. Enzimatikus: a shigella azonosításához szükséges fő biokémiai jellemzők tiszta kultúra izolálása során a következők:

1. a gázképződés hiánya a glükóz fermentáció során;
2. nem termel hidrogén-szulfidot;
3. nincs laktóz fermentáció 48 órán belül.

Összességében a négy fajt további körülbelül 40 szerotípusra osztják. A fő szomatikus (O) antigének jellemzői és biokémiai tulajdonságai alapján a következő négy fajt vagy csoportot különböztetjük meg: S. dysenteriae (A csoport, ide tartozik: Grigoriev-Shigi, Stutzer-Schmitz, Large-Sachs), S. flexneri (B csoport), S. boydii (C csoport) és S. sonnei (D csoport).

A mannit vonatkozásában az összes shigellát hasadó (Flexner, Boyd, Sonne shigella) és nem hasadó (Grigoriev-Shiga, Stutzer-Schmitz, Large-Sachs shigella) mannitra osztják.

IV. Patogén tényezők:

1. Plazmid invázióbiztosítja a shigella azon képességét, hogy inváziót okozzon, majd ezt követő intercelluláris terjedéssel és szaporodással a vastagbél nyálkahártyájának hámjában;
2. toxin képződés: A Shigella lipopoliszacharid endotoxint tartalmaz, amely kémiailag és biokémiailag hasonló az Enterobacteriaceae család többi tagjának endotoxinjaihoz. Ezenkívül az I. típusú S. dysenteriae (Shiga-bacillus) exotoxint termel. Utóbbi felfedezése óta megállapították, hogy enterotoxin aktivitással rendelkezik és bélszekréciót okozhat, valamint citotoxikus hatást fejt ki a bélhámsejtek ellen; neurotoxikus hatása van, amelyet shigellosisban szenvedő gyermekeknél észlelnek. A vérbe kerülő Shiga toxin a nyálkahártya alatti endotélium károsodásával együtt a vese glomerulusait is érinti, aminek következtében a véres hasmenés mellett hemolitikus urémiás szindróma alakul ki veseelégtelenség kialakulásával.

V. Antigén szerkezet:Minden Shigella szomatikus O-antigénnel rendelkezik, szerkezetétől függően szerovariánsokra oszlik.

VI. Ellenállás: Hőmérséklet 100 0 C azonnal megöli a shigellát. A Shigella ellenáll az alacsony hőmérsékletnek folyóvíz legfeljebb 3 hónapig tárolják, zöldségeken és gyümölcsökön - legfeljebb 15 hónapig.Kedvező körülmények között a Shigella képes szaporodni élelmiszer termékek(saláták, vinaigrettek, főtt hús, darált hús, főtt hal, tej és tejtermékek, kompótok és zselé), különösen a Shigella Sonne.

Járványtan.

1. Fertőzés forrása:A shigellózis akut és krónikus formáiban szenvedő személy; bakteriohordozó.

2. Az átvitel módjai:

• Élelmiszer (főleg S. sonnei számára)
• Vízi (főleg S. flexneri esetében)
• Kapcsolattartás a háztartással (főleg S. dysenteriae esetén)

3. bejárati kapu fertőzés a gyomor-bélrendszert szolgálja.

Patogenezis és kóros elváltozások.

Lenyelés után a Shigella kolonizálja a felső régiókat vékonybélés ott szaporodnak, esetleg fokozott szekréciót okozva tovább korai fázis fertőzések. A Shigella ezután az M-sejteken keresztül behatol a nyálkahártya alatti részbe, ahol a makrofágok elnyelik őket. Ez a shigella egy részének elpusztulásához vezet, ami gyulladásos mediátorok felszabadulását eredményezi, amelyek gyulladást indítanak el a nyálkahártya alatt. A fagociták apoptózisa lehetővé teszi, hogy a Shigella egy másik része túlélje, és az alapmembránon keresztül behatoljon a nyálkahártya hámsejtjébe. Az enterociták belsejében a shigella szaporodik és sejtközötti terjed, ami eróziókat eredményez. Amikor a shigella elpusztul, shiga és shiga-szerű toxinok szabadulnak fel, amelyek hatása mérgezéshez vezet. A nyálkahártya vereségét duzzanat, nekrózis és vérzés kíséri, ami vér megjelenését okozza a székletben. Ezenkívül a toxin hatással van a központi idegrendszerre, ami trofikus rendellenességekhez vezet.

Klinikai megnyilvánulások.

A shigellosis klinikai megnyilvánulásainak spektruma nagyon széles az enyhe hasmenéstől a súlyos vérhasig, görcsös hasi fájdalommal, tenezmussal, lázzal és általános mérgezéssel.

Lappangási időszaktöbb órától 7 napig terjed, leggyakrabban 2-3 nap.Kezdetben a betegeknek van vizes széklet, láz (41 °C-ig), diffúz hasi fájdalom, hányinger és hányás. Ezzel együtt a betegek izomfájdalomra, hidegrázásra, hátfájásra és fejfájásra panaszkodnak. A betegség kezdetétől számított következő napokban megjelennek a vérhas jelei - tenezmus, gyakori, ritka, véres-nyálkás széklet. A testhőmérséklet fokozatosan csökken, a fájdalom lokalizálható alsó kvadránsok has. A hasmenés intenzitása a betegség első hetének végén éri el a maximumát. A véres széklettel járó dizentéria gyakoribb, és korábban jelentkezik az általa okozott betegségben S. dysenteriae típusú, mint a shigellosis más formáiban.

Shigellosis Sonne számára a betegség enyhébb lefolyása jellemző (gasztroenterális vagy gastroenterokolitikus változat). A lázas időszak rövidebb, a mérgezés hatásai rövid ideig tartanak, a bélnyálkahártya pusztító elváltozásai nem jellemzőek.

Shigellosis FlexnerAlapvetően a klinikai lefolyás két változata jellemző - gastroenterokolitikus és vastagbélgyulladás.

Extraintestinalis szövődmények shigellosisbanritka:

1. A shigellosis szövődménye lehet a bélrendszeri diszbakteriózis kialakulása.
2. A fejfájás mellett agyhártyagyulladás és görcsös rohamok jelei is jelentkezhetnek.
3. Perifériás neuropátia eseteit írták le az I. típusú S. dysenteriae fertőzésben, és Guillain-Barré szindrómáról (polyneuritis) számoltak be a S. boydii gastroenteritis kitörése során.
4. A dystrophiában szenvedő gyermekek kivételével a kórokozó hematogén disszeminációja viszonylag ritka, és leírtak shigellosis tályogok és agyhártyagyulladás eseteit is.
5. Shigellosis esetén a Reiter-szindróma kialakulása ízületi gyulladással, steril kötőhártya-gyulladással és urethritissel lehetséges, ez általában a betegek hasmenésétől számított 1-4 hét után következik be.
6. Gyermekeknél a shigellózist hemolitikus urémiás szindróma kíséri, gyakran leukémiához hasonló reakciókkal, súlyos vastagbélgyulladással és keringő endotoxinnal, de bakterémiát általában nem észlelnek.
7. A gennyes keratoconjunctivitist nagyon ritkán olyan shigella okozza, amely szennyezett ujjakkal történt önfertőzés következtében került a szembe.
8. Hipovolémiás sokk és DIC.
9. Hashártyagyulladás, bél gangréna, bélvérzés.

Immunitás: Az emberek természetes ellenállással rendelkeznek a shigellózissal szemben. Után múltbeli betegség az immunitás nem stabil, és a shigellosis után Sonne gyakorlatilag hiányzik. A Shigella Grigoriev Shigi által okozott betegséggel stabilabb antitoxikus immunitás alakul ki. A fertőzés elleni védekezésben a fő szerep a szekrécióé IgA , megakadályozza az adhéziót és az intraepiteliális limfociták citotoxikus antitest-függő aktivitását, amely a szekrécióval együtt IgA öld meg a shigellát.

Diagnosztika és laboratóriumi vizsgálatok.

A tanulmány célja: shigella kimutatása és azonosítása a diagnózishoz; baktériumhordozók kimutatása; a shigella kimutatása az élelmiszerekben.

Kutatási anyag: ürülék, szelvényanyag, élelmiszer.

Diagnosztikai módszerek:mikrobiológiai (bakteriológiai, mikroszkópos (lumineszcens); szerológiai; biológiai; allergiateszt.

A kutatás előrehaladása:

1 nap tanulás:A tenyésztést frissen kiválasztott ürülékből vagy rektális tamponnal (rektális tubus) kell végezni; megfelelő körülmények hiányában az anyagot szállítási környezetbe kell helyezni. Ehhez bélben oldódó agart (MacConkey vagy Shigella-Salmonella táptalaj), mérsékelten szelektív xilóz-lizin-dezoxikolát agart, KLD-t és táplevest (szelenitlevest) kell használni. Ha a begyűjtés és az oltás közötti idő meghaladja a 2 órát, akkor tartósító oldatokat kell használni: 20% epeleves, kombinált Kauffmann táptalaj.

• A glicerines keverékben lévő ürüléket emulgeáljuk, az emulzió egy cseppjét a táptalajra visszük, és spatulával dörzsöljük. A Shigella differenciálközege a Ploskirev, Endo és az EMS táptalaj (eozinmetilénkék agar). Ploskirev táptalaj (a táptalaj összetétele: MPA, laktóz, epesók és a briliánzöld indikátor) szintén választható táptalaj a shigella számára, mert. gátolja az Escherichia coli növekedését.
• A direkt vetéssel párhuzamosan az összegyűjtött anyagot a dúsító táptalajra - szelenitlevesre vetik.
• Minden terményt termosztátba helyeznek.

A tanulmány második napja:

• A csészéket eltávolítjuk a termosztátból, a gyanús telepeket Ressel-féle tápközegen (táptalaj, amely agar-agart, Andrede indikátort, 1% laktózt, 0,1% glükózt) és mannitot szűrünk. A vetést lejtős felületen ütésekkel és agaroszlopba injektálással végezzük. A beoltott Ressel táptalajt 18-24 órára termosztátba helyezzük (párhuzamosan történik a szelenit táptalajból a differenciáldiagnosztikai táptalajba történő újraoltás).
• Kenet készítése (Gram-festés), mikroszkóp.
• Készítsünk készítmények „lógó” vagy „zúzott” csepp.
• Az indikatív RA kimutatása polivalens diagnosztikai shigellosis szérummal.
• Gyanús telepek vetése agar ferdén.

A tanulmány 3. napja:

• Agar ferde anyag mikroszkópos vizsgálata.
• Azokat a tenyészeteket, amelyek Ressel-féle táptalajon nem fermentáltak laktózt, további vizsgálatnak vetjük alá: keneteket készítünk (Gram-festés), ellenőrizzük a tenyészet tisztaságát. Gram-negatív rudak jelenlétében az oltást Hiss táptalajra, indikátorpapírral (indol és hidrogén-szulfid kimutatására) és lakmusztejjel ellátott táplevesre végezzük.
• A beoltott táptalajt termosztátba helyezzük 18-24 órára.

A tanulmány 4. napja:

• Egy rövid "tarka sorozat" számonkérése.
• A Shigellával szembeni enzimatikus és kulturális tulajdonságaik miatt gyanús tenyészeteket szerológiai azonosításnak vetik alá. RA kimutatása üvegen (tipikus és csoportos diagnosztikai szérumok). A telepített RA beállítása.

A shigellózis gyorsított módszereként alkalmazzafluoreszcens mikroszkópiaés biológiai minta(a Shigella virulens törzseinek bejutása a tengerimalacok kötőhártyazsákjába (alsó szemhéj alatt) kötőhártya-gyulladás az 1. nap végére alakul ki).

Allergiás teszt Zuverkalovintradermális allergiás teszt dizentériával (0,1 ml vérhas bevezetése az alkarban pozitív reakció infiltráció és hyperemia esetén). Az allergológiai diagnosztikát jelenleg gyakorlatilag nem használják. A Tsurvekalov-teszt nem különbözik a specifitásban, pozitív reakciókat nemcsak shigellózisban, hanem szalmonellózisban, escherichiosisban, yersiniosisban és más akut bélfertőzésekben, és néha egészséges egyénekben is rögzítenek.

Kezelés és megelőzés.A bakteriofágot epidemiológiai javallatok szerint kezelésre és megelőzésre használják. orális beadás, antibiotikumok az antibiogram meghatározása után; dysbacteriosis esetén a mikroflóra korrekciójára szolgáló probiotikum készítmények. A folyadék- és elektrolitveszteség pótlására - glükóz-elektrolit oldat bevezetése a belsejébe.

Konkrét célok:

Értelmezze a shigellózis kórokozóinak biológiai tulajdonságait!

Ismerkedjen meg a Shigella osztályozásával.

Tanulja meg értelmezni a shigella által okozott fertőzési folyamat patogenetikai mintázatait.

A mikrobiológiai diagnosztika, az etiotrop terápia és a shigellosis megelőzésének módszereinek meghatározása.

Képesnek lenni:

• Oltsuk be a vizsgálati anyagot táptalajra.
  • Készítsen keneteket és Gram-festést.
  • A preparátumok mikroszkópos vizsgálata merülőmikroszkóp segítségével.
  • Elemezze a Shigella morfológiai, kulturális, enzimatikus jellemzőit.

Elméleti kérdések:

1. A shigellózis kórokozóinak jellemzői. biológiai tulajdonságait.

2. A shigella osztályozása. A mögöttes elvek.

3. Epidemiológia, patogenezis és klinikai szolgáltatások shigellózis.

4. Laboratóriumi diagnosztika.

5. A shigellózis kezelésének és megelőzésének elvei.

Gyakorlati feladatok amelyeket az osztályban végeznek:

1. Shigellosis kórokozók tiszta tenyészetéből származó demonstrációs preparátumok mikroszkópos vizsgálata.

2. Munka a shigellosis bakteriológiai diagnosztikájáról: székletkultúrák vizsgálata Ploskirev táptalajon.

3. Gyanús telepek szubkultúrája Ressel táptalajon és BCH-n az indolképződés és a H meghatározására 2 S .

4. A shigellózis mikrobiológiai diagnosztikájának bemutató preparátumainak vázlatos vázlata az órai jegyzőkönyvben.

5. A jegyzőkönyv rögzítése.

Irodalom:

1. Korotyaev A.I., Babichev S.A., Orvosi mikrobiológia, immunológia és virológia / Tankönyv orvosi egyetemeknek, St. Petersburg "Special Literature", 1998. - 592p.

2. Timakov V.D., Levashev V.S., Borisov L.B. Mikrobiológia / Tankönyv.-2. kiadás, átdolgozott. És további - M .: Orvostudomány, 1983, -512s.

3. Pjatkin K.D. Krivoshein Yu.S. Mikrobiológia virológiával és immunológiával.- Kijev: In és shcha iskola, 1992. - 431s.

4. Orvosi mikrobiológia / Szerk.: V.I. Pokrovszkij.-M.: GEOTAR-MED, 2001.-768s.

5. Útmutató a gyakorlati képzés mikrobiológiában, immunológiában és virológiában. Szerk. M.P. Zykov. M. "Gyógyászat". 1977. 288 p.

6. Cherkes F.K., Bogoyavlenskaya L.B., Belskan N.A. Mikrobiológia. / Szerk. F.K. Cserkesz. M.: Orvostudomány, 1986. 512 p.

7. Előadási jegyzetek.

További irodalom:

1. Makijarov K.A. Mikrobiológia, virológia és immunológia. Alma-Ata, "Kazahsztán", 1974. 372. o.

2. Titov M.V. Fertőző betegségek. - K., 1995. 321s.

3. Shuvalova E.P. fertőző betegségek. - M.: Orvostudomány, 1990. - 559 p.

4. BME, 1., 2., 7. évf.

5. Pavlovich S.A. Orvosi mikrobiológia grafikonokban: Proc. orvosi ellátás elvtárs. Mn.: Vysh. iskola, 1986. 255 p.

Rövid iránymutatásokat a gyakorlati foglalkozáson dolgozni.

Az óra elején ellenőrizzük a tanulók tanórára való felkészültségét.

Az önálló munka a shigella osztályozásának tanulmányozásából, a shigellosis patogenetikai és klinikai tüneteinek sémájának elemzéséből áll. A shigellosis laboratóriumi diagnosztikájának módszereinek tanulmányozása. A tanulók bioanyag vetését táptalajra végzik. Ezután mikropreparátumokat készítenek, azokat Gram szerint megfestik, mikroszkópos vizsgálatot végeznek, mikropreparátumokat vázolnak fel, és megadják a szükséges magyarázatokat. Az önálló munka összetétele tartalmazza a bemutató preparátumok mikroszkópos vizsgálatát és azok vázlatát az óra jegyzőkönyvében.

Az óra végén minden tanuló önálló munkájának végeredményének tesztellenőrzése és elemzése történik.

A gyakorlati óra technológiai térképe.

p/p	Szakasz	Idő percekben	A tanulás módjai	Felszerelés	Elhelyezkedés
	A tanórára való felkészülés kezdeti szintjének ellenőrzése, javítása		Kezdő szintű tesztfeladatok	Táblázatok, atlasz	tanulószoba
	Önálló munkavégzés		Logikai szerkezeti grafikon	Merülő mikroszkóp, festékek, tárgylemezek, bakteriológiai hurkok, táptalajok, Ploskirev táptalaj, Ressel táptalaj, "tarka Hiss sorozat"
	Önellenőrzésés az anyag elsajátításának korrekciója		Célzott tanulási feladatok
	Tesztvezérlés		Tesztek
	Munkaeredmények elemzése

Célzott tanulási feladatok:

1. Egy akut bélfertőzésben szenvedő gyermektől vettek ürüléket (a széklet összegyűjtése végbélszondával történt), amely nyálkát és gennyet tartalmazott. Milyen expressz diagnosztikai módszert kell alkalmazni?

A. ELISA.

b. ZÁTONY.

C. RA.

D. RSK.

E. RIA.

1. A vérhas kórokozóját egy akut bélfertőzésben szenvedő beteg gyermektől izolálták. Milyen morfológiai jellemzők jellemzőek a kórokozóra?

A . Gram-negatív, nem mozgó rúd.

B . Gram-pozitív mozgatható rúd.

C . Kapszulát képez tápközegen.

D . A külső környezetben spórákat képez.

E . Gram-pozitív streptobacillusok.

3. Egy beteg, aki három napja megbetegedett és 38 °C-os hőmérsékletre, hasi fájdalomra panaszkodik, gyakori folyékony széklet, a vér jelenléte a székletben, az orvos klinikailag bakteriális vérhasat állapított meg. Milyen mikrobiológiai diagnosztikai módszert kell alkalmazni ebben az esetben és milyen anyagot kell venni a betegtől a diagnózis megerősítéséhez?

A. Bakterioszkópos cal.

B. Bakteriológiai cal.

C. Bakterioszkópos vér.

D. Bakteriológiai vizelet.

E. Szerológiai vér.

4. Shigella Sonne-t izolálták a páciens ürülékéből. Milyen további kutatások szükségesek a fertőzés forrásának megállapításához?

A . Végezze el az izolált tiszta tenyészet fágtipizálását.

B . Határozza meg az antibiogramot.

C . Állítsa be a kicsapódási reakciót.

D . Állítsa be a komplementkötési reakciót.

E . Állítson be semlegesítési reakciót.

5. A tóvizet ivó turisták csoportjából (27 fő) két nap után 7 főnél jelentkeztek akut hasmenés tünetei. Milyen anyagot kell küldeni a bakteriológiai laboratóriumba a betegség etiológiájának megállapításához?

A. Víz, betegek ürüléke.

B. Víz, a betegek vére.

C. Élelmiszeripari termékek.

D. Vizelet.

E. Flegm.

6. Az akut bélfertőzések mikroszkópos diagnosztikai módszerének jelentős hátránya a családba tartozó baktériumok morfológiai azonossága miatti elégtelen információtartalma. Enterobacteriaceae . Mitől informatívabb ez a módszer?

A . Radioimmunoassay.

B . Coombs reakciója.

C . Kapcsolt immunszorbens vizsgálat.

D . opszonizációs reakció.

E . Immunfluoreszcens reakció.

7. Egy 29 éves beteg hányás, hasmenés és tenezmus miatt került kórházba. Nyálkadarabokkal és vérkeverékkel ellátott széklet. A Ploskirev táptalajon elhelyezett telepekről származó baktériumok bakteriológiai vizsgálata mozdulatlan, gram-negatív rudakat mutatott ki, amelyek nem fermentálnak laktózt. Nevezze meg a fertőző folyamat kórokozóját!

A. Shigella flexneri.

b. Vibrio eltor.

C. E. Coli.

D. Proteus mirabilis.

E. Salmonella enteritidis.

8. A mikrobiológiai laboratóriumba egy salátát szállítottak, amely feltehetően akut bélfertőzés okozója. Milyen tápközeget használnak az elsődleges oltáshoz?

A . Sárga-só agar, MPB.

b. MPA, MPB.

C . Selenit húsleves, Endo, Ploskireva.

D . Májleves, Roux medium.

E . Véragar, lúgos agar.

9. Mikrobiológiai kutatásoknál darált hús a Shigella nemzetségbe tartozó izolált baktériumok. A mikrobák milyen tulajdonságainak vizsgálata vezetett ilyen következtetésre?

A . Kulturális, tinctoriális.

B . Antigén, kulturális.

C . Szacharolitikus, proteolitikus.

D . Antigén, immunogén.

E . Morfológiai, antigén.

10. Az akut bélfertőzés tüneteit mutató beteg hányásának mikroszkópos vizsgálata mozdulatlan rudakat mutatott ki. Milyen kenetben vagy készítményben vizsgálható a baktériumok mozgékonysága?

A . Gram-foltos kenetben.

B . Tsil - Nelsen szerint festett kenetben.

C . A készítményben "vastag csepp".

D . Neisser-foltos kenetben.

E . A készítményben "zúzott csepp".

Algoritmus laboratóriumi munka :

1. A Shigella biológiai tulajdonságainak tanulmányozása.

2. Ismerkedés a shigella osztályozásával.

3. A shigellózis patogenetikai és klinikai megnyilvánulási sémájának elemzése.

4. A shigellosis laboratóriumi diagnosztikájának módszereinek tanulmányozása.

5. A shigellosis terápiás és megelőzési alapelveinek tanulmányozása.

1. Fix preparátumok készítése baktériumtenyészetből.
2. Színezés mikrokészítmények a Gram által.
3. Mikropreparátumok mikroszkópos vizsgálata Val vel merülő mikroszkóp segítségével, ezek elemzése és felvázolása az óra jegyzőkönyvében.
4. Mi Shigella tiszta tenyészeteiből származó demonstrációs preparátumok kromoszkópia és elemzése.
5. A shigellózis demonstrációs preparátumainak és laboratóriumi diagnosztikájának vázlata a protokollban.
6. A protokoll megfogalmazása.

A shigella osztályozása, tulajdonságaik. A shigellosis patogenezise.

A bakteriális vérhas vagy shigellosis a Shigella nemzetségbe tartozó baktériumok által okozott fertőző betegség, amely a vastagbél túlnyomórészt elváltozásával fordul elő. A nemzetség neve K. Shigihez fűződik, aki felfedezte az egyik kórokozót

vérhas.

Taxonómia és osztályozás. A vérhas kórokozói a Gracilicutes osztályhoz, az Enterobacteriaceae családhoz, a Shigella nemzetséghez tartoznak.

Morfológia és színárnyalati tulajdonságok. Shigella - gramm-negatív rudak lekerekített végekkel, 2-3 mikron hosszúak, 0,5-7 mikron vastagok (lásd a 10.1. ábrát); nem alkotnak spórákat, nem rendelkeznek flagellákkal, mozdulatlanok. Sok törzsben általános típusú boholyok és genitális pilusok találhatók. Néhány Shigellában van mikrokapszula.

Termesztés. A dizentériás pálcikák fakultatív anaerobok. A tápközeg iránt igénytelenek, 37 °C-os hőmérsékleten és 7,2-7,4 pH-értéken jól fejlődnek. Sűrű közegben kis átlátszó telepeket képeznek, folyékony közegben -

diffúz köd. A szelenitlevest leggyakrabban dúsító közegként használják a Shigella termesztéséhez.

Enzimatikus aktivitás. A Shigella enzimaktivitása kisebb, mint a többi enterobaktérium. A szénhidrátokat sav képződésével fermentálják. A Shigella megkülönböztetését lehetővé tevő fontos jellemző a mannithoz való viszonyuk: a S. dysenteriae nem fermentál mannitot, a B, C, D csoport képviselői mannit pozitívak. A biokémiailag legaktívabb a S. sonnei, amely lassan (2 napon belül) képes erjeszteni a laktózt. A S. sonnei ramnózhoz, xilózhoz és maltózhoz való viszonya alapján 7 biokémiai változatát különböztetjük meg.

Antigén szerkezet. A Shigella O-antigénnel rendelkezik, heterogenitása lehetővé teszi a szerováltozatok és alszerovariumok csoporton belüli megkülönböztetését; a nemzetség néhány tagjában megtalálható a K-antigén.

patogenitási tényezők. Minden dizentériás bacilus endotoxint képez, amely enterotróp, neurotróp, pirogén hatású. Ezenkívül a S. dysenteriae (I. szerovariáns) - Shigella Grigoriev-Shigi - exotoxint választ ki, amely enterotoxikus, neurotoxikus, citotoxikus és nefrotoxikus hatással van a szervezetre, ami ennek megfelelően megzavarja a víz-só anyagcserét és a központi idegrendszer tevékenységét, a vastagbél hámsejtek pusztulásához, a vesetubulusok károsodásához vezet. Több mint súlyos lefolyású e kórokozó által okozott vérhas. A Shigella más típusai exotoxint is kiválaszthatnak. Felfedezték a rádiófrekvenciás permeabilitási faktort, amelynek eredményeként az erek érintettek. A patogenitási faktorok közé tartozik még egy invazív fehérje, amely elősegíti a hámsejtekbe való behatolásukat, valamint a tapadásért felelős pili- és külső membránfehérjék, valamint a mikrokapszula.

ellenállás. A Shigellák csekély hatásállósággal rendelkeznek különféle tényezők. A S. sonnei ellenállóbbak, amelyek csapvízben akár 2"/2 hónapig, nyílt tározók vizében V / 2 hónapig fennmaradnak. A S. sonnei nemcsak hosszú ideig, hanem szaporodnak a termékekben, különösen a tejtermékekben.

Járványtan. A vérhas antroponotikus fertőzés: a forrás beteg emberek és hordozók. A fertőzések átvitelének mechanizmusa széklet-orális. A terjedési útvonalak eltérőek lehetnek - Sonne vérhasnál a táplálkozási út dominál, Flexner vérhasnál - víz, Grigoriev-Shiga vérhasnál a kontakt-háztartási út a jellemző. A vérhas a világ számos országában előfordul. Az utóbbi

években meredeken emelkedett ennek a fertőzésnek az előfordulása. Minden korosztály megbetegszik, de az 1-3 éves gyermekek a leginkább érzékenyek a vérhasra. Július-szeptemberben nő a betegek száma. Különböző típusú shigella egyedenként

a régiók egyenetlenül oszlanak el.

Patogenezis. A Shigella a szájon keresztül jut be a gyomor-bélrendszerbe, és eléri a vastagbelet. A hám tropizmusával a kórokozók a sejtekhez kötődnek a külső membrán fehérjéi és pilusai segítségével. Az invazív faktornak köszönhetően behatolnak a sejtek belsejébe, ott szaporodnak, aminek következtében a sejtek elhalnak. A bélfalban fekélyek képződnek, amelyek helyén aztán hegek képződnek. A baktériumok pusztulása során felszabaduló endotoxin általános mérgezést, fokozott bélmozgást és hasmenést okoz. A kialakult fekélyekből származó vér belép a székletbe. Az exotoxin hatásának eredményeként a víz-só anyagcsere, a központi idegrendszer aktivitása és a vesekárosodás kifejezettebb megsértése figyelhető meg.

klinikai kép. Az inkubációs időszak 1-5 napig tart. A betegség akutan kezdődik, a testhőmérséklet 38-39 ° C-ra emelkedik, hasi fájdalom, hasmenés jelenik meg. A székletben vér, nyálka keveréke található. A legsúlyosabb vérhas a Grigoriev-Shiga.

Immunitás. Egy betegség után az immunitás nemcsak faj-, hanem változat-specifikus is. Rövid életű és instabil. Gyakran a betegség krónikussá válik.

Mikrobiológiai diagnosztika. Vizsgálati anyagként a páciens székletét veszik. A diagnózis alapja a bakteriológiai módszer, amely lehetővé teszi a kórokozó azonosítását, annak érzékenységének meghatározását

antibiotikumok, intraspecifikus azonosítás (a biokémiai variáns, szerovar vagy colicinogenovar meghatározása). A vérhas elhúzódó lefolyása esetén kiegészítő szerológiai módszerként alkalmazható, amely az RA, RNHA stádiumba állításából áll (az ismételt reakció során az antitesttiter növelésével a diagnózis megerősíthető).

Kezelés. A vérhas súlyos formáiban szenvedő betegeket Grigoriev-Shiga és Flexner széles spektrumú antibiotikumokkal kezelik az antibiogram kötelező figyelembevételével, mivel a Shigellák között gyakran nemcsak antibiotikum-rezisztensek vannak.

chivy, de antibiotikum-függő formák is. A dizentéria enyhe formáiban nem alkalmaznak antibiotikumokat, mivel használatuk diszbakteriózishoz vezet, ami megnehezíti kóros folyamat, és a helyreállítási folyamatok megzavarása a vastagbél nyálkahártyájában.

Megelőzés. Az egyetlen gyógyszer, amely a fertőzési gócokban profilaktikus céllal alkalmazható, a dysenteric bakteriofág. A fő szerepet a nem specifikus profilaxis játssza.

11. Yersinia - a pestis kórokozói. Tulajdonságok. Patogenezis, immunitás, laboratóriumi diagnosztika, epidemiológia, megelőzés, kezelés. A hazai tudósok szerepe a pestis vizsgálatában.

Taxonómia: Az Y.pestis pestist okoz; osztály Gracilicutes, Enterobacteriaceae család, Yersinia nemzetség. A kórokozó a Yersinia pestis.

Morfológiai tulajdonságok: Gram-negatív rudak, tojásdad, foltos bipoláris. Mobilak, kapszulával rendelkeznek, nem képeznek spórákat.

kulturális javak.

fakultatív anaerobok. Optimális hőmérséklet + 25 С. Jól termeszthető egyszerű táptalajokon. A legtöbb szénhidrát gázképződés nélkül fermentálódik. Pszichofilek - képesek megváltoztatni az anyagcseréjüket a hőmérséklet függvényében és szaporodni alacsony hőmérsékletek. A virulens törzsek durva (R) telepeket, átmeneti (RS) és szürkés nyálkás sima avirulens (S) formákat alkotnak.

Kétféle kolónia - fiatal és érett. Fiatalkorú, egyenetlen szélű. Az érett telepek nagyok, barna szemcsés középponttal és szaggatott szélekkel. A ferde agaron két napos fordulat +28 C-on szürkés - fehér bevonat, a környezetbe növő, a húslevesen - finom felületű film és pamutszerű csapadék.

Biokémiai tulajdonságok: magas enzimaktivitás: fermentáció savas xilózzá, plazmakoaguláz, fibrinolizin, hemolizin, lecitináz, hidrogén-szulfid szintézise. A ramnóz, a karbamid nem erjed.

Antigén szerkezet.

Fehérje - poliszacharid és lipopoliszacharid antigének egy csoportja: hőstabil szomatikus O-antigén és termolabilis kapszuláris V, W antigének. A baktériumok virulenciája a W antigénhez kapcsolódik. Patogenitási faktorokat termel: fibrinolizin, plazmakoaguláz, endotoxin, exotoxin, kapszula, V, W antigének.

Ellenállás:érzékeny az antibiotikumokra (különösen a sztreptomicinre), magas hőmérsékleten instabil a környezetre.

patogén tulajdonságok.

Patogén potenciállal rendelkezik, elnyomja a funkciókat fagocita rendszer, elnyomja az oxidatív robbanást a fagocitákban és szabadon szaporodik bennük. A patogenitási faktorokat a plazmidok három osztálya szabályozza. A patogenezisben három fő szakasz van - limfogén sodródás, bakteremia, generalizált szeptikémia. Adhezineket és invazinokat, alacsony molekulatömegű fehérjéket (baktericid faktorokat gátolnak), enterotoxint tartalmaznak. Néhány tényezőt a virulenciaplazmidok szabályoznak.

Klinikai szolgáltatások: A lappangási idő több órától 8 napig tart. Megkülönböztetni a helyi - bőr-bubós, bubós; külsőleg disszeminált - elsődleges pulmonalis, másodlagos tüdő- és bélrendszer; generalizált - a pestis elsődleges szeptikus, másodlagos szeptikus formái. Regionális lymphadenopathia, enterocolitis, reaktív ízületi gyulladás, spondylitis, láz.

Járványtan: A pestis a vadon élő állatok klasszikus természetes fokális zoonózisa. A természetben a fő hordozók mormoták, földi mókusok, városi körülmények között - patkányok. A kórokozó átvitelében - az állatok bolhái, amelyek megfertőzhetik az embert.

Immunitás: sejtes-humorális, időtartama és intenzitása korlátozott.

Mikrobiológiai diagnosztika:

Bakterioszkópos vizsgálat. A vizsgálati anyagból keneteket készítünk, Grammal és metilénkék vizes oldatával megfestjük. A pestis baktériumok Gram-negatív, tojásdad alakú rudak. bakteriológiai kutatás. A vizsgálati anyagot tápagar lemezekre oltottuk be. A tenyészeteket 25 °C-on inkubáljuk. A növények elsődleges vizsgálatát 10 óra elteltével végzik el. Ekkorra már megjelennek a virulens R-formák által létrehozott telepek. Alacsony és avirulens baktériumok S-alakú telepeket alkotnak. A tiszta tenyészet azonosítása a baktériumsejtek morfológiája, a növekedés természete, az antigén- és biokémiai tulajdonságok, az adott fágra való érzékenység és a biológiai vizsgálat szerint történik.

A baktériumok filmet képeznek a húslevesen; sok cukrot savvá erjeszt, nem képez indolt, nem cseppfolyósítja a zselatint. Tartalmaznak egy csoportos hőstabil szomatikus antigént és egy specifikus termolabilis tok-antigént.

Bioassay. Ennek célja a tiszta kultúra izolálása idegen mikroflórával szennyezett anyagból. A legérzékenyebb laboratóriumi állatok a tengerimalacok, amelyekbe szubkután fecskendezik be az anyagot. Intraperitoneálisan az anyagot injektálják, ha nem szennyezett más baktériumokkal. Az állatok elhullása után a szervek kóros elváltozásait észlelik, és bakteriológiai vizsgálatot végeznek.

A laboratóriumi diagnosztika expressz módszerei:

2.RPGA - az anyagban lévő bakteriális antigének kimutatására standard pestisellenes szérum segítségével, amelynek antitestei az eritrocitákra kerülnek.

Kezelés: antibiotikumok - sztreptomicin, tetraciklin gyógyszerek.

Megelőzés: specifikus profilaxis – élő attenuált EV pestisvakcina. Orális beadásra száraz tabletta vakcina kapható. A pestis elleni immunitás felmérésére (természetes utófertőzés és vakcina) pesztinnel végzett intradermális allergiateszt használható.

Pestis bakteriofág– Y. pestis azonosításakor.

Száraz pestis vakcina - a pestis megelőzésére használt Y. pestis vakcinatörzs EV szárított élő kultúrája.

A vérhas mikrobiológiája

A vérhas egy fertőző betegség, amelyet a szervezet általános mérgezése, hasmenés és a vastagbél nyálkahártyájának sajátos elváltozása jellemez. Ez az egyik leggyakoribb akut bélbetegség a világon. A betegség ősidők óta ismert "véres hasmenés" néven, de természete más volt. 1875-ben F. A. Lesh orosz tudós amőbát izolált egy véres hasmenéses betegtől. Entamoeba histolytica, a következő 15 évben létrejött ennek a betegségnek a függetlensége, amelyre az amoebiasis elnevezést megőrizték.

A vérhas kórokozói a biológiailag hasonló baktériumok nagy csoportja, amelyek a nemzetségben egyesülnek Shigella. A kórokozót először 1888-ban A. Chantemes és F. Vidal fedezte fel; 1891-ben A. V. Grigorjev írta le, 1898-ban pedig K. Shiga egy betegtől kapott szérum felhasználásával 34 vérhasban szenvedő betegnél azonosította a kórokozót, végül bizonyítva e baktérium etiológiai szerepét. A következő években azonban a vérhas más kórokozóit is felfedezték: 1900-ban - S. Flexner, 1915-ben - K. Sonne, 1917-ben - K. Stutzer és K. Schmitz, 1932-ben - J. Boyd , 1934-ben - D. Large, 1943-ban - A. Sachs. Jelenleg a nemzetség Shigella több mint 40 szerotípust tartalmaz. Ezek mind rövid, mozdulatlan Gram-negatív pálcikák, amelyek nem képeznek spórákat és kapszulákat, amelyek jól növekednek közönséges táptalajokon, nem nőnek olyan éheztetési táptalajon, amelyben citrát vagy malonát az egyetlen szénforrás; nem képeznek H 2 S-t, nem tartalmaznak ureázt; a Voges-Proskauer reakció negatív; a glükózt és néhány más szénhidrátot erjesztik, hogy sav keletkezzen gáz nélkül (kivéve néhány biotípust Shigella flexneri: S. Manchesterés S. newcastle); általában nem fermentál laktózt (kivéve Shigella Sonne), adonitot, szalicint és inozitot, nem cseppfolyósítja a zselatint, általában katalázt képez, nincs lizin-dekarboxiláz és fenilalanin-deamináz. A DNS G + C tartalma 49-53 mol%. A Shigella fakultatív anaerob, növekedési optimuma 37 °C, 45 °C feletti hőmérsékleten nem nő, a táptalaj optimális pH-ja 6,7 ​​- 7,2. A sűrű táptalajokon a telepek kerekek, domborúak, áttetszőek, disszociáció esetén durva R alakú telepek képződnek. Növekedés a BCH-n egyenletes zavarosság formájában, a durva formák csapadékot képeznek. A Sonne Shigella frissen izolált tenyészetei általában kétféle kolóniát képeznek: kicsi, kerek konvex (I. fázis), nagy lapos (II. fázis). A telep jellege függ egy m.m. 120 MD plazmid jelenlététől (I. fázis) vagy hiányától (II.fázis), amely a Shigella Sonne virulenciáját is meghatározza.

Nemzetközi osztályozás A Shigella biokémiai jellemzőit (mannitot nem fermentáló, mannitot erjesztő, lassan laktózt fermentáló Shigella) és az antigénszerkezet jellemzőit figyelembe véve épül fel (37. táblázat).

Különböző specifitású O-antigéneket találtak a Shigellában: gyakori a családban Enterobacteriaceae, generikus, faj-, csoport- és típusspecifikus, valamint K-antigének; Nincsenek H-antigénjeik.

37. táblázat

A nemzetséghez tartozó baktériumok osztályozása Shigella

Az osztályozás csak a csoport- és típusspecifikus O-antigéneket veszi figyelembe. Ezen jellemzők szerint a Shigella 4 alcsoportra vagy 4 fajra osztva, és 44 szerotípust tartalmaz. Az A alcsoportban (faj Shigella dysenteriae) magában foglalja a mannitot nem erjesztő shigellákat. A faj 12 szerotípust tartalmaz (1-12). Minden szerotípusnak megvan a maga specifikus típusú antigénje; A szerotípusok közötti antigén kapcsolatok, valamint a shigella más típusai között gyengén expresszálódnak. A B alcsoportba (típus Shigella flexneri) közé tartozik a Shigella, amely általában mannitot erjeszt. Ennek a fajnak a Shigellái szerológiailag rokonok egymással: típusspecifikus antigéneket (I-VI) tartalmaznak, amelyek szerint szerotípusokra (1-6) és csoportantigénekre oszthatók, amelyek az egyes szerotípusokban eltérő összetételben találhatók meg. és amely szerint a szerotípusokat alszerotípusokra osztják. Ezenkívül ez a faj két antigénváltozatot tartalmaz, az X-et és az Y-t, amelyek nem rendelkeznek tipikus antigénekkel, hanem csoportantigénkészletekben különböznek egymástól. Szerotípus S. flexneri 6 nem rendelkezik alszerotípusokkal, de a glükóz, mannit és dulcit fermentációjának jellemzői szerint 3 biokémiai típusra oszlik (38. táblázat).

38. táblázat

Biotípusok S. flexneri 6

Jegyzet. K - fermentáció csak sav képződésével; KG - fermentáció sav és gáz képződésével; (-) - nincs erjedés.

A Shigella Flexner összes lipopoliszacharid antigénje a 3-as, 4-es csoportantigént tartalmazza fő elsődleges szerkezetként, szintézisét a his-lókusz közelében lokalizált kromoszómális gén szabályozza. Az I., II., IV., V. típusspecifikus antigének és a 6., 7., 8. csoportantigének a 3., 4. antigének módosításának (glikoziláció vagy acetilezés) eredményeként jönnek létre, és a megfelelő konvertáló profágok génjei határozzák meg őket, az integrációs helyük amely a Shigella kromoszóma lac-pro régiójában található.

Az ország területén a 80-as években jelent meg. 20. század és egy széles körben használt új alszerotípus S. flexneri 4(IV:7, 8) eltér a 4a (IV:3, 4) és 4b (IV:3, 4, 6) alszerotípustól, a változatból keletkezett S. flexneri Y(IV:3, 4) a IV. és 7., 8. konvertáló profágok lizogenizálása miatt.

A C alcsoportba (fajta Shigella boydii) közé tartozik a Shigella, amely általában mannitot erjeszt. A csoport tagjai szerológiailag különböznek egymástól. A fajon belüli antigén kapcsolatok gyengén kifejeződnek. A faj 18 szerotípust (1-18) tartalmaz, amelyek mindegyikének megvan a maga fő típusú antigénje.

A D alcsoportban (faj Shigella sonnei) tartalmazza a Shigella-t, amely általában a mannitot fermentálja, és képes lassan (24 órás inkubáció után és később) a laktóz és a szacharóz fermentálására. Kilátás S. sonnei egy szerotípust tartalmaz, azonban az I. és II. fázisú telepeknek saját típusspecifikus antigénjeik vannak. Két módszert javasoltak a Sonne-féle Shigella intraspecifikus osztályozására:

1) 14 biokémiai típusra és altípusra osztva őket maltóz, ramnóz és xilóz fermentációs képességük szerint; 2) fágtípusokra osztás a megfelelő fágok csoportjával szembeni érzékenység szerint.

Ezek a tipizálási módszerek főként epidemiológiai jelentőségűek. Ezenkívül a Sonne-féle és a Flexner-féle sigellákat ugyanabból a célból tipizálásnak vetik alá, mivel képesek specifikus colicineket szintetizálni (kolicinogenotipizálás), valamint az ismert kolicinekre való érzékenységük miatt (kolicinotipizálás). A shigella által termelt colicinek típusának meghatározására J. Abbott és R. Shannon javasolta a Shigella tipikus és indikátor törzseit, valamint a shigella ismert típusú colicinekkel szembeni érzékenységét, P. Frederick referencia colicinogén törzseit. használt.

ellenállás. A Shigella meglehetősen nagy ellenállással rendelkezik a környezeti tényezőkkel szemben. Túlélnek pamutszöveten és papíron 30-36 napig, szárított székletben - 4-5 hónapig, talajban - 3-4 hónapig, vízben - 0,5-3 hónapig, gyümölcsökön és zöldségeken - legfeljebb 2 hétig, tejben és tejtermékekben - több hétig; 60 °C hőmérsékleten 15-20 perc alatt elpusztulnak. Érzékeny a klóramin oldatokra, aktív klórra és egyéb fertőtlenítőszerekre.

patogenitási tényezők. A Shigella legfontosabb biológiai tulajdonsága, amely meghatározza patogenitását, az a képesség, hogy behatolnak a hámsejtekbe, szaporodnak bennük és halálukat okozzák. Ez a hatás keratoconjunctival teszttel (a tengerimalac alsó szemhéja alá Shigella tenyészet (2-3 milliárd baktérium) egy hurok bejuttatása savós gennyes keratoconjunctivitis kialakulását idézi elő), valamint sejtfertőzéssel is kimutatható. tenyészetek (citotoxikus hatás) vagy csirkeembriók (pusztulásuk), vagy intranazálisan fehér egerekben (tüdőgyulladás kialakulása). A shigella fő patogenitási tényezői három csoportra oszthatók:

1) a nyálkahártya hámjával való kölcsönhatást meghatározó tényezők;

2) a makroorganizmus humorális és sejtes védekező mechanizmusaival szembeni rezisztenciát biztosító tényezők, valamint a Shigella sejtekben való szaporodási képessége;

3) a toxinok és mérgező termékek előállításának képessége, amelyek meghatározzák a tényleges kóros folyamat kialakulását.

Az első csoportba az adhéziós és kolonizációs faktorok tartoznak: szerepüket a pili, a külső membránfehérjék és az LPS töltik be. A nyálkapusztító enzimek, például a neuraminidáz, a hialuronidáz és a mucináz elősegítik az adhéziót és a kolonizációt. A második csoportba azok az inváziós faktorok tartoznak, amelyek elősegítik a Shigella behatolását az enterocitákba és szaporodását bennük és a makrofágokban, a citotoxikus és (vagy) enterotoxikus hatás egyidejű megnyilvánulásával. Ezeket a tulajdonságokat a m. m. 140 MD plazmid génjei (a külső membrán fehérjéinek szintézisét kódolják, amelyek inváziót okoznak) és a Shigella kromoszómális génjei szabályozzák: kcp A (keratoconjunctivitist okoz), cyt (a sejtpusztulásért felelős), valamint más, még nem azonosított gének. A Shigella fagocitózis elleni védelmét a felületi K-antigén, a 3-as, 4-es antigének és a lipopoliszacharid biztosítják. Emellett a Shigella endotoxin lipid A immunszuppresszív hatással is rendelkezik: elnyomja az immunmemória sejtek aktivitását.

A patogenitási faktorok harmadik csoportjába tartozik az endotoxin és a Shigellában található kétféle exotoxin - Shiga exotoxinok és Shiga-szerű exotoxinok (SLT-I és SLT-II), amelyek citotoxikus tulajdonságai a legkifejezettebbek S. dysenteriae 1. Shiga- és Shiga-szerű toxinok más szerotípusokban is megtalálhatók S. dysenteriae, ezek is kialakulnak S. flexneri, S. sonnei, S. boydii, EHEC és néhány szalmonella. Ezeknek a toxinoknak a szintézisét a konvertáló fágok toxgénjei szabályozzák. LT típusú enterotoxinokat találtak Flexner, Sonne és Boyd Shigella esetében. Az LT szintézisét bennük a plazmidgének szabályozzák. Az enterotoxin serkenti az adenilát-cikláz aktivitását, és felelős a hasmenés kialakulásáért. A Shiga toxin vagy neurotoxin nem lép reakcióba az adenilát-cikláz rendszerrel, de közvetlen citotoxikus hatása van. A Shiga és Shiga-szerű toxinok (SLT-I és SLT-II) MW 70 kD, és A és B alegységekből állnak (az 5 egyforma kis alegység közül az utolsó). A toxinok receptora a sejtmembrán glikolipidje.

A Shigella Sonne virulenciája a plazmidtól is függ, amelynek m.m.120 MD. Körülbelül 40 külső membrán polipeptid szintézisét szabályozza, amelyek közül hét virulenciával kapcsolatos. A Shigella Sonne ezzel a plazmiddal I. fázisú telepeket képez és virulens. Azok a tenyészetek, amelyek elvesztették a plazmidot, II. fázisú telepeket képeznek, és nincs virulenciája. 120-140 MD m.m.-ű plazmidokat találtak Shigella Flexner és Boyd esetében. A Shigella lipopoliszacharid egy erős endotoxin.

Az epidemiológia jellemzői. A fertőzés egyetlen forrása az ember. A természetben egyetlen állat sem szenved vérhasban. Kísérleti körülmények között a vérhas csak majmokban reprodukálható. A fertőzés módja széklet-orális. Terjedési módok - a víz (a Shigella Flexner esetében túlnyomórészt), az élelmiszerek, különösen a tej és a tejtermékek (a Shigella Sonne esetében a fertőzés túlnyomó útja), valamint a kontakt-háztartás, különösen a faj esetében. S. dysenteriae.

A vérhas epidemiológiájának sajátossága a kórokozók fajösszetételének változása, valamint egyes régiókban a Sonne biotípusok és Flexner szerotípusok. Például az 1930-as évek végéig 20. század megosztani S. dysenteriae 1 az összes vérhas 30-40%-át tette ki, majd ez a szerotípus egyre ritkábban fordult elő, és szinte eltűnt. Azonban az 1960-1980-as években. S. dysenteriaeújra megjelent a történelmi színtéren, és járványsorozatot okozott, amelyek három hiperendémiás góc kialakulásához vezettek - Közép-Amerikában, Közép-Afrikában és Dél-Ázsiában (India, Pakisztán, Banglades és más országok). A dizentériás kórokozók fajösszetételének változásának okai valószínűleg a kollektív immunitás megváltozásával és a vérhasbaktériumok tulajdonságainak megváltozásával hozhatók összefüggésbe. Különösen a visszatérés S. dysenteriae 1 Széles elterjedése pedig, amely a vérhas hiperendémiás gócainak kialakulását okozta, az általa történő plazmidszerzéssel függ össze, ami többszörös gyógyszer-rezisztenciaés megnövekedett virulencia.

A patogenezis és a klinika jellemzői. A dizentéria lappangási ideje 2-5 nap, néha kevesebb, mint egy nap. Képződés fertőző fókusz a vastagbél leszálló részének (szigmabél és végbél) nyálkahártyájában, ahová a vérhas kórokozója behatol, ciklikus: adhézió, kolonizáció, shigella bejutása az enterociták citoplazmájába, intracelluláris szaporodása, pusztulása és kilökődése hámsejtek esetében a kórokozók felszabadulása a bél lumenébe; ezt követően kezdődik a következő ciklus - adhézió, kolonizáció stb. A ciklusok intenzitása a kórokozók koncentrációjától függ a nyálkahártya parietális rétegében. Az ismétlődő ciklusok következtében a gyulladásos fókusz megnő, a kialakuló fekélyek, összekapcsolódnak, növelik az expozíciót bélfal, melynek következtében a székletben vér, nyálkahártya-gennyes csomók, polimorfonukleáris leukociták jelennek meg. A citotoxinok (SLT-I és SLT-II) sejtpusztulást, enterotoxinok - hasmenést, endotoxinok - általános mérgezést okoznak. A vérhas klinikáját nagyban meghatározza, hogy a kórokozó milyen típusú exotoxinokat termel nagyobb mértékben, milyen allergiás hatást fejt ki, illetve a szervezet immunállapota. A dizentéria patogenezisének számos kérdése azonban megmagyarázatlan, különösen: a vérhas lefolyása az első két életévben, az akut vérhas krónikussá válásának okai, a szenzitizáció jelentősége, a helyi immunitás mechanizmusa. A vérhas legjellemzőbb klinikai megnyilvánulásai a hasmenés, gyakori késztetések: súlyos esetekben akár napi 50-szer vagy többször, tenezmus (fájdalmas végbélgörcs) és általános mérgezés. A széklet jellegét a vastagbél károsodásának mértéke határozza meg. A legsúlyosabb vérhas az okozza S. dysenteriae 1, legkönnyebben - Sonne vérhas.

Posztinfekciós immunitás. A majmokon végzett megfigyelések szerint a vérhas elszenvedése után erős és meglehetősen hosszú távú immunitás marad fenn. Antimikrobiális antitestek, antitoxinok, a makrofágok és a T-limfociták fokozott aktivitása okozza. Jelentős szerepet játszik a bélnyálkahártya helyi immunitása, amelyet az IgA-k közvetítenek. Az immunitás azonban típusspecifikus jellegű, erős keresztimmunitás nem lép fel.

Laboratóriumi diagnosztika. A fő módszer bakteriológiai. A vizsgálat anyaga széklet. Kórokozó izolálási séma: beoltás Endo és Ploskirev differenciáldiagnosztikai táptalajra (párhuzamosan a dúsító táptalajra, majd beoltás Endo és Ploskirev táptalajra) az izolált telepek izolálására, tiszta tenyészet előállítása, biokémiai tulajdonságainak tanulmányozása, és figyelembe véve az utóbbi, azonosítás polivalens és monovalens diagnosztikai agglutináló szérumok segítségével. A következő kereskedelmi szérumokat gyártják.

1. Shigella, amely nem erjeszt mannitot:

nak nek S. dysenteriae 1és 2

nak nek S. dysenteriae 3–7(polivalens és egyértékű),

nak nek S. dysenteriae 8-12(polivalens és egyértékű).

2. Shigella fermentáló mannithoz:

tipikus antigénekhez S. flexneri I, II, III, IV, V, VI,

az antigének csoportosítására S. flexneri 3, 4, 6, 7, 8- többértékű,

az antigénekhez S.boydii 1–18(polivalens és monovalens), az antigénekhez S. sonnei I fázis, II fázis,

az antigénekhez S. flexneri I–VI+ S. sonnei- többértékű.

A Shigella gyors azonosítására a következő módszer javasolt: egy gyanús telepet (Endo táptalajon laktozonegatív) TSI táptalajon (eng. hármas cukor vas) - háromcukros agar (glükóz, laktóz, szacharóz) vassal a H 2 S termelésének meghatározására; vagy glükózt, laktózt, szacharózt, vasat és karbamidot tartalmazó táptalajon. Minden olyan organizmus, amely 4-6 órás inkubáció után lebontja a karbamidot, nagy valószínűséggel a nemzetséghez tartozik. Proteusés kizárható. A H 2 S-t termelő vagy az ízületben ureázt vagy savat termelő mikroorganizmus (laktózt vagy szacharózt erjeszt) kizárható, bár a H 2 S-t termelő törzseket a nemzetség lehetséges tagjaiként meg kell vizsgálni. Salmonella. Minden más esetben az ezeken a táptalajokon termesztett tenyészetet meg kell vizsgálni, és ha glükózt fermentál (a rúd színe megváltozik), akkor tiszta formában izolálni kell. Ugyanakkor a nemzetségnek megfelelő antiszérummal üvegen végzett agglutinációs teszttel is vizsgálható. Shigella. Szükség esetén egyéb biokémiai vizsgálatokat is végeznek a nemzetséghez való tartozás ellenőrzésére Shigellaés tanulmányi mobilitás.

A következő módszerek használhatók az antigének kimutatására a vérben (beleértve a CEC részét is), a vizeletben és a székletben: RPHA, RSK, koagulációs reakció (vizeletben és székletben), IFM, RAGA (vérszérumban). Ezek a módszerek rendkívül hatékonyak, specifikusak és alkalmasak a korai diagnózisra.

Szerológiai diagnosztikára a következők használhatók: RPGA a megfelelő eritrocita diagnosztikával, immunfluoreszcens módszer (indirekt módosításban), Coombs módszer (inkomplett antitestek titerének meghatározása). A dizentériával végzett allergiás teszt (a Shigella Flexner és Sonne fehérjefrakcióinak oldata) szintén diagnosztikus értékű. A reakciót 24 óra elteltével vesszük figyelembe, hiperémia és 10-20 mm átmérőjű infiltráció esetén pozitívnak tekintjük.

Kezelés. A fő figyelmet a normál víz-só anyagcsere helyreállítására, a racionális táplálkozásra, a méregtelenítésre, a racionális antibiotikum-terápiára fordítják (figyelembe véve a kórokozó antibiotikum-érzékenységét). Jó hatás érhető el egy polivalens dysentericus bakteriofág korai felhasználásával, különösen a pektinbevonatú tablettáknál, amelyek megvédik a fágot a gyomornedv HCl-jának hatásától; a vékonybélben a pektin feloldódik, a fágok felszabadulnak és megmutatják hatásukat. Profilaktikus célokra a fágot legalább háromnaponta egyszer kell beadni (a bélben való túlélés időszaka).

A specifikus megelőzés problémája. A vérhas elleni mesterséges immunitás megteremtésére különféle vakcinákat használtak: elölt baktériumok ellen, vegyszereket, alkoholt, de mindegyik hatástalannak bizonyult, és beszüntették. A Flexner-dizentéria elleni vakcinákat élő (mutáns, sztreptomicin-függő) Shigella Flexnerből hoztak létre; riboszómális vakcinák, de ezeket sem alkalmazták széles körben. Ezért a vérhas specifikus megelőzésének problémája továbbra is megoldatlan. A vérhas elleni küzdelem fő módja a vízellátás és a csatornarendszer javítása, a szigorú egészségügyi és higiéniai szabályok biztosítása az élelmiszeripari vállalkozásokban, különösen a tejiparban, a gyermekgondozási intézményekben, a nyilvános helyeken és a személyi higiéniában.

UDC 616.935-074(047)

A.M.Sadykova

Kazah Nemzeti Orvostudományi Egyetem

S.D.-ről nevezték el. Asfendiyarov, Almati

Fertőző és Trópusi Betegségek Osztálya

A vérhas megbízható diagnosztizálása az AEI felügyelet egyik sürgető feladata. A baciláris vérhas pontos diagnózisa az fontosságát a jobb és időben történő kezelés beteget, valamint a szükséges járványellenes intézkedések végrehajtását. Az áttekintésben bemutatott adatok azt mutatják, hogy a vérhas széles körű elterjedtsége miatt az érzékenység hiánya, ill. késői megjelenés Számos diagnosztikai módszer pozitív eredménye, célszerű fejleszteni a fertőzés kimutatásának diagnosztikai potenciálját.

Kulcsszavak: diagnosztika, vérhas, antigénkötő limfocita módszer.

A shigellosis fertőzés felismerése a klinikai gyakorlatban jelentős nehézségekbe ütközik olyan objektív tényezők miatt, mint a vérhas klinikai patomorfizmusa, számának növekedése. atipikus formák betegségek, jelentős számú fertőző és nem fertőző jellegű betegség fennállása, amelyek klinikai megnyilvánulásai hasonlóak a vérhashoz. A "klinikai vérhas" diagnózisa alatt az esetek felében más etiológiájú, fel nem ismert betegségek rejtőznek.

A legnagyobb nehézségek az orvos előtt a páciens kezdeti vizsgálata során merülnek fel, mielőtt a paraklinikai diagnosztikai módszerek eredményeit megszereznék. A dizentéria felismerése is nehézkes jelenlétében kísérő betegségek gyomor-bél traktus.

A dizentéria etiológiai laboratóriumi diagnosztikájának használatának kezdete óta számos módszert javasoltak és teszteltek. A fertőzések etiológiai diagnosztizálására számos módszer létezik. Módszertanilag a B.V. által javasolt osztályozás. Büntetés. A vérhas diagnózisa tekintetében a módszertanilag megalapozott osztályozás elveit alkalmazta B.V. Karalnik, N.M. Nurkina, B.K. Erkinbekova..

A vérhas diagnosztizálásának laboratóriumi módszerei közül ismert a bakteriológiai (a kórokozó izolálása és azonosítása) és az immunológiai. Ez utóbbiak közé tartoznak az in vivo immunológiai módszerek (Zuverkalov allergológiai teszt) és in vitro. Az in vitro immunológiai módszereknek van egy kétségtelen előnye a Zuverkalov-teszttel szemben - nem kapcsolódnak idegen antigének bejuttatásához a szervezetbe.

A legtöbb kutató még mindig úgy véli, hogy a bakteriológiai kutatás, amely magában foglalja az izolálást is tiszta kultúra a betegség kórokozója, morfológiai, biokémiai és antigénjellemzők alapján történő azonosításával a legmegbízhatóbb módszer a shigellosis fertőzés diagnosztizálására. A Shigella izolálásának gyakorisága az "akut vérhas" klinikai diagnózisával rendelkező betegek székletéből a különböző szerzők szerint 30,8% és 84,7%, sőt 91,1% között mozog. A különböző szerzők számára ilyen jelentős tartomány nemcsak a bakteriológiai vizsgálat eredményességét befolyásoló objektív tényezőktől függ, hanem a „klinikai vérhas” diagnózisának (vagy kizárásának) alaposságától is. A bakteriológiai kutatások eredményességét befolyásolják olyanok objektív tényezők, mint a betegség lefolyásának jellemzői, a mintavétel és az anyag laboratóriumba szállításának módja, a tápközeg minősége, a személyzet képzettsége, a beteg egészségügyi dolgozókkal való érintkezésének időpontja, felhasználása antimikrobiális szerek mielőtt anyagot vesz a kutatáshoz. mennyiségi mikrobiológiai kutatás A széklet akut vérhasban azt mutatja, hogy a fertőzés bármely klinikai formája esetén a kórokozók legmasszívabb felszabadulása a betegség első napjaiban következik be, és a betegség 6. és különösen a 10. napjától kezdve a shigella koncentrációja a széklet jelentősen csökken. T.A. Avdeeva megállapította, hogy a shigella alacsony tartalma és a nem patogén mikroorganizmusok éles túlsúlya a székletben gyakorlatilag kizárja a dizentériás baktériumok bakteriológiai kimutatásának lehetőségét.

Ismeretes, hogy a shigellosis fertőzés bakteriológiai igazolása leggyakrabban a betegség első napjaiban végzett betegek vizsgálatakor sikerül – a kórokozó koprokultúráját az esetek túlnyomó többségében az első vizsgálat során először izolálják. A bakteriológiai vizsgálat pozitív eredményeit csak a betegség első 3 napjában a betegek 45-49% -ánál, az első 7 napban - 75% -ánál észlelték. Tillet és Thomas a betegek vizsgálatának időpontját is fontos tényezőnek tekinti a vérhas diagnosztizálására szolgáló bakteriológiai módszer hatékonyságának meghatározásában. A T.A. Avdeeva, a betegség első napjaiban a kórokozó legintenzívebb felszabadulása Sonne-dizentéria esetén figyelhető meg, kevésbé intenzív Flexner-dizentéria esetén és a legkevésbé intenzív Flexner VI-dizentéria esetén; a betegség későbbi szakaszában a legmagasabb koncentráció Flexner-dizentériában marad fenn a leghosszabb ideig, kevésbé hosszú - Shigella Sonne és a legkevésbé hosszú - Shigella Flexner VI.

Így bár a széklet bakteriológiai vizsgálata a legmegbízhatóbb módszer a shigellosis fertőzés diagnosztizálására, hatékonyságának fent felsorolt ​​korlátai jelentős hátrányok. Fontos rámutatni a bakteriológiai módszerrel történő korai diagnózis korlátaira is, amelyben az elemzés időtartama 3-4 nap. Ezzel összefüggésben nagy gyakorlati jelentőséggel bír az egyéb laboratóriumi diagnosztikai módszerek alkalmazása. Egy másik mikrobiológiai módszer a vérhas diagnosztizálására szintén az élő Shigella kimutatásán alapul. Ez egy fágtiter-emelkedési reakció (RNF), amely specifikus fágok azon képességén alapul, hogy kizárólag homológ élő mikroorganizmusok jelenlétében szaporodnak. Az indikátorfág titerének növekedése a megfelelő mikrobák jelenlétét jelzi a tápközegben. Az RNF diagnosztikai értékét shigellosis fertőzésben B.I. Khaimzon, T.S. Vilkomirskaya. Az RNF érzékenysége meglehetősen magas. Térképezés minimális koncentráció A bakteriológiai módszerrel fogott székletben (12,5 ezer baktérium 1 ml-ben) és az RNF-ben (3,0-6,2 ezer) lévő Shigella az RNF felsőbbrendűségét jelzi.

Mivel a pozitív RNF eredmények gyakorisága közvetlenül függ a széklet szennyezettségének mértékétől, a módszer alkalmazása a betegség első napjaiban és a fertőző folyamat súlyosabb formáiban is a legnagyobb hatást fejti ki. A módszer nagyobb érzékenysége azonban különleges előnyöket nyújt a bakteriológiai vizsgálattal szemben a betegség késői stádiumában, valamint a fertőzés enyhe, tünetmentes és szubklinikai formáiban szenvedő betegek vizsgálatánál, akiknél a kórokozó alacsony koncentrációban van jelen a betegségben. szék. Az RNF-t az antibakteriális szert szedő betegek vizsgálatánál is alkalmazzák, mivel az utóbbiak drasztikusan csökkentik a bakteriológiai kutatási módszer pozitív eredményeinek gyakoriságát, de jóval kisebb mértékben befolyásolják az RNF hatékonyságát. Az RNF érzékenysége a fágrezisztens shigella törzsek létezése miatt nem abszolút: a fágrezisztens törzsek aránya nagyon széles tartományban változhat - 1% és 34,5% között.

Az RNF nagy előnye a nagy specificitása. Egészséges emberek, valamint eltérő etiológiájú fertőző betegségekben szenvedő betegek vizsgálatakor csak az esetek 1,5% -ában figyeltek meg pozitív reakciót. Az RNF értékes kiegészítő módszer a shigellosis fertőzés diagnosztizálására. De ma ezt a módszert ritkán használják technikai összetettsége miatt. Más módszerek immunológiaiak. Segítségükkel specifikus immunválaszt regisztrálnak a kórokozóra vonatkozóan, vagy immunológiai módszerekkel meghatározzák a kórokozó antigénjeit.

A specifikus fertőző allergia folyamatainak súlyossága miatt a shigellosis fertőzésben először allergológiai diagnosztikai módszereket alkalmaztak, amelyek magukban foglalják a vérhasas intradermális allergiás tesztet (VPD). A "dizentéria" gyógyszert, amely egy speciális Shigella allergén, amely mentes a mérgező anyagoktól, a D.A. Tsuverkalov és először alkalmazták klinikai körülmények között, amikor intradermális tesztet állított fel L.K. Korovitsky 1954-ben. E.V. szerint. Golyusova és M.Z. Trokhimenko, korábbi akut vérhas vagy kapcsolódó allergiás betegségek bőrmegnyilvánulásokkal (ekcéma, csalánkiütés stb.) a VPD pozitív eredményei sokkal gyakrabban figyelhetők meg (paraallergia). A VPD eredményeinek elemzése in különböző időszakok Az akut vérhas azt mutatja, hogy egy specifikus allergia már a betegség első napjaiban fellép, a 7-15. napon éri el maximális súlyosságát, majd fokozatosan elmúlik. A 16 és 60 év közötti egészséges emberek vizsgálatakor az esetek 15-20%-ában, a 3-7 éveseknél pedig az esetek 12,5%-ában pozitív reakciót kaptunk. Még gyakrabban észlelték a VPD nem specifikus pozitív eredményeit a gyomor-bélrendszeri betegségekben szenvedő betegeknél - az esetek 20-36% -ában. Az allergén bevezetése a szalmonellózisban szenvedő betegek 35,5-43,0%-ánál, a coli-0124-enterocolitisben szenvedő betegek 74-87%-ánál helyi reakcióval járt. Komoly érv a VPD klinikai gyakorlatban való széles körű alkalmazása ellen a szervezetre gyakorolt ​​allergén hatása volt. A fentiek alapján elmondhatjuk, hogy ez a módszer nem túl specifikus. A Tsuverkalov-teszt szintén nem fajspecifikus. A pozitív reakciók egyformán gyakoriak voltak a vérhas különböző etiológiás formáiban.

A VPD mellett más diagnosztikus reakciókat is alkalmaztak, változó érvényességgel, allergiásnak tekintett, például az allergén leukocitolízis (ALC) reakciót, amelynek lényege az aktívan vagy passzívan szenzitizált neutrofilek specifikus károsodása vagy teljes elpusztulása volt. a megfelelő AG-val való kapcsolatfelvételkor. De ez a reakció nem tulajdonítható a korai diagnózis módszereinek, mivel a pozitív eredmények maximális gyakorisága a betegség 6-9. napján volt megfigyelhető, és 69% volt. Allergén leukergia (ALE) reakciót is javasoltak. Egy érzékeny szervezet leukocitáinak azon képességén alapul, hogy homológ allergénnek (dizentéria) kitéve agglomerálódnak. Tekintettel az ilyen vizsgálatok pontos mechanizmusára vonatkozó bizonyítékok hiányára, eredményeik nem megfelelő egyezésére a betegség etiológiájával, ezek a módszerek a Szovjetunióban való rövid használatuk után a későbbiekben nem terjedtek el.

A Shigella antigének kimutatása a szervezetben diagnosztikailag egyenértékű a kórokozó izolálásával. Az antigének kimutatására szolgáló módszerek fő előnyei a bakteriológiai vizsgálattal szemben, azok indokolása klinikai alkalmazása, nemcsak az életképes mikroorganizmusok kimutatásának lehetősége, hanem az elpusztult, sőt elpusztult mikroorganizmusok is, amelyek különleges jelentése amikor az antibiotikum-terápia során vagy röviddel azt követően vizsgálják a betegeket.

A vérhas gyors diagnosztizálásának egyik legjobb módszere a széklet immunfluoreszcens vizsgálata volt (Koons-módszer). A módszer lényege a shigella kimutatása a vizsgált anyag fluorokrómokkal jelölt, specifikus antitesteket tartalmazó szérummal történő kezelésével. A jelölt antitestek homológ antigénekkel való kombinációját a fluoreszcens mikroszkópban kimutatott komplexek specifikus fénye kíséri. A gyakorlatban a Koons-módszer két fő változatát alkalmazzák: a direkt, amelyben Shigella antigének elleni jelölt antitesteket tartalmazó szérumot használnak, és az indirekt (kétlépcsős), ahol az első szakaszban fluorokrómmal (vagy globulin-frakcióval) nem jelölt szérumot használnak. anti-shigella szérum). A második szakaszban fluorokrómmal jelölt szérumot használnak az első szakaszban használt anti-shigellosis szérum globulinjai ellen. Az immunfluoreszcens módszer két változatának diagnosztikus értékének összehasonlító vizsgálata nem tárt fel nagy különbségeket specificitásukban és érzékenységükben. A klinikai gyakorlatban ennek a módszernek a használata a betegek vizsgálatakor a leghatékonyabb korai időpontok betegségekben, valamint a fertőzés súlyosabb formáiban. Az immunfluoreszcens módszer jelentős hátránya a specifitás hiánya. A legfontosabb ok Az immunfluoreszcens reakció elégtelen specificitása a különböző nemzetségekhez tartozó enterobaktériumok antigén kapcsolata. Ezért ez a módszer indikatívnak tekinthető a shigellosis fertőzés felismerésében.

Különféle reakciókat alkalmaznak a shigella antigének kimutatására mikroszkópos vizsgálat nélkül. Ezek a módszerek lehetővé teszik a kórokozó antigének kimutatását a székletben a bakteriológiailag igazolt vérhasban szenvedő betegek 76,5-96,0% -ánál, ami a meglehetősen magas érzékenységre utal. Ezeket a módszereket leginkább a betegség késői szakaszában célszerű alkalmazni. E diagnosztikai módszerek specifikusságát a legtöbb szerző nagyra értékeli. Azonban F.M. Ivanov, aki az RSK-t használta a shigellosis antigének kimutatására a székletben, az esetek 13,6%-ában pozitív eredményeket ért el egészséges emberek és más etiológiájú bélfertőzésben szenvedő betegek vizsgálatakor. A szerző szerint a módszer alkalmazása alkalmasabb a vizeletben lévő specifikus antigének kimutatására, mivel ez utóbbi esetben jóval kisebb a nem specifikus pozitív reakciók gyakorisága. A különféle kutatási módszerek alkalmazása lehetővé teszi a Shigella antigének kimutatását a bakteriológiailag igazolt vérhasban szenvedő betegek túlnyomó többségének vizeletében. Az antigének vizelettel történő kiválasztódásának dinamikája bizonyos sajátosságokkal rendelkezik - az antigén anyagok kimutatása bizonyos esetekben már a betegség első napjaitól lehetséges, de a legnagyobb gyakorisággal és állandósággal a 10-15. napon sikerül. egy későbbi időpontban. A B.A. Godovanny és munkatársai szerint a pozitív vizelet shigella antigének (RSK) aránya a betegség 10. napja után 77% (a széklet bakteriológiai vizsgálatának megfelelő adata 47%). Ezzel összefüggésben a vizelet kórokozó-antigének jelenlétére vonatkozó vizsgálata értékes kiegészítő módszer a vérhasban, elsősorban a késői és retrospektív diagnózis céljából.

N.M. Nurkina, ha az antitest immunreagenst poliklonális szérumból nyerik, pozitív indikációs eredmények lehetségesek, ha rokon antigének vannak jelen a mintában. Például egy S.flexneri VI elleni nagy aktivitású szérumból származó eritrocitadiagnosztikával a S.flexneri I-V antigén is kimutatható, mivel mindkét alfaj Shigella-jának közös faji antigénje van. A Shigella antigének a betegség ideje alatt mind vérszérumban, mind váladékban meghatározhatók.

Lee Won Ho et al. kimutatták, hogy a Shigella antigének kimutatásának gyakorisága és koncentrációjuk a vérben és a vizeletben magasabb a betegség első napjaiban, és hogy a kimutatott antigének koncentrációja magasabb közepesen súlyos betegségben, mint enyhe betegségben.

CM. Omirbajeva egy módszert javasolt a Shigella-antigén kimutatására, amely a vizsgált székletkivonatból származó antigének szorbensére formalizált eritrociták felhasználásán alapul, majd immunszérummal történő agglutinációjukat. E módszer sajátosságának értékelése véleményünk szerint további kutatást igényel, mivel a székletkivonatok tartalmaznak jelentős mennyiségben más baktériumok antigénjei, amelyek nem kórokozói ennek a bélbetegségnek.

Számos kutató az enzim immunoassay-t javasolja az akut vérhas gyors diagnosztizálásának módszereként, amelyet sok szerző szerint rendkívül érzékenynek és nagyon specifikusnak tartanak. Ugyanakkor a legtöbbet magas szint Az antigén a betegség 1-4 napján megtalálható. Az ELISA nyilvánvaló előnyei ellenére, amelyek közé tartozik a nagy érzékenység, a szigorú műszeres kvantitatív elszámolás lehetősége, valamint a reakció beállításának egyszerűsége, ennek a módszernek a széles körű elterjedése korlátozott a speciális berendezések szükségessége miatt.

Monoklonális antitestek, immunglobulin-fragmensek, szintetikus antitestek, LPS ezüstfestés és egyéb technológiai fejlesztések javasoltak a különféle szerológiai antigén-detektálási módszerek érzékenységének és specificitásának fokozása érdekében.

Gyakran még akkor sem lehet kimutatni a fertőző ágens antigénjét, ha a kórokozó AG kimutatására nagyon érzékeny reakciókat alkalmazunk a szervezet biológiai szubsztrátjaiban, mivel az antigén anyagok jelentős része láthatóan a bioassayben van. immunkomplexek formája a szervezetben. A bakteriológiailag igazolt akut dizentériában szenvedő betegek vizsgálatakor egyes jelentések szerint csak az esetek 18% -ában észleltek pozitív eredményeket az antigén CSC-vel történő meghatározásában.

TÉVÉ. Remneva et al. javasolja az ultrahang alkalmazását a kórokozó részecskékkel alkotott antitestkomplexek szétbontására, majd a kórokozó antigén meghatározására a CSC-ben hidegben. A módszert vérhas diagnosztizálására használták, kutatási anyagként akut bélfertőzésben szenvedő betegek vizeletmintáját használtam.

A precipitációs reakció alkalmazása antigén-detektálásra akut vérhasban alacsony érzékenysége és specificitása miatt nem indokolt. Úgy gondoljuk, hogy a Shigella antigének kimutatására szolgáló bármely módszer specifitása jelentősen növelhető a Shigella elleni monoklonális antitestek alkalmazásával.

A koagglutinációs reakció a shigellózis, valamint számos más fertőzés kórokozóinak antigénjei gyors diagnosztizálásának egyik módszere. Shigellosis esetén a kórokozók antigénjei meghatározhatók a betegség első napjaitól kezdve az akut periódus során, valamint a baktériumok kiürülésének megszűnése után 1-2 héten belül. A koagglutinációs reakció előnye a diagnosztikai vizsgálatok egyszerűsége, a reakció felállítása, a gazdaságosság, a gyorsaság, az érzékenység és a nagy specificitás.

A Shigella antigének meghatározásával végzett diagnosztika során sok szerző szerint a betegek székletének vizsgálata a leghatékonyabb. A betegség kialakulásával csökken a Shigella antigének kimutatásának lehetősége a vizeletben és a nyálban, bár a székletben szinte ugyanolyan gyakorisággal találhatók meg, mint a betegség kezdetén. Nem szabad megfeledkezni arról, hogy a betegség első 3-4 napjában az antigén székletét valamivel hatékonyabban vizsgálják az RPHA-ban. A betegség közepén az RPHA és az RNAb egyformán hatékony, és a 7. naptól kezdődően az RNAb hatékonyabb a Shigella antigén keresésében. Ezek a tulajdonságok a Shigella-sejtek és antigénjeik fokozatos elpusztulásából adódnak a beteg beleiben a betegség során. A vizelettel kiválasztott Shigella antigének viszonylag kisebbek, mint a székletben lévő antigének. Ezért tanácsos a vizeletet RNSt-ben vizsgálni. A nők vizeletében, ellentétben a férfiak vizeletével, a valószínű székletszennyezés miatt a Shigella antigének egyformán gyakran kimutathatók TPHA és RNAb segítségével.

Bár az antigén szignifikánsan gyakrabban (94,5 - 100%) mutatható ki azokban a székletmintákban, amelyekből Shigellát lehet izolálni, mint azokban a mintákban, amelyekből a Shigellát nem izolálták (61,8 - 75,8%), párhuzamosan bakteriológiai és szerológiai ( antigénre) a vérhasban szenvedő betegek székletmintáinak vizsgálata során általában a minták 28,2-40,0%-ából izolálták a shigellát, és a minták 65,9-91,5%-ában találtak antigént. Fontos hangsúlyozni, hogy a kimutatott antigén fajspecifitása mindig megfelel a szérum antitestek specificitásának, amelyek titere dinamikában a maximumra nő. Ha egy feltételes diagnosztikai antitest-titerre fókuszálunk, néha eltérések figyelhetők meg az ilyen antitestek és a kimutatott antigén specificitásában. Ez az eltérés a szérum antitestek aktivitásának egyszeri meghatározásának elégtelen diagnosztikai megbízhatóságából adódik. Ebben az esetben etiológiai diagnózis a kimutatott antigén specifitása szerint kell beállítani.

A kórokozó jeleinek közvetlen kimutatására szolgáló PCR módszer közel áll az antigének kimutatásának módszereihez. Lehetővé teszi a kórokozó DNS-ének meghatározását, és a természetes DNS-replikáció elvén alapul, beleértve a DNS kettős hélix feltekercselését, a DNS-szálak divergenciáját és mindkettő komplementer hozzáadását. A DNS-replikáció nem kezdődhet meg bárhol, hanem csak bizonyos kiindulási blokkokban - rövid, kétszálú szakaszokban. A módszer lényege abban rejlik, hogy ha ilyen blokkokkal megjelölünk egy DNS-szakaszt, amely csak egy adott fajra (de más fajokra nem) specifikus, akkor lehetőség van ennek a régiónak a többszöri reprodukálására (amplifikálására). A DNS-amplifikáció elvén alapuló tesztrendszerek a legtöbb esetben lehetővé teszik az emberre patogén baktériumok és vírusok kimutatását olyan esetekben is, amikor más módszerrel nem mutathatók ki. A PCR tesztrendszerek specifitása (a taxonspecifikus primerek helyes megválasztásával, a hamis pozitív eredmények kizárásával és az amplifikációs gátlók hiányával a bioassay-ben) elvileg elkerüli a keresztreagáló antigénekkel kapcsolatos problémákat, ezáltal nagyon magas specificitást biztosít. A meghatározás közvetlenül elvégezhető élő kórokozót tartalmazó klinikai anyagban. De annak ellenére, hogy a PCR érzékenysége elérheti a matematikailag lehetséges határt (1 példány DNS-templát kimutatása), a módszert a shigellosis diagnosztizálásának gyakorlatában nem használják viszonylag magas költsége miatt.

A széles klinikai gyakorlatban a szerológiai kutatási módszerek közül a legszélesebb körben alkalmazott módszerek a betegség feltételezett kórokozójával szembeni szérum antitestek szintjének és dinamikájának meghatározásán alapulnak.

Egyes szerzők Shigella elleni antitesteket határoztak meg koprofiltrátumokban. A koproantitestek sokkal korábban jelennek meg, mint a szérum antitestek. Az antitestek aktivitása 9-12 napon belül éri el a maximumot, és 20-25 napon belül általában már nem észlelhető. R. Laplane és munkatársai azt sugallják, hogy ennek oka a proteolitikus enzimek hatására a bélben lévő antitestek elpusztulása. A koproantitestek egészséges emberekben nem mutathatók ki.

W. Barksdale és munkatársai, T.H. Nikolaev et al. a diagnózis megfejtésének és a lábadozók kimutatásának hatékonyságának növekedéséről számoltak be a szérum és a koproantitestek egyidejű meghatározásával.

A diagnosztikus titerekben az agglutinin kimutatása bakteriológiailag igazolt vérhas esetén csak a betegek 23,3%-ában lehetséges. Az RA korlátozott érzékenysége a segítségével kimutatott agglutininok nem kellően magas titerében is megnyilvánul. Bizonyíték van az RA egyenlőtlen érzékenységére a shigellosis fertőzés különböző etiológiás formáiban. Az A.A. Klyucharev szerint 1:200 és afeletti titerű antitesteket RA-val csak a Flexner-dizentériában szenvedő betegek 8,3%-ánál, és még ritkábban a Sonne-dizentériában észleltek. A reakció pozitív eredményei nemcsak gyakrabban, hanem magasabb titerekben is megfigyelhetők Flexner I-V és Flexner VI vérhas esetén, mint Sonne dizentéria esetén. Az RA pozitív eredményei a betegség első hetének végétől jelennek meg, és leggyakrabban a második vagy harmadik héten jelentkeznek. A betegség első 10 napja az összes pozitív reakció 39,6%-át teszi ki. Az A.F. Podlevsky és munkatársai szerint a diagnosztikai titerekben lévő agglutinineket a betegség első hetében a betegek 19% -ánál, a második héten - 25% -ánál és a harmadik héten - a betegek 33% -ánál észlelik.

A pozitív RA eredmények gyakorisága és a segítségével kimutatott antitestek titereinek magassága közvetlenül függ a shigellosis fertőzés lefolyásának súlyosságától. V.P. szerint Zubareva szerint az antibiotikum-terápia alkalmazása nem csökkenti a pozitív RA eredmények gyakoriságát, azonban ha a betegség első 3 napjában antibiotikumot írnak fel, az agglutinineket alacsonyabb titerekben észlelik.

Az RA korlátozott specifitású. Egészséges emberek vizsgálatakor az esetek 12,7%-ában, 11,3%-ban csoportreakciót észleltek RA pozitív eredményt. A Flexner I-V és Flexner VI baktériumok antigén kapcsolata miatt különösen gyakran figyelhetők meg keresztreakciók a shigellosis fertőzés megfelelő etiológiai formáiban.

A shigellosis fertőzések szerodiagnosztizálásának fejlettebb módszereinek megjelenésével az RA fokozatosan elvesztette jelentőségét. Az agglutinációs reakció („Vidal-dizentériás reakció”) (RA) diagnosztikus értékét vérhasban a különböző kutatók kétértelműen becsülik, azonban a legtöbb szerző munkájának eredményei a módszer korlátozott szenzitivitását és specificitását jelzik.

Az antitestek meghatározására leggyakrabban közvetett (passzív) hemagglutinációs reakciót (RPHA) alkalmaznak. A passzív hemagglutinációs reakció (RPHA) diagnosztikus értékének részletes vizsgálatát shigellosis fertőzésben A.V. Lullu, L. M. Schmuter, T. V. Vlohom és számos más kutató. Eredményeik arra engednek következtetni, hogy az RPHA az egyik leghatékonyabb módszer a vérhas szerológiai diagnosztizálására, bár nem nélkülözi az e csoport módszereiben rejlő néhány általános hátrányt.

A vérhasban az RPHA és az agglutinációs reakció érzékenységének összehasonlító vizsgálata az első módszer nagy fölényét mutatja. A. V. Lullu szerint az RPHA átlagos titere ebben a betegségben 15-ször haladja meg az RA átlagos titerét (a betegség magasságában 19-21-szeres), a magas (1:320 - RPHA) antitestek kimutathatók a használat során. 4,5-szer gyakrabban, mint a titerben (1:160 az agglutinációs reakció beállításakor). Bakteriológiailag igazolt akut dizentéria esetén a betegek 53-80% -ának vizsgálata során az RPHA pozitív reakcióját figyelték meg a diagnosztikai titerekben.

A hemagglutinineket a betegség első hetének végétől mutatják ki, a kimutatási gyakoriság és az antitesttiter növekszik, maximumát a második és harmadik hét végére érik el, majd titerük fokozatosan csökken.

Az RPHA és a hemagglutinin titerek pozitív eredményeinek gyakorisága egyértelműen függ a shigellosis fertőzés lefolyásának súlyosságától és természetétől. A vonatkozó tanulmányok kimutatták, hogy a fertőzés törölt és szubklinikai formáinál ritkábban értek el pozitív RPHA eredményeket, mint akut, klinikailag kifejezett vérhas esetén (52,9, illetve 65,0%), míg az 1:200 és 1:400 közötti titereknél csak 4 reagált, a szérumok 2%-a (klinikailag kifejezett formával - 31,2%), és elhúzódó és krónikus formák esetén az RPHA pozitív eredményeit a betegek 40,8%-ánál figyelték meg, ebből csak 2,0%-a 1:200 titernél. A shigellosis fertőzés bizonyos etiológiai formáiban az RPHA eltérő érzékenységéről is beszámoltak. L.M. Schmuter, a legmagasabb hemagglutinin titer a Sonne dizentériában és szignifikánsan alacsonyabb a Flexner I-V és Flexner VI vérhasban. A betegség korai szakaszában megkezdett antibakteriális kezelés az antigén irritáció időtartamának és intenzitásának csökkenése miatt alacsonyabb titerű hemagglutininek megjelenését okozhatja a vérszérumban.

Az agglutinációs reakcióhoz hasonlóan az RPGA sem mindig teszi lehetővé a shigellosis fertőzés etiológiai formájának pontos felismerését, amely a csoportreakciók lehetőségével jár. A keresztreakciók főként Flexner-dizentériában figyelhetők meg - a Flexner I-V és a Flexner VI-dizentéria között. A humorális immunválasz sok betegben gyengén fejeződik ki. Nem kizárt a közös antigének miatti kereszt-agglutináció lehetősége sem. Ennek a módszernek az előnyei közé tartozik azonban a reakció beállításának egyszerűsége, a gyors eredmények elérése és a viszonylag magas diagnosztikai hatékonyság. Jelentős hátrány ez a módszer az, hogy a diagnózis legkorábban a betegség 5. napján állapítható meg, a maximális diagnosztikai antitest titerek a betegség 3. hetére határozhatók meg, így a módszer "retrospektív" kategóriába sorolható.

A vérhas diagnosztizálásához javasolják a S.sonnei O-antigén által képviselt specifikus keringő immunkomplexek szintjének meghatározását is, amelyek egy specifikus antitesthez kapcsolódnak, az enzim immunoassay indirekt „szendvics-változatával” annak nagy érzékenysége miatt. A módszer alkalmazása azonban csak 5 napos betegség esetén javasolt.

Dizentériás betegeknél a betegség kezdetétől a vér bakteriofixáló aktivitásának specifikus növekedése tapasztalható az eritrociták antigénkötő aktivitása miatt. Az AII első 5 napjában az eritrociták antigénkötő aktivitásának meghatározása az esetek 85-90% -ában lehetővé teszi a betegség etiológiájának megállapítását. Ennek a jelenségnek a mechanizmusa nem teljesen ismert. Feltételezhető, hogy az eritrociták kötődése az antigén-antitest immunkomplex C3v receptorai (főemlősökben, beleértve az embert is) vagy Fcγ receptorai (más emlősökben) révén.

A specifikus immunválasz sejtszintű rögzítésének viszonylag új módszerei közül felhívják a figyelmet a specifikus, taxonómiailag jelentős antigénnel reagáló antigénkötő limfociták (ASL) meghatározására. Az ASL kimutatását különféle módszerekkel hajtják végre - a limfociták páros agglutinációja antigénnel, immunfluoreszcencia, RIA, limfociták adszorpciója antigént tartalmazó oszlopokon, mononukleáris sejtek adhéziója üvegkapillárisokon, közvetett rozetta reakció (RNRO). Meg kell jegyezni, hogy az ASL regisztrálásának olyan rendkívül érzékeny módszerei, mint az ELISA és a RIA, valamint a limfociták adszorpciója antigéntartalmú oszlopokon, technikailag viszonylag összetettek, és nem mindig állnak rendelkezésre széles körben. Számos szerző munkája kimutatta a PHPR nagy érzékenységét és specifitását az ASL kimutatására különböző betegségekben. Számos kutató tárt fel szoros összefüggést a különböző kórképekben és formákban szenvedő betegek vérében az ASL-tartalom, a betegség súlyossága és periódusa, valamint az elhúzódó ill. krónikus forma.

Egyes szerzők úgy vélik, hogy a betegség dinamikájában az ASL szintjének meghatározásával meg lehet ítélni a terápia hatékonyságát. A legtöbb szerző úgy véli, hogy ha sikeres, az ASL száma csökken, és ha a kezelés hatékonysága nem kielégítő, akkor ennek a mutatónak a növekedését vagy stabilizálódását rögzítik. Beszámoltak arról, hogy az ASL felhasználható a szövetekkel, bakteriális antigénekkel és antibiotikumokkal szembeni érzékenység számszerűsítésére, ami fontos. diagnosztikai érték. Az ASL módszert korlátozott mértékben alkalmazták vérhas diagnosztizálására.

Lehetőség korai észlelés Az ASL már a fertőzést követő első napokban nagyon fontos a korai diagnózis és az időben történő kezelés szempontjából, ami szükséges a klinikus számára.

Az áttekintésben bemutatott adatok tehát azt mutatják, hogy a vérhas elterjedt elterjedtsége, az elégtelen érzékenység és számos diagnosztikai módszer pozitív eredményének késői megjelenése miatt célszerű e fertőzés kimutatására szolgáló diagnosztikai potenciál fejlesztése. Számos fertőző betegségben az ASL módszer magas hatékonyságáról, pozitív eredményének korai megjelenéséről nyert adatok meghatározzák a módszer shigellózisban való tanulmányozását és alkalmazását.

Bibliográfia

1 Juscsuk N.D., Brodov L.E. Az akut bélfertőzések differenciáldiagnosztikája és kezelése// Ros. és. gastroenterol., hepatol., koloproktol. - 2000. - 10, No. 5. - P. 13 - 16. - Rus. – ISSN 1382-4376. – RU.

2 Shuvalova E.P., Zmushko E.I. Fertőző betegségek szindróma diagnózisa. // Tankönyv. - Szentpétervár: Péter, 2001. - S. 138-141.

3 Karalnik B.V., Amireev S.A., Syzdykov M.S. A laboratóriumi diagnosztika módszereinek elvei és lehetőségei, eredményeik értelmezése az epidemiológus munkájában // Módszer. ajánlott - Almati. - 1997. - 21 p.

4 Karalnik B.V. Bakteriális bélfertőzések szerológiai diagnosztikája. // Módszer. ajánlásokat. - Almaty, 1973. - 3-20 p.

5 5. Nurkina N.M. A dizentéria szerológiai diagnosztikájának módszereinek összehasonlító hatékonysága szenzitizált eritrociták felhasználásával: A tézis kivonata. dis. folypát. - Almaty, 1984. - 22 p.

6 Karalnik B.V., Nurkina N.M. A vérhas komplex szerológiai diagnosztikája. // Módszer. ajánlásokat. - Almaty, 1983. - 24 p.

7 Erkinbekova B.K. A Shigella antigének indikációjának módszere vérhasban végzett egészségügyi és epidemiológiai vizsgálatokban: Az értekezés kivonata. diss. ...az orvostudományok kandidátusa. - Almaty, 1995. - 18 p.

8 Nikitin V.M., Georgita F.I., Plugaru S.V. satöbbi. Gyorsított módszerek fertőző betegségek diagnosztizálása. // Chisinau. - 1987. - 106 p.

9 Neverov V.A. Az akut bélfertőzések diagnosztikájának és kezelésének stratégiája és taktikája. // Szentpétervár - 1996. - 12 p.

10 Vorobjov A.A. Orvosi mikrobiológia, virológia és immunológia. // M.- 2004.- S. 7-8.

11 Ivanov K.S., Ivanov A.I. Akut hasmenéses fertőzések diagnózisa // Klin. édesem. - 1992. - No. 7-8 - S. 64-69.

12 Ciudin L., Pencu E., Mihai, I. et al. A Shigella flex neri törzsek szerológiai azonosítása a koagglutinációs reakcióval // Roum. Boltív. Microbiol.Immunol. -1995/ - Vol/ 54(4). - 295-311. o.

13 Lindberg A.A., Cam P.D., Chan N. et al. Shigellosis Vietnamban: szeroepida miológiai vizsgálatok lipopoliszacharid antigének használatával enzimimmun vizsgálatokban // Rev. Megfertőzni. Dis. - 1991. - Vol. 13., 4. melléklet - 231-237.

14 Sloper S. Shigella. // In: Enterobacteriaceae fertőzés. Lipcse.- 1968.- P. 375-441.

15 Jacobs J., Rudensky B., Dresner J. et al. Négy laboratóriumi vizsgálat összehasonlítása a Clostridium difficile-vel összefüggő hasmenés diagnosztizálására // Eur. J. Clin. Microbiol. Infect.Dis. - 1996. - 1. évf. 15. (7) bekezdése alapján. - P. 561-566.

16 Klyucharev A.A., Poleshko D.V., Vershenya M.I. A vérhas lefolyásának klinikai és epidemiológiai jellemzői az elmúlt években. // Fehéroroszország egészségügyi ellátása. - 1973. - 11. sz. - P. 54-56.

17 Gusarskaya I.L. A Sonne-dizentéria klinikai lefolyásának jellemzői a jelenlegi stádiumban és megelőzésének néhány kérdése. // A könyvben: A fertőző betegségek problémái. - Vologda. - 1970. -S. 23-27.

18 Shitov I.A., Trinitatskaya M.I. A bakterioexkréció időtartama akut vérhasban szenvedő betegeknél. // A könyvben: Bélfertőzések.- 2. rész.- L. 1972.- S. 161-163.

19 Avdeeva T.A. A vérhas kvantitatív mikrobiológiai vizsgálata (a vérhas klinikai, mikrobiológiai és epidemiológiai mintázatainak vizsgálatára szolgáló módszer kidolgozásának és alkalmazásának eredményei). Absztrakt dis. a versenyre tudós lépés. Dr. med. Tudományok. L., 1964, 28 p.

20 Tillet H., Thomas M. A széklet tenyésztése a Sonne-dizentéria diagnózisában: statisztikai módszer a valódi izolációs ráta becslésére. // Beszállás. J. Epidemiol.- 1974.- 3. köt.- R. 177-181.

21 Khaimzon B.I. Fágtiter-emelkedési reakció az akut vérhas diagnosztizálásában felnőtteknél. Absztrakt dis. a versenyre tudós lépés. tud. Orvostudomány Voronyezs, 1965, 16 p.

22 Vilkomirskaya T.S. Anyagok a fágtiter-emelkedési reakció (RNF) szenzitivitásának és specificitásának vizsgálatához a vérhas diagnózisában. // A könyvben: A fertőző és allergiás betegségek immunológiai kérdései. Ufa.- 1970.- S. 48-49.

23 Ivanov F.M. Az oltás, a titrafág növekedése és az antigén anyagok kimutatási módszereinek összehasonlító értéke a dysentericus folyamat különböző szakaszaiban. Absztrakt dis. a versenyre tudós lépés. tud. Orvostudomány Orenburg, 1963, 10 p.

24 Vilkomirskaya T.S. A fágtiter-növekedési reakció (RNF) klinikai és epidemiológiai jelentőségéről a dizentéria diagnosztizálásában Ufa-ban. Absztrakt dis. a versenyre tudós lépés. tud. édesem. Tudományok. Ufa, 1971, 24 p.

25 Mazurin N.D., Rozina-Itskina Ts.S. Fágtiter-emelkedési reakció a vérhas diagnózisában. // JMPEI.- 1963. - No. 1.- P. 113-116.

26 Golyusova E.V., Trokhimenko M.Z. A Tsuverkalov-teszt jelentőségéről a gyermekek akut vérhas diagnosztizálásában. // Bélfertőzések (Kijev) - 1972. - szám. 5. - S. 97-99.

27 Fradkin V.A., Lodinova L.M. Allergének alkalmazása krónikus bélfertőzések diagnosztizálására. // A könyvben: A fertőző betegségek bakteriohordozó és krónikus formái. - 2. rész - M.-1975.- S. 213-215.

28 Lukashevics K.K. Allergiás módszer vérhas diagnózisa. // A könyvben: A klinika és az allergia néhány kérdése a fertőző patológiában Kuibisev - 1970 - 41-43.

29 Csecselnickij V.M. A Tsuverkalov-reakció értéke az akut vérhas diagnózisában. // A könyvben: Immunológia és bélfertőzések Voronyezs - 1970. - 110-114.

30 Bogdanov I.L. Allergia a fertőző betegségek patogenezisében, klinikájában és terápiájában. // M.- 1974.- 245 p.

31 Gorchakova G.A. Disenterin (a vérhas diagnózisának intradermális vizsgálatára szolgáló gyógyszer). Absztrakt dis. a versenyre tudós lépés. dr. Orvostudomány Odessza, 1969, 19 p.

32 Lubitskaya N.A., Polyak A.I. A dizentéria immundiagnosztikája gyermekeknél // VI All-Union. konf. klinikai szerint biokémia, morfológia és immunol.infekts. Bol.: Jelentéskivonatok. - Riga, 1983. - S. 106-107.

33 Furman A.A. Összehasonlító tanulmány a dizentéria és a colienteritis laboratóriumi diagnosztizálásának néhány gyorsított módszere. Absztrakt dis. Szivattyú tudós lépés. tud. édesem. Tudományok. Kijev, 1970, 19 p.

34 Mikhailov I.F., Pers I.F. A baktériumok közötti antigén kapcsolatok azonosítása bélcsoport fluoreszcens antitest módszer. ZHMEI, 1975, 5. sz., S. 97-103.

35 Shmuter L.M. Az indirekt hemagglutináció és az antitestek semlegesítésének reakciói a vérhas diagnózisában. Absztrakt dis. a versenyre tudós lépés csatorna édesem. Tudományok. Harkov, 1968, 19 p.

36 Evdokimova T.V., Podlevsky A.F., Yafaev R.Kh. Klinikai és laboratóriumi párhuzamok akut dizentériában felnőtteknél. - JMPEI, 1974, 6. sz., S. 82-85.

37 Mogilev V.E. Passzív hemagglutináció vérhasban. A szakdolgozat kivonata a versenyre tudós lépés. tud. édesem. Tudományok. Kuibisev, 1968, 20 p.

38 Rybakova N.A. Passzív hemagglutinációs gátlási reakció alkalmazása a Sonne-féle vérhas diagnosztizálására gyakorlati laboratóriumban. - Lab. ügy, 1975, 3. szám, 168-170.

39 Ivanov F.M. Az oltás, a titrafág növekedése és az antigén anyagok kimutatási módszereinek összehasonlító értéke a dysentericus folyamat különböző szakaszaiban. Absztrakt dis. a versenyre tudós lépés. tud. édesem. Tudományok. Orenburg, 1963, 10 p.

40 Godovanny B.A., Litinsky Yu.I., Bodisko V.P. A Shigella Sonne antigén kvantitatív meghatározása betegek és hordozók vizeletében. - Lab. ügy, 1974, 6. szám, 360-363.

41 Kashkin G.S. A mikrobiális antigének dinamikájának vizsgálata a vérben és a húgyutakban akut vérhasban. - A könyvben: A fertőző betegségek problémái. Vologda, 1970, 47-50.

42 Nurkina N.M. A dizentéria szerológiai diagnosztikájának módszereinek összehasonlító hatékonysága szenzitizált eritrociták felhasználásával: A tézis kivonata. dis. folypát. - Almaty, 1984. - 22 p.

43 Li Van Ho., Rubtsov I.V., Tregub A.V., Remneva T.V. Néhány módszer összehasonlító diagnosztikai értéke dysentericus antigének kimutatására a páciens testének szubsztrátjaiban. J. mikrobiol. - 1989. - 1. sz. - S. 57-61.

45 Sakal N.N. Az enzim immunoassay alkalmazása és hatékonyságának értékelése a Sonne-féle vérhas korai diagnosztizálásában és lefolyásának prognózisában: Az értekezés kivonata. diss. … cand. édesem. Tudományok. - Szentpétervár, 1993. - 21 p.

46 Rubcov I.V., Pimenova G.N., Kulakova V.N. Az ELISA klinikai és laboratóriumi adatainak statisztikai értékeléséhez // Proceedings of the Jubileumi tudományos és gyakorlati. konferenciák, dedikált elnevezett Infektológiai Osztály MMA megalakulásának 80. évfordulója. I. M. Sechenov (2003. május 22-23.). - M.: MMA im. I. M. Sechenov. - 2003. - S. 152-153.

47 Downes F.P., Green J.K. et al. Enzimkapcsolt immunszorbens assay fejlesztése és értékelése Shiga – mint toxin I és Shiga – liketoxin II kimutatására // J. Clin. mikrobiol. - 1989. - V. 27., 6. sz. - P. 1292-1297.

48 Barbans P.S., Pantyukhina A.N. Módszer fluoreszcens Fav - tífuszban szenvedők szérumfehérje elleni antitest-fragmenseinek megszerzésére és monitorozására // J. microbiol., epidemiol. és immunobiol. - 1984. - 2. sz. - S. 102-105.

49 Szintetikus antigének használata fertőző betegségek diagnosztizálására //Techn.ser/WHO. - 1989. - 784. sz. - P. 1-74.

50 Ekwall E., Norberg T., Swensons S.B. et al. a szalmonella E szerocsoport O3 antigénjének specifikus azonosítása immunfluoreszcenciával és antiszérummal való koagglutinációval, amelyet szintetikus trisacharid – szarvasmarha szérum albuminglikokonjugátum vált ki 1 // J. Clin.Microb. - 1994. - 19, 5. sz. – P. 699-702.

51 Lee Kuo-Ka, Ellis A.E. Gyors és érzékeny ezüst-lipopoliszacharid festés Phast System segítségével gyors vízszintes poliakrilamid gélelektroforézisben //Elektroforézis. - 1989. - V. 10., 10. sz. - P. 729-731.

52 Tempieva T.V., Yuditskaya N.M., Litinsky Yu.I., Lee Wam Ho. Immunkomplexek ultrahangos szétesése a Shigella antigének kimutatására vérhasban szenvedő betegek vizeletében // Lab. egy üzlet. - 1988. - 9. sz. - S. 64-66.

53 Chaika N.A. Bélfertőzések és kórokozóik vizsgálata modern immunológiai módszerekkel // Akut bélfertőzések. - L .: Leningrád. kutatóintézet epid. és mikrofon. - 1987. - szám. II. - P.3-8.

54 Khazenson L.B., Chaika N.A. A bélfertőzések diagnosztikájának és epidemiológiai elemzésének immunológiai alapjai. – M.: Orvostudomány. –1987. - 112 p.

55 Kashkin G.S. Akut vérhasban szenvedő gyermekek vérében és vizeletében lévő mikrobiális antigének dinamikájának vizsgálata. // A könyvben: A fertőző betegségek problémái. - Vologda. – 1970.- S. 47-50.

56 Godovannyy B.A., Litinsky Yu.I., Bodisko V.P. A Shigella Sonne antigén kvantitatív meghatározása betegek és baktériumhordozók vizeletében. // Lab. egy üzlet. - 1970. - 6. sz. - S. 360-363.

57 Rybakova N.A., Rybakov D.A. Az RNGA és az RNAt alkalmazása vérhas etiológiájú betegségek epidemiológiai vizsgálatában. – A Leningrádi Epidemiológiai Kutatóintézet közleménye. és mikrobiol. Pasteur neve. -t. 56. - L., 1981. - S. 58-61.

58 Vasziljeva A.V. A Sonne-dizentéria szerológiai diagnosztikai módszereinek összehasonlító értékelése. // Bélfertőzések. - 1972. - Kiadás. 5. szám - S. 129-132.

59 Dubinina I.G., Shcherbo S.N., Makarov V.B. A polimeráz láncreakció módszerei a laboratóriumi gyakorlatban. // Klinikai laboratóriumi diagnosztika. - 1997, 7. sz. - 4 - 6. o.

60 Turkadze K.A., Podkolzin T.A., Kokoreva L.N. A PCR és a bakteriológiai módszer alkalmazásának összehasonlító hatékonysága a szalmonellózis és shigellózis diagnosztizálásában // Proceedings of the jubileumi tudományos és gyakorlati. konferenciák, dedikált elnevezett Infektológiai Osztály MMA megalakulásának 80. évfordulója. I. M. Sechenov (2003. május 22-23.). - M.: MMA im. I. M. Sechenov. - 2003. - S. 172-173.

61 Akhtamov M.A., Akhmedov A.A. Egyesek hatékonyságának összehasonlító vizsgálata szerológiai reakciók az akut vérhas laboratóriumi diagnosztikájában // Med. Üzbegisztán folyóirat. - 1984. -№1. - S. 29-31.

62 Boriszov V.A. Néhány szerológiai módszer összehasonlító értékelésére a vérhas diagnosztizálására. - Lab. ügy, 1972, 9. szám, 564-566.

63 Laplane R., Be, gue P., Omanga V. Anticorps seriques et copro-anticorps dansles bacteriennes digestives de l, enfant. // Bika. Acad. nat. med. - 1975. - 1. évf. 159. - 7. sz. - P. 596-600.

64 Barksdale W., Ghoda A. Agglutináló antitestek szérumban és székletben.// J. Immunol. - 1951. - 1. évf. 66. – 395. – 401. o.

65 Nikolaeva T.A., Kukain E.M., Khazenson L.B. A kopro- és szérumantitestek immunkémiai természete Sonne-dizentériában és más ICD-ben szenvedő betegeknél. - Tez. jelentés Tudományos-gyakorlatira. konf., dedikált 50. évfordulója a LeningrNIIEM őket. Pasztőr. L., 1973, p. 53-54.

66 Lullu A.V. Az indirekt hemagglutináció reakciójának alkalmazása akut vérhas diagnosztizálására és immunológiájának vizsgálatára. // Absztrakt. dis. a versenyre tudós lépés. tud. édesem. Tudományok. - Tartu. - 1963. - 10 p.

67 Klyucharev A.A. Anyagok a fehéroroszországi vérhas tanulmányozásához. Poleshko D.V., Vershenya M.I. A vérhas lefolyásának klinikai és epidemiológiai jellemzői az elmúlt években. // Absztrakt. dis. a versenyre akadémiai lépés. dr. édesem. Tudományok. - Kaunas. - 1970. - 32 p.

68 Podlevsky A.F., Cselinskaya N.M., Zhuravleva L.V., Buchel N.E. A közvetett hemagglutináció reakciója dizentériában különböző korú betegeknél. // A könyvben: A bél- és természetes gócos fertőzések epidemiológiai és megelőzési kérdései. L., 1971, S. 93-99.

69 Zaitlenok M.A., Eremina A.M., Subbotina Yu.L. Bakteriológiailag nem igazolt akut bélfertőzések szerológiai vizsgálatok // Immunológia és immunpatológia. - Voronyezs, 1983. - S. 35-37.

70 Boriszov V.A., Orlik N.S., Kiriljuk M.A. Immunválasz vérhasban szenvedő betegeknél, akiknél a shigella elhúzódó leválása. // Összszövetség. konf. a fertőző betegségek klinikai biokémiájáról, morfológiájáról és immunológiájáról. Tez. jelentés - Riga - 1977. - S. 377-378.

71 Chilingaryan A.V. A tüdőmodell, az indirekt hemagglutinációs teszt és az agglutinációs teszt párhuzamos alkalmazásának eredményei egészséges emberek vérében antidizentériás antitestek kimutatására. // A könyvben: Akut bélfertőzések. Dizentéria, escherichiosis, szalmonellózis. - L. - 1970. - S. 93-101.

72 Patton C.M., Gangorosa E.J., Weissman J.B. et al. Az inderect hemaglutináció diagnosztikai értéke a Shigella fertőzések szeroepidemiológiájában. // J.ofClin. Microb. - 1976. - 1. évf. - 23. - P. 143-148.

73 Martinez J. A bakteriális vérhas epidemiológiai vizsgálata. // Bol. ofic. higiéniai panamer. - 1973. - 1. évf. 75. - P. 213-224.

74 Musabaev I.K., Abubakirova F.Z. Bakteriális vérhas. - Taskent - 1973. - 258 p.

75 Dulatova M.V., Golovacheva S.N., Savitskaya O.V. Az RPGA elve a fertőzések és az immunitás expressz diagnosztikájában. // A könyvben: Előkészületek expressz diagnosztikához. - L., 1981. - S. 31-42.

76 Safonova N.V. Az indirekt hemagglutináció reakciójának alkalmazása az akut bélfertőzés gócaiban a fertőzöttek azonosítására és a források felkutatására. - L., 1974. - 11. sz.

77 Solodovnikov Yu.P., Kalashnikova GK, Subbotina Yu.L., Bobkin SV Az indirekt hemagglutináció reakciója az antitestek vizsgálatában egészséges, beteg és felépült Sonne-dizentériában. - ZHMEI, 1971, 1. sz. - P.13-18.

78 Provotorov V.Ya. A vérhas betegek kezelésének kérdéséhez. - A könyvben: A fertőző betegek közösségi ellátása és a fertőző betegek kezelésének kérdései. Szaratov, 1973. - S. 153-155.

79 Karalnik B.V. A fertőző patológia immundiagnosztikájának módszertana és taktikája. - A könyvben: A klinikai immunológia és immunológiai diagnosztika kérdései. Alma-Ata, 1988. - 10 p.

80 Kaplin V.I., Klevcova G.A., Koryukhina I.P. stb. A vér specifikus reakciója kezdeti időszak dizentéria és szalmonella fertőzések és új lehetőségek az akut bélfertőzések korai specifikus diagnosztizálására // VI All-Union. konf. klinikai szerint biokémia, morfológia és immunol. fertőző Bol.: Jelentéskivonatok. – Riga, 1983. – P.76-77.

81 Savilov E.D., Astafiev V.A., Mamontova L.M., Volodin Yu.F. A vérhas epidemiológiai jellemzői Kelet-Szibéria. //Novoszibirszk "Nauka", 1994. - P.42-43.

82 Ivanov K.S., Ivanov A.I. Akut hasmenéses fertőzések diagnózisa //Klin. édesem. - 1992. - No. 7-8 - S. 64-69.

83 Karalnik B.V. Vörösvérsejtek, receptoraik és immunitásuk. // A modern biol. sikere, M. - 1992. - 112. v., 1. sz. - P.52-61.

84 Garib F.Yu., Zalyalieva M.V. Módszerek a limfociták szubpopulációjának tanulmányozására emberekben különböző kóros állapotokban // Módszer.ajánlások. - Taskent, 1989. - 17p.

85 Bahrg. Modabber F.Z. J. Immunol.Meth. - 1980. - V. 38., 3-4. - P. 203-216.

86 Tyagotin Yu.A. // Vérrendszeri betegségekben szenvedő betegek vizsgálatának és kezelésének kérdései. - L., 1975. - S. 21-25.

87 Novikov D.K., Novikova V.I. Az immundiagnosztika sejtes módszerei. // Minszk, 1979. - 222 p.

88 Smirnov B.N., Toropova N.I., Mokhova G.A. és mások // Az "Orvosi biotechnológia problémái" című szövetségi tudományos konferencia anyaga. október 1988. - L., 1990. - S. 114-116.

89 Slavko E.A., Deryabin P.N., Karalnik B.V. Az antigénkötő limfociták meghatározása a szalmonellózis és a vérhas korai diagnosztizálásának módszereként // Healthcare of Kazakhstan.-Almaty.- 1999. - No. 5-6.-C.43-45.

90 Karalnik B.V., Kozhageldieva A.A., Karabekov A.Zh., Denisova T.G., Raipov O.R. A Yersinia enterocolitica által okozott yersiniosis kezelésének hatékonyságának nyomon követése // Gyógyászat. - Almaty - 2004. - 4. szám - P. 51-53.

91 Karalnik B.V., Denisova T.G., Plazun A.A. A tuberkulinspecifitás antigénkötő limfocitái M. bovis-szal fertőzött nyulakban a tuberkulózis kezelésének dinamikájában // A tuberkulózis és a tüdőbetegségek problémái. -M.-2006.- 5.-S.48-53 sz.

92 Karalnik B.V., Karabekov A.Zh., Denisova T.G., Kozhageldieva A.A., Zhunusova G.B. A Yersinia enterocolitica O9 szerovar által okozott brucellózis és intestinalis yersiniosis differenciáldiagnosztikája // Medicine.-Almaty.-2004.- No. 3.- P.155-157.

93 Karalnik B.V., Denisova T.G., Zhunusova G.B., Fedosov S.A., Zhankin A.A., Ospanov K.S., Mizanbayeva S.U. Különféle antitestvizsgálatok és az antigénkötő limfocita teszt hatékonysága a brucellózis diagnosztizálásában emberekben. // Orvosi immunológia. – S.-P. - 2006. - 8. évf. - 4. sz. - S. 567 - 572.

94 Karalnik B.V., Denisova T.G., Grushina T.A., Tugambaev T.I. Brucella melitensis-szel fertőzött tengerimalacok immunválaszának elemzése // Zh.

95 Karalnik B.V., Berezin V.E., Denisova T.G., Deryabin P.N., Slavko E.A. A Sendai vírus receptoraival rendelkező limfociták tartalmának dinamikája vírussal és glikoproteinek immunstimuláló komplexével végzett immunizálás során // Izvest. Min.tudomány és felsőoktatás RK. Ser.biol. és orvosi-Almaty.-1999.- No. 3.- P.50-51.

96 Garib F.Yu., Gurariy N.I., Aliev Sh.R. Az antigénkötő limfociták jellemzői krónikus hepatitisben gyermekeknél // Immunológia - 1988. - 5. sz. 91-93.

97 Finlay B.B., Falkow S.A. Salmonella, Shigella és Jersinia fajok mikrobiális stratégiáinak összehasonlítása // Baktérium – Gazdasejtek interakciója, Alban R. Liss. Inc. - 1988. - P. 227-243.

98 Karalnik B.V., Denisova T.G., Keshileva Z.B., Pshenichnaya L.A. és munkatársai: Antigénkötő limfociták és antitestek a szifilisz diagnosztizálásában // Szexuális úton terjedő fertőzések. - M. - 1999. - 5. sz. – 34–36.

99 Sakanova L.M., Karalnik B.V., Ukbaeva T.D. és mtsai. Immunreagensek antigénkötő limfociták kimutatására és jóváhagyásukra a diagnosztikában meningococcus fertőzés// Higiénia, epidemiológia és immunbiológia - Almaty. -2002.- 1-2.-S.69-72 sz.

100 Slavko E.A., Deryabin P.N., Karalnik B.V., Karabekov A.Zh. A gyomor-bél traktus akut gyulladásos betegségeiben szenvedő betegekben kimutatott antigénkötő limfociták specificitásáról. // Higiénia, epidemiológia és immunbiológia. - Almati. - 1999. - 2. sz. - S. 102 - 105.

A.M.Sadykova

Dizentéria laboratóriumi diagnosztikája

Tү jin: Zhedel іshek fertőzéses bakylauda, ​​vérhas naқty diagnosztika és özu maselesi bolyp tabylady. Bakteriális dizentériás dұrys қoyylғan diagnosztizálja a nauқaska vaқytynda em zhүrgіzuge zhane epidemica қarsy sharalardy өtkіzu үshіn manyzdy. Обзордағы көрсетілген мәліметтер, дизентерияның кең таралуын негіздей отырып, сезімталдығының жеткіліксіздігі және көп деген диагностикалық әдістердің оң нәтижесінің кеш анықталуына байланысты, осы инфекцияны анықтауда диагностикалық потенциалды мақсатты түрде дамыту керек екенін көрсетеді.

Tү hátulsóktólө zder: diagnosztika, vérhas, antigenbaylanystyrushy adis.

A.M.Sadycova

Dizentéria laboratóriumi diagnosztikája

Összegzés: A hasmenés megbízható diagnózisa az egyik legfontosabb kérdés az akut bélfertőzés leküzdésében. A bakteriózisos hasmenések pontos diagnózisának vitae-je van a beteg helyes és pontos kezeléséhez, valamint a szükséges járványellenes intézkedések megtételéhez. A felmérésben szereplő tagok, figyelembe véve a széles körben elterjedt hasmenést, számos diagnosztikai módszer érzékenységének hiányát és a pozitív eredmény késői megjelenését mutatják. Lényeges, hogy célirányosan fejlesszük a diagnosztikai potenciált a fertőzés megtervezéséhez.

kulcsszavak: diagnosztika, vérhas, antigénkötő limfociták módszere.