Schéma skríningu nádrže na úplavicu. Laboratórna diagnostika dyzentérie (prehľad literatúry)

Dyzentéria je závažná črevná infekcia charakterizovaná akútnym nástupom. Mikrobiologická diagnostika dyzentéria spočíva v izolácii patogénu z fekálnych más pacienta výsevom do špeciálneho živného média. Ochorenie treba odlíšiť od iných črevných ochorení a otráv. Včasná diagnostika a včasná liečba pomôžu vyhnúť sa komplikáciám.

Dôležitosť včasnej diagnózy

Rozpoznanie dyzentérie v praxi nie je také jednoduché, pretože existujú infekčné a neinfekčné ochorenia s podobnými klinickými prejavmi. Charakteristickým znakom pôvodcov dyzentérie (shigella) je schopnosť meniť rezistenciu na antibakteriálne lieky. Predčasne diagnostikovaná choroba povedie k infekcii Vysoké číslo z ľudí. Zneužívanie antibiotík je dôvodom vzniku rezistencie baktérií, čo vedie k masovým infekciám a epidémiám úmrtia. Zdrojom infekcie sú pacienti a nosiči baktérií, ktoré vylučujú patogénne mikroorganizmy s výkalmi. Inkubačná dobaúplavica - 2-3 dni.

Klinické príznaky ochorenia

• Náhla horúčka s telesnou teplotou 40 stupňov alebo viac.
• Hnačka viac ako 10-krát denne.
• Vzhľad v stolici krvi, hlienu, v zriedkavé prípady hnis.
• Strata chuti do jedla až do úplnej absencie.
• Nevoľnosť a zvracanie.
• Rezanie v bruchu a pravom hypochondriu.
• Bolesť v konečníku.
• Dehydratácia.
• Suchý jazyk s bielym povlakom.
• Arytmia.
• Znížený krvný tlak.
• Poruchy vedomia.

Diagnostické postupy

Lekár stanoví diagnózu úplavice až po vykonaných výskumoch.

Diagnóza ochorenia zahŕňa všeobecne uznávané a špeciálne metódy, ktoré stanovujú nielen konečná diagnóza, ale aj posudzovanie úrovne porúch tráviacich orgánov. Pri úplavici sa diagnóza robí na základe epidemiologického obrazu choroby, klinické príznaky a vykonali výskum. Hlavnou laboratórnou diagnostikou je rozbor trusu na mikrobiológiu, výsev až 80 % patogénov. Sérologická metóda sa vykonáva najskôr 5. deň choroby, tento typ štúdie dopĺňa, ale nenahrádza mikrobiologický rozbor. Iné metódy:

• Koprologické vyšetrenie je jednoduchá a cenovo dostupná klinická metóda, ktorá zisťuje hlien, krvné pruhy, erytrocyty, neutrofily (až 50 na jedno zorné pole) a zmenené epitelové bunky.
• Sigmoidoskopia - umožňuje sledovať proces hojenia. Nevzťahuje sa na deti.
• Metóda testu na alergiu - pomocná metóda, na základe vykonania alergického kožného testu s úplavicou (Tsuverkalovova metóda).

Všeobecná analýza krvi

Imunitné bunky ničia patogény dyzentérie dokonca aj v črevách a závažné prípady ochorenia sa vyskytujú, keď baktérie vstúpia do lymfatických uzlín a následne sa dostanú do krvného obehu. Krvný test na úplavicu hodnotí stav pacienta a umožňuje vám včas reagovať na možné komplikácie. Zvýšenie rýchlosti sedimentácie erytrocytov je laboratórnym indikátorom, ktorý charakterizuje stupeň zápalu. Dyzentéria tiež spôsobuje zvýšenie koncentrácie bodných neutrofilov a monocytov.

Ako darovať výkaly pre koprogram?

Na potvrdenie ochorenia sa vykoná test stolice. Coprogram - podrobná laboratórna štúdia, ktorá hodnotí prácu gastrointestinálneho traktu, rýchlosť a účinnosť trávenia a funkcie čriev. Laboratórne metódy na vyšetrenie výkalov odhaľujú fyzikálne a Chemické vlastnosti výkaly, zloženie, prítomnosť cudzích organizmov a inklúzií. Požiadavky na odber stolice:

• Materiál sa odoberá po prirodzenom akte defekácie.
• Zber sa vykonáva v špeciálnej nádobe.
• Je zakázané odoberať biologický materiál získaný v dôsledku klystíru na vyšetrenie výkalov na úplavicu.
• Pred štúdiom je zakázané používať prípravky železa, dávať rektálne čapíky, užívať preháňadlá a piť alkoholické nápoje.

Mikrobiologická diagnostika

Výsev v nádrži na dyzentériu presne určuje typ patogénu.

Bakteriologická diagnostika - odber trusu a následný výsev trusu do špeciálneho živného média. Výskyt kolónií patogénnych baktérií (shigella) po zasiatí potvrdzuje navrhovanú diagnózu. Bakteriologická analýza na úplavicu presne určuje patogén, jeho typ, poddruh a citlivosť na antibakteriálne látky, čo vám umožňuje vybrať ten správny liek na liečbu.

Skúmaný materiál - získané výkaly s cudzími nečistotami prirodzene alebo špeciálna trubica na sigmoidoskopiu. U detí sa výter odoberá špeciálnym výterom (výter na VD alebo výter na črevnú skupinu). Vytvorte citlivosť na lieky umiestnením kolónií Shigella spolu s rôznymi antibiotikami. Ak vitálna aktivita mikroorganizmov pokračuje v blízkosti antibiotickej tablety, potom sa liek nepoužíva na liečbu, ak mikroorganizmy zomrú, je predpísaná liečba takýmto antibiotikom.

Sérologické testy na dyzentériu

V prípade negatívnych alebo pochybných výsledkov bakteriologického vyšetrenia sa používa sérologická metóda. AT výkaly pacient je detegovaný bakteriálnym antigénom av plazme - špecifickými protilátkami. Na stanovenie titra protilátok môžete použiť metódu RIGA, niekedy - RPHA alebo RA. Ako antigény sa používa suspenzia dennej kolónie Shegella. mínus metóda - spoľahlivé výsledky dostávať len 5 dní po nástupe ochorenia, kedy koncentrácia protilátok dosiahne požadovanú úroveň.

Sigmoidoskopia

Vzhľadom na to, že pôvodca dyzentérie postihuje hrubé črevo, je sigmoidoskopia významnou diagnostickou metódou, nie však určujúcou. Diagnostika spočíva v zavedení rektoskopu vybaveného zariadením na prívod vzduchu do konečníka. Opuch, črevná dutina sa stáva dostupnou pre výskum. Táto metóda pomáha posúdiť stupeň poškodenia črevného epitelu. Pri úplavici sú črevné steny hyperemické v dôsledku vazodilatácie. Na niektorých segmentoch sa tvoria erózie a krvácania. Sigmoidoskopia nevyžaduje prípravu, ale postup sa nevykonáva, ak existujú análne trhliny alebo patológie konečníka.

Metodické pokyny pre žiakov na praktickú hodinu č.28.

Téma lekcie:

Cieľ: Štúdium metód mikrobiologickej diagnostiky, etiotropnej terapie a prevencie šigelózy.

Modul 2 . Špeciálna, klinická a ekologická mikrobiológia.

Téma 5: Metódy mikrobiologickej diagnostiky dyzentérie.

Relevantnosť témy:Shigellóza je všadeprítomná a je vážny problém v krajinách s nízkou sanitárnou kultúrnou úrovňou a vysokým výskytom podvýživy a zlej výživy. V rozvojových krajinách napomáha šíreniu infekcie zlá hygiena, zlá osobná hygiena, preľudnenosť a veľký podiel detí v populácii. Na Ukrajine sú ohniská šigelózy častejšie v uzavretých komunitách so zlou sanitáciou a hygienou, ako sú jasle a škôlky, turistické lode, psychiatrické kliniky alebo útulky pre osoby so zdravotným postihnutím. Shigella bola príčinou hnačky cestovateľov a turistov.

Za príčinu skupinových chorôb možno považovať používanie potravinových výrobkov kontaminovaných nedbalosťou pracovníkov obchodu, ktorí sú nosičmi šigelly. Vyskytujú sa ohniská spojené s používaním pitnej vody a k infekcii viedlo aj kúpanie v znečistených nádržiach. Zdá sa však, že potravinové a vodné cesty prenosu zohrávajú menšiu úlohu pri šírení šigelózy v porovnaní s cholerou a brušným týfusom, pri ktorých sú na infikovanie človeka zvyčajne potrebné veľké dávky patogénov. V rozvojových krajinách, kde sa choroba šíri prevažne z človeka na človeka, môžu byť nosiči dôležitým rezervoárom infekčného agens. U pacientov, ktorí neužívali antibakteriálne lieky, vylučovanie šigely stolicou zvyčajne trvá 14 týždňov, ale v malej časti prípadov trvá oveľa dlhšie.

Shigellóza je akútna bakteriálna infekcia čreva spôsobená jedným zo štyroch typov Shigella. Spektrum klinických foriem infekcie siaha od miernej vodnatej hnačky až po ťažkú ​​dyzentériu charakterizovanú kŕčmi v bruchu, tenezmami, horúčkou a príznakmi celkovej intoxikácie.

Etiológia.

Rod Shigella (pomenovaný po K. Shigovi, ktorý v roku 1898 podrobne študoval a opísal izolovaného pôvodcu bakteriálnej dyzentérie A. V. Grigoriev) z čeľade Enterobacteriaceae pozostáva zo skupiny blízko príbuzných bakteriálnych druhov s nasledujúcimi vlastnosťami:

ja Morfologické: shigella - malé tyčinky so zaoblenými koncami. Od ostatných zástupcov čeľade Enterobacteriaceae sa líšia absenciou bičíkov (nepohyblivé), nemajú spóry a tobolky a sú gramnegatívne.

II. Kultúrne: shigella sú aeróby alebo fakultatívne anaeróby; optimálne podmienky kultivačná teplota 37°C, pH 7,2-7,4. Rastú na jednoduchých živných pôdach (MPA, MPB) vo forme malých, lesklých, priesvitných, sivastých, okrúhlych kolónií o veľkosti 1,52 mm. S formulár. Výnimkou je Sonne's Shigella, ktorá sa často oddeľuje a vytvára veľké, ploché, zakalené kolónie so zubatými okrajmi. R formy (kolónie vyzerajú ako „hroznový list“). V tekutých živných médiách poskytuje Shigella jednotný zákal, R formy tvoria zrazeninu. Obohacovacím kvapalným médiom je seleničitanový bujón.

III. Enzymatické: hlavné biochemické znaky potrebné na identifikáciu šigel v izolácii čistej kultúry sú tieto:

1. nedostatok tvorby plynu počas fermentácie glukózy;
2. žiadna produkcia sírovodíka;
3. nedochádza k fermentácii laktózy do 48 hodín.

Celkovo sa tieto štyri druhy ďalej delia na približne 40 sérotypov. Podľa charakteristík hlavných somatických (O) antigénov a biochemických vlastností sa rozlišujú tieto štyri druhy alebo skupiny: S. dysenteriae (skupina A, zahŕňa: Grigoriev-Shigi, Stutzer-Schmitz, Large-Sachs), S. flexneri (skupina B), S. boydii (skupina C) a S. sonnei (skupina D).

Vo vzťahu k manitolu sa všetky shigelly delia na štiepiaci (Flexner, Boyd, Sonne shigella) a neštiepiaci sa (Grigoriev-Shiga, Stutzer-Schmitz, Large-Sachs shigella) manitol.

IV. Patogénne faktory:

1. Invázia plazmiduposkytuje schopnosť shigelly spôsobiť inváziu s následným medzibunkovým šírením a reprodukciou v epiteli sliznice hrubého čreva;
2. tvorba toxínov: Shigella majú lipopolysacharidový endotoxín, ktorý je chemicky a biochemicky podobný endotoxínom iných členov čeľade Enterobacteriaceae. Okrem toho S. dysenteriae typu I (Shigov bacil) produkuje exotoxín. Od objavu posledne menovaného sa zistilo, že má enterotoxínovú aktivitu a môže spôsobiť črevnú sekréciu, ako aj cytotoxický účinok proti bunkám črevného epitelu; má neurotoxický účinok, ktorý sa zaznamenáva u detí so šigelózou. Shiga toxín, ktorý sa dostáva do krvi, spolu s poškodením submukózneho endotelu ovplyvňuje aj glomeruly obličiek, v dôsledku čoho sa okrem krvavej hnačky rozvinie hemolyticko-uremický syndróm s rozvojom zlyhania obličiek.

V. Antigénna štruktúra:Všetky Shigelly majú somatický O-antigén, v závislosti od štruktúry ktorého sa delia na sérovary.

VI. Odolnosť: Teplota 100 0 C okamžite zabije shigellu. Shigella sú odolné voči nízkym teplotám v riečna voda skladujú sa do 3 mesiacov, na zelenine a ovocí - do 15 mesiacov.Za priaznivých podmienok sú Shigella schopné rozmnožovať sa v produkty na jedenie(šaláty, vinaigretty, varené mäso, mleté ​​mäso, varené ryby, mlieko a mliečne výrobky, kompóty a želé), najmä Shigella Sonne.

Epidemiológia.

1. Zdroj infekcie:Osoba trpiaca akútnou a chronickou formou šigelózy; bakterionosič.

2. Spôsoby prenosu:

• Jedlo (hlavne pre S. sonnei)
• Vodné (hlavne pre S. flexneri)
• Kontaktná domácnosť (hlavne pre S. dysenteriae)

3. vstupná brána infekcia podáva gastrointestinálny trakt.

Patogenéza a patologické zmeny.

Po požití Shigella kolonizujú horné oblasti tenké črevo a množiť sa tam, čo môže spôsobiť zvýšenú sekréciu na skoré štádium infekcií. Shigella potom prenikajú cez M bunky do submukózy, kde sú pohltené makrofágmi. To vedie k odumretiu časti šigel, čo vedie k uvoľneniu zápalových mediátorov, ktoré iniciujú zápal v submukóze. Apoptóza fagocytov umožňuje ďalšej časti Shigella prežiť a preniknúť do epitelových buniek sliznice cez bazálnu membránu. Vo vnútri enterocytov sa shigella rozmnožuje a medzibunkovo ​​sa šíri, čo vedie k rozvoju erózie. Keď shigella zomrie, uvoľňujú sa toxíny shiga a shiga podobné toxíny, ktorých pôsobenie vedie k intoxikácii. Porážka sliznice je sprevádzaná opuchom, nekrózou a krvácaním, čo spôsobuje výskyt krvi v stolici. Okrem toho toxín ovplyvňuje centrálny nervový systém, čo vedie k trofickým poruchám.

Klinické prejavy.

Spektrum klinických prejavov šigelózy je veľmi široké od miernej hnačky až po ťažkú ​​dyzentériu s kŕčovitými bolesťami brucha, tenezmami, horúčkou a celkovou intoxikáciou.

Inkubačná dobasa pohybuje od niekoľkých hodín do 7 dní, najčastejšie sú to 2-3 dni.Spočiatku majú pacienti vodnatá stolica, horúčka (do 41 °C), difúzna bolesť brucha, nevoľnosť a vracanie. Spolu s tým sa pacienti sťažujú na myalgiu, zimnicu, bolesti chrbta a hlavy. V najbližších dňoch od začiatku ochorenia sa objavujú príznaky úplavice - tenezmy, časté, riedke, krvavo-hlienovité stolice. Telesná teplota postupne klesá, bolesť môže byť lokalizovaná v dolných kvadrantoch brucho. Intenzita hnačky dosahuje maximum okolo konca 1. týždňa choroby. Dyzentéria s krvavou stolicou je bežnejšia a objavuje sa skôr pri chorobe spôsobenej o S. dysenteriae typu I ako pri iných formách šigelózy.

Pre Shigellosis Sonne charakteristický je miernejší priebeh ochorenia (gastroenterický alebo gastroenterokolický variant). Horúčkové obdobie je kratšie, účinky intoxikácie sú krátkodobé, deštruktívne zmeny na sliznici čreva nie sú typické.

Shigellosis FlexnerV zásade sú charakteristické dva varianty klinického priebehu - gastroenterokolitída a kolitída.

Extraintestinálne komplikácie pri shigelózezriedkavé:

1. Komplikáciou šigelózy môže byť vývoj črevnej dysbakteriózy.
2. Spolu s bolesťami hlavy môžu byť príznaky meningitídy a konvulzívnych záchvatov.
3. Boli opísané prípady periférnej neuropatie pri infekcii S. dysenteriae typu I a prípady Guillain-Barrého syndrómu (polyneuritída) boli hlásené počas prepuknutia gastroenteritídy S. boydii.
4. S výnimkou detí trpiacich dystrofiou je hematogénne šírenie patogénu pomerne zriedkavé, popísané sú aj prípady abscesov šigelózy a meningitídy.
5. Pri šigelóze je možný rozvoj Reiterovho syndrómu s artritídou, sterilnou konjunktivitídou a uretritídou, zvyčajne sa to u pacientov vyskytuje po 1-4 týždňoch od začiatku hnačky.
6. U detí je shigelóza sprevádzaná hemolyticko-uremickým syndrómom, často spojeným s reakciami podobnými leukémii, ťažkou kolitídou a cirkulujúcim endotoxínom, ale bakteriémia sa zvyčajne nezistí.
7. Veľmi zriedkavo je hnisavá keratokonjunktivitída spôsobená šigelou, ktorá sa dostala do očí v dôsledku samoinfekcie kontaminovanými prstami.
8. Hypovolemický šok a DIC.
9. Peritonitída, črevná gangréna, črevné krvácanie.

Imunita: Ľudia majú prirodzenú odolnosť voči šigelóze. Po minulé ochorenie imunita nie je stabilná a po šigelóze Sonne prakticky chýba. S chorobou spôsobenou Shigellou Grigoriev Shigi sa vyvíja stabilnejšia antitoxická imunita. Hlavná úloha pri ochrane pred infekciou patrí sekrécii IgA zabraňujúca adhézii a cytotoxickej protilátkovo závislej aktivite intraepitelových lymfocytov, ktoré spolu so sekrečnými IgA zabiť shigella.

Diagnostika a laboratórne výskumy.

Účel štúdie: detekcia a identifikácia šigel na diagnostiku; detekcia nosičov baktérií; detekcia shigelly v potravinách.

Výskumný materiál: exkrementy, prierezový materiál, potraviny.

Diagnostické metódy:mikrobiologické (bakteriologické, mikroskopické (luminiscenčné); sérologické; biologické; alergický test.

Priebeh výskumu:

1 deň štúdia:Kultúry by sa mali robiť z čerstvo vylúčených výkalov alebo pomocou rektálnych tampónov (rektálna trubica); pri absencii vhodných podmienok musí byť materiál umiestnený v transportnom prostredí. Na tento účel by sa mal použiť enterický agar (médium MacConkey alebo Shigella-Salmonella), stredne selektívny xylóza-lyzín-deoxycholátový agar, KLD) a živný bujón (selenitový bujón). Ak čas medzi odberom a inokuláciou presiahne 2 hodiny, potom by sa mali použiť konzervačné roztoky: 20 % žlčový bujón, kombinované Kauffmannovo médium.

• Exkrementy v glycerínovej zmesi sa emulgujú, kvapka emulzie sa nanesie na médium a rozotrie sa špachtľou. Diferenciálne médiá pre Shigella sú Ploskirev, Endo a EMS médiá (eozínmetylénová modrá agar). Ploskirevovo médium (zloženie média zahŕňa: MPA, laktózu, žlčové soli a indikátor brilantná zelená) je tiež voliteľným médiom pre shigellu, pretože. inhibuje rast Escherichia coli.
• Paralelne s priamou sejbou sa zozbieraný materiál vysieva na obohacovacie médium - seleničitanový bujón.
• Všetky plodiny sú umiestnené v termostate.

2. deň štúdie:

• Poháriky sa vyberú z termostatu, podozrivé kolónie sa skrínujú na Resselovom médiu (živné médium, ktoré obsahuje: agar-agar, Andredeov indikátor, 1 % laktózy, 0,1 % glukózy) a manitol. Výsev sa robí ťahmi na šikmú plochu a nástrekom do agarového stĺpca. Naočkované Resselovo médium sa umiestni do termostatu na 18 až 24 hodín (súbežne sa uskutoční preočkovanie zo seleničitanového média do diferenciálneho diagnostického média).
• Urobte šmuhy (Gramovo farbenie), mikroskop.
• Pripravte prípravky "visiace" alebo "drvené" kvapky.
• Vyhlásenie o indikatívnej RA s polyvalentnými diagnostickými sérami na shigelózu.
• Výsev podozrivých kolónií na šikmý agar.

3. deň štúdie:

• Mikroskopia agarového šikmého materiálu.
• Kultúry, ktoré nefermentovali laktózu na Resselovom médiu, sa podrobia ďalšiemu štúdiu: urobia sa nátery (Gramovo farbenie), skontroluje sa čistota kultúry. V prítomnosti gramnegatívnych tyčiniek sa naočkuje Hissovo médium, bujón s indikátorovými papierikmi (na detekciu indolu a sírovodíka) a lakmusové mlieko.
• Naočkované médiá sa umiestnia do termostatu na 18-24 hodín.

Štvrtý deň štúdie:

• Účtovanie krátkej „pestrej série“.
• Kultúry podozrivé z hľadiska ich enzymatických a kultúrnych vlastností proti Shigella sa podrobia sérologickej identifikácii. Stanovenie RA na skle (typické a skupinové diagnostické séra). Nastavenie nasadeného RA.

Ako zrýchlené metódy na shigelózu použitefluorescenčná mikroskopia a biologická vzorka(zavlečenie virulentných kmeňov Shigella do spojovkového vaku (pod dolným viečkom) morčiat zápal spojiviek sa vyvinie do konca 1. dňa).

Alergický test Zuverkalovintradermálny alergický test s dyzentériou (zavedenie 0,1 ml dyzentérie do predlaktia pozitívna reakcia v prípade infiltrácie a hyperémie). Alergologická diagnostika sa v súčasnosti prakticky nepoužíva. Tsurvekalov test sa nelíši v špecifickosti, pozitívne reakcie sú zaznamenané nielen pri šigelóze, ale aj pri salmonelóze, escherichióze, yersinióze a iných akútnych črevných infekciách a niekedy aj u zdravých jedincov.

Liečba a prevencia.Bakteriofág sa používa na liečbu a prevenciu podľa epidemiologických indikácií. orálne podávanie, antibiotiká po stanovení antibiogramu; v prípade dysbakteriózy prípravky probiotík na korekciu mikroflóry. Na doplnenie straty tekutín a elektrolytov - zavedenie roztoku glukózy-elektrolytu dovnútra.

Konkrétne ciele:

Interpretujte biologické vlastnosti patogénov šigelózy.

Zoznámte sa s klasifikáciou Shigella.

Naučte sa interpretovať patogenetické vzorce infekčného procesu spôsobeného shigellou.

Stanoviť metódy mikrobiologickej diagnostiky, etiotropnej terapie a prevencie šigelózy.

Byť schopný:

• Testovaný materiál naočkujte na živné médiá.
  • Pripravte si nátery a Gramovo farbenie.
  • Vykonajte mikroskopiu prípravkov pomocou ponorného mikroskopu.
  • Analyzujte morfologické, kultúrne a enzymatické vlastnosti Shigella.

Teoretické otázky:

1. Charakteristika patogénov šigelózy. biologické vlastnosti.

2. Klasifikácia šigelly. Základné princípy.

3. Epidemiológia, patogenéza a klinické príznakyšigelóza.

4. Laboratórna diagnostika.

5. Zásady liečby a prevencie šigelózy.

Praktické úlohy ktoré sa vykonávajú v triede:

1. Mikroskopia demonštračných preparátov z čistých kultúr patogénov šigelózy.

2. Práca na bakteriologickej diagnostike šigelózy: štúdium fekálnych kultúr na Ploskirevovom médiu.

3. Subkultivácia podozrivých kolónií na Resselovom médiu a na BCH na stanovenie tvorby indolu a H 2 S .

4. Náčrt demonštračných prípravkov a schémy mikrobiologickej diagnostiky šigelózy v protokole vyučovacej hodiny.

5. Registrácia protokolu.

Literatúra:

1. Korotyaev A.I., Babichev S.A., Lekárska mikrobiológia, imunológia a virológia / Učebnica pre lekárske univerzity, Petrohrad "Špeciálna literatúra", 1998. - 592s.

2. Timakov V.D., Levašev V.S., Borisov L.B. Mikrobiológia / Učebnica. - 2. vyd., prepracované. A ďalšie - M .: Medicína, 1983, -512s.

3. Pyatkin K.D. Krivoshein Yu.S. Mikrobiológia s virológiou a imunológiou.- Kyjev: In and shcha school, 1992. - 431s.

4. Lekárska mikrobiológia / Edited by V.I. Pokrovského.-M.: GEOTAR-MED, 2001.-768s.

5. Sprievodca praktický tréning v mikrobiológii, imunológii a virológii. Ed. M.P. Zykov. M. "Medicína". 1977. 288 s.

6. Cherkes F.K., Bogoyavlenskaya L.B., Belskan N.A. Mikrobiológia. / Ed. F.K. Čerkesský. M.: Medicína, 1986. 512 s.

7. Poznámky k prednáške.

Doplnková literatúra:

1. Makiyarov K.A. Mikrobiológia, virológia a imunológia. Alma-Ata, "Kazachstan", 1974. 372 s.

2. Titov M.V. Infekčné choroby. - K., 1995. 321s.

3. Šuvalová E.P. infekčné choroby. - M.: Medicína, 1990. - 559 s.

4. BME, zväzok 1, 2, 7.

5. Pavlovič S.A. Lekárska mikrobiológia v grafoch: Proc. príspevok na zdravotnú súdruh. Mn.: Vyš. škola, 1986. 255 s.

Stručný usmernenia pracovať na praktickej časti.

Na začiatku vyučovacej hodiny sa kontroluje úroveň prípravy žiakov na vyučovaciu hodinu.

Samostatná práca pozostáva zo štúdia klasifikácie shigella, analýzy schémy patogenetických a klinických príznakov shigellózy. Štúdium metód laboratórnej diagnostiky šigelózy. Žiaci realizujú výsev biomateriálu na živné pôdy. Potom sa pripravia mikropreparáty, zafarbia sa podľa Grama, vykoná sa mikroskopia, načrtnú sa mikropreparáty a podajú sa potrebné vysvetlenia. Súčasťou samostatnej práce je aj mikroskopovanie ukážkových príprav a ich zakreslenie do protokolu vyučovacej hodiny.

Na konci hodiny je vykonaná kontrola testu a rozbor konečných výsledkov samostatnej práce každého študenta.

Technologická mapa praktickej hodiny.

p/n	Etapy	Čas v minútach	Spôsoby učenia	Vybavenie	Poloha
	Kontrola a oprava počiatočnej úrovne prípravy na vyučovaciu hodinu		Testovacie úlohy počiatočnej úrovne	Tabuľky, atlas	študovňa
	Samostatná práca		Graf logickej štruktúry	Ponorný mikroskop, farbivá, podložné sklíčka, bakteriologické slučky, živné pôdy, Ploskirevovo médium, Resselovo médium, "pestrý Hissov rad"
	Samokontrola a korekcia zvládnutia látky		Cielené učebné úlohy
	Kontrola testu		Testy
	Analýza výsledkov práce

Cielené vzdelávacie úlohy:

1. Výkaly boli získané od dieťaťa s akútnymi črevnými infekciami (odber výkalov bol vykonaný rektálnou sondou) obsahujúcimi hlien a hnis. Akú expresnú diagnostickú metódu použiť?

A. ELISA.

b. REEF.

C. RA.

D. RSK.

E. RIA.

1. Pôvodca dyzentérie bol izolovaný z chorého dieťaťa s akútnou črevnou infekciou. Aké morfologické znaky sú charakteristické pre patogén?

A . Gramnegatívna nepohyblivá tyčinka.

B . Gram-pozitívna pohyblivá tyč.

C . Vytvára kapsulu na živnom médiu.

D . Vo vonkajšom prostredí tvorí spóry.

E . Gram-pozitívne streptobacily.

3. Pacient, ktorý pred tromi dňami ochorel a sťažuje sa na teplotu 38 °C, bolesti brucha, časté tekutá stolica, prítomnosť krvi v stolici, lekár klinicky diagnostikoval bakteriálnu úplavicu. Akú metódu mikrobiologickej diagnostiky v tomto prípade použiť a aký materiál odobrať pacientovi na potvrdenie diagnózy?

A. Bakterioskopický kal.

B. Bakteriologické kal.

C. Bakterioskopická krv.

D. Bakteriologický moč.

E. Sérologická krv.

4. Shigella Sonne bola izolovaná z pacientových výkalov. Aký ďalší výskum je potrebný na zistenie zdroja infekcie?

A . Vykonajte fágovú typizáciu izolovanej čistej kultúry.

B . Stanovte antibiogram.

C . Nastavte zrážaciu reakciu.

D . Nastavte reakciu fixácie komplementu.

E . Nastavte neutralizačnú reakciu.

5. V skupine turistov (27 ľudí), ktorí pili vodu z jazera, sa po dvoch dňoch u 7 ľudí objavili príznaky akútnej hnačky. Aký materiál by sa mal poslať do bakteriologického laboratória na zistenie etiológie tohto ochorenia?

A. Voda, výkaly pacientov.

B. Voda, krv chorých.

C. Potravinárske výrobky.

D. Moč.

E. Flegm.

6. Významnou nevýhodou mikroskopickej diagnostickej metódy akútnych črevných infekcií je jej nedostatočný informačný obsah spôsobený morfologickou identitou baktérií rodu Enterobacteriaceae . Čo robí túto metódu informatívnejšou?

A . Rádioimunoanalýza.

B . Coombsova reakcia.

C . Prepojený imunosorbentový test.

D . opsonizačná reakcia.

E . Imunofluorescenčná reakcia.

7. 29-ročný pacient bol hospitalizovaný so záchvatmi vracania, hnačky a tenesmy. Výkaly s kúskami hlienu a prímesou krvi. Bakteriologické vyšetrenie baktérií z kolónií na Ploskirevovom médiu odhalilo nepohyblivé gramnegatívne tyčinky, ktoré nefermentujú laktózu. Vymenujte pôvodcu infekčného procesu.

A. Shigella flexneri.

b. Vibrio eltor.

C. E. Coli.

D. Proteus mirabilis.

E. Salmonella enteritidis.

8. Do mikrobiologického laboratória bol doručený šalát, ktorý je pravdepodobne príčinou akútnej črevnej infekcie. Aké živné médiá sa používajú na primárne očkovanie?

A . Žĺtkovo-soľný agar, MPB.

b. MPA, MPB.

C . Selenitový vývar, Endo, Ploskireva.

D . Pečeňový vývar, Roux Wednesday.

E . Krvný agar, alkalický agar.

9. Pri mikrobiologickom výskume mleté ​​mäso izolované baktérie patriace do rodu Shigella. Štúdium akých vlastností mikróbov viedlo k takémuto záveru?

A . Kultúrny, farbistý.

B . Antigénne, kultúrne.

C . Sacharolytický, proteolytický.

D . Antigénne, imunogénne.

E . Morfologické, antigénne.

10. Mikroskopické vyšetrenie zvratkov odobratých pacientovi s príznakmi akútnej črevnej infekcie odhalilo nehybné tyčinky. V akom nátere alebo prípravku by sa dala študovať pohyblivosť baktérií?

A . V nátere zafarbenom Gramom.

B . V nátere zafarbenom podľa Tsil - Nelsen.

C . V príprave "hustá kvapka".

D . Vo farbe Neisser.

E . V príprave "drvená kvapka".

Algoritmus laboratórne práce :

1. Štúdium biologických vlastností Shigella.

2. Oboznámenie sa s klasifikáciou šigel.

3. Analýza schémy patogenetických a klinických prejavov šigelózy.

4. Štúdium metód laboratórnej diagnostiky šigelózy.

5. Štúdium základných princípov terapie a prevencie šigelózy.

1. Príprava fixovaných preparátov z bakteriálnej kultúry.
2. Farbenie mikroprípravky od Gram.
3. Mikroskopia mikropreparátov s pomocou ponorného mikroskopu, ich rozbor a zakreslenie do protokolu z vyučovacej hodiny.
4. Mi chromoskopia a analýza demonštračných preparátov z čistých kultúr Shigella.
5. Náčrt demonštračných preparátov a schéma laboratórnej diagnostiky šigelózy v protokole.
6. Formulácia protokolu.

Klasifikácia shigella, ich vlastnosti. Patogenéza šigelózy.

Bakteriálna dyzentéria alebo šigelóza je infekčné ochorenie spôsobené baktériami rodu Shigella, vyskytujúce sa s prevládajúcou léziou hrubého čreva. Názov rodu je spojený s K. Shigi, ktorý objavil jeden z patogénov

úplavica.

Taxonómia a klasifikácia. Pôvodcovia dyzentérie patria do oddelenia Gracilicutes, čeľade Enterobacteriaceae, rodu Shigella.

Morfológia a farbiace vlastnosti. Shigella - gramnegatívne tyčinky so zaoblenými koncami, dlhé 2-3 mikróny, hrubé 0,5-7 mikrónov (pozri obr. 10.1); netvoria spóry, nemajú bičíky, sú nepohyblivé. V mnohých kmeňoch sa nachádzajú klky všeobecného typu a genitálne pili. Niektoré Shigella majú mikrokapsulu.

Kultivácia. Dysentery sticks sú fakultatívne anaeróby. Sú nenáročné na živné pôdy, dobre rastú pri teplote 37°C a pH 7,2-7,4. Na hustých médiách tvoria malé priehľadné kolónie, v tekutých médiách -

difúzny zákal. Selenitový bujón sa najčastejšie používa ako obohacovacie médium na kultiváciu Shigella.

Enzymatická aktivita. Shigella majú menšiu enzymatickú aktivitu ako iné enterobaktérie. Fermentujú sacharidy za vzniku kys. Dôležitým znakom, ktorý umožňuje odlíšiť Shigelly, je ich vzťah k manitolu: S. dysenteriae nefermentujú manitol, zástupcovia skupín B, C, D sú na manitol pozitívni. Biochemicky najaktívnejšie sú S. sonnei, ktoré pomaly (do 2 dní) dokážu fermentovať laktózu. Na základe vzťahu S. sonnei k ramnóze, xylóze a maltóze sa rozlišuje 7 jej biochemických variantov.

Antigénna štruktúra. Shigella majú O-antigén, ich heterogenita umožňuje rozlíšiť sérovary a subserovary v rámci skupín; u niektorých členov rodu sa nachádza K-antigén.

faktory patogénnosti. Všetky dysenterické bacily tvoria endotoxín, ktorý má enterotropný, neurotropný, pyrogénny účinok. Okrem toho S. dysenteriae (sérovar I) - Shigella Grigoriev-Shigi - vylučujú exotoxín, ktorý má na organizmus enterotoxický, neurotoxický, cytotoxický a nefrotoxický účinok, čo následne narúša metabolizmus voda-soľ a činnosť centrálneho nervového systému, vedie k smrti epiteliálnych buniek hrubého čreva, poškodeniu renálnych tubulov. Viac ako ťažký priebeh dyzentéria spôsobená týmto patogénom. Iné typy Shigella môžu vylučovať exotoxín. Bol objavený faktor RF permeability, v dôsledku čoho sú postihnuté krvné cievy. Faktory patogenity zahŕňajú aj invazívny proteín, ktorý uľahčuje ich penetráciu do epiteliálnych buniek, ako aj proteíny pili a vonkajšej membrány zodpovedné za adhéziu a mikrokapsulu.

odpor. Shigella majú nízku odolnosť voči pôsobeniu rôznych faktorov. Odolnejšie sú S. sonnei, ktoré vo vode z vodovodu vydržia až 2"/2 mesiace, vo vode otvorených nádrží prežijú až V/2 mesiace. S. sonnei dokážu nielen dlho pretrvávať, ale aj množiť vo výrobkoch, najmä mliečnych výrobkoch.

Epidemiológia. Dyzentéria je antroponotická infekcia: zdrojom sú chorí ľudia a nosiči. Mechanizmus prenosu infekcií je fekálno-orálny. Cesty prenosu môžu byť rôzne – pri Sonneovej dyzentérii prevažuje potravná cesta, pri Flexnerovej – voda, pre Grigorievovu-Šigovu dyzentériu je charakteristická cesta kontakt – domácnosť. Dyzentéria sa vyskytuje v mnohých krajinách sveta. V nedávnej

rokov došlo k prudkému nárastu výskytu tejto infekcie. Ľudia všetkých vekových skupín ochorejú, ale deti vo veku od 1 do 3 rokov sú najviac náchylné na úplavicu. Počet pacientov stúpa v júli - septembri. Rôzne druhy shigelly jednotlivo

regióny sú nerovnomerne rozdelené.

Patogenéza. Shigella vstupuje do gastrointestinálneho traktu cez ústa a dosahuje hrubé črevo. Vďaka tropizmu pre svoj epitel sa patogény pripájajú k bunkám pomocou pili a proteínov vonkajšej membrány. Vďaka invazívnemu faktoru prenikajú do vnútra buniek, tam sa množia, v dôsledku čoho bunky odumierajú. V črevnej stene sa tvoria ulcerácie, na mieste ktorých sa potom tvoria jazvy. Endotoxín, uvoľnený pri ničení baktérií, spôsobuje celkovú intoxikáciu, zvýšenú črevnú motilitu a hnačku. Krv z vytvorených vredov vstupuje do stolice. V dôsledku pôsobenia exotoxínu sa pozoruje výraznejšie narušenie metabolizmu voda-soľ, činnosť centrálneho nervového systému a poškodenie obličiek.

klinický obraz. Inkubačná doba trvá od 1 do 5 dní. Choroba začína akútne zvýšením telesnej teploty na 38-39 ° C, objavujú sa bolesti brucha, hnačka. V stolici sa nachádza prímes krvi, hlienu. Najťažšou úplavicou je Grigoriev-Shiga.

Imunita. Po ochorení je imunita nielen druhovo, ale aj variantne špecifická. Má krátke trvanie a je nestabilný. Často sa choroba stáva chronickou.

Mikrobiologická diagnostika. Ako testovací materiál sa berie stolica pacienta. Základom diagnostiky je bakteriologická metóda, ktorá umožňuje identifikovať patogén, určiť jeho citlivosť na

antibiotiká, vykonať intrašpecifickú identifikáciu (určiť biochemický variant, sérovar alebo kolicinogenovar). Pri protrahovanom priebehu dyzentérie možno použiť ako pomocnú sérologickú metódu, ktorá spočíva v stagingu RA, RNHA (zvyšovaním titra protilátok pri opakovanej reakcii možno potvrdiť diagnózu).

Liečba. Pacienti s ťažkými formami dyzentérie Grigoriev-Shiga a Flexner sú liečení širokospektrálnymi antibiotikami s povinným zvážením antibiogramu, keďže medzi Shigellami sú často nielen rezistentné na antibiotiká

pažítka, ale aj formy závislé od antibiotík. Pri miernych formách dyzentérie sa antibiotiká nepoužívajú, pretože ich použitie vedie k dysbakterióze, čo sťažuje patologický proces, a narušenie procesov obnovy v sliznici hrubého čreva.

Prevencia. Jediným liekom, ktorý možno použiť v ohniskách infekcie na profylaktické účely, je dyzenteriálny bakteriofág. Hlavnú úlohu zohráva nešpecifická profylaxia.

11. Yersinia – pôvodcovia moru. Vlastnosti. Patogenéza, imunita, laboratórna diagnostika, epidemiológia, prevencia, liečba. Úloha domácich vedcov pri štúdiu moru.

Taxonómia: Y.pestis spôsobuje mor; oddelenie Gracilicutes, čeľaď Enterobacteriaceae, rod Yersinia. Pôvodcom je Yersinia pestis.

Morfologické vlastnosti: Gramnegatívne tyčinky, vajcovité, škvrnité bipolárne. Sú pohyblivé, majú tobolku, netvoria spóry.

kultúrne vlastnosti.

fakultatívne anaeróby. Teplotné optimum + 25С. Dobre pestované na jednoduchých živných pôdach. Väčšina sacharidov je fermentovaná bez tvorby plynov. Psychofili – schopní meniť svoj metabolizmus v závislosti od teploty a množiť sa pri nízke teploty. Virulentné kmene tvoria hrubé (R) kolónie, prechodné (RS) a sivasté slizké hladké avirulentné (S) formy.

Dva typy kolónií - mladé a dospelé. Mláďatá s nerovnými okrajmi. Zrelé kolónie sú veľké, s hnedým zrnitým stredom a zubatými okrajmi. Na šikmom agare sa po dvoch dňoch pri +28 °C vytvorí sivastý - biely povlak, rastúce do prostredia, na bujóne - jemný povrchový film a vatovitá zrazenina.

Biochemické vlastnosti: vysoká aktivita enzýmov: fermentácia na kyslú xylózu, syntéza plazmakoagulázy, fibrinolyzín, hemolyzín, lecitináza, sírovodík. Rhamnóza, močovina nefermentuje.

Antigénna štruktúra.

Skupina proteínovo-polysacharidových a lipopolysacharidových antigénov: termostabilný somatický O-antigén a termolabilné kapsulárne V,W antigény. Virulencia baktérií je spojená s W antigénom. Produkuje faktory patogenity: fibrinolyzín, plazmakoaguláza, endotoxín, exotoxín, kapsula, antigény V, W.

Odolnosť: citlivé na antibiotiká (najmä streptomycín), nestabilné voči prostrediu pri vysokých teplotách.

patogénne vlastnosti.

Má patogénny potenciál, potláča funkcie fagocytárny systém, potláča oxidačný vzplanutie vo fagocytoch a voľne sa v nich množí. Faktory patogenity sú kontrolované tromi triedami plazmidov. V patogenéze existujú tri hlavné štádiá - lymfogénny drift, bakteriémia, generalizovaná septikémia. Majú adhezíny a invazíny, proteíny s nízkou molekulovou hmotnosťou (inhibujú baktericídne faktory), enterotoxín. Niektoré faktory sú kontrolované virulentnými plazmidmi.

Klinické príznaky: Inkubačná doba je niekoľko hodín až 8 dní. Rozlišujte lokálne - koža-bubonic, bubonic; externe diseminované - primárne pľúcne, sekundárne pľúcne a črevné; generalizované - primárne septické, sekundárne septické formy moru. Regionálna lymfadenopatia, enterokolitída, reaktívna artritída, spondylitída, horúčka.

Epidemiológia: Mor je klasická prírodná ohnisková zoonóza voľne žijúcich zvierat. Hlavnými prenášačmi v prírode sú svište, sysle, v mestských podmienkach - potkany. Pri prenose patogénu - blchy zvierat, ktoré môžu infikovať človeka.

Imunita: bunkovo-humorálne, obmedzené trvaním a intenzitou.

Mikrobiologická diagnostika:

Bakterioskopické vyšetrenie. Z testovaného materiálu sa pripravia nátery zafarbené Gramom a vodným roztokom metylénovej modrej. Morové baktérie sú gramnegatívne tyčinky vajcovitého tvaru. bakteriologický výskum. Testovaný materiál sa naočkoval na platne s výživným agarom. Kultúry sa inkubujú pri 25 °C. Primárna štúdia plodín sa uskutočňuje po 10 hodinách. V tomto čase sa objavujú kolónie, ktoré sú tvorené virulentnými R-formami. Nízke a avirulentné baktérie tvoria kolónie v tvare S. Identifikácia čistej kultúry sa uskutočňuje podľa morfológie bakteriálnych buniek, charakteru rastu, antigénnych a biochemických vlastností, citlivosti na špecifický fág a biotestu.

Baktérie tvoria film na bujóne; fermentovať veľa cukrov na kyselinu, netvoriť indol, neskvapalňovať želatínu. Obsahujú skupinový termostabilný somatický antigén a špecifický termolabilný kapsulárny antigén.

Biotest. Vykonáva sa na izoláciu čistej kultúry z materiálu kontaminovaného cudzou mikroflórou. Najcitlivejšie laboratórne zvieratá sú morčatá, ktorým sa materiál aplikuje subkutánne. Intraperitoneálne sa materiál vstrekuje, ak nie je kontaminovaný inými baktériami. Po smrti zvierat sa zaznamenajú patologické zmeny v orgánoch a vykoná sa bakteriologické vyšetrenie.

Expresné metódy laboratórnej diagnostiky:

2.RPGA - na detekciu bakteriálnych antigénov v materiáli pomocou štandardného antimorového séra, ktorého protilátky sú nanesené na erytrocyty.

Liečba: antibiotiká - streptomycín, tetracyklínové lieky.

Prevencia:špecifická profylaxia – živá atenuovaná vakcína proti EV moru. Na perorálne podanie je dostupná suchá tabletová vakcína. Na posúdenie imunity voči moru (prirodzená postinfekcia a vakcína) možno použiť intradermálny alergický test s pestínom.

Morový bakteriofág– pri identifikácii Y. pestis.

Suchá vakcína proti moru - sušená živá kultúra vakcinačného kmeňa EV Y. pestis, používaná na prevenciu moru.

Mikrobiológia úplavice

Dyzentéria je infekčné ochorenie charakterizované všeobecnou intoxikáciou tela, hnačkou a zvláštnou léziou sliznice hrubého čreva. Ide o jedno z najčastejších akútnych črevných ochorení na svete. Choroba je známa už od staroveku pod názvom "krvavá hnačka", ale jej povaha sa ukázala byť iná. V roku 1875 ruský vedec F. A. Lesh izoloval amébu od pacienta s krvavou hnačkou Entamoeba histolytica, v nasledujúcich 15 rokoch sa ustálila samostatnosť tohto ochorenia, pre ktoré sa zachoval názov amébóza.

Pôvodcami vlastnej dyzentérie je veľká skupina biologicky podobných baktérií združených v rode Shigella. Patogén prvýkrát objavili v roku 1888 A. Chantemes a F. Vidal; v roku 1891 ju opísal A. V. Grigoriev a v roku 1898 K. Shiga pomocou séra, ktoré dostal od pacienta, identifikoval patogén u 34 pacientov s úplavicou, čím napokon dokázal etiologickú úlohu tejto baktérie. V nasledujúcich rokoch však boli objavení aj ďalší pôvodcovia dyzentérie: v roku 1900 - S. Flexner, v roku 1915 - K. Sonne, v roku 1917 - K. Stutzer a K. Schmitz, v roku 1932 - J. Boyd , v roku 1934 - D. Large, v roku 1943 - A. Sachs. V súčasnosti rod Shigella zahŕňa viac ako 40 sérotypov. Všetko sú to krátke nepohyblivé gramnegatívne tyčinky, ktoré netvoria spóry a kapsuly, ktoré dobre rastú na bežných živných médiách, nerastú na hladovom médiu s citrátom alebo malonátom ako jediným zdrojom uhlíka; netvoria H 2 S, nemajú ureázu; Voges-Proskauerova reakcia je negatívna; glukóza a niektoré ďalšie uhľohydráty sa fermentujú za vzniku kyseliny bez plynu (okrem niektorých biotypov Shigella flexneri: S. manchester a S. newcastle); spravidla nefermentujú laktózu (s výnimkou Shigella Sonne), adonit, salicín a inozitol, neskvapalňujú želatínu, zvyčajne tvoria katalázu, nemajú lyzíndekarboxylázu a fenylalaníndeaminázu. Obsah G + C v DNA je 49 - 53 mol%. Shigella sú fakultatívne anaeróby, teplotné optimum pre rast je 37 °C, nerastú pri teplotách nad 45 °C, optimálne pH média je 6,7 - 7,2. Kolónie na hustých médiách sú okrúhle, konvexné, priesvitné, v prípade disociácie sa vytvárajú hrubé kolónie v tvare R. Rast na BCH vo forme rovnomerného zákalu, drsné formy tvoria zrazeninu. Čerstvo izolované kultúry Sonne Shigella zvyčajne tvoria kolónie dvoch typov: malé okrúhle konvexné (I fáza), veľké ploché (II fáza). Povaha kolónie závisí od prítomnosti (fáza I) alebo neprítomnosti (fáza II) plazmidu s m. m. 120 MD, čo tiež určuje virulenciu Shigella Sonne.

Medzinárodná klasifikácia Shigella je postavená s prihliadnutím na ich biochemické vlastnosti (manitol-nefermentujúca, manitol-fermentujúca, pomaly laktózu-fermentujúca Shigella) a vlastnosti antigénnej štruktúry (tabuľka 37).

V Shigella sa našli O-antigény rôznej špecificity: spoločné pre túto rodinu Enterobacteriaceae generické, druhovo, skupinovo a typovo špecifické, ako aj K-antigény; Nemajú H antigény.

Tabuľka 37

Klasifikácia baktérií rodu Shigella

Klasifikácia berie do úvahy iba skupinovo a typovo špecifické O-antigény. Podľa týchto vlastností je Shigellaďalej rozdelené do 4 podskupín alebo 4 druhov a zahŕňa 44 sérotypov. V podskupine A (druh Shigella dysenteriae) zahŕňa shigelly, ktoré nefermentujú manitol. Druh zahŕňa 12 sérotypov (1 - 12). Každý sérotyp má svoj vlastný špecifický typ antigénu; antigénne vzťahy medzi sérotypmi, ako aj s inými typmi šigel, sú slabo exprimované. Do podskupiny B (typ Shigella flexneri) patrí Shigella, zvyčajne fermentujúci manitol. Shigella tohto druhu sú si navzájom sérologicky príbuzné: obsahujú typovo špecifické antigény (I - VI), podľa ktorých sa delia na sérotypy (1 - 6), a skupinové antigény, ktoré sa v každom sérotype nachádzajú v rôznom zložení. a podľa ktorej sa sérotypy delia na subsérotypy. Okrem toho tento druh zahŕňa dva antigénne varianty X a Y, ktoré nemajú typické antigény, líšia sa súbormi skupinových antigénov. sérotyp S. flexneri 6 nemá subsérotypy, ale delí sa na 3 biochemické typy podľa charakteristík fermentácie glukózy, manitolu a dulcitu (tabuľka 38).

Tabuľka 38

Biotypy S. flexneri 6

Poznámka. K - fermentácia s tvorbou iba kyseliny; KG - fermentácia s tvorbou kyseliny a plynu; (-) - bez fermentácie.

Lipopolysacharidový antigén O vo všetkých Shigella Flexner obsahuje ako hlavnú primárnu štruktúru skupinový antigén 3, 4, jeho syntéza je riadená chromozomálnym génom lokalizovaným v blízkosti his-lokusu. Typovo špecifické antigény I, II, IV, V a skupinové antigény 6, 7, 8 sú výsledkom modifikácie antigénov 3, 4 (glykozylácia alebo acetylácia) a sú určené génmi zodpovedajúcich konvertujúcich profágov, integračným miestom ktorý sa nachádza v lac-pro oblasti chromozómu Shigella.

Objavil sa na území krajiny v 80. rokoch. 20. storočie a široko používaný nový subsérotyp S. flexneri 4(IV:7, 8) sa líši od subsérotypu 4a (IV:3, 4) a 4b (IV:3, 4, 6), vznikol z variantu S. flexneri Y(IV: 3, 4) v dôsledku lyzogenizácie jeho konvertujúcimi profágmi IV a 7, 8.

Do podskupiny C (druh Shigella boydii) patrí Shigella, zvyčajne fermentujúci manitol. Členovia skupiny sú od seba sérologicky odlišní. Antigénne vzťahy v rámci druhu sú slabo vyjadrené. Tento druh zahŕňa 18 sérotypov (1 - 18), z ktorých každý má svoj vlastný hlavný typ antigénu.

V podskupine D (druh Shigella sonnei) zahŕňa Shigella, ktorá zvyčajne fermentuje manitol a je schopná pomaly (po 24 hodinách inkubácie a neskôr) fermentovať laktózu a sacharózu. vyhliadka S. sonnei Zahŕňa jeden sérotyp, avšak kolónie fázy I a II majú svoje vlastné typovo špecifické antigény. Na vnútrodruhovú klasifikáciu Sonnovej Shigelly boli navrhnuté dve metódy:

1) ich rozdelenie na 14 biochemických typov a podtypov podľa ich schopnosti fermentovať maltózu, ramnózu a xylózu; 2) rozdelenie na typy fágov podľa citlivosti na súbor zodpovedajúcich fágov.

Tieto typizačné metódy majú hlavne epidemiologický význam. Okrem toho, Sonneova shigella a Flexnerova shigella sú podrobené typizácii na rovnaký účel vďaka schopnosti syntetizovať špecifické kolicíny (kolicinogenotypizácia) a citlivosti na známe kolicíny (kolicinotypizácia). Na určenie typu kolicínov produkovaných shigellami J. Abbott a R. Shannon navrhli súbory typických a indikátorových kmeňov shigel a na stanovenie citlivosti shigella na známe typy kolicínov súbor referenčných kolicinogénnych kmeňov od P. Fredericka. sa používa.

odpor. Shigella má pomerne vysokú odolnosť voči environmentálnym faktorom. Prežijú na bavlnenej tkanine a na papieri až 30-36 dní, v sušených výkaloch - až 4-5 mesiacov, v pôde - až 3-4 mesiace, vo vode - od 0,5 do 3 mesiacov, na ovocí a zelenine - do 2 týždňov, v mlieku a mliečnych výrobkoch - až niekoľko týždňov; pri teplote 60 °C odumierajú za 15 - 20 minút. Citlivý na roztoky chlóramínu, aktívny chlór a iné dezinfekčné prostriedky.

faktory patogénnosti. Najdôležitejšou biologickou vlastnosťou Shigella, ktorá určuje ich patogenitu, je schopnosť napádať epitelové bunky, množiť sa v nich a spôsobiť ich smrť. Tento účinok možno zistiť pomocou keratokonjunktiválneho testu (zavedenie jednej slučky kultúry Shigella (2–3 miliardy baktérií) pod spodné viečko morčiatka spôsobí rozvoj seróznej purulentnej keratokonjunktivitídy, ako aj infekciou buniek. kultúry (cytotoxický účinok) alebo kuracích embryí (ich smrť), alebo intranazálne u bielych myší (vývoj pneumónie). Hlavné faktory patogenity shigelly možno rozdeliť do troch skupín:

1) faktory, ktoré určujú interakciu s epitelom sliznice;

2) faktory, ktoré poskytujú odolnosť voči humorálnym a bunkovým obranným mechanizmom makroorganizmu a schopnosť Shigella množiť sa v jeho bunkách;

3) schopnosť produkovať toxíny a toxické produkty, ktoré určujú vývoj skutočného patologického procesu.

Prvá skupina zahŕňa adhézne a kolonizačné faktory: ich úlohu zohrávajú pili, proteíny vonkajšej membrány a LPS. Enzýmy ničiace hlien, ako je neuraminidáza, hyaluronidáza a mucináza, podporujú adhéziu a kolonizáciu. Do druhej skupiny patria invázne faktory, ktoré podporujú penetráciu Shigella do enterocytov a ich reprodukciu v nich a v makrofágoch so súčasným prejavom cytotoxického a (alebo) enterotoxického účinku. Tieto vlastnosti sú riadené génmi plazmidu s m. m. 140 MD (kóduje syntézu proteínov vonkajšej membrány, ktoré spôsobujú inváziu) a chromozomálnymi génmi Shigella: kcp A (spôsobuje keratokonjunktivitídu), cyt (zodpovedný za deštrukciu buniek), ako aj iné zatiaľ neidentifikované gény. Ochranu Shigella pred fagocytózou zabezpečuje povrchový K-antigén, antigény 3, 4 a lipopolysacharid. Okrem toho má Shigella endotoxín lipid A imunosupresívny účinok: potláča aktivitu imunitných pamäťových buniek.

Tretia skupina faktorov patogenity zahŕňa endotoxín a dva typy exotoxínov vyskytujúcich sa v Shigelle – Shiga exotoxíny a Shiga-like exotoxíny (SLT-I a SLT-II), ktorých cytotoxické vlastnosti sú najvýraznejšie v S. dysenteriae 1. Shiga- a Shiga podobné toxíny nachádzajúce sa aj v iných sérotypoch S. dysenteriae, tiež sa tvoria S. flexneri, S. sonnei, S. boydii, EHEC a niektoré salmonely. Syntéza týchto toxínov je riadená toxovými génmi konvertujúcich fágov. Enterotoxíny typu LT sa našli u Flexnera, Sonneho a Boyda Shigella. Syntéza LT v nich je riadená plazmidovými génmi. Enterotoxín stimuluje aktivitu adenylátcyklázy a je zodpovedný za rozvoj hnačky. Shiga toxín alebo neurotoxín nereaguje s adenylátcyklázovým systémom, ale má priamy cytotoxický účinok. Shiga a Shiga podobné toxíny (SLT-I a SLT-II) majú molekulovú hmotnosť 70 kD a pozostávajú z podjednotiek A a B (posledná z 5 rovnakých malých podjednotiek). Receptorom pre toxíny je glykolipid bunkovej membrány.

Virulencia Shigella Sonne tiež závisí od plazmidu s m. m. 120 MD. Riadi syntézu asi 40 vonkajších membránových polypeptidov, z ktorých sedem je spojených s virulenciou. Shigella Sonne s týmto plazmidom tvoria kolónie fázy I a sú virulentné. Kultúry, ktoré stratili plazmid, tvoria kolónie fázy II a nemajú virulenciu. Plazmidy s MM 120 - 140 MD sa našli u Shigelly Flexnerovej a Boyda. Lipopolysacharid Shigella je silný endotoxín.

Charakteristiky epidemiológie. Jediným zdrojom nákazy sú ľudia. Žiadne zviera v prírode netrpí úplavicou. V experimentálnych podmienkach sa dyzentéria môže reprodukovať iba u opíc. Spôsob infekcie je fekálno-orálny. Spôsoby prenosu - voda (prevláda u Shigella Flexner), potrava, obzvlášť dôležitú úlohu zohráva mlieko a mliečne výrobky (prevládajúca cesta infekcie u Shigella Sonne), a kontaktná domácnosť, najmä u druhu S. dysenteriae.

Charakteristickým znakom epidemiológie dyzentérie je zmena v druhovom zložení patogénov, ako aj biotypov Sonne a sérotypov Flexner v určitých regiónoch. Napríklad do konca 30. rokov 20. storočia 20. storočie zdielať S. dysenteriae 1 tvoril až 30 - 40 % všetkých prípadov dyzentérie a potom sa tento sérotyp začal vyskytovať čoraz menej a takmer vymizol. Avšak v 60. – 80. rokoch 20. storočia. S. dysenteriae sa znovu objavila na historickej scéne a spôsobila sériu epidémií, ktoré viedli k vytvoreniu troch jej hyperendemických ohnísk - v Strednej Amerike, Strednej Afrike a Južnej Ázii (India, Pakistan, Bangladéš a ďalšie krajiny). Príčiny zmeny v druhovom zložení patogénov dyzentérie sú pravdepodobne spojené so zmenou kolektívnej imunity a so zmenou vlastností baktérií dyzentérie. Najmä návratnosť S. dysenteriae 1 a jeho široká distribúcia, ktorá spôsobila vznik hyperendemických ložísk úplavice, je spojená s jej získavaním plazmidov, čo spôsobilo mnohopočetné liekovej rezistencie a zvýšenú virulenciu.

Charakteristiky patogenézy a kliniky. Inkubačná doba dyzentérie je 2-5 dní, niekedy menej ako jeden deň. Tvorenie infekčné zameranie v sliznici zostupnej časti hrubého čreva (esovina a konečník), kam preniká pôvodca dyzentérie, je cyklický: adhézia, kolonizácia, zavedenie shigelly do cytoplazmy enterocytov, ich intracelulárna reprodukcia, deštrukcia a odmietnutie epitelových buniek, uvoľňovanie patogénov do črevného lúmenu; potom začína ďalší cyklus - adhézia, kolonizácia atď. Intenzita cyklov závisí od koncentrácie patogénov v parietálnej vrstve sliznice. V dôsledku opakovaných cyklov zápalové zameranie rastie, výsledné vredy, spájajúce, zvyšujú expozíciu črevnej steny, v dôsledku čoho sa v stolici objavuje krv, mukopurulentné hrudky, polymorfonukleárne leukocyty. Cytotoxíny (SLT-I a SLT-II) spôsobujú deštrukciu buniek, enterotoxín - hnačka, endotoxíny - celková intoxikácia. Klinika dyzentérie je do značnej miery daná tým, aký typ exotoxínov patogén vo väčšej miere produkuje, mierou jeho alergénneho účinku a imunitným stavom organizmu. Mnohé otázky patogenézy dyzentérie však zostávajú nevysvetlené, najmä: priebeh dyzentérie u detí prvých dvoch rokov života, dôvody prechodu akútnej dyzentérie na chronickú, význam senzibilizácie, mechanizmus lokálnej imunity črevnej sliznice a pod. Najtypickejšími klinickými prejavmi dyzentérie sú hnačky, časté nutkania: v ťažkých prípadoch až 50 a viackrát denne, tenesmy (bolestivé kŕče konečníka) a celková intoxikácia. Charakter stolice je určený stupňom poškodenia hrubého čreva. Najťažšia dyzentéria je spôsobená S. dysenteriae 1, najľahšie - Sonneho úplavica.

Postinfekčná imunita. Ako ukázali pozorovania na opiciach, po prekonaní úplavice zostáva silná a pomerne dlhodobá imunita. Spôsobujú ho antimikrobiálne protilátky, antitoxíny, zvýšená aktivita makrofágov a T-lymfocytov. Významnú úlohu zohráva lokálna imunita črevnej sliznice, sprostredkovaná IgAs. Imunita je však typovo špecifická, silná skrížená imunita sa nevyskytuje.

Laboratórna diagnostika. Hlavná metóda je bakteriologická. Materiálom na štúdium sú výkaly. Schéma izolácie patogénov: očkovanie na diferenciálne diagnostické médiá Endo a Ploskirev (paralelne na obohacovacie médium, po ktorom nasleduje očkovanie na médium Endo a Ploskirev) na izoláciu izolovaných kolónií, získanie čistej kultúry, štúdium jej biochemických vlastností a zohľadnenie identifikácia pomocou polyvalentných a monovalentných diagnostických aglutinačných sér. Vyrábajú sa nasledujúce komerčné séra.

1. Shigella, ktoré nefermentujú manitol:

do S. dysenteriae 1 a 2

do S. dysenteriae 3.–7(polyvalentné a monovalentné),

do S. dysenteriae 8 – 12(polyvalentné a monovalentné).

2. Na shigella fermentujúci manitol:

na typické antigény S. flexneri I, II, III, IV, V, VI,

na zoskupenie antigénov S. flexneri 3, 4, 6, 7, 8- polyvalentný,

na antigény S.boydii 1.–18(polyvalentné a monovalentné), na antigény S. sonnei I fáza, II fáza,

na antigény S. flexneri I–VI+ S. sonnei- polyvalentný.

Na rýchlu identifikáciu Shigelly sa odporúča nasledujúca metóda: podozrivá kolónia (laktosonegatívna na médiu Endo) sa subkultivuje na médiu TSI (eng. trojitý cukor železo) - trojcukrový agar (glukóza, laktóza, sacharóza) so železom na stanovenie produkcie H 2 S; alebo na médiu obsahujúcom glukózu, laktózu, sacharózu, železo a močovinu. Každý organizmus, ktorý rozkladá močovinu po 4 až 6 hodinách inkubácie, s najväčšou pravdepodobnosťou patrí do rodu Proteus a môžu byť vylúčené. Mikroorganizmus produkujúci H2S alebo majúci ureázu alebo produkujúci kyselinu v kĺbe (fermentuje laktózu alebo sacharózu) možno vylúčiť, hoci kmene produkujúce H2S by sa mali skúmať ako možní členovia rodu Salmonella. Vo všetkých ostatných prípadoch by sa kultúra pestovaná na týchto médiách mala preskúmať a ak fermentuje glukózu (zmena farby stĺpca), izolovať v čistej forme. Zároveň sa dá skúmať aglutinačným testom na skle s príslušným antisérom rodu Shigella. V prípade potreby sa vykonajú ďalšie biochemické testy na kontrolu príslušnosti k rodu Shigella a študijnú mobilitu.

Na detekciu antigénov v krvi (aj ako súčasť CEC), moči a stolici možno použiť nasledujúce metódy: RPHA, RSK, koagulačná reakcia (v moči a stolici), IFM, RAGA (v krvnom sére). Tieto metódy sú vysoko účinné, špecifické a vhodné na včasnú diagnostiku.

Na sérologickú diagnostiku možno použiť: RPGA s príslušnými erytrocytovými diagnostikami, imunofluorescenčnú metódu (v nepriamej modifikácii), Coombsovu metódu (stanovenie titra neúplných protilátok). Diagnostický význam má aj alergický test s úplavicou (roztok proteínových frakcií Shigelly Flexner a Sonne). Reakcia sa berie do úvahy po 24 hodinách.Považuje sa za pozitívnu v prítomnosti hyperémie a infiltrácie s priemerom 10-20 mm.

Liečba. Hlavná pozornosť je venovaná obnove normálneho metabolizmu voda-soľ, racionálnej výžive, detoxikácii, racionálnej antibiotickej terapii (s prihliadnutím na citlivosť patogénu na antibiotiká). Dobrý účinok sa dosiahne skorým použitím polyvalentného dyzenterického bakteriofága, najmä tabliet s pektínovým povlakom, ktorý chráni fág pred pôsobením HCl žalúdočnej šťavy; v tenkom čreve sa pektín rozpúšťa, fágy sa uvoľňujú a prejavujú svoju činnosť. Na profylaktické účely by sa mal fág podávať aspoň raz za tri dni (obdobie jeho prežívania v čreve).

Problém špecifickej prevencie. Na vytvorenie umelej imunity proti úplavici boli použité rôzne vakcíny: z usmrtených baktérií, chemikálie, alkohol, ale všetky sa ukázali ako neúčinné a boli prerušené. Vakcíny proti Flexnerovej úplavici boli vytvorené zo živej (mutantnej, na streptomycíne závislej) Shigelly Flexnerovej; ribozomálne vakcíny, ale tiež neboli široko používané. Preto problém špecifickej prevencie dyzentérie zostáva nevyriešený. Hlavným spôsobom boja proti úplavici je zlepšenie vodovodného a kanalizačného systému, zabezpečenie prísnych hygienických a hygienických režimov v potravinárskych podnikoch, najmä v mliekarenskom priemysle, v zariadeniach starostlivosti o deti, na verejných miestach a pri osobnej hygiene.

UDC 616.935-074(047)

A.M.Sadykovej

Kazašská národná lekárska univerzita

pomenovaný po S.D. Asfendiyarov, Almaty

Klinika infekčných a tropických chorôb

Spoľahlivá diagnostika dyzentérie je jednou z naliehavých úloh dohľadu nad AEI. Presná diagnóza bacilárnej dyzentérie je dôležitosti za právo a včasná liečba pacienta a na realizáciu potrebných protiepidemických opatrení. Údaje uvedené v prehľade ukazujú, že vzhľadom na rozšírenú prevalenciu dyzentérie, nedostatok citlivosti a neskorý vzhľad pozitívne výsledky mnohých diagnostických metód, je vhodné rozvíjať diagnostický potenciál detekcie tejto infekcie.

Kľúčové slová: diagnostika, dyzentéria, metóda lymfocytov viažucich antigén.

Rozpoznanie infekcie šigelózou v klinickej praxi naráža na značné ťažkosti v dôsledku objektívnych faktorov, medzi ktoré patrí klinický patomorfizmus dyzentérie, zvýšenie počtu atypické formy choroby, existencia značného počtu chorôb infekčnej a neinfekčnej povahy, ktoré majú klinické prejavy podobné úplavici. Pod diagnózou „klinická dyzentéria“ sa v polovici prípadov skrývajú nerozpoznané ochorenia inej etiológie.

Najväčšie ťažkosti vznikajú pred lekárom pri vstupnom vyšetrení pacienta pred získaním výsledkov paraklinických diagnostických metód. Rozpoznanie úplavice je tiež ťažké v prítomnosti sprievodné ochorenia gastrointestinálny trakt.

Od začiatku používania etiologickej laboratórnej diagnostiky dyzentérie bolo navrhnutých a testovaných pomerne veľa metód. Existuje mnoho klasifikácií metód na etiologickú diagnostiku infekcií. Metodologicky je klasifikácia navrhnutá B.V. Trest. Čo sa týka diagnostiky dyzentérie, zásady metodologicky správneho triedenia využil B.V. Karalník, N.M. Nurkina, B.K. Erkinbeková..

Z laboratórnych metód diagnostiky dyzentérie sú známe bakteriologické (izolácia a identifikácia patogénu) a imunologické. Posledne uvedené zahŕňajú imunologické metódy in vivo (alergologický test Zuverkalov) a in vitro. Imunologické metódy in vitro majú oproti Zuverkalovmu testu jednu nepochybnú výhodu - nie sú spojené so zavedením cudzích antigénov do tela.

Väčšina výskumníkov stále verí, že bakteriologický výskum, ktorý zahŕňa izoláciu v čistá kultúra pôvodcu ochorenia s jeho následnou identifikáciou podľa morfologických, biochemických a antigénnych charakteristík, je najspoľahlivejšou metódou diagnostiky infekcie šigelózou. Frekvencia izolácie shigelly z výkalov pacientov s klinickou diagnózou "akútna dyzentéria" sa podľa rôznych autorov pohybuje od 30,8% do 84,7% a dokonca 91,1%. Takýto významný rozsah u rôznych autorov závisí nielen od objektívnych faktorov ovplyvňujúcich efektivitu bakteriologického vyšetrenia, ale aj od dôkladnosti diagnostiky (alebo vylúčenia) „klinickej dyzentérie“. Účinnosť bakteriologického výskumu je ovplyvnená takými objektívne faktory, ako znaky priebehu ochorenia, spôsob odberu a dodávky materiálu do laboratória, kvalita živných médií, kvalifikácia personálu, načasovanie kontaktu pacienta so zdravotníckymi pracovníkmi, použitie antimikrobiálne látky pred odberom materiálu na výskum. kvantitatívne mikrobiologický výskum stolice pri akútnej dyzentérii ukazuje, že pri akýchkoľvek klinických formách infekcie dochádza k najmasívnejšiemu uvoľňovaniu patogénov v prvých dňoch ochorenia a počnúc 6. a najmä 10. dňom ochorenia sa koncentrácia šigely v výkalov je výrazne znížená. T.A. Avdeeva zistil, že nízky obsah shigelly a prudká prevaha nepatogénnych mikroorganizmov vo výkaloch prakticky vylučujú možnosť bakteriologickej detekcie baktérií dyzentérie.

Je známe, že bakteriologické potvrdenie infekcie šigelózou je najčastejšie úspešné pri vyšetrovaní pacientov v prvých dňoch ochorenia – koprodulácia patogénu sa vo veľkej väčšine prípadov najskôr izoluje počas prvej štúdie. Pozitívne výsledky bakteriologického vyšetrenia sú zaznamenané iba v prvých 3 dňoch ochorenia u 45 - 49% pacientov, v prvých 7 dňoch - u 75%. Tillet a Thomas tiež považujú načasovanie vyšetrenia pacientov za dôležitý faktor pri určovaní účinnosti bakteriologickej metódy na diagnostiku dyzentérie. Podľa T.A. Avdeeva, v prvých dňoch choroby sa najintenzívnejšie uvoľňovanie patogénu pozoruje pri dyzentérii Sonne, menej intenzívne pri dyzentérii Flexner a najmenej pri dyzentérii Flexner VI; v neskorších štádiách ochorenia sa najvyššia koncentrácia najdlhšie udržiava pri Flexnerovej dyzentérii, menej dlho - Shigella Sonne a najmenej dlho - Shigella Flexner VI.

Hoci je teda bakteriologické vyšetrenie výkalov najspoľahlivejšou metódou na diagnostikovanie infekcie šigelózou, vyššie uvedené obmedzenia účinnosti sú významnými nevýhodami. Dôležité je tiež poukázať na obmedzenia včasnej diagnostiky bakteriologickou metódou, pri ktorej je trvanie rozboru 3-4 dni. V súvislosti s týmito okolnosťami má veľký praktický význam využitie ďalších metód laboratórnej diagnostiky. Ďalšia mikrobiologická metóda diagnostiky dyzentérie je tiež založená na detekcii živých Shigella. Ide o reakciu zvýšenia fágového titra (RNF) založenú na schopnosti špecifických fágov množiť sa výlučne v prítomnosti homológnych živých mikroorganizmov. Zvýšenie indikátorového fágového titra indikuje prítomnosť zodpovedajúcich mikróbov v médiu. Diagnostická hodnota RNF pri infekcii šigelózou bola testovaná B.I. Khaimzon, T.S. Vilkomirskaya. RNF má pomerne vysokú citlivosť. Mapovanie minimálna koncentrácia Shigely v stolici zachytené bakteriologickou metódou (12,5 tisíc baktérií v 1 ml) a RNF (3,0 - 6,2 tisíc) naznačujú nadradenosť RNF.

Keďže frekvencia pozitívnych výsledkov RNF je priamo závislá od stupňa kontaminácie výkalov, použitie metódy dáva najväčší efekt aj v prvých dňoch ochorenia a pri ťažších formách infekčného procesu. Vyššia citlivosť metódy však spôsobuje jej osobitné výhody oproti bakteriologickému vyšetreniu v neskorých štádiách ochorenia, ako aj pri vyšetrovaní pacientov s miernymi, asymptomatickými a subklinickými formami infekcie, s nízkou koncentráciou patogénu v stolica. RNF sa tiež používa pri vyšetrovaní pacientov užívajúcich antibakteriálne látky, pretože tieto výrazne znižujú frekvenciu pozitívnych výsledkov bakteriologickej metódy výskumu, ale v oveľa menšej miere ovplyvňujú účinnosť RNF. Citlivosť RNF nie je absolútna v dôsledku existencie kmeňov shigella odolných voči fágom: podiel kmeňov odolných voči fágom sa môže meniť vo veľmi širokom rozmedzí - od 1 % do 34,5 %.

Veľkou výhodou RNF je jej vysoká špecifickosť. Pri vyšetrovaní zdravých ľudí, ako aj pacientov s infekčnými ochoreniami inej etiológie boli výsledky pozitívnej reakcie pozorované len v 1,5 % prípadov. RNF je cenná doplnková metóda na diagnostiku infekcie šigelózou. Dnes sa však táto metóda používa zriedkavo kvôli jej technickej zložitosti. Ďalšie metódy sú imunologické. S ich pomocou sa zaregistruje špecifická imunitná odpoveď vzhľadom na patogén alebo sa imunologickými metódami stanovia antigény patogénu.

Vzhľadom na závažnosť procesov špecifickej infekčnej alergie pri infekcii šigelózou boli najskôr použité alergologické diagnostické metódy, medzi ktoré patrí intradermálny alergický test s dyzentériou (VPD). Liek "dyzentéria", čo je špecifický alergén Shigella zbavený toxických látok, získal D.A. Tsuverkalov a prvýkrát bol použitý v klinických podmienkach pri zostavovaní intradermálneho testu L.K. Korovitského v roku 1954. Podľa E.V. Golyusova a M.Z. Trokhimenko, v prítomnosti predchádzajúcej akútnej dyzentérie alebo pridružených alergických ochorení s kožnými prejavmi (ekzém, žihľavka atď.). pozitívne výsledky VPD sa pozorujú oveľa častejšie (paraalergia). Rozbor výsledkov VPD v r rôzne obdobia akútna dyzentéria ukazuje, že špecifická alergia sa vyskytuje už v prvých dňoch ochorenia, maximálnu závažnosť dosiahne na 7. - 15. deň a potom postupne odznie. Pozitívne výsledky reakcie boli získané pri vyšetrení zdravých ľudí vo veku 16 až 60 rokov v 15 - 20 % prípadov a vo veku 3 až 7 rokov - v 12,5 % prípadov. Ešte častejšie boli nešpecifické pozitívne výsledky VPD pozorované u pacientov s gastrointestinálnymi ochoreniami – v 20 – 36 % prípadov. Zavedenie alergénu bolo sprevádzané rozvojom lokálnej reakcie u 35,5 – 43,0 % pacientov so salmonelózou, u 74 – 87 % pacientov s coli-0124-enterokolitídou. Vážnym argumentom proti širokému používaniu VPD v klinickej praxi bol jej alergénny účinok na organizmus. Vzhľadom na vyššie uvedené môžeme povedať, že táto metóda nie je príliš špecifická. Tsuverkalovov test tiež nie je druhovo špecifický. Výsledky pozitívnych reakcií boli rovnako časté pri rôznych etiologických formách dyzentérie.

Okrem VPD sa využívali aj iné diagnostické reakcie s rôznou mierou platnosti, považované za alergické, napr. reakcia alergénovej leukocytolýzy (ALC), ktorej podstatou bolo špecifické poškodenie alebo úplná deštrukcia aktívne alebo pasívne senzibilizovaných neutrofilov. po kontakte s príslušnou AG. Túto reakciu však nemožno pripísať metódam včasnej diagnostiky, pretože maximálna frekvencia pozitívnych výsledkov bola pozorovaná v 6. až 9. deň choroby a predstavovala 69%. Bola tiež navrhnutá alergénová leukergia (ALE) reakcia. Je založená na schopnosti leukocytov senzibilizovaného organizmu aglomerovať sa pri vystavení homologickému alergénu (úplavica). Vzhľadom na nedostatok dôkazov o presných mechanizmoch takýchto testov, nedostatočnú zhodu ich výsledkov s etiológiou ochorenia sa tieto metódy po krátkom období ich používania v ZSSR následne nerozšírili.

Detekcia antigénov Shigella v tele je diagnosticky ekvivalentná izolácii patogénu. Hlavné výhody metód na detekciu antigénov oproti bakteriologickému vyšetreniu, ktoré ich odôvodňujú klinická aplikácia, je možnosť detekcie nielen životaschopných mikroorganizmov, ale aj mŕtvych a dokonca zničených, ktoré získava zvláštny význam pri vyšetrovaní pacientov počas antibiotickej liečby alebo krátko po nej.

Jednou z najlepších metód na rýchlu diagnostiku dyzentérie bola imunofluorescenčná štúdia výkalov (Koonsova metóda). Podstata metódy spočíva v detekcii šigel ošetrením testovaného materiálu sérom obsahujúcim špecifické protilátky značené fluorochrómmi. Kombináciu značených protilátok s homológnymi antigénmi sprevádza špecifická žiara komplexov detegovaných vo fluorescenčnom mikroskope. V praxi sa používajú dva hlavné varianty Koonsovej metódy: priama, v ktorej sa používa sérum obsahujúce značené protilátky proti antigénom Shigella, a nepriama (dvojstupňová) využívajúca v prvej fáze sérum neznačené fluorochrómom (alebo globulínovou frakciou). anti-shigella séra). V druhom stupni sa sérum značené fluorochrómom používa proti globulínom séra proti shigelóze použitého v prvom stupni. Porovnávacia štúdia diagnostickej hodnoty dvoch variantov imunofluorescenčnej metódy neodhalila veľké rozdiely v ich špecifickosti a citlivosti. V klinickej praxi je použitie tejto metódy najúčinnejšie pri vyšetrovaní pacientov v skoré termíny ochoreniach, ako aj pri ťažších formách infekcie. Významnou nevýhodou imunofluorescenčnej metódy je jej nedostatočná špecifickosť. Najdôležitejší dôvod nedostatočnou špecifickosťou imunofluorescenčnej reakcie je antigénny vzťah enterobaktérií rôznych rodov. Preto sa táto metóda považuje za indikatívnu pri rozpoznávaní infekcie šigelózou.

Na detekciu antigénov shigely bez mikroskopie sa používajú rôzne reakcie. Tieto metódy umožňujú detekovať antigény patogénov vo výkaloch u 76,5 - 96,0 % pacientov s bakteriologicky potvrdenou dyzentériou, čo svedčí o ich pomerne vysokej citlivosti. Najvhodnejšie je použiť tieto metódy v neskorých štádiách ochorenia. Špecifickosť týchto diagnostických metód väčšina autorov vysoko odhaduje. Avšak F.M. Ivanov, ktorý použil RSK na detekciu antigénov šigelózy vo výkaloch, získal pozitívne výsledky pri vyšetrení zdravých ľudí a pacientov s črevnými infekciami inej etiológie v 13,6% prípadov. Podľa autora je použitie metódy vhodnejšie na detekciu špecifických antigénov v moči, pretože frekvencia nešpecifických pozitívnych reakcií je v druhom prípade oveľa nižšia. Použitie rôznych výskumných metód umožňuje zistiť antigény Shigella v moči veľkej väčšiny pacientov s bakteriologicky potvrdenou dyzentériou. Dynamika vylučovania antigénov v moči má určité znaky - detekcia antigénnych látok je v niektorých prípadoch možná už od prvých dní choroby, ale s najväčšou frekvenciou a stálosťou sa darí na 10-15 deň a dokonca k neskoršiemu dátumu. Podľa B.A. Godovanny et al., podiel pozitívnych výsledkov močových shigella antigénov (RSK) po 10. dni choroby je 77 % (zodpovedajúci údaj pre bakteriologické vyšetrenie stolice je 47 %). V súvislosti s touto okolnosťou má štúdium moču na prítomnosť antigénov patogénov hodnotu cennej doplnkovej metódy pri dyzentérii, predovšetkým za účelom neskorej a retrospektívnej diagnostiky.

Podľa N.M. Nurkina, ak je protilátkové imunoreagens získané z polyklonálnych sér, sú možné pozitívne indikačné výsledky, ak sú vo vzorke prítomné príbuzné antigény. Napríklad pomocou erytrocytárneho diagnostica z vysoko aktívneho séra proti S.flexneri VI sa deteguje aj antigén S.flexneri I-V, keďže Shigella oboch poddruhov majú spoločný druhový antigén. Shigella antigény môžu byť stanovené počas obdobia ochorenia v krvnom sére aj v sekrétoch.

Lee Won Ho a kol. ukázalo sa, že frekvencia detekcie antigénov Shigella a ich koncentrácia v krvi a moči sú vyššie v prvých dňoch ochorenia a že koncentrácia detekovaných antigénov je vyššia pri stredne ťažkom ochorení ako pri miernom ochorení.

CM. Omirbayeva navrhla metódu indikovania antigénu Shigella, založenú na použití formalizovaných erytrocytov ako sorbentu pre antigény zo študovaného fekálneho extraktu, po ktorom nasleduje ich aglutinácia s imunitnými sérami. Hodnotenie špecifickosti tejto metódy si podľa nášho názoru vyžaduje ďalší výskum, keďže fekálne extrakty obsahujú významné množstvá antigény iných baktérií, ktoré nie sú pôvodcom tohto črevného ochorenia.

Množstvo výskumníkov navrhuje enzýmovú imunoanalýzu ako metódu rýchlej diagnostiky akútnej dyzentérie, ktorá je podľa mnohých autorov považovaná za vysoko citlivú a vysoko špecifickú. Zároveň najviac vysoký stupeň antigén sa nachádza v 1-4 dňoch choroby. Napriek zjavným výhodám ELISA, medzi ktoré patrí vysoká citlivosť, možnosť prísneho inštrumentálneho kvantitatívneho účtovania a jednoduchosť nastavenia reakcie, je rozšírené použitie tejto metódy obmedzené kvôli potrebe špeciálneho vybavenia.

Monoklonálne protilátky, imunoglobulínové fragmenty, syntetické protilátky, farbenie striebrom LPS a ďalšie technologické pokroky sa odporúčajú na zvýšenie citlivosti a špecifickosti rôznych sérologických metód detekcie antigénu.

Často nie je možné detegovať antigén infekčného agens ani pri použití vysoko citlivých reakcií na detekciu AG patogénu v biologických substrátoch tela, pretože významná časť antigénnych látok je zjavne v biologickom teste forma imunitných komplexov v tele. Pri vyšetrovaní pacientov s bakteriologicky potvrdenou akútnou dyzentériou boli pozitívne výsledky stanovenia antigénu pomocou CSC zaznamenané podľa niektorých správ len v 18 % prípadov.

T.V. Remneva a kol. navrhnúť použiť ultrazvuk na dezintegráciu komplexov protilátok s časticami patogénu a potom určiť antigén patogénu v CSC za studena. Metóda bola použitá na diagnostiku dyzentérie, ako výskumný materiál boli použité vzorky moču od pacientov s akútnymi črevnými infekciami.

Použitie precipitačnej reakcie na detekciu antigénu pri akútnej dyzentérii nie je opodstatnené pre jej nízku citlivosť a špecifickosť. Domnievame sa, že špecifickosť akejkoľvek metódy na označenie antigénov Shigella môže byť významne zvýšená použitím monoklonálnych protilátok proti Shigella.

Koaglutinačná reakcia je tiež jednou z metód rýchlej diagnostiky šigelózy, ako aj antigénov patogénov radu iných infekcií. Pri šigelóze možno antigény patogénov určiť od prvých dní ochorenia počas akútneho obdobia, ako aj do 1-2 týždňov po ukončení vylučovania baktérií. Výhody koagulačnej reakcie spočívajú v jednoduchosti tvorby diagnostiky, nastavení reakcie, hospodárnosti, rýchlosti, citlivosti a vysokej špecificite.

Pri vykonávaní diagnostiky stanovením antigénov Shigella od samého začiatku ochorenia je podľa mnohých autorov najúčinnejšie vyšetrenie výkalov pacientov. S rozvojom ochorenia klesá možnosť detekcie antigénov Shigella v moči a slinách, hoci sa v stolici nachádzajú takmer s rovnakou frekvenciou ako na začiatku ochorenia. Treba mať na pamäti, že v prvých 3-4 dňoch choroby sa v RPHA skúmajú výkaly na antigén o niečo efektívnejšie. Uprostred choroby sú RPHA a RNAb rovnako účinné a od 7. dňa je RNAb účinnejšia pri hľadaní antigénu Shigella. Tieto vlastnosti sú spôsobené postupnou deštrukciou buniek Shigella a ich antigénov v črevách pacienta v priebehu ochorenia. Antigény Shigella vylučované močom sú relatívne menšie ako antigény v stolici. Preto je vhodné vyšetrovať moč v RNAt. V moči žien, na rozdiel od moču mužov, sa v dôsledku pravdepodobnej fekálnej kontaminácie rovnako často zisťujú antigény Shigella pomocou TPHA a RNAb.

Hoci antigén je signifikantne častejšie (94,5 - 100 %) detegovaný v tých vzorkách trusu, z ktorých je možné izolovať Shigella, ako vo vzorkách, z ktorých Shigella nie je izolovaná (61,8 - 75,8 %), s paralelnými bakteriologickými a sérologickými ( pre antigén) pri štúdiu vzoriek výkalov od pacientov s dyzentériou bola vo všeobecnosti shigella izolovaná len z 28,2 - 40,0 % vzoriek a antigén bol nájdený v 65,9 - 91,5 % vzoriek. Je dôležité zdôrazniť, že druhová špecifickosť detegovaného antigénu vždy zodpovedá špecifickosti sérových protilátok, ktorých titer v dynamike narastá na maximum. Pri zameraní na podmienený diagnostický titer protilátok možno niekedy pozorovať nezrovnalosti v špecifickosti takýchto protilátok a detekovaného antigénu. Tento nesúlad je spôsobený nedostatočnou diagnostickou spoľahlivosťou jediného stanovenia aktivity sérových protilátok. V tomto prípade etiologická diagnóza by mala byť nastavená podľa špecifickosti detegovaného antigénu.

Metóda PCR pre úlohu priamej detekcie príznakov patogénu je blízka metódam indikácie antigénov. Umožňuje určiť DNA patogénu a je založený na princípe prirodzenej replikácie DNA vrátane odvíjania dvojzávitnice DNA, divergencie reťazcov DNA a komplementárnej adície oboch. Replikácia DNA sa nemusí začať v žiadnom bode, ale len v určitých štartovacích blokoch – krátkych dvojvláknových úsekoch. Podstata metódy spočíva v tom, že označením takýmito blokmi segmentu DNA špecifického len pre daný druh (ale nie pre iné druhy) je možné opakovane reprodukovať (amplifikovať) tento konkrétny región. Testovacie systémy založené na princípe amplifikácie DNA vo väčšine prípadov umožňujú odhaliť baktérie a vírusy patogénne pre človeka, a to aj v prípadoch, keď ich nemožno zistiť inými metódami. Špecifickosť testovacích systémov PCR (so správnym výberom primerov špecifických pre taxón, vylúčením falošne pozitívnych výsledkov a absenciou inhibítorov amplifikácie v biologických testoch) v zásade zabraňuje problémom spojeným s krížovo reagujúcimi antigénmi, čím poskytuje veľmi vysokú špecifickosť. Stanovenie sa môže uskutočniť priamo v klinickom materiáli obsahujúcom živý patogén. Ale napriek tomu, že citlivosť PCR môže dosiahnuť matematicky možnú hranicu (detekcia 1 kópie templátu DNA), metóda sa v praxi diagnostiky šigelózy nepoužíva kvôli jej relatívne vysokej cene.

V širokej klinickej praxi sú medzi sérologickými výskumnými metódami najpoužívanejšie metódy založené na stanovení hladiny a dynamiky sérových protilátok proti údajnému pôvodcovi ochorenia.

Niektorí autori stanovili protilátky proti Shigella v koprofiltrátoch. Koproprotilátky sa objavujú oveľa skôr ako protilátky v sére. Aktivita protilátok dosahuje maximum po 9-12 dňoch a do 20-25 dní sa zvyčajne nezistia. R. Laplane a kol., naznačujú, že je to spôsobené deštrukciou protilátok v čreve pôsobením proteolytických enzýmov. Koproprotilátky sa nedajú zistiť u zdravých ľudí.

W. Barksdale a kol., T.H. Nikolaev a kol. uvádzajú zvýšenie účinnosti dešifrovania diagnózy a detekcie rekonvalescentov súčasným stanovením sérových a koproprotilátok.

Detekcia aglutinínov v diagnostických titroch je možná pri bakteriologicky potvrdenej dyzentérii len u 23,3 % pacientov. Obmedzená senzitivita RA sa prejavuje aj v nedostatočne vysokých titroch aglutinínov zistených s jej pomocou. Existujú dôkazy o nerovnakej citlivosti RA pri rôznych etiologických formách infekcie šigelózou. Podľa A.A. Klyucharev, protilátky v titri 1:200 a viac sa pomocou RA detegujú len u 8,3 % pacientov s Flexnerovou dyzentériou a ešte zriedkavejšie so Sonnovou dyzentériou. Pozitívne výsledky reakcie sú nielen častejšie, ale aj vo vyšších titroch sa pozorujú pri dyzentérii Flexner I-V a Flexner VI ako pri dyzentérii Sonne. Pozitívne výsledky RA sa objavujú od konca prvého týždňa ochorenia a najčastejšie sa zaznamenávajú v druhom alebo treťom týždni. Prvých 10 dní choroby predstavuje 39,6 % všetkých výsledkov pozitívnych reakcií. Podľa A.F. Podlevsky et al., aglutiníny v diagnostických titroch sa detegujú v prvom týždni ochorenia u 19% pacientov, v druhom týždni - u 25% a v treťom - u 33% pacientov.

Frekvencia pozitívnych výsledkov RA a výška titrov protilátok zistených s jeho pomocou sú priamo závislé od závažnosti priebehu infekcie šigelózou. Podľa V.P. Zubareva, použitie antibiotickej terapie neznižuje frekvenciu pozitívnych výsledkov RA, avšak pri predpisovaní antibiotík v prvých 3 dňoch ochorenia sa aglutiníny zisťujú v nižších titroch.

RA má obmedzenú špecifickosť. Pri vyšetrovaní zdravých ľudí boli pozitívne výsledky RA dosiahnuté v 12,7% prípadov, v 11,3% prípadov boli pozorované skupinové reakcie. Vzhľadom na antigénny vzťah baktérií Flexner I-V a Flexner VI sa krížové reakcie obzvlášť často pozorujú v zodpovedajúcich etiologických formách infekcie šigelózou.

S príchodom pokročilejších metód sérodiagnostiky infekcie šigelózou RA postupne strácala na význame. Diagnostický význam aglutinačnej reakcie („Vidalova dyzentérna reakcia“) (RA) pri dyzentérii odhadujú rôzni výskumníci nejednoznačne, avšak výsledky prác väčšiny autorov poukazujú na obmedzenú senzitivitu a špecificitu tejto metódy.

Najčastejšie sa na stanovenie protilátok používa nepriama (pasívna) hemaglutinačná reakcia (RPHA). Podrobné štúdie diagnostickej hodnoty pasívnej hemaglutinačnej reakcie (RPHA) pri infekcii šigelózou vykonal A.V. Lullu, L. M. Schmuter, T. V. Vlohom a rad ďalších bádateľov. Ich výsledky nám umožňujú dospieť k záveru, že RPHA je jednou z najúčinnejších metód sérologickej diagnostiky dyzentérie, aj keď nie je bez niektorých spoločných nedostatkov, ktoré sú vlastné metódam tejto skupiny.

Porovnávacia štúdia citlivosti pri úplavici RPHA a aglutinačnej reakcii ukazuje veľkú prevahu prvej metódy. Podľa A. V. Lullu priemerné titre RPHA pri tomto ochorení prevyšujú priemerné titre RA 15-krát (vo výške ochorenia 19-21-krát), protilátky vo vysokej (1:320 - RPHA) sa zisťujú pri použití 4,5-krát častejšie ako v titri (1:160 pri nastavení aglutinačnej reakcie). Pri bakteriologicky potvrdenej akútnej dyzentérii je pozitívna reakcia RPHA v diagnostických titroch zaznamenaná pri vyšetrení u 53-80 % pacientov.

Hemaglutiníny sa detegujú od konca prvého týždňa ochorenia, frekvencia detekcie a titer protilátok sa zvyšujú, pričom maximum dosahujú na konci druhého a tretieho týždňa, potom ich titer postupne klesá.

Existuje jasná závislosť frekvencie pozitívnych výsledkov titra RPHA a hemaglutinínu od závažnosti a charakteru priebehu infekcie šigelózou. Relevantné štúdie ukázali, že pri vymazaných a subklinických formách infekcie boli pozitívne výsledky RPHA získané menej často ako pri akútnej klinicky výraznej dyzentérii (52,9 a 65,0 %), zatiaľ čo v titroch 1:200 - 1:400 boli iba 4 odpovedali 2 % sér (s klinicky výraznou formou - 31,2 %) a pri predĺžených a chronických formách boli pozitívne výsledky RPHA zaznamenané u 40,8 % pacientov, vrátane iba 2,0 % s titrom 1:200. Existujú aj správy o rozdielnej citlivosti RPHA pri určitých etiologických formách infekcie šigelózou. Podľa L.M. Schmutera, najvyššie titre hemaglutinínu sa pozorujú pri dyzentérii Sonne a výrazne nižšie titre pri dyzentérii Flexner I-V a Flexner VI. Antibakteriálna liečba začatá v počiatočných štádiách ochorenia môže v dôsledku zníženia trvania a intenzity antigénneho podráždenia spôsobiť výskyt hemaglutinínov v krvnom sére v nižších titroch.

Rovnako ako aglutinačná reakcia, RPGA nie vždy umožňuje presne rozpoznať etiologickú formu infekcie šigelózou, ktorá je spojená s možnosťou skupinových reakcií. Krížové reakcie sa pozorujú hlavne pri Flexnerovej dyzentérii – medzi Flexner I-V a Flexner VI dyzentériou. Humorálna imunitná odpoveď u mnohých pacientov je slabo vyjadrená. Nie je vylúčená ani možnosť krížovej aglutinácie v dôsledku bežných antigénov. Medzi výhody tejto metódy však patrí jednoduchosť nastavenia reakcie, možnosť rýchleho získania výsledkov a pomerne vysoká diagnostická účinnosť. Významná nevýhoda túto metódu spočíva v tom, že diagnózu možno stanoviť najskôr 5. deň choroby, maximálne diagnostické titre protilátok je možné určiť do 3. týždňa choroby, teda metódu možno klasifikovať ako „retrospektívnu“.

Za účelom diagnostiky úplavice sa tiež navrhuje stanoviť hladinu špecifických cirkulujúcich imunitných komplexov reprezentovaných S.sonnei O-antigénom, spojeným so špecifickou protilátkou, pomocou nepriamej „sendvičovej verzie“ enzýmovej imunoanalýzy kvôli jej vysokej citlivosti. Metóda sa však odporúča používať len pri 5-dňovej chorobe.

U pacientov s dyzentériou sa od samého začiatku ochorenia zistí špecifické zvýšenie bakteriofixačnej aktivity krvi v dôsledku antigén-väzbovej aktivity erytrocytov. V prvých 5 dňoch AII umožňuje stanovenie antigén-väzbovej aktivity erytrocytov stanoviť etiológiu ochorenia v 85-90% prípadov. Mechanizmus tohto javu nie je dobre pochopený. Dá sa predpokladať, že jeho základom je väzba erytrocytov v dôsledku ich C3v receptorov (u primátov vrátane človeka) alebo Fcy receptorov (u iných cicavcov) imunitného komplexu antigén-protilátka.

Spomedzi relatívne nových metód zaznamenávania špecifickej imunitnej odpovede na bunkovej úrovni sa pozornosť sústreďuje na stanovenie antigén viažucich lymfocytov (ASL), ktoré reagujú so špecifickým, taxonomicky významným antigénom. Detekcia ASL sa uskutočňuje rôznymi metódami - párová aglutinácia lymfocytov s antigénom, imunofluorescencia, RIA, adsorpcia lymfocytov na kolóny obsahujúce antigén, adhézia mononukleárnych buniek na sklenené kapiláry, nepriama ružicová reakcia (RNRO). Je potrebné poznamenať, že také vysoko citlivé metódy registrácie ASL, ako sú ELISA a RIA, adsorpcia lymfocytov na kolónach obsahujúcich antigén sú technicky relatívne zložité a nie vždy dostupné pre široké použitie. Práce viacerých autorov preukázali vysokú senzitivitu a špecifickosť PHPR na detekciu ASL pri rôznych ochoreniach. Množstvo výskumníkov odhalilo úzky vzťah medzi obsahom ASL v krvi pacientov s rôznymi patologiami a formami, závažnosťou a dobou ochorenia, jeho prechodom do zdĺhavého, resp. chronická forma.

Niektorí autori sa domnievajú, že stanovením hladiny ASL v dynamike ochorenia možno posúdiť účinnosť terapie. Väčšina autorov sa domnieva, že ak je úspešná, počet ASL klesá, a ak je efektivita liečby nedostatočná, zaznamenáva sa nárast alebo stabilizácia tohto ukazovateľa. Uvádza sa, že ASL možno použiť na kvantifikáciu senzibilizácie na tkanivo, bakteriálne antigény a antibiotiká, čo je dôležité. diagnostická hodnota. Metóda ASL sa v obmedzenej miere používa na diagnostiku dyzentérie.

Možnosť skoré odhalenie ASL, už v prvých dňoch po infekcii, je veľmi dôležitá pre včasnú diagnostiku a včasnú liečbu, ktorá je pre lekára nevyhnutná.

Údaje prezentované v prehľade teda ukazujú, že vzhľadom na rozšírenú prevalenciu dyzentérie, nedostatočnú citlivosť a neskorý výskyt pozitívnych výsledkov mnohých diagnostických metód je vhodné rozvinúť diagnostický potenciál na detekciu tejto infekcie. Údaje získané pri mnohých infekčných ochoreniach o vysokej účinnosti metódy ASL, skorý výskyt jej pozitívneho výsledku, určujú vyhliadky na štúdium a aplikáciu tejto metódy pri šigelóze.

Bibliografia

1 Juščuk N.D., Brodov L.E. Diferenciálna diagnostika a liečba akútnych črevných infekcií// Ros. a. gastroenterol., hepatol., koloprotol. - 2000. - 10, č. 5. - S. 13 - 16. - Rus. – ISSN 1382-4376. – RU.

2 Shuvalova E.P., Zmushko E.I. Syndromová diagnostika infekčných chorôb. // Učebnica. - Petrohrad: Peter, 2001. - S. 138-141.

3 Karalnik B.V., Amireev S.A., Syzdykov M.S. Princípy a možnosti metód laboratórnej diagnostiky a interpretácia ich výsledkov v práci epidemiológa // Metóda. odporúčané - Almaty. - 1997. - 21 s.

4 Karalnik B.V. Sérologická diagnostika bakteriálnych črevných infekcií. // Metóda. odporúčania. - Almaty, 1973. - 3-20 s.

5 5. Nurkina N.M. Porovnávacia účinnosť metód sérologickej diagnostiky dyzentérie pomocou senzibilizovaných erytrocytov: Abstrakt práce. dis. cand. - Almaty, 1984. - 22 s.

6 Karalnik B.V., Nurkina N.M. Komplexná sérologická diagnostika dyzentérie. // Metóda. odporúčania. - Almaty, 1983. - 24 s.

7 Erkinbeková B.K. Metóda indikácie antigénov Shigella v sanitárnych a epidemiologických štúdiách dyzentérie: Abstrakt práce. diss. ...kandidát lekárskych vied. - Almaty, 1995. - 18 s.

8 Nikitin V.M., Georgita F.I., Plugaru S.V. atď. Zrýchlené metódy diagnostika infekčných chorôb. // Kišiňov. - 1987. - 106 s.

9 Neverov V.A. Stratégia a taktika diagnostiky a liečby akútnych črevných infekcií. // Petrohrad - 1996. - 12 s.

10 Vorobyov A.A. Lekárska mikrobiológia, virológia a imunológia. // M.- 2004.- S. 7-8.

11 Ivanov K.S., Ivanov A.I. Diagnóza akútnych hnačkových infekcií // Klin. med. - 1992. - č. 7-8 - S. 64-69.

12 Ciudin L., Pencu E., Mihai, I. a kol. Sérologická identifikácia kmeňov Shigella flex neri koagulačnou reakciou // Roum. Arch. Microbiol.Immunol. -1995/ - Vol/ 54(4). - S. 295 - 311.

13 Lindberg A.A., Cam P.D., Chan N. a kol. Shigellosis vo Vietname: séroepidové miologické štúdie s použitím lipopolysacharidových antigénov v enzýmových imunoanalýzach // Rev. Infikovať. Dis - 1991. - Vol. 13, dodatok 4. - S.231 - 237.

14 Sloper S. Shigella. // In: Infekcia Enterobacteriaceae. Lipsko.- 1968.- S. 375-441.

15 Jacobs J., Rudenský B., Dresner J. a kol. Porovnanie štyroch laboratórnych testov na diagnostiku hnačky spojenej s Clostridium difficile // Eur. J. Clin. Microbiol. Infect.Dis. - 1996. - Zv. 15(7). - S. 561-566.

16 Klyucharev A.A., Poleshko D.V., Vershenya M.I. Klinické a epidemiologické znaky priebehu dyzentérie v posledných rokoch. // Zdravotníctvo Bieloruska. - 1973. - Číslo 11. - S. 54-56.

17 Gusarskaya I.L. Charakteristiky klinického priebehu Sonnovej dyzentérie v súčasnom štádiu a niektoré otázky jej prevencie. // V knihe: Problémy infekčných chorôb. - Vologda. - 1970. -S. 23-27.

18 Shitov I.A., Trinitatskaya M.I. Trvanie bakterioexkrécie u pacientov s akútnou dyzentériou. // V knihe: Črevné infekcie.- Časť 2.- L. 1972.- S. 161-163.

19 Avdeeva T.A. Kvantitatívna mikrobiologická štúdia dyzentérie (výsledky vývoja a aplikácie metódy na štúdium klinických, mikrobiologických a epidemiologických vzorcov dyzentérie). Abstraktné dis. pre súťaž vedec krok. Dr. med. vedy. L., 1964, 28 s.

20 Tillet H., Thomas M. Kultivácia stolice pri diagnostike Sonnovej dyzentérie: štatistická metóda na odhad skutočnej miery izolácie. // Nastupovanie. J. Epidemiol.- 1974.- zväzok 3.- R. 177-181.

21 Khaimzon B.I. Reakcia zvýšenia fágového titra pri diagnostike akútnej dyzentérie u dospelých. Abstraktné dis. pre súťaž vedec krok. môcť. lekárske vedy Voronež, 1965, 16 s.

22 Vilkomirskaya T.S. Materiály o štúdiu senzitivity a špecifickosti reakcie na zvýšenie fágového titra (RNF) pri diagnostike dyzentérie. // V knihe: Problematika imunológie infekčných a alergických ochorení. Ufa.- 1970.- S. 48-49.

23 Ivanov F.M. Porovnávacia hodnota metód výsevu, rastu titrafágov a detekcie antigénnych látok v rôznych štádiách dysenterického procesu. Abstraktné dis. pre súťaž vedec krok. môcť. lekárske vedy Orenburg, 1963, 10 s.

24 Vilkomirskaya T.S. O klinickom a epidemiologickom význame reakcie zvýšenia fágového titra (RNF) v diagnostike dyzentérie v Ufe. Abstraktné dis. pre súťaž vedec krok. môcť. med. vedy. Ufa, 1971, 24 s.

25 Mazurin N.D., Rozina-Itskina Ts.S. Reakcia zvýšenia fágového titra pri diagnostike dyzentérie. // JMPEI.- 1963. - Číslo 1.- S. 113-116.

26 Golyusova E.V., Trochimenko M.Z. O význame Tsuverkalovho testu v diagnostike akútnej dyzentérie u detí. // Črevné infekcie (Kyjev).- 1972. - vydanie. 5. - S. 97-99.

27 Fradkin V.A., Lodinová L.M. Použitie alergénov na diagnostiku chronických črevných infekcií. // V knihe: Bakterionosič a chronické formy infekčných chorôb. - časť 2. - M.-1975.- S. 213-215.

28 Lukaševič K.K. Alergická metóda diagnostika dyzentérie. // V knihe: Niektoré otázky kliniky a alergie v infekčnej patológii Kuibyshev - 1970. - S. 41-43.

29 Chechelnitsky V.M. Hodnota Tsuverkalovovej reakcie pri diagnostike akútnej dyzentérie. // V knihe: Imunológia a črevné infekcie.Voronež.- 1970. - S. 110-114.

30 Bogdanov I.L. Alergia v patogenéze, klinike a terapii infekčných chorôb. // M.- 1974.- 245 s.

31 Gorčaková G.A. Disenterin (liek na intradermálne testovanie pri diagnostike dyzentérie). Abstraktné dis. pre súťaž vedec krok. DR. lekárske vedy Odesa, 1969, 19 s.

32 Lubitskaya N.A., Polyak A.I. Imunodiagnostika dyzentérie u detí // VI All-Union. conf. podľa klinického biochémia, morfológia a imunol.infekt. Bol.: Abstrakty správ. - Riga, 1983. - S. 106-107.

33 Furman A.A. Porovnávacia štúdia niektoré zrýchlené metódy laboratórnej diagnostiky dyzentérie a kolienteritídy. Abstraktné dis. Pumpa vedec krok. môcť. med. vedy. Kyjev, 1970, 19 s.

34 Michajlov I.F., Pers I.F. Identifikácia antigénnych vzťahov medzi baktériami črevnej skupiny fluorescenčná protilátková metóda. ZHMEI, 1975, č. 5, S. 97-103.

35 Shmuter L.M. Reakcie nepriamej hemaglutinácie a neutralizácie protilátok v diagnostike dyzentérie. Abstraktné dis. pre súťaž vedec krokový kanál med. vedy. Charkov, 1968, 19 s.

36 Evdokimova T.V., Podlevsky A.F., Yafaev R.Kh. Klinické a laboratórne paralely pri akútnej dyzentérii u dospelých. - JMPEI, 1974, č. 6, S. 82-85.

37 Mogilev V.E. Pasívna hemaglutinácia pri úplavici. Abstrakt práce pre súťaž vedec krok. môcť. med. vedy. Kuibyshev, 1968, 20 s.

38 Rybáková N.A. Využitie pasívnej hemaglutinačnej inhibičnej reakcie na diagnostiku Sonnovej dyzentérie v praktickom laboratóriu. - Laboratórium. prípad, 1975, č. 3, s. 168-170.

39 Ivanov F.M. Porovnávacia hodnota metód výsevu, rastu titrafágov a detekcie antigénnych látok v rôznych štádiách dysenterického procesu. Abstraktné dis. pre súťaž vedec krok. môcť. med. vedy. Orenburg, 1963, 10 s.

40 Godovanny B.A., Litinsky Yu.I., Bodisko V.P. Kvantitatívne stanovenie antigénu Shigella Sonne v moči pacientov a nosičov. - Laboratórium. prípad, 1974, č. 6, s. 360-363.

41 Kashkin G.S. Štúdium dynamiky mikrobiálnych antigénov v krvi a močovom trakte pri akútnej dyzentérii. - V knihe: Problémy infekčných chorôb. Vologda, 1970, s. 47-50.

42 Nurkina N.M. Porovnávacia účinnosť metód sérologickej diagnostiky dyzentérie pomocou senzibilizovaných erytrocytov: Abstrakt práce. dis. cand. - Almaty, 1984. - 22 s.

43 Li Van Ho., Rubtsov I.V., Tregub A.V., Remneva T.V. Porovnávacia diagnostická hodnota niektorých metód na detekciu dysenterických antigénov v substrátoch tela pacienta. // J. microbiol. - 1989. - č. 1. - S. 57-61.

45 Sakal N.N. Aplikácia a hodnotenie účinnosti enzýmovej imunoanalýzy vo včasnej diagnostike a prognóze priebehu Sonnovej dyzentérie: Abstrakt práce. diss. … cukrík. med. vedy. - Petrohrad, 1993. - 21 s.

46 Rubtsov I.V., Pimenova G.N., Kulakova V.N. K štatistickému vyhodnoteniu klinických a laboratórnych údajov ELISA // Zborník k výročiu vedeckého a praktického. konferencie, venované 80. výročie vzniku oddelenia infekčných chorôb MMA pomenovaného po. I. M. Sechenov (22. – 23. mája 2003). - M.: MMA im. I. M. Sechenov. - 2003. - S. 152-153.

47 Downes F.P., Green J.K. a kol. Vývoj a vyhodnotenie enzim-linked immunosorbent assay na detekciu Shiga – ako toxínu I a Shiga – podobného toxínu II // J. Clin. microbiol. - 1989. - V. 27, č. 6. - S. 1292-1297.

48 Barbans P.S., Pantyukhina A.N. Spôsob získavania a monitorovania fluorescenčných Fav - fragmentov protilátok proti sérovým proteínom ľudí, ktorí mali brušný týfus // J. microbiol., epidemiol. a imunobiol. - 1984. - č.2. - S. 102-105.

49 Použitie syntetických antigénov na diagnostiku infekčných ochorení //Techn.ser/WHO. - 1989. - Číslo 784. - S. 1-74.

50 Ekwall E., Norberg T., Swensons S.B. a kol. špecifická identifikácia antigénu O3 salmonely séroskupiny E imunofluorescenciou a koaguláciou s antisérom vyvolaným 1 syntetickým trisacharidom – albuminglykokonjugátom hovädzieho séra // J. Clin.Microb. - 1994. - 19, č.5. – S. 699-702.

51 Lee Kuo-Ka, Ellis A.E. Rýchle a citlivé farbenie strieborno-lipopolysacharidovým farbením pomocou systému Phast v rýchlej horizontálnej polyakrylamidovej gélovej elektroforéze //Elektroforéza. - 1989. - V. 10, č.10. - S. 729-731.

52 Tempieva T.V., Yuditskaya N.M., Litinsky Yu.I., Lee Wam Ho. Ultrazvuková dezintegrácia imunitných komplexov na detekciu Shigella antigénov v moči pacientov s dyzentériou // Lab. biznis. - 1988. - Číslo 9. - S. 64-66.

53 Čajka N.A. Štúdium črevných infekcií a ich patogénov pomocou moderných imunologických metód // Akútne črevné infekcie. - L .: Leningrad. výskumný ústav epid. a mikrofón. - 1987. - vydanie. II. - S.3-8.

54 Khazenson L.B., Čajka N.A. Imunologický základ pre diagnostiku a epidemiologický rozbor črevných infekcií. – M.: Medicína. –1987. - 112 s.

55 Kashkin G.S. Štúdium dynamiky mikrobiálnych antigénov v krvi a moči detí s akútnou úplavicou. // V knihe: Problémy infekčných chorôb. - Vologda. – 1970.- S. 47-50.

56 Godovannyy B.A., Litinsky Yu.I., Bodisko V.P. Kvantitatívne stanovenie antigénu Shigella Sonne v moči pacientov a nosičov baktérií. // Lab. biznis. - 1970. - Číslo 6. - S. 360-363.

57 Rybakova N.A., Rybakov D.A. Využitie RNGA a RNAt pri epidemiologickom vyšetrovaní chorôb etiológie dyzentérie. – Zborník Leningradského výskumného ústavu epidemiol. a mikrobiol. meno Pasteur. -t. 56. - L., 1981. - S. 58-61.

58 Vasilyeva A.V. Porovnávacie hodnotenie rôznych metód sérologickej diagnostiky Sonnovej dyzentérie. // Črevné infekcie. - 1972. - Vydanie. č. 5. - S. 129-132.

59 Dubinina I.G., Shcherbo S.N., Makarov V.B. Metódy polymerázovej reťazovej reakcie v laboratórnej praxi. // Klinická laboratórna diagnostika. - 1997, č. 7. - str. 4 - 6.

60 Turkadze K.A., Podkolzin T.A., Kokoreva L.N. Porovnávacia účinnosť použitia PCR a bakteriologickej metódy pri diagnostike salmonelózy a šigelózy // Zborník k jubileu vedecký a praktický. konferencie, venované 80. výročie vzniku oddelenia infekčných chorôb MMA pomenovaného po. I. M. Sechenov (22. – 23. mája 2003). - M.: MMA im. I. M. Sechenov. - 2003. - S. 172-173.

61 Achtamov M.A., Akhmedov A.A. Porovnávacia štúdia účinnosti niektorých sérologické reakcie v laboratórnej diagnostike akútnej dyzentérie // Med. Journal of Uzbekistan. - 1984. -№1. - S. 29-31.

62 Borisov V.A. Na porovnávacie hodnotenie niektorých sérologických metód na diagnostiku dyzentérie. – Laboratórium. prípad, 1972, č. 9, s. 564-566.

63 Laplane R., Be, gue P., Omanga V. Anticorps seriques et copro-anticorps dansles infekcie bacteriennes digests de l, enfant. // Býk. Akad. nat. med. - 1975. - Sv. 159. - Číslo 7. - S. 596-600.

64 Barksdale W., Ghoda A. Aglutinačné protilátky v sére a stolici.// J. Immunol. - 1951. - Sv. 66. – S. 395 – 401.

65 Nikolaeva T.A., Kukain E.M., Khazenson L.B. Imunochemická povaha kopro- a sérových protilátok u pacientov so Sonnovou úplavicou a inými ICD. - Tez. správa Do vedecko-praktickej. konf., venovaný 50. výročie LeningrNIIEM im. Pasteur. L., 1973, s. 53-54.

66 Lullu A.V. Aplikácia reakcie nepriamej hemaglutinácie na diagnostiku a štúdium imunológie akútnej dyzentérie. // Abstrakt. dis. pre súťaž vedec krok. môcť. med. vedy. - Tartu. - 1963. - 10 s.

67 Kľucharev A.A. Materiály na štúdium dyzentérie v Bielorusku. Poleshko D.V., Vershenya M.I. Klinické a epidemiologické znaky priebehu dyzentérie v posledných rokoch. // Abstrakt. dis. pre súťaž akademický krok. DR. med. vedy. - Kaunas. - 1970. - 32 s.

68 Podlevsky A.F., Tselinskaya N.M., Zhuravleva L.V., Buchel N.E. Reakcia nepriamej hemaglutinácie pri dyzentérii u pacientov rôzneho veku. // V knihe: Problematika epidemiológie a prevencie črevných a prirodzených fokálnych infekcií. L., 1971, S. 93-99.

69 Zaitlenok M.A., Eremina A.M., Subbotina Yu.L. Sérologické štúdie pri akútnych črevných infekciách bakteriologicky nepotvrdené // Imunológia a imunopatológia. - Voronež, 1983. - S. 35-37.

70 Borisov V.A., Orlík N.S., Kirilyuk M.A. Imunitná odpoveď u pacientov s úplavicou s predĺženým vylučovaním shigelly. // All-Union. conf. o klinickej biochémii, morfológii a imunológii infekčných chorôb. Tez. správa - Riga - 1977. - S. 377-378.

71 Čilingár A.V. Výsledky paralelnej aplikácie pľúcneho modelu, nepriameho hemaglutinačného testu a aglutinačného testu na detekciu antidyzenteriálnych protilátok v krvi zdravých ľudí. // V knihe: Akútne črevné infekcie. Dyzentéria, escherichióza, salmonelóza. - L. - 1970. - S. 93-101.

72 Patton C.M., Gangorosa E.J., Weissman J.B. a kol. Diagnostická hodnota nesprávnej hemaglutinácie v séroepidemiológii infekcií Shigella. // J.ofClin. Microb. - 1976. - Sv. - 23. - S. 143-148.

73 Martinez J. Epidemiologická štúdia bakteriálnej dyzentérie. // Bol. ofic. sanitárny panamer. - 1973. - Sv. 75. - S. 213-224.

74 Musabaev I.K., Abubakirova F.Z. Bakteriálna úplavica. - Taškent - 1973. - 258 s.

75 Dulatova M.V., Golovacheva S.N., Savitskaya O.V. Princíp RPGA v expresnej diagnostike infekcií a imunity. // V knihe: Prípravy na expresnú diagnostiku. - L., 1981. - S. 31-42.

76 Safonova N.V. Aplikácia reakcie nepriamej hemaglutinácie v ložiskách akútnej črevnej infekcie na identifikáciu infikovaných ľudí a hľadanie zdrojov. - L., 1974. - 11s.

77 Solodovnikov Yu.P., Kalashnikova GK, Subbotina Yu.L., Bobkin SV Reakcia nepriamej hemaglutinácie pri štúdiu protilátok u zdravých, chorých a uzdravených Sonnových dyzentérií. - ZHMEI, 1971, č. 1. - S.13-18.

78 Provotorov V.Ya. K otázke liečby pacientov s úplavicou. - V knihe: Komunitná starostlivosť o infekčných pacientov a problematika liečby infekčných pacientov. Saratov, 1973. - S. 153-155.

79 Karalnik B.V. Metodika a taktika imunodiagnostiky infekčnej patológie. - V knihe: Problematika klinickej imunológie a imunologickej diagnostiky. Alma-Ata, 1988. - 10 s.

80 Kaplin V.I., Klevtsova G.A., Koryukhina I.P. atď Špecifická reakcia krvi v počiatočné obdobie infekcie dyzentérie a salmonely a nové príležitosti na včasnú špecifickú diagnostiku akútnych črevných infekcií // VI All-Union. conf. podľa klinického biochémia, morfológia a imunol. infekčné Bol.: Abstrakty správ. – Riga, 1983. – S.76-77.

81 Savilov E.D., Astafiev V.A., Mamontova L.M., Volodin Yu.F. Epidemiologické črty dyzentérie v r. Východná Sibír. //Novosibirsk "Nauka", 1994. - S.42-43.

82 Ivanov K.S., Ivanov A.I. Diagnóza akútnych hnačkových infekcií //Klin. med. - 1992. - č. 7-8 - S. 64-69.

83 Karalnik B.V. Erytrocyty, ich receptory a imunita. // Success of modern biol., M. - 1992. - v. 112, No. 1. - S.52-61.

84 Garib F.Yu., Zalyalieva M.V. Metódy na štúdium subpopulácie lymfocytov u ľudí za rôznych patologických stavov // Metóda.odporúčania. - Taškent, 1989. - 17s.

85 Bahrg. Modabber F.Z. // J. Immunol.Meth. - 1980. - V. 38, č. 3-4. - S. 203-216.

86 Tyagotin Yu.A. // Problematika vyšetrenia a liečby pacientov s chorobami krvného systému. - L., 1975. - S. 21-25.

87 Novikov D.K., Novikova V.I. Bunkové metódy imunodiagnostiky. // Minsk, 1979. - 222 s.

88 Smirnov B.N., Toropova N.I., Mokhova G.A. a iné // Zborník z celozväzovej vedeckej konferencie „Problémy medicínskej biotechnológie“. okt. 1988. - L., 1990. - S. 114-116.

89 Slavko E.A., Deryabin P.N., Karalnik B.V. Stanovenie antigén viažucich lymfocytov ako metóda včasnej diagnostiky salmonelózy a dyzentérie // Healthcare of Kazachstan.-Almaty.- 1999. - No. 5-6.-C.43-45.

90 Karalnik B.V., Kozhageldieva A.A., Karabekov A.Zh., Denisova T.G., Raipov O.R. Monitorovanie účinnosti liečby yersiniózy spôsobenej Yersinia enterocolitica // Liek. - Almaty. - 2004. - Číslo 4. - S. 51-53.

91 Karalnik B.V., Denisova T.G., Plazun A.A. Antigén viažuce lymfocyty tuberkulínovej špecifickosti u králikov infikovaných M. bovis v dynamike liečby tuberkulózy // Problémy tuberkulózy a pľúcnych chorôb. -M.-2006.- č.5.-S.48-53.

92 Karalnik B.V., Karabekov A.Zh., Denisova T.G., Kozhageldieva A.A., Zhunusova G.B. Diferenciálna diagnostika brucelózy a črevnej yersiniózy spôsobenej Yersinia enterocolitica serovar O9 // Medicína.-Almaty.-2004.- č.3.- S.155-157.

93 Karalnik B.V., Denisova T.G., Zhunusova G.B., Fedosov S.A., Zhankin A.A., Ospanov K.S., Mizanbayeva S.U. Účinnosť rôznych protilátkových testov a antigén viažuceho lymfocytového testu pri diagnostike brucelózy u ľudí. // Lekárska imunológia. – S.-P. - 2006. - Zväzok 8. - Číslo 4. - S. 567 - 572.

94 Karalnik B.V., Denisova T.G., Grushina T.A., Tugambaev T.I. Analýza imunitnej odpovede morčiat infikovaných Brucella melitensis // Zh.

95 Karalnik B.V., Berezin V.E., Denisova T.G., Deryabin P.N., Slavko E.A. Dynamika obsahu lymfocytov s receptormi pre vírus Sendai počas imunizácie vírusom a imunostimulačným komplexom jeho glykoproteínov // Izvest. Min.veda a vyššie vzdelanie RK. Ser.biol. a lekárske-Almaty.-1999.- č.3.- P.50-51.

96 Garib F.Yu., Gurariy N.I., Aliev Sh.R. Charakteristika lymfocytov viažucich antigén pri chronickej hepatitíde u detí // Imunológia - 1988. - č. s. 91-93.

97 Finlay B.B., Falkow S.A. Porovnanie mikrobiálnych stratégií druhov Salmonella, Shigella a Jersinia // Interakcia baktérie – hostiteľská bunka, Alban R. Liss. Inc. - 1988. - S. 227-243.

98 Karalnik B.V., Denisova T.G., Keshileva Z.B., Pshenichnaya L.A. et al. Antigén viažuce lymfocyty a protilátky v diagnostike syfilisu // Sexuálne prenosné infekcie. - M. - 1999. - č.5. — s. 34–36.

99 Sakanova L.M., Karalnik B.V., Ukbaeva T.D. Imunočinidlá na detekciu lymfocytov viažucich antigén a ich schválenie v diagnostike meningokokovej infekcie// Hygiena, epidemiológia a imunobiológia - Almaty. -2002.- č. 1-2.-S.69-72.

100 Slavko E.A., Deryabin P.N., Karalnik B.V., Karabekov A.Zh. O špecifickosti antigén viažucich lymfocytov zistených u pacientov s akútnymi zápalovými ochoreniami gastrointestinálneho traktu. // Hygiena, epidemiológia a imunobiológia. - Almaty. - 1999. - č.2. - S. 102 - 105.

A.M.Sadykovej

Laboratórna diagnostika dyzentérie

Tү jin: Zhedel іshek infekciealaryn bakylauda, ​​​​dyzentéria naқty diagnostika en özu maselesi bolyp tabylady. Bakteriálna dysenterická dұrys қoyylғan diagnózy nauқaska vaқytynda em zhүrgіzuge zhane epidemica қarsy sharalardy өtkіzu үshіn manyzdy. Обзордағы көрсетілген мәліметтер, дизентерияның кең таралуын негіздей отырып, сезімталдығының жеткіліксіздігі және көп деген диагностикалық әдістердің оң нәтижесінің кеш анықталуына байланысты, осы инфекцияны анықтауда диагностикалық потенциалды мақсатты түрде дамыту керек екенін көрсетеді.

Tү zastavuje odө zder: diagnostika, úplavica, antigenbaylanystyrushy adis.

A.M.Sadycovej

Laboratórna diagnostika dyzentérie

Zhrnutie: Spoľahlivá diagnostika hnačky je jedným z najdôležitejších problémov kontroly akútnej črevnej infekcie. Presná diagnostika bakterióznych hnačiek má vitae význam pre správnu a presnú liečbu pacienta a tiež prijatie potrebných protiepidemických opatrení. Členovia uvedení v prieskume, berúc do úvahy rozšírené hnačky, ukazujú nedostatočnú citlivosť a neskorý výskyt pozitívnych výsledkov mnohých diagnostických metód. Je nevyhnutné zamerať sa na rozvoj diagnostického potenciálu na navrhnutie infekcie.

Kľúčové slová: diagnostika, dyzentéria, metóda antigén viažucich lymfocytov.