Schéma vyšetrenia nádrže na úplavicu. Laboratórna diagnostika dyzentérie (prehľad literatúry)

Dyzentéria je závažná črevná infekcia charakterizovaná akútnym nástupom. Mikrobiologická diagnostika dyzentéria zahŕňa izoláciu patogénu z výkalov pacienta jeho naočkovaním do špeciálneho živného média. Ochorenie treba odlíšiť od iných črevných ochorení a otráv. Včasná diagnostika a včasná liečba pomôžu vyhnúť sa komplikáciám.

Dôležitosť včasnej diagnózy

Rozpoznanie dyzentérie v praxi nie je také jednoduché, pretože existujú infekčné a neinfekčné ochorenia s podobnými klinickými prejavmi. Charakteristickým znakom patogénov dyzentérie (Shigella) je schopnosť meniť rezistenciu na antibakteriálne lieky. Zle diagnostikovaná choroba povedie k infekcii veľké číslo z ľudí. Nesprávne používanie antibiotík je príčinou bakteriálnej rezistencie, ktorá vedie k masovým infekciám a epidémiám úmrtia. Zdrojom infekcie sú pacienti a nosiči baktérií, ktorí vylučujú patogénne mikroorganizmy s výkalmi. Inkubačná dobaúplavica - 2-3 dni.

Klinické príznaky ochorenia

• Náhla horúčka s telesnou teplotou 40 stupňov alebo vyššou.
• Hnačka viac ako 10-krát denne.
• Výskyt krvi, hlienu v stolici, v ojedinelých prípadoch hnis.
• Strata chuti do jedla až do úplnej absencie.
• Nevoľnosť a zvracanie.
• Rezanie v bruchu a pravom hypochondriu.
• Bolesť v konečníku.
• Dehydratácia.
• Suchý jazyk s bielym povlakom.
• Arytmia.
• Znížený krvný tlak.
• Poruchy vedomia.

Diagnostické postupy

Lekár diagnostikuje úplavicu až po vykonaní štúdií.

Diagnóza ochorenia zahŕňa všeobecne uznávané a špeciálne metódy, ktoré stanovujú nielen konečná diagnóza, ale aj posúdenie úrovne dysfunkcie tráviacich orgánov. Pri úplavici sa diagnóza robí na základe epidemiologického obrazu choroby, klinické príznaky a uskutočnený výskum. Hlavnou laboratórnou diagnostikou je mikrobiologický rozbor stolice, ktorý identifikuje až 80 % patogénov. Sérologická metóda sa vykonáva najskôr 5. deň choroby, tento typ štúdie dopĺňa, ale nenahrádza mikrobiologickú analýzu. Iné metódy:

• Koprologické vyšetrenie je jednoduchá a dostupná klinická metóda, ktorá zisťuje hlien, krvné pruhy, červené krvinky, neutrofily (až 50 v zornom poli) a zmenené epitelové bunky.
• Sigmoidoskopia - umožňuje sledovať proces hojenia. Nepoužívať u detí.
• Metóda testu na alergiu - pomocná metóda, na základe vykonania kožného alergického testu s dyzentérínom (metóda Tsuverkalova).

Všeobecná analýza krvi

Imunitné bunky ničia patogény dyzentérie v črevách a závažné prípady ochorenia sa vyskytujú, keď baktérie napadnú lymfatické uzliny a následne sa dostanú do krvného obehu. Krvný test na dyzentériu hodnotí stav pacienta a umožňuje včasnú odpoveď možné komplikácie. Zvýšenie rýchlosti sedimentácie erytrocytov je laboratórny indikátor charakterizujúci stupeň zápalu. Dyzentéria tiež spôsobuje zvýšenie koncentrácie pásových neutrofilov a monocytov.

Ako darovať výkaly pre koprogram?

Na potvrdenie ochorenia sa vykoná test stolice. Koprogram je podrobná laboratórna štúdia, ktorá hodnotí fungovanie gastrointestinálneho traktu, rýchlosť a účinnosť trávenia a funkciu čriev. Laboratórne metódy na vyšetrenie stolice odhalia fyzikálne a Chemické vlastnosti výkaly, zloženie, prítomnosť cudzích organizmov a inklúzií. Požiadavky na odber stolice:

• Materiál sa odoberá po prirodzenom akte defekácie.
• Zber sa vykonáva v špeciálnej nádobe.
• Je zakázané odoberať biologický materiál získaný v dôsledku klystíru na testovanie stolice na dyzentériu.
• Pred štúdiom je zakázané užívať doplnky železa, rektálne čapíky, laxatíva alebo piť alkoholické nápoje.

Mikrobiologická diagnostika

Tanková kultúra pre úplavicu presne určuje typ patogénu.

Bakteriologická diagnostika - odber trusu a následný výsev trusu do špeciálneho živného média. Výskyt kolónií patogénnych baktérií (Shigella) po kultivácii potvrdzuje podozrenie na diagnózu. Bakteriologická analýza pri úplavici presne určuje patogén, jeho typ, poddruh a citlivosť na antibakteriálne látky, čo vám umožňuje vybrať ten správny liek na liečbu.

Skúmaným materiálom sú výkaly so získanými cudzími nečistotami prirodzene alebo špeciálna trubica na sigmoidoskopiu. Deťom sa odoberá ster špeciálnym tampónom (náter VD alebo črevný výter). Citlivosť na liek sa stanoví umiestnením kolónií Shigella spolu s rôznymi antibiotikami. Ak vitálna aktivita mikroorganizmov pokračuje v blízkosti tablety s antibiotikom, potom sa liek na liečbu nepoužíva, ak mikroorganizmy zomrú, je predpísaná liečba takýmto antibiotikom.

Sérologické testy na dyzentériu

V prípade negatívnych alebo pochybných výsledkov bakteriologického vyšetrenia sa používa sérologická metóda. IN stolica U pacienta sa zistí bakteriálny antigén a v plazme sa zistia špecifické protilátky. Titer protilátky možno určiť pomocou metódy RIGA, niekedy pomocou metódy RPGA alebo RA. Ako antigény sa používa suspenzia dennej kolónie Shegella. Nevýhoda metódy - spoľahlivé výsledky dostávať len 5 dní po nástupe ochorenia, kedy koncentrácia protilátok dosiahne požadovanú úroveň.

Sigmoidoskopia

Vzhľadom na to, že pôvodca dyzentérie postihuje hrubé črevo, je sigmoidoskopia významnou diagnostickou metódou, nie však rozhodujúcou. Diagnostika spočíva v zavedení rektoskopu do konečníka, vybaveného prístrojom, ktorý dodáva vzduch. Opuchnutím sa črevná dutina sprístupní na vyšetrenie. Táto metóda pomáha posúdiť stupeň poškodenia črevného epitelu. Pri dyzentérii sa črevné steny stávajú hyperemickými v dôsledku vazodilatácie. Na niektorých úsekoch dochádza k erózii a krvácaniu. Sigmoidoskopia nevyžaduje prípravu, ale postup sa nevykonáva, ak sú prítomné análne trhliny alebo patológie konečníka.

Pokyny pre žiakov na praktickú hodinu č.28.

Téma lekcie:

Cieľ: Štúdium metód mikrobiologickej diagnostiky, etiotropnej terapie a prevencie šigelózy.

Modul 2 . Špeciálna, klinická a environmentálna mikrobiológia.

Téma 5: Metódy mikrobiologickej diagnostiky dyzentérie.

Relevantnosť témy:Shigellóza je všadeprítomná a predstavuje vážny problém v krajinách s nízkou sanitárnou kultúrnou úrovňou a vysokým výskytom nedostatočnej a nekvalitnej výživy. V rozvojových krajinách je šírenie infekcie uľahčené zlou hygienou, zlou osobnou hygienou, preľudnenosťou a veľkým podielom detí medzi obyvateľstvom. Na Ukrajine sú ohniská šigelózy častejšie v uzavretých komunitách s nízkou úrovňou sanitácie a hygieny, napríklad v jasliach a škôlkach, na turistických lodiach, na psychiatrických klinikách alebo v útulkoch pre osoby so zdravotným postihnutím. Shigella bola príčinou hnačky u cestovateľov a turistov.

Za príčinu skupinových chorôb možno považovať konzumáciu kontaminovaných potravín v dôsledku nedbanlivosti predajcov, ktorí sú nosičmi Shigelly. Vyskytujú sa ohniská spojené s konzumáciou pitnej vody, k infekcii viedlo aj kúpanie v kontaminovaných vodných útvaroch. Zdá sa však, že cesty prenosu potravou a vodou zohrávajú menšiu úlohu pri šírení šigelózy v porovnaní s cholerou a brušným týfusom, ktoré zvyčajne vyžadujú veľké dávky patogénov na infikovanie ľudí. V rozvojových krajinách, kde sa choroba šíri prevažne z človeka na človeka, môžu byť nosiči dôležitým rezervoárom infekčného agens. U pacientov, ktorí neužívali antibakteriálne lieky, vylučovanie Shigelly stolicou zvyčajne pokračuje 1×4 týždne, ale v malej časti prípadov pokračuje výrazne dlhšie.

Shigellóza je akútna bakteriálna infekcia čriev spôsobená jedným zo štyroch typov Shigella. Spektrum klinických foriem infekcie zahŕňa miernu vodnatú hnačku a ťažkú ​​dyzentériu, ktorá je charakterizovaná kŕčovitými bolesťami brucha, tenezmami, horúčkou a príznakmi celkovej intoxikácie.

Etiológia.

Rod Shigella (pomenovaný podľa K. Shiga, ktorý v roku 1898 študoval a podrobne opísal izolovaného pôvodcu bakteriálnej dyzentérie od A. V. Grigorieva) z čeľade Enterobacteriaceae pozostáva zo skupiny blízko príbuzných druhov baktérií s týmito vlastnosťami:

ja Morfologické: Shigella - malé tyčinky so zaoblenými koncami. Od ostatných zástupcov čeľade Enterobacteriaceae sa líšia absenciou bičíkov (nepohyblivé), nemajú spóry ani tobolky a sú gramnegatívne.

II. Kultúrne: Shigella sú aeróby alebo fakultatívne anaeróby; optimálne podmienky kultivačná teplota 37°C, pH 7,27,4. Rastú na jednoduchých živných pôdach (MPA, MPB) vo forme malých, lesklých, priesvitných, sivastých, okrúhlych kolónií o veľkosti 1,5 x 2 mm. S formulár. Výnimkou je Shigella Sonne, ktorá často disociuje a vytvára veľké, ploché, zakalené kolónie so zubatými okrajmi. R tvary (kolónie majú vzhľad „hroznového listu“). V tekutých živných médiách Shigella vytvára rovnomerný zákal, R formy tvoria zrazeninu. Kvapalným obohacovacím médiom je seleničitanový bujón.

III. Enzymatické: hlavné biochemické charakteristiky potrebné na identifikáciu Shigella pri izolácii čistej kultúry sú tieto:

1. neprítomnosť tvorby plynu počas fermentácie glukózy;
2. nedostatok produkcie sírovodíka;
3. nedochádza k fermentácii laktózy do 48 hodín.

Celkovo sa tieto štyri druhy ďalej delia na približne 40 sérotypov. Podľa charakteristík hlavných somatických (O) antigénov a biochemických vlastností sa rozlišujú tieto štyri druhy alebo skupiny: S. dysenteriae (skupina A, zahŕňa: Grigoriev-Shigi, Stutzer-Schmitz, Large-Sachs), S. flexneri (skupina B), S. boydii (skupina C) a S. sonnei (skupina D).

Vo vzťahu k manitolu sa všetky Shigelly delia na štiepiaci (Shigella Flexner, Boyd, Sonne) a neštiepiaci sa (Shigella Grigoriev-Shiga, Stutzer-Schmitz, Large-Sachs) manitol.

IV. Faktory patogenity:

1. Invázny plazmidposkytuje schopnosť Shigella spôsobiť inváziu s následným medzibunkovým šírením a reprodukciou v epiteli sliznice hrubého čreva;
2. Tvorba toxínov: Shigella má lipopolysacharidový endotoxín, ktorý je chemicky a biochemicky podobný endotoxínom iných členov čeľade Enterobacteriaceae. Okrem toho S. dysenteriae typu I (Shigov bacil) produkuje exotoxín. Od objavu posledne menovaného sa zistilo, že má enterotoxínovú aktivitu a môže spôsobiť črevnú sekréciu, ako aj cytotoxický účinok namierený proti bunkám črevného epitelu; má neurotoxický účinok, ktorý sa pozoruje u detí so šigelózou. Shiga toxín, vstupujúci do krvi, spolu s poškodením submukózneho endotelu ovplyvňuje aj glomeruly obličiek, v dôsledku čoho sa okrem krvavej hnačky rozvinie hemolyticko-uremický syndróm s rozvojom zlyhania obličiek.

V. Antigénna štruktúra:Všetky Shigelly majú somatický O-antigén, v závislosti od štruktúry ktorého sa delia na sérovary.

VI. Odolnosť: Teplota 100 0 C okamžite zabije shigellu. Shigella sú odolné voči nízkym teplotám v riečna voda skladujú sa do 3 mesiacov, na zelenine a ovocí - do 15 mesiacov.Za priaznivých podmienok sú Shigella schopné rozmnožovať sa v produkty na jedenie(šaláty, vinaigretty, varené mäso, mleté ​​mäso, varené ryby, mlieko a mliečne výrobky, kompóty a želé), najmä Shigella Sonne.

Epidemiológia.

1. Zdroj infekcie:Osoba trpiaca akútnou a chronickou formou šigelózy; nosič baktérií.

2. Prenosové cesty:

• Potravinová kvalita (hlavne pre S. sonnei)
• Vodné (hlavne pre S. flexneri)
• Kontaktná domácnosť (hlavne pre S. dysenteriae)

3. Vstupná brána infekcie sú spôsobené gastrointestinálnym traktom.

Patogenéza a patologické zmeny.

Po požití Shigella kolonizuje horné časti tenké črevo a množiť sa tam, čo môže spôsobiť zvýšenú sekréciu na skoré štádium infekcií. Shigella potom preniká cez M bunky do submukózy, kde je absorbovaná makrofágmi. To vedie k smrti niektorých Shigella, čo vedie k uvoľneniu zápalových mediátorov, ktoré iniciujú zápal v submukóze. Apoptóza fagocytov umožňuje druhej časti Shigella prežiť a preniknúť do epitelových buniek sliznice cez bazálnu membránu. Shigella sa množia a šíria medzibunkovo ​​v enterocytoch, čo vedie k rozvoju erózie. Keď Shigella zomrie, uvoľňujú sa toxíny Shiga a Shiga podobné toxíny, ktorých pôsobenie vedie k intoxikácii. Poškodenie sliznice je sprevádzané opuchom, nekrózou a krvácaním, čo spôsobuje výskyt krvi v stolici. Okrem toho toxín ovplyvňuje centrálny nervový systém, čo vedie k trofickým poruchám.

Klinické prejavy.

Spektrum klinických prejavov šigelózy je veľmi široké, od miernej hnačky až po ťažkú ​​dyzentériu s kŕčovitými bolesťami brucha, tenezmami, horúčkami a celkovou intoxikáciou.

Inkubačná dobasa pohybuje od niekoľkých hodín do 7 dní, najčastejšie 2-3 dni.Spočiatku pacienti prežívajú vodnatá stolica, horúčka (do 41 °C), difúzna bolesť brucha, nevoľnosť a vracanie. Spolu s tým sa pacienti sťažujú na myalgiu, zimnicu, bolesť dolnej časti chrbta a bolesť hlavy. V najbližších dňoch od začiatku ochorenia sa objavujú príznaky úplavice: tenesmus, časté, slabé, krvavo-hlienovité stolice. Telesná teplota postupne klesá, bolesť môže byť lokalizovaná v dolných kvadrantoch brucho. Intenzita hnačky dosahuje maximum okolo konca 1. týždňa choroby. Dyzentéria s krvavou stolicou je bežnejšia a objavuje sa skôr pri chorobe spôsobenej o S. dysenteriae typu I ako pri iných formách šigelózy.

Na šigelózu Sonne Charakteristický je miernejší priebeh ochorenia (gastroenterický alebo gastroenterokolický variant). Febrilné obdobie je kratšie, príznaky intoxikácie sú krátkodobé, deštruktívne zmeny na sliznici čreva nie sú typické.

Flexnerova šigelózaV zásade sú charakteristické dva varianty klinického priebehu - gastroenterokolitné a kolické.

Extraintestinálne komplikácie pri shigelózezriedkavé:

1. Komplikáciou šigelózy môže byť vývoj črevnej dysbakteriózy.
2. Spolu s bolesťami hlavy sa môžu vyskytnúť príznaky meningitídy a záchvaty.
3. Periférna neuropatia bola hlásená pri infekciách S. dysenteriae typu I a Guillain-Barrého syndróm (polyneuritída) bol hlásený počas prepuknutia gastroenteritídy S. boydii.
4. S výnimkou detí trpiacich dystrofiou je hematogénne šírenie patogénu pomerne zriedkavé, popísané sú aj prípady abscesov šigelózy a meningitídy.
5. Pri šigelóze je možný rozvoj Reiterovho syndrómu s artritídou, sterilnou konjunktivitídou a uretritídou, ktorá sa u pacientov zvyčajne vyskytuje 1-4 týždne po nástupe hnačky.
6. U detí je shigelóza sprevádzaná hemolyticko-uremickým syndrómom, často v kombinácii s reakciami podobnými leukémii, ťažkou kolitídou a endotoxínovým obehom, ale bakteriémia sa zvyčajne nezistí.
7. Pomerne zriedkavo je hnisavá keratokonjunktivitída spôsobená Shigellou, ktorá sa dostala do očí v dôsledku samoinfekcie kontaminovanými prstami.
8. Hypovolemický šok a syndróm diseminovanej intravaskulárnej koagulácie.
9. Peritonitída, črevná gangréna, črevné krvácanie.

Imunita: Ľudia majú prirodzenú odolnosť voči šigelóze. Po minulé ochorenie imunita nie je stabilná a po šigelóze Sonne prakticky chýba. V prípade ochorenia spôsobeného Shigella Grigoriev Shiga sa vyvíja stabilnejšia antitoxická imunita. Hlavná úloha pri ochrane pred infekciou patrí sekrécii IgA zabraňujúca adhézii a cytotoxickej protilátkovo závislej aktivite intraepitelových lymfocytov, ktoré spolu so sekrečnými IgA zničiť Shigellu.

Diagnostika a laboratórne výskumy.

Účel štúdie: detekcia a identifikácia šigel na diagnostiku; detekcia nosičov baktérií; detekcia shigelly v potravinách.

Materiál na výskum: exkrementy, prierezový materiál, potraviny.

Diagnostické metódy:mikrobiologické (bakteriologické, mikroskopické (luminiscenčné); sérologické; biologické; alergický test.

Priebeh štúdie:

1 deň štúdia:Kultúry by sa mali robiť z čerstvo vylúčených výkalov alebo pomocou rektálnych tampónov (rektálna trubica); Ak nie sú k dispozícii vhodné podmienky, materiál sa musí umiestniť do prepravného prostredia. Na tento účel použite črevný agar (médium MacConkey alebo Shigella-Salmonella), stredne selektívny xylóza-lyzínový deoxycholátový agar, KLD) a živný bujón (selenitový bujón). Ak čas medzi odberom a inokuláciou presiahne 2 hodiny, potom by sa mali použiť konzervačné roztoky: 20% žlčový bujón, kombinované Kauffmannovo médium.

• Výkaly v glycerínovej zmesi sa emulgujú, kvapka emulzie sa nanesie na médium a rozotrie sa špachtľou. Diferenciálnymi médiami pre Shigella sú Ploskirev, Endo a EMS (eozín metylénová modrá agar). Ploskirevovo médium (médium obsahuje: MPA, laktózu, žlčové soli a indikátor brilantne zelený) je tiež selektívne médium pre Shigellu, pretože inhibuje rast Escherichia coli.
• Súbežne s priamym výsevom sa zozbieraný materiál naočkuje na obohacovacie médium – seleničitanový bujón.
• Všetky plodiny sú umiestnené v termostate.

2. deň štúdie:

• Misky sa vyberú z termostatu, podozrivé kolónie sa skrínujú na Resselovom médiu (živné médium, ktoré obsahuje: agar-agar, Andredeov indikátor, 1 % laktózy, 0,1 % glukózy) a manitol. Inokulácia sa uskutočňuje ťahmi na skosený povrch a injekciou do agarového stĺpca. Naočkované Resselovo médium sa vloží do termostatu na 18-24 hodín (súčasne sa uskutoční preočkovanie zo seleničitanového média do diferenciálneho diagnostického média).
• Urobia sa šmuhy (Gramovo farbenie) a skúmajú sa pod mikroskopom.
• Prípravky sa pripravujú ako „závesná“ alebo „drvená“ kvapka.
• Stanovenie predbežnej RA s polyvalentnými diagnostickými shigella sérami.
• Výsev podozrivých kolónií na agarové šikmé plochy.

3. deň štúdie:

• Mikroskopia materiálu zo šikmých agarov.
• Kultúry, ktoré nefermentovali laktózu na Resselovom médiu, sa podrobia ďalšej štúdii: urobia sa nátery (farbenie podľa Grama) a skontroluje sa čistota kultúry. V prítomnosti gramnegatívnych tyčiniek sa naočkuje Hissovo médium, bujón s indikátorovými papierikmi (na detekciu indolu a sírovodíka) a lakmusové mlieko.
• Naočkované médiá sa umiestnia do termostatu na 18-24 hodín.

Štvrtý deň štúdie:

• Účtovanie pre krátky „pestrý riadok“.
• Kultúry podozrivé z hľadiska ich enzymatických a kultúrnych vlastností vo vzťahu k Shigella sú podrobené sérologickej identifikácii. Stanovenie RA na skle (typické a skupinové diagnostické séra). Nastavenie nasadeného RA.

Ako zrýchlené metódy na shigelózu sa používajúfluorescenčná mikroskopia A biologická vzorka(zavlečenie virulentných kmeňov Shigella do spojovkového vaku (pod dolné viečko) morčiat; zápal spojiviek sa vyvíja do konca 1. dňa).

Tsuverkalov test na alergiuintradermálny alergický test s dyzentérínom (injekcia 0,1 ml dyzenterínu do predlaktia pozitívna reakcia v prípade infiltrácie a hyperémie). Diagnostika alergií sa v súčasnosti prakticky nepoužíva. Tsurvekalov test nie je špecifický, pozitívne reakcie sú zaznamenané nielen pri šigelóze, ale aj pri salmonelóze, escherichióze, yersinióze atď.OKI a niekedy aj u zdravých jedincov.

Liečba a prevencia.Na liečbu a prevenciu podľa epidemiologických indikácií sa používa bakteriofág orálne podávanie, antibiotiká po stanovení antibiogramu; pri dysbakterióze probiotické prípravky na úpravu mikroflóry. Na doplnenie straty tekutín a elektrolytov podajte dovnútra roztok glukózy a elektrolytov.

Konkrétne ciele:

Interpretujte biologické vlastnosti patogénov šigelózy.

Zoznámte sa s klasifikáciou Shigella.

Naučte sa interpretovať patogenetické vzorce infekčného procesu spôsobeného Shigellou.

Určiť metódy mikrobiologickej diagnostiky, etiotropnej terapie a prevencie šigelózy.

Byť schopný:

• Testovaný materiál naočkujte na živné médiá.
  • Pripravte si nátery a Gramovo farbenie.
  • Vykonajte mikroskopiu prípravkov pomocou ponorného mikroskopu.
  • Analyzujte morfologické, kultúrne a enzymatické vlastnosti Shigelly.

Teoretické otázky:

1. Charakteristika patogénov šigelózy. Biologické vlastnosti.

2. Klasifikácia Shigella. Princípy, z ktorých vychádza.

3. Epidemiológia, patogenéza a klinické príznaky Shigellosis

4. Laboratórna diagnostika.

5. Zásady liečby a prevencie šigelózy.

Praktické úlohy ktoré sa vykonávajú v triede:

1. Mikroskopia demonštračných preparátov z čistých kultúr patogénov šigelózy.

2. Práca na bakteriologickej diagnostike šigelózy: štúdium fekálnych kultúr na Ploskirevovom médiu.

3. Subkultivácia podozrivých kolónií na Resselovom médiu a MPB na stanovenie tvorby indolu a H 2 S.

4. Načrtnutie demonštračných prípravkov a mikrobiologických diagnostických diagramov šigelózy do protokolu vyučovacej hodiny.

5. Vypracovanie protokolu.

Literatúra:

1. Korotyaev A.I., Babichev S.A., Lekárska mikrobiológia, imunológia a virológia / Učebnica pre lekárske univerzity, Petrohrad „Špeciálna literatúra“, 1998. - 592 s.

2. Timakov V.D., Levašev V.S., Borisov L.B. Mikrobiológia / Učebnica. - 2. vyd., prepracované. A doplnkové - M.: Medicína, 1983, - 512 s.

3. Pyatkin K.D. Krivoshein Yu.S. Mikrobiológia s virológiou a imunológiou.- Kyjev: Škola V i scha, 1992. - 431 s.

4. Lekárska mikrobiológia / Edited by V.I. Pokrovského.-M.:GEOTAR-MED, 2001.-768s.

5. Sprievodca praktické hodiny v mikrobiológii, imunológii a virológii. Ed. M.P. Zykova. M. "Medicína". 1977. 288 s.

6. Cherkes F.K., Bogoyavlenskaya L.B., Belskan N.A. Mikrobiológia. /Ed. F.K. Čerkesský. M.: Medicína, 1986. 512 s.

7. Poznámky k prednáške.

Doplnková literatúra:

1. Makiyarov K.A. Mikrobiológia, virológia a imunológia. Alma-Ata, „Kazachstan“, 1974. 372 s.

2. Titov M.V. Infekčné choroby. - K., 1995. 321 s.

3. Šuvalová E.P. Infekčné choroby. - M.: Medicína, 1990. - 559 s.

4. BME, T. 1, 2, 7.

5. Pavlovič S.A. Lekárska mikrobiológia v grafoch: Učebnica. príspevok na zdravotnú Inst. Mn.: Vyššie. škola, 1986. 255 s.

Stručný usmernenia pracovať na praktickej hodine.

Na začiatku vyučovacej hodiny sa kontroluje úroveň prípravy žiakov na vyučovaciu hodinu.

Samostatná práca pozostáva zo štúdia klasifikácie shigella, analýzy schémy patogenetických a klinických príznakov shigellózy. Štúdium metód laboratórnej diagnostiky šigelózy. Žiaci naočkujú biomateriál na živné médiá. Potom sa pripravia mikropreparáty, zafarbia sa podľa Grama, vykoná sa mikroskopia, načrtnú sa mikropreparáty a podajú sa potrebné vysvetlenia. Súčasťou samostatnej práce je aj mikroskopovanie ukážkových príprav a ich zakreslenie do protokolu vyučovacej hodiny.

Na konci hodiny je vykonaná kontrola testu a rozbor konečných výsledkov samostatnej práce každého študenta.

Technologická mapa na vedenie praktickej hodiny.

p/p	Etapy	Čas v minútach	Spôsoby učenia	Vybavenie	Poloha
	Kontrola a oprava počiatočnej úrovne prípravy na vyučovaciu hodinu		Testovacie položky počiatočnej úrovne	Tabuľky, atlas	Študovňa
	Samostatná práca		Graf logickej štruktúry	Ponorný mikroskop, farbivá, podložné sklíčka, bakteriologické slučky, živné pôdy, Ploskirevovo médium, Resselovo médium, "pestrý Hissov rad"
	Samokontrola a korekcia materiálneho majstrovstva		Cielené učebné úlohy
	Kontrola testu		Testy
	Analýza výsledkov práce

Cieľové tréningové úlohy:

1. Výkaly boli získané od dieťaťa s akútnymi črevnými infekciami (odber výkalov bol vykonaný rektálnou sondou) obsahujúcimi hlien a hnis. Akú expresnú diagnostickú metódu použiť?

A. ELISA.

B. REEF.

C. RA.

D. RSK.

E. RIA.

1. Pôvodca dyzentérie bol izolovaný z chorého dieťaťa s akútnou črevnou infekciou. Aké morfologické znaky sú charakteristické pre patogén?

A . Gramnegatívna nepohyblivá tyčinka.

B . Gram-pozitívna pohyblivá tyčinka.

C . Vytvára kapsulu na živnom médiu.

D . Vo vonkajšom prostredí tvorí spóry.

E . Gram-pozitívne streptobacily.

3. Pacient, ktorý pred tromi dňami ochorel a sťažuje sa na teplotu 38°C, bolesti brucha, časté tekutá stolica, prítomnosť krvi v stolici, lekár klinicky diagnostikoval bakteriálnu úplavicu. Akú mikrobiologickú diagnostickú metódu je vhodné v tomto prípade použiť a aký materiál treba odobrať pacientovi na potvrdenie diagnózy?

A. Bakterioskopický kal.

B. Bakteriologické kal.

C. Bakterioskopická krv.

D. Bakteriologický moč.

E. Sérologická krv.

4. Shigella Sonne bola izolovaná z pacientových výkalov. Aký ďalší výskum je potrebné vykonať na určenie zdroja infekcie?

A . Vykonajte fágovú typizáciu izolovanej čistej kultúry.

B . Stanovte antibiogram.

C . Nastavte zrážaciu reakciu.

D . Vykonajte reakciu fixácie komplementu.

E . Nastavte neutralizačnú reakciu.

5. Medzi skupinou turistov (27 osôb), ktorí používali vodu z jazera na pitie, sa po dvoch dňoch u 7 ľudí objavili príznaky akútnej hnačky. Aký materiál by sa mal poslať do bakteriologického laboratória na zistenie etiológie tohto ochorenia?

A. Voda, výkaly pacientov.

B. Voda, krv pacientov.

C. Potravinárske výrobky.

D. cikam sa.

E. Spútum.

6. Významnou nevýhodou mikroskopickej diagnostickej metódy pri akútnych črevných infekciách je nedostatok informácií v dôsledku morfologickej identity baktérií rodu. Enterobacteriaceae . Čo robí túto metódu informatívnejšou?

A . Rádioimunoanalýza.

B . Coombsova reakcia.

C . Prepojený imunosorbentový test.

D . Opsonizačná reakcia.

E . Imunofluorescenčná reakcia.

7. 29-ročný pacient bol hospitalizovaný so záchvatmi vracania, hnačky a tenesmy. Výkaly s kúskami hlienu a trochou krvi. Bakteriologická štúdia baktérií z kolónií na Ploskirevovom médiu odhalila nepohyblivé gramnegatívne tyčinky, ktoré nefermentujú laktózu. Vymenujte pôvodcu infekčného procesu.

A. Shigella flexneri.

B. Vibrio eltor.

C. E. Coli.

D. Proteus mirabilis.

E. Salmonella enteritidis.

8. Šalát, o ktorom sa predpokladá, že je príčinou akútnej črevnej infekcie, bol doručený do mikrobiologického laboratória. Aké živné médiá sa používajú na primárny výsev?

A . Žĺtková soľ agar, MPB.

B. MPA, MPB.

C . Selenitový vývar, Endo, Ploskireva.

D . Pečeňový vývar, Roux medium.

E . Krvný agar, alkalický agar.

9. Pri mikrobiologickom vyšetrení mleté ​​mäso boli izolované baktérie patriace do rodu Shigella. Štúdium akých vlastností mikróbov viedlo k tomuto záveru?

A . Kultúrny, farbistý.

B . Antigénne, kultúrne.

C . Sacharolytický, proteolytický.

D . Antigénne, imunogénne.

E . Morfologické, antigénne.

10. Pri mikroskopickom vyšetrení zvratkov odobratých pacientovi s príznakmi akútnej črevnej infekcie sa našli nepohyblivé tyčinky. V akom nátere alebo prípravku by sa dala študovať pohyblivosť baktérií?

A . V nátere zafarbenom Gramom.

B . V nátere zafarbenom podľa Ziehla-Neelsena.

C . Prípravok obsahuje „hustú kvapku“.

D . V nátere zafarbenom podľa Neissera.

E . Prípravok obsahuje „rozdrvenú kvapku“.

Algoritmus laboratórne práce :

1. Štúdium biologických vlastností Shigella.

2. Oboznámenie sa s klasifikáciou Shigella.

3. Analýza schémy patogenetických a klinických prejavov šigelózy.

4. Štúdium metód laboratórnej diagnostiky šigelózy.

5. Štúdium základných princípov terapie a prevencie šigelózy.

1. Príprava fixovaných preparátov z bakteriálnej kultúry.
2. Farbenie mikrosklíčka podľa Gram.
3. Mikroskopia mikrosklíčok s pomocou ponorného mikroskopu, ich rozbor a zápis do protokolu z vyučovacej hodiny.
4. Mi kroskopia a analýza demonštračných preparátov z čistých kultúr Shigella.
5. Zakreslenie demonštračných preparátov a laboratórnych diagnostických diagramov šigelózy do protokolu.
6. Vypracovanie protokolu.

Klasifikácia Shigella, ich vlastnosti. Patogenéza šigelózy.

Bakteriálna dyzentéria alebo šigelóza je infekčné ochorenie spôsobené baktériami rodu Shigella, ktoré postihuje predovšetkým hrubé črevo. Názov rodu je spojený s K. Shigi, ktorý objavil jeden z patogénov

úplavica.

Taxonómia a klasifikácia. Pôvodcovia dyzentérie patria do oddelenia Gracilicutes, čeľade Enterobacteriaceae, rodu Shigella.

Morfológia a farbiace vlastnosti. Shigella - gramnegatívne tyčinky so zaoblenými koncami, 2-3 µm dlhé, 0,5-7 µm hrubé (pozri obr. 10.1); netvoria spóry, nemajú bičíky a sú nepohyblivé. Mnohé kmene majú spoločný typ klkov a pohlavných pili. Niektoré Shigella majú mikrokapsulu.

Kultivácia. Bacily úplavice sú fakultatívne anaeróby. Sú nenáročné na živné pôdy a dobre rastú pri teplote 37 °C a pH 7,2-7,4. Na hustých médiách tvoria malé priehľadné kolónie, v tekutých médiách -

difúzny zákal. Selenitový bujón sa najčastejšie používa ako obohacovacie médium na kultiváciu Shigella.

Enzýmová aktivita. Shigella má menšiu enzymatickú aktivitu ako iné enterobaktérie. Fermentujú sacharidy za vzniku kyseliny. Dôležitým znakom, ktorý umožňuje odlíšiť Shigelly, je ich vzťah k manitolu: S. dysenteriae manitol nefermentuje, zástupcovia skupín B, C, D sú na manitol pozitívni. Biochemicky najaktívnejšie sú S. sonnei, ktoré dokážu pomaly (do 2 dní) fermentovať laktózu. Na základe vzťahu S. sonnei k ramnóze, xylóze a maltóze sa rozlišuje 7 biochemických variantov.

Antigénna štruktúra. Shigella má O-antigén, jej heterogenita umožňuje rozlíšiť sérovary a subserovary v rámci skupín; Niektorí členovia rodu vykazujú K-antigén.

Faktory patogenity. Všetky bacily dyzentérie tvoria endotoxín, ktorý má enterotropný, neurotropný a pyrogénny účinok. Okrem toho S. dysenteriae (sérovar I) - Shigella Grigoriev-Shiga - vylučujú exotoxín, ktorý má na organizmus enterotoxický, neurotoxický, cytotoxický a nefrotoxický účinok, čo následne narúša metabolizmus voda-soľ a činnosť centrálneho nervového systému, vedie k smrti epiteliálnych buniek hrubého čreva, poškodeniu renálnych tubulov. Tvorba exotoxínov je spojená s viacerými ťažký priebeh dyzentéria spôsobená týmto patogénom. Iné druhy Shigella môžu tiež produkovať exotoxín. Bol objavený faktor RF permeability, ktorý spôsobuje poškodenie ciev. Faktory patogenity zahŕňajú aj invazívny proteín, ktorý podporuje ich penetráciu do epiteliálnych buniek, ako aj proteíny pili a vonkajšej membrány zodpovedné za adhéziu a mikrokapsulu.

Odpor. Shigella má nízku odolnosť voči rôzne faktory. Odolnejší je S. sonnei, ktorý vo vode z vodovodu vydrží až 2"/2 mesiace, vo vode z otvorených nádrží až 5/2 mesiaca. S. sonnei dokáže prežiť nielen pomerne dlho, ale aj množiť vo výrobkoch, najmä mliečnych výrobkoch.

Epidemiológia. Dyzentéria je antroponotická infekcia: zdrojom sú chorí ľudia a nosiči. Mechanizmus prenosu infekcií je fekálno-orálny. Cesty prenosu môžu byť rôzne – pri Sonnovej dyzentérii prevláda potravná cesta, pri Flexnerovej – voda, pre Grigorievovu-Šigovu dyzentériu je typická cesta kontakt – domácnosť. Dyzentéria sa vyskytuje v mnohých krajinách sveta. V nedávnej

V priebehu rokov došlo k prudkému nárastu výskytu tejto infekcie. Postihnutí sú ľudia všetkých vekových kategórií, ale deti vo veku od 1 do 3 rokov sú najviac náchylné na úplavicu. Počet pacientov stúpa v júli - septembri. Rôzne druhy Shigella jednotlivo

regióny sú rozdelené nerovnomerne.

Patogenéza. Shigella vstupuje do gastrointestinálneho traktu cez ústa a dosahuje hrubé črevo. Vďaka tropizmu pre svoj epitel sa patogény pripájajú k bunkám pomocou pili a proteínov vonkajšej membrány. Vďaka invazívnemu faktoru prenikajú do vnútra buniek, tam sa množia, v dôsledku čoho bunky odumierajú. V črevnej stene sa tvoria ulcerácie, na mieste ktorých sa potom tvoria jazvy. Endotoxín, ktorý sa uvoľňuje pri zničení baktérií, spôsobuje celkovú intoxikáciu, zvýšenú črevnú motilitu a hnačku. Krv zo vzniknutých vredov končí v stolici. V dôsledku pôsobenia exotoxínu sa pozoruje výraznejšia porucha metabolizmu voda-soľ, činnosť centrálneho nervového systému a poškodenie obličiek.

Klinický obraz. Inkubačná doba trvá od 1 do 5 dní. Ochorenie začína akútne zvýšením telesnej teploty na 38-39 °C, objavujú sa bolesti brucha a hnačky. V stolici je prímes krvi a hlienu. Grigoriev-Shiga dyzentéria je najťažšia.

Imunita. Po chorobe je imunita nielen druhovo, ale aj variantne špecifická. Je krátkodobý a krehký. Často sa choroba stáva chronickou.

Mikrobiologická diagnostika. Ako materiál, ktorý sa má študovať, sa berú pacientove výkaly. Základom diagnostiky je bakteriologická metóda, ktorá umožňuje identifikovať patogén a určiť jeho citlivosť na

antibiotiká, vykonať intrašpecifickú identifikáciu (určiť biochemický variant, sérovar alebo kolicinogenovar). V prípade protrahovanej dyzentérie možno použiť ako pomocnú sérologickú metódu, ktorá spočíva v diagnostike RA, RNGA (zvýšením titra protilátok pri opakovaní reakcie možno potvrdiť diagnózu).

Liečba. Pacienti s ťažkými formami Grigorievovej-Shigovej a Flexnerovej dyzentérie sú liečení širokospektrálnymi antibiotikami s povinným zvážením antibiogramu, keďže Shigella často zahŕňa nielen rezistenciu na antibiotiká

aktívne, ale aj na antibiotikách závislé formy. Pri miernych formách dyzentérie sa antibiotiká nepoužívajú, pretože ich použitie vedie k dysbakterióze, čo zhoršuje ochorenie. patologický proces, a narušenie regeneračných procesov v sliznici hrubého čreva.

Prevencia. Jediným liekom, ktorý možno použiť v ohniskách infekcie na profylaktické účely, je bakteriofág dyzentérie. Hlavnú úlohu zohráva nešpecifická prevencia.

11. Yersinia sú pôvodcami moru. Vlastnosti. Patogenéza, imunita, laboratórna diagnostika, epidemiológia, prevencia, liečba. Úloha domácich vedcov pri štúdiu moru.

Taxonómia: Y. pestis spôsobuje mor; oddelenie Gracilicutes, čeľaď Enterobacteriaceae, rod Yersinia. Pôvodcom je Yersinia pestis.

Morfologické vlastnosti: Gramnegatívne tyčinky, vajcovitého tvaru, škvrna bipolárne. Pohyblivé, majú tobolku, netvoria spóry.

Kultúrne vlastnosti.

Fakultatívne anaeróby. Teplotné optimum +25C. Rastú dobre na jednoduchých živných médiách. Väčšina sacharidov je fermentovaná bez produkcie plynu. Psychofili – sú schopní meniť svoj metabolizmus v závislosti od teploty a rozmnožovať sa pri nízke teploty. Virulentné kmene tvoria drsné (R) kolónie, prechodné (RS) a sivasté hlienovité hladké avirulentné (S) formy.

Dva typy kolónií - mladé a dospelé. Mladé so zubatými okrajmi. Zrelé kolónie sú veľké, s hnedým zrnitým stredom a zubatými okrajmi. Na šikmom agare po dvoch dňoch pri +28 C vytvoria sivastý biely povlak, rastúci do média, na bujóne je jemný povrchový film a sediment podobný bavlne.

Biochemické vlastnosti: Vysoká fenomenálna aktivita: fermentácia na kyslú xylózu, syntéza plazmakoagulázy, fibrinolyzín, hemolyzín, lecitináza, sírovodík. Ramnóza a močovina nefermentujú.

Antigénna štruktúra.

Skupina proteín-polysacharidových a lipopolysacharidových antigénov: termostabilný somatický O-antigén a termolabilné kapsulárne V,W antigény. Virulencia baktérií je spojená s W antigénom. Produkuje faktory patogenity: fibrinolyzín, plazmakoaguláza, endotoxín, exotoxín, kapsula, V, W antigény.

Odolnosť: citlivé na antibiotiká (najmä streptomycín), nestabilné voči prostrediu pri vysokých teplotách.

Patogénne vlastnosti.

Má patogénny potenciál, potláča funkcie fagocytárny systém, potláča oxidačné vzplanutie vo fagocytoch a nerušene sa v nich množí. Faktory patogenity sú kontrolované tromi triedami plazmidov. V patogenéze existujú tri hlavné štádiá - lymfogénne zavedenie, bakteriémia, generalizovaná septikémia. Majú adhezíny a invazíny, proteíny s nízkou molekulovou hmotnosťou (inhibujú baktericídne faktory) a enterotoxín. Niektoré faktory sú kontrolované virulentnými plazmidmi.

Klinické príznaky: Inkubačná doba je niekoľko hodín až 8 dní. Existujú miestne - kožné-bubonic, bubonic; externe diseminované - primárne pľúcne, sekundárne pľúcne a črevné; generalizované – primárne septické, sekundárne septické formy moru. Regionálna lymfadenopatia, enterokolitída, reaktívna artritída, spondylitída, horúčka.

Epidemiológia: Mor je klasická prírodná ohnisková zoonóza voľne žijúcich zvierat. Hlavnými nosičmi v prírode sú svište a gophers av mestskom prostredí - potkany. Patogén prenášajú zvieracie blchy, ktoré môžu infikovať ľudí.

Imunita: bunkovo-humorálne, obmedzené trvaním a intenzitou.

Mikrobiologická diagnostika:

Bakterioskopické vyšetrenie. Z testovaného materiálu sa pripravia nátery zafarbené Gramom a vodným roztokom metylénovej modrej. Morové baktérie sú gramnegatívne tyčinky vajcovitého tvaru Bakteriologický výskum. Testovaný materiál sa naočkuje na platne s výživným agarom. Plodiny sa inkubujú pri 25 °C. Počiatočné vyšetrenie plodín sa vykoná po 10 hodinách. V tomto čase sa objavujú kolónie, ktoré sú tvorené virulentnými R-formami. Nízko- a avirulentné baktérie tvoria kolónie S-formy. Identifikácia čistej kultúry sa uskutočňuje morfológiou bakteriálnych buniek, rastovými vzormi, antigénnymi a biochemickými vlastnosťami, citlivosťou na špecifický fág a biotestom.

Baktérie tvoria film na bujóne; Mnohé cukry sú fermentované na kyselinu, indol nevzniká a želatína nie je skvapalnená. Obsahujú skupinový termostabilný somatický antigén a špecifický termolabilný kapsulárny antigén.

Biotest. Vykonáva sa na izoláciu čistej kultúry z materiálu kontaminovaného cudzou mikroflórou. Najcitlivejšie laboratórne zvieratá sú morčatá, ktorým sa materiál aplikuje subkutánne. Materiál sa podáva intraperitoneálne, ak nie je kontaminovaný inými baktériami. Po smrti zvierat sa zaznamenajú patologické zmeny v orgánoch a vykoná sa bakteriologické vyšetrenie

Expresné laboratórne diagnostické metódy:

2.RPGA - na detekciu bakteriálnych antigénov v materiáli pomocou štandardného antimorového séra, ktorého protilátky sú nanesené na červené krvinky.

Liečba: antibiotiká – streptomycín, tetracyklínové lieky.

Prevencia:špecifická prevencia - živá atenuovaná morová vakcína EV. Existuje suchá tabletová vakcína na perorálne použitie. Na posúdenie imunity proti moru (prirodzená postinfekčná a očkovacia látka) možno použiť intradermálny alergický test s pestínom.

Morový bakteriofág– pri identifikácii Y.pestis.

Suchá vakcína proti moru - sušená živá kultúra vakcinačného kmeňa EV Y. pestis, používaná na prevenciu moru.

Mikrobiológia úplavice

Dyzentéria je infekčné ochorenie charakterizované všeobecnou intoxikáciou tela, hnačkou a zvláštnou léziou sliznice hrubého čreva. Ide o jedno z najčastejších akútnych črevných ochorení na svete. Choroba je od staroveku známa pod názvom „krvavá hnačka“, ale jej povaha sa ukázala byť iná. V roku 1875 ruský vedec F.A. Lesh izoloval amébu od pacienta s krvavou hnačkou. Entamoeba histolytica, v nasledujúcich 15 rokoch sa ustálila samostatnosť tohto ochorenia, pre ktoré sa zachoval názov amébóza.

Pôvodcami vlastnej dyzentérie je veľká skupina biologicky podobných baktérií zjednotených v rode Shigella. Patogén prvýkrát objavili v roku 1888 A. Chantemes a F. Vidal; v roku 1891 ju opísal A. V. Grigoriev a v roku 1898 K. Shiga pomocou séra získaného od pacienta identifikoval patogén u 34 pacientov s úplavicou, čím sa napokon dokázala etiologická úloha tejto baktérie. V nasledujúcich rokoch však boli objavení ďalší pôvodcovia dyzentérie: v roku 1900 - S. Flexner, v roku 1915 - K. Sonne, v roku 1917 - K. Stutzer a K. Schmitz, v roku 1932 - J. Boyd, v roku 1934 - D. Large, v roku 1943 - A. Sax. V súčasnosti rod Shigella zahŕňa viac ako 40 sérotypov. Všetky z nich sú krátke, nehybné gramnegatívne tyčinky, ktoré netvoria spóry alebo kapsuly, ktoré dobre rastú na bežných živných médiách a nerastú na hladových médiách s citrátom alebo malonátom ako jediným zdrojom uhlíka; netvoria H 2 S, nemajú ureázu; Voges-Proskauerova reakcia je negatívna; glukóza a niektoré ďalšie uhľohydráty sa fermentujú za vzniku kyseliny bez plynu (okrem niektorých biotypov Shigella flexneri: S. manchester A S. newcastle); Spravidla nefermentujú laktózu (s výnimkou Shigella Sonne), adonitol, salicín a inozitol, neskvapalňujú želatínu, zvyčajne tvoria katalázu a nemajú lyzíndekarboxylázu a fenylalaníndeaminázu. Obsah G + C v DNA je 49 – 53 mol%. Shigella sú fakultatívne anaeróby, optimálna teplota pre rast je 37 °C, nerastú pri teplotách nad 45 °C, optimálne pH prostredia je 6,7 - 7,2. Kolónie na hustých médiách sú okrúhle, konvexné, priesvitné, v prípade disociácie sa vytvárajú hrubé kolónie R-formy. Rast na MPB vo forme rovnomerného zákalu, drsné formy tvoria sediment. Čerstvo izolované kultúry Shigella Sonne zvyčajne tvoria kolónie dvoch typov: malé okrúhle konvexné (fáza I), veľké ploché (fáza II). Povaha kolónie závisí od prítomnosti (fáza I) alebo neprítomnosti (fáza II) plazmidu s molekulovou hmotnosťou 120 MD, čo tiež určuje virulenciu Shigella Sonne.

Medzinárodná klasifikácia Shigella je postavená s prihliadnutím na ich biochemické vlastnosti (manitol-nefermentujúca, manitol-fermentujúca, pomaly laktózu-fermentujúca Shigella) a vlastnosti antigénnej štruktúry (tabuľka 37).

V Shigella sa našli O-antigény rôznej špecificity: spoločné pre túto rodinu Enterobacteriaceae generické, druhovo, skupinovo a typovo špecifické, ako aj K-antigény; Nemajú N-antigény.

Tabuľka 37

Klasifikácia rodu baktérií Shigella

Klasifikácia berie do úvahy iba skupinovo a typovo špecifické O-antigény. V súlade s týmito charakteristikami rod Shigella je rozdelená do 4 podskupín alebo 4 druhov a zahŕňa 44 sérotypov. V podskupine A (typ Shigella dysenteriae) zahŕňala Shigella, ktorá nefermentuje manitol. Druh zahŕňa 12 sérotypov (1 – 12). Každý sérotyp má svoj vlastný špecifický typ antigénu; antigénne spojenia medzi sérotypmi, ako aj s inými druhmi Shigella, sú slabo exprimované. Do podskupiny B (typ Shigella flexneri) patrí Shigella, ktorá zvyčajne fermentuje manitol. Shigelly tohto druhu sú si navzájom sérologicky príbuzné: obsahujú typovo špecifické antigény (I – VI), podľa ktorých sa delia na sérotypy (1 – 6), a skupinové antigény, ktoré sa nachádzajú v rôznom zložení v každom sérotype a podľa ktorých sa sérotypy delia na subsérotypy. Okrem toho tento druh zahŕňa dva antigénne varianty - X a Y, ktoré nemajú typické antigény, líšia sa súbormi skupinových antigénov. sérotyp S. flexneri 6 nemá subsérotypy, ale delí sa na 3 biochemické typy podľa charakteristík fermentácie glukózy, manitolu a dulcitolu (tabuľka 38).

Tabuľka 38

Biotypy S. flexneri 6

Poznámka. K – fermentácia s tvorbou iba kyseliny; CG – fermentácia s tvorbou kyseliny a plynu; (–) – žiadne kvasenie.

Lipopolysacharidový antigén O vo všetkých Shigella Flexner obsahuje ako hlavnú primárnu štruktúru skupinový antigén 3, 4, jeho syntéza je riadená chromozomálnym génom lokalizovaným v blízkosti his-lokusu. Typovo špecifické antigény I, II, IV, V a skupinové antigény 6, 7, 8 sú výsledkom modifikácie antigénov 3, 4 (glykozylácia alebo acetylácia) a sú určené génmi zodpovedajúcich konvertujúcich profágov, miestom integrácie z ktorých sa nachádza v lac - pro oblasti chromozómu Shigella.

V krajine sa objavil v 80. rokoch. XX storočia a nový subsérotyp, ktorý sa rozšíril S. flexneri 4(IV:7, 8) sa líši od subsérotypu 4a (IV:3, 4) a 4b (IV:3, 4, 6), vznikol z variantu S. flexneri Y(IV: 3, 4) v dôsledku lyzogenizácie jeho konvertujúcimi profágmi IV a 7, 8.

Do podskupiny C (typ Shigella boydii) patrí Shigella, ktorá zvyčajne fermentuje manitol. Členovia skupiny sa od seba sérologicky líšia. Antigénne spojenia v rámci druhu sú slabo exprimované. Tento druh zahŕňa 18 sérotypov (1 – 18), z ktorých každý má svoj vlastný hlavný typ antigénu.

V podskupine D (typ Shigella sonnei) zahŕňali Shigella, ktoré zvyčajne fermentujú manitol a sú schopné pomaly (po 24 hodinách inkubácie a neskôr) fermentovať laktózu a sacharózu. vyhliadka S. sonnei zahŕňa jeden sérotyp, ale kolónie fázy I a II majú svoje vlastné typovo špecifické antigény. Pre vnútrodruhovú klasifikáciu Shigella Sonne boli navrhnuté dve metódy:

1) ich rozdelenie na 14 biochemických typov a podtypov podľa ich schopnosti fermentovať maltózu, ramnózu a xylózu; 2) rozdelenie na typy fágov podľa citlivosti na súbor zodpovedajúcich fágov.

Tieto typizačné metódy majú hlavne epidemiologický význam. Okrem toho sú Shigella Sonne a Shigella Flexner typizované na rovnaký účel na základe ich schopnosti syntetizovať špecifické kolicíny (kolicinogenotypizácia) a citlivosti na známe kolicíny (kolicinotypizácia). Na určenie typu kolicínov produkovaných Shigellou navrhli J. Abbott a R. Chenon sady štandardných a indikátorových kmeňov Shigella a na stanovenie citlivosti Shigella na známe typy kolicínov, súbor štandardných kolicinogénnych kmeňov P. Fredericka. sa používa.

Odpor. Shigella má pomerne vysokú odolnosť voči environmentálnym faktorom. Na bavlnenej tkanine a papieri prežijú až 30 - 36 dní, v sušených výkaloch - 4 - 5 mesiacov, v pôde - 3 - 4 mesiace, vo vode - 0,5 - 3 mesiace, na ovocí a zelenine – do 2 týždňov, v mlieku a mliečnych výrobkoch – do niekoľkých týždňov; pri teplote 60 °C odumierajú za 15 – 20 minút. Citlivý na roztoky chlóramínu, aktívny chlór a iné dezinfekčné prostriedky.

Faktory patogenity. Najdôležitejšou biologickou vlastnosťou Shigella, ktorá určuje ich patogenitu, je schopnosť napádať epitelové bunky, množiť sa v nich a spôsobiť ich smrť. Tento účinok možno zistiť pomocou keratokonjunktiválneho testu (vloženie jednej slučky kultúry Shigella (2–3 miliardy baktérií) pod spodné viečko morčiatka spôsobuje rozvoj serózno-hnisavej keratokonjunktivitídy, ako aj infikovaním bunkových kultúr ( cytotoxický účinok) alebo kuracích embryí (ich smrť), alebo intranazálne u bielych myší (vývoj pneumónie). Hlavné faktory patogenity Shigelly možno rozdeliť do troch skupín:

1) faktory určujúce interakciu s epitelom sliznice;

2) faktory, ktoré zaisťujú odolnosť makroorganizmu voči humorálnym a bunkovým obranným mechanizmom a schopnosť shigelly reprodukovať sa vo svojich bunkách;

3) schopnosť produkovať toxíny a toxické produkty, ktoré určujú vývoj samotného patologického procesu.

Do prvej skupiny patria adhézne a kolonizačné faktory: ich úlohu zohrávajú pili, proteíny vonkajšej membrány a LPS. Adhéziu a kolonizáciu podporujú enzýmy, ktoré ničia hlien – neuraminidáza, hyaluronidáza, mucináza. Do druhej skupiny patria invázne faktory, ktoré podporujú penetráciu Shigella do enterocytov a ich reprodukciu v nich a v makrofágoch so súčasným prejavom cytotoxického a (alebo) enterotoxického účinku. Tieto vlastnosti sú riadené génmi plazmidu s molekulovou hmotnosťou 140 MD (kóduje syntézu proteínov vonkajšej membrány, ktoré spôsobujú inváziu) a chromozomálnymi génmi Shigella: kcp A (spôsobuje keratokonjunktivitídu), cyt (zodpovedný za deštrukciu buniek ), ako aj ďalšie zatiaľ neidentifikované gény. Ochranu Shigella pred fagocytózou zabezpečuje povrchový K-antigén, antigény 3, 4 a lipopolysacharid. Okrem toho má lipid A endotoxínu Shigella imunosupresívny účinok: potláča aktivitu imunitných pamäťových buniek.

Tretia skupina faktorov patogenity zahŕňa endotoxín a dva typy exotoxínov nachádzajúcich sa v Shigella - Shiga a Shiga-like exotoxíny (SLT-I a SLT-II), ktorých cytotoxické vlastnosti sú najvýraznejšie v S. dysenteriae 1. Shiga a Shiga podobné toxíny sa našli aj v iných sérotypoch S. dysenteriae, tiež sa tvoria S. flexneri, S. sonnei, S. boydii, EHEC a niektoré salmonely. Syntéza týchto toxínov je riadená toxovými génmi konvertujúcich fágov. Enterotoxíny typu LT sa nachádzajú u Shigelly Flexner, Sonne a Boyda. Ich syntéza LT je riadená plazmidovými génmi. Enterotoxín stimuluje aktivitu adenylátcyklázy a je zodpovedný za rozvoj hnačky. Shiga toxín alebo neurotoxín nereaguje s adenylátcyklázovým systémom, ale má priamy cytotoxický účinok. Shiga a Shiga podobné toxíny (SLT-I a SLT-II) majú molekulovú hmotnosť 70 kDa a pozostávajú z podjednotiek A a B (posledná z 5 rovnakých malých podjednotiek). Receptorom pre toxíny je glykolipid bunkovej membrány.

Virulencia Shigella Sonne tiež závisí od plazmidu s molekulovou hmotnosťou 120 MD. Riadi syntézu asi 40 vonkajších membránových polypeptidov, z ktorých sedem je spojených s virulenciou. Shigella Sonne s týmto plazmidom tvoria kolónie fázy I a sú virulentné. Kultúry, ktoré stratili plazmid, tvoria kolónie fázy II a nemajú virulenciu. Plazmidy s molekulovou hmotnosťou 120–140 MD sa našli u Shigelly Flexnerovej a Boyda. Lipopolysacharid Shigella je silný endotoxín.

Charakteristiky epidemiológie. Zdrojom nákazy sú len ľudia. Žiadne zviera v prírode netrpí úplavicou. V experimentálnych podmienkach sa dyzentéria môže reprodukovať iba u opíc. Spôsob infekcie je fekálno-orálny. Cesty prenosu: voda (hlavne pre Shigella Flexner), potraviny, najmä mlieko a mliečne výrobky (prevládajúca cesta infekcie pre Shigella Sonne) a kontakt v domácnosti, najmä pre druhy S. dysenteriae.

Charakteristickým znakom epidemiológie dyzentérie je zmena v druhovom zložení patogénov, ako aj biotypov Sonne a sérotypov Flexner v určitých regiónoch. Napríklad do konca 30. rokov. XX storočia na podiel S. dysenteriae 1 tvoril až 30–40 % všetkých prípadov dyzentérie a potom sa tento sérotyp začal vyskytovať čoraz menej často a takmer vymizol. Avšak v 60. – 80. rokoch 20. storočia. S. dysenteriae sa znovu objavila na historickej scéne a spôsobila sériu epidémií, ktoré viedli k vytvoreniu troch jej hyperendemických ohnísk - v Strednej Amerike, Strednej Afrike a Južnej Ázii (India, Pakistan, Bangladéš a ďalšie krajiny). Príčiny zmeny v druhovom zložení patogénov dyzentérie sú pravdepodobne spojené so zmenami kolektívnej imunity a zmenami vlastností baktérií dyzentérie. Najmä návratnosť S. dysenteriae 1 a jeho rozšírená distribúcia, ktorá spôsobila tvorbu hyperendemických ložísk úplavice, je spojená s jej získavaním plazmidov, ktoré spôsobili mnohopočetné liekovej rezistencie a zvýšenú virulenciu.

Charakteristiky patogenézy a kliniky. Inkubačná doba dyzentérie je 2–5 dní, niekedy menej ako jeden deň. Tvorenie infekčné zameranie v sliznici zostupnej časti hrubého čreva (esovitá a konečníková), kam preniká patogén dyzentérie, má cyklický charakter: adhézia, kolonizácia, zavedenie Shigelly do cytoplazmy enterocytov, ich intracelulárna reprodukcia, deštrukcia a odmietnutie epitelových buniek, uvoľnenie patogénov do črevného lúmenu; potom začína ďalší cyklus - adhézia, kolonizácia atď. Intenzita cyklov závisí od koncentrácie patogénov v parietálnej vrstve sliznice. V dôsledku opakovaných cyklov zápalové zameranie rastie, výsledné vredy, spájajúce, zvyšujú expozíciu črevnej steny, v dôsledku čoho sa v stolici objavuje krv, hlienovité hrudky a polymorfonukleárne leukocyty. Cytotoxíny (SLT-I a SLT-II) spôsobujú deštrukciu buniek, enterotoxín – hnačka, endotoxíny – celková intoxikácia. Klinický obraz dyzentérie je do značnej miery určený tým, aký typ exotoxínu je vo väčšej miere produkovaný patogénom, stupňom jeho alergénneho účinku a imunitným stavom organizmu. Mnohé otázky patogenézy dyzentérie však zostávajú nejasné, najmä: znaky priebehu dyzentérie u detí prvých dvoch rokov života, dôvody prechodu akútnej dyzentérie na chronickú, význam senzibilizácie, mechanizmus lokálnej imunity črevnej sliznice a pod. Najtypickejšími klinickými prejavmi dyzentérie sú hnačky, časté nutkanie: v ťažkých prípadoch až 50 a viackrát denne, tenesmy (bolestivé kŕče konečníka) a celková intoxikácia. Charakter stolice je určený stupňom poškodenia hrubého čreva. Najťažšia dyzentéria je spôsobená S. dysenteriae 1, najľahšie - Sonnova úplavica.

Postinfekčná imunita. Ako ukázali pozorovania opíc, po prekonaní úplavice zostáva silná a pomerne dlhotrvajúca imunita. Spôsobujú ho antimikrobiálne protilátky, antitoxíny, zvýšená aktivita makrofágov a T-lymfocytov. Významnú úlohu zohráva lokálna imunita črevnej sliznice sprostredkovaná IgAs. Imunita je však typovo špecifická, silná skrížená imunita sa nevyskytuje.

Laboratórna diagnostika. Hlavná metóda je bakteriologická. Materiálom na výskum sú výkaly. Schéma izolácie patogénu: očkovanie na diferenciálne diagnostické médiá Endo a Ploskirev (paralelne na obohacovacie médium, po ktorom nasleduje očkovanie na médium Endo a Ploskirev) s cieľom izolovať izolované kolónie, získať čistú kultúru, študovať jej biochemické vlastnosti a s prihliadnutím na druhé identifikácia pomocou polyvalentných a monovalentných diagnostických aglutinačných sér. Vyrábajú sa nasledujúce komerčné séra.

1. Shigella, ktorá nefermentuje manitol:

Komu S. dysenteriae 1 A 2

Komu S. dysenteriae 3 – 7(polyvalentné a monovalentné),

Komu S. dysenteriae 8 – 12(polyvalentné a monovalentné).

2. Do manitolu fermentujúceho Shigella:

na typické antigény S. flexneri I, II, III, IV, V, VI,

na zoskupenie antigénov S. flexneri 3, 4, 6, 7, 8- polyvalentný,

na antigény S. boydii 1 – 18(polyvalentné a monovalentné), na antigény S. sonnei I fáza, II fáza,

na antigény S. flexneri I–VI+ S. sonnei– polyvalentný.

Na rýchlu identifikáciu Shigelly sa odporúča nasledujúca metóda: podozrivá kolónia (negatívna na laktózu na médiu Endo) sa subkultivuje na médiu TSI (angl. trojitý cukor železo) – trojcukrový agar (glukóza, laktóza, sacharóza) so železom na stanovenie produkcie H2S; alebo do média obsahujúceho glukózu, laktózu, sacharózu, železo a močovinu. Každý organizmus, ktorý rozkladá močovinu po 4 až 6 hodinách inkubácie, je s najväčšou pravdepodobnosťou členom rodu Proteus a môžu byť vylúčené. Mikroorganizmus, ktorý produkuje H2S alebo má ureázu alebo kyselinotvorný kĺb (fermentes laktóza alebo sacharóza), možno vylúčiť, hoci kmene produkujúce H2S by sa mali skúmať ako možní členovia rodu Salmonella. Vo všetkých ostatných prípadoch by sa kultúra pestovaná na týchto médiách mala preskúmať a ak fermentuje glukózu (zmena farby kolóny), izolovať ju v čistej forme. Zároveň sa môže študovať v sklenenej aglutinačnej reakcii s príslušnými antisérami rodu Shigella. V prípade potreby sa vykonajú ďalšie biochemické testy na kontrolu členstva v rode. Shigella, a tiež študijnú mobilitu.

Na detekciu antigénov v krvi (aj ako súčasť CEC), moči a stolici je možné použiť nasledujúce metódy: RPGA, RSK, koagulačná reakcia (v moči a stolici), IFM, RAGA (v krvnom sére). Tieto metódy sú vysoko účinné, špecifické a vhodné na včasnú diagnostiku.

Na sérologickú diagnostiku možno použiť: RPHA s príslušnou erytrocytárnou diagnostikou, imunofluorescenčnú metódu (nepriama modifikácia), Coombsovu metódu (stanovenie titra neúplných protilátok). Diagnostický význam má aj test na alergiu s dysenterínom (roztok proteínových frakcií Shigelly Flexner a Sonne). Reakcia sa berie do úvahy po 24 hodinách, považuje sa za pozitívnu v prítomnosti hyperémie a infiltrátu s priemerom 10–20 mm.

Liečba. Hlavná pozornosť sa venuje obnoveniu normálneho metabolizmu voda-soľ, racionálnej výžive, detoxikácii, racionálnej antibiotickej terapii (s prihliadnutím na citlivosť patogénu na antibiotiká). Dobrý účinok sa dosiahne skorým užívaním polyvalentného bakteriofága dyzentérie, najmä tabliet s pektínovým obalom, ktorý chráni fág pred pôsobením žalúdočnej šťavy HCl; V tenkom čreve sa pektín rozpúšťa, fágy sa uvoľňujú a uplatňujú svoj účinok. Na preventívne účely by sa mal fág podávať aspoň raz za tri dni (obdobie jeho prežívania v čreve).

Problém špecifickej prevencie. Na vytvorenie umelej imunity proti úplavici boli použité rôzne vakcíny: z usmrtených baktérií, chemikálie, alkohol, ale všetky sa ukázali ako neúčinné a boli prerušené. Vakcíny proti Flexnerovej úplavici boli vytvorené zo živej (mutantnej, na streptomycíne závislej) Shigelly Flexnerovej; ribozomálne vakcíny, ale tiež nenašli široké použitie. Preto problém špecifickej prevencie dyzentérie zostáva nevyriešený. Hlavným spôsobom boja proti úplavici je zlepšenie vodovodného a kanalizačného systému, zabezpečenie prísnych hygienických a hygienických režimov v potravinárskych podnikoch, najmä v mliekarenskom priemysle, v zariadeniach starostlivosti o deti, na verejných miestach a pri udržiavaní osobnej hygieny.

UDC 616.935-074(047)

A.M.Sadykovej

Kazašská národná lekárska univerzita

pomenovaný po S.D. Asfendiyarov, Almaty

Klinika infekčných a tropických chorôb

Spoľahlivá diagnostika dyzentérie je jednou z naliehavých úloh dohľadu nad AEI. Presná diagnóza bakteriálnej úplavice má dôležité za správne a včasná liečba pacienta a vykonať potrebné protiepidemické opatrenia. Údaje uvedené v prehľade ukazujú, že vzhľadom na rozšírenú prevalenciu dyzentérie, nedostatok citlivosti a neskorý vzhľad Vzhľadom na pozitívne výsledky mnohých diagnostických metód je vhodné rozvíjať diagnostický potenciál na zistenie tejto infekcie.

Kľúčové slová: diagnostika, dyzentéria, metóda lymfocytov viažucich antigén.

Rozpoznanie infekcie shigella v klinickej praxi naráža na značné ťažkosti v dôsledku objektívnych faktorov, medzi ktoré patrí klinická patomorfóza dyzentérie, zvýšenie počtu atypické formy choroby, existencia značného počtu chorôb infekčnej a neinfekčnej povahy, ktoré majú klinické prejavy podobné úplavici. V polovici prípadov sa pod diagnózou „klinická dyzentéria“ skrývajú nerozpoznané ochorenia inej etiológie.

Najväčšie ťažkosti čelí lekárovi počas počiatočného vyšetrenia pacienta pred prijatím výsledkov paraklinických diagnostických metód. Rozpoznanie úplavice je tiež ťažké v prítomnosti sprievodné ochorenia gastrointestinálny trakt.

Od začiatku používania etiologickej laboratórnej diagnostiky dyzentérie bolo navrhnutých a testovaných pomerne veľa metód. Existuje mnoho klasifikácií metód na etiologickú diagnostiku infekcií. Metodicky je najviac opodstatnená klasifikácia navrhnutá B.V. Punisher. Vo vzťahu k diagnostike dyzentérie boli princípy metodologicky podloženej klasifikácie použité B.V. Karalník, N.M. Nurkina, B.K. Erkinbeková..

Laboratórne metódy na diagnostiku dyzentérie zahŕňajú bakteriologické (izolácia a identifikácia patogénu) a imunologické. Posledne menované zahŕňajú imunologické metódy in vivo (Tsuverkalov test na alergiu) a in vitro. Imunologické metódy in vitro majú oproti testu Tsuverkalov jednu nepochybnú výhodu - nie sú spojené so zavedením cudzích antigénov do tela.

Väčšina výskumníkov stále verí, že bakteriologický výskum zahŕňa izoláciu čistá kultúra pôvodcu ochorenia s jeho následnou identifikáciou podľa morfologických, biochemických a antigénnych charakteristík je najspoľahlivejšou metódou diagnostiky infekcie šigelózou. Frekvencia izolácie Shigella z výkalov pacientov s klinickou diagnózou „akútna dyzentéria“ sa podľa rôznych autorov pohybuje od 30,8% do 84,7% a dokonca 91,1%. Takýto významný rozsah medzi rôznymi autormi závisí nielen od objektívnych faktorov ovplyvňujúcich efektivitu bakteriologického výskumu, ale aj od dôslednosti diagnostiky (alebo vylúčenia) „klinickej dyzentérie“. Účinnosť bakteriologického výskumu je ovplyvnená takými objektívne faktory ako znaky priebehu ochorenia, spôsob odberu a dodania materiálu do laboratória, kvalita kultivačných médií, kvalifikácia personálu, načasovanie kontaktu pacienta so zdravotníckymi pracovníkmi, použitie antimikrobiálne látky pred odberom materiálu na výskum. Kvantitatívne mikrobiologické vyšetrenie exkrementy pri akútnej dyzentérii ukazujú, že pri akejkoľvek klinickej forme infekcie dochádza k najmasívnejšiemu uvoľňovaniu patogénov v prvých dňoch choroby a počnúc 6. a najmä 10. dňom choroby sa koncentrácia Shigelly vo výkaloch výrazne klesá. T.A. Avdeeva zistil, že nízky obsah Shigella a prudká prevaha nepatogénnych mikroorganizmov vo výkaloch prakticky vylučujú možnosť bakteriologickej detekcie baktérií dyzentérie.

Je známe, že bakteriologické potvrdenie infekcie shigella je najčastejšie možné pri vyšetrovaní pacientov presne v prvých dňoch ochorenia - koprodulácia patogénu sa vo veľkej väčšine prípadov najskôr izoluje pri prvom vyšetrení. Pozitívne výsledky bakteriologického vyšetrenia sa pozorujú iba v prvých 3 dňoch ochorenia u 45–49 % pacientov, v prvých 7 dňoch u 75 %. Tillett a Thomas považujú aj obdobie vyšetrenia pacientov za dôležitý faktor určujúci účinnosť bakteriologickej metódy na diagnostiku dyzentérie. Podľa T.A. Avdeeva, v prvých dňoch choroby sa najintenzívnejšie uvoľňovanie patogénu pozoruje pri dyzentérii Sonne, menej intenzívne pri dyzentérii Flexner a najmenej pri dyzentérii Flexner VI; v neskorších štádiách ochorenia pretrváva vysoká koncentrácia najdlhšie pri Flexnerovej dyzentérii, kratšiu dobu - Shigella Sonne a najmenej dlho - Shigella Flexner VI.

Hoci je teda bakteriologické vyšetrenie stolice najspoľahlivejšou metódou na diagnostiku infekcie šigelózou, významnými nevýhodami sú vyššie uvedené obmedzenia jej účinnosti. Dôležité je tiež poukázať na obmedzenia včasnej diagnostiky pomocou bakteriologickej metódy, pri ktorej je trvanie rozboru 3-4 dni. V súvislosti s týmito okolnosťami má veľký praktický význam využitie ďalších laboratórnych diagnostických metód. Ďalšia mikrobiologická metóda na diagnostiku dyzentérie je tiež založená na detekcii živých Shigella. Ide o reakciu zvýšenia fágového titra (PTR) založenú na schopnosti špecifických fágov množiť sa výlučne v prítomnosti homológnych živých mikroorganizmov. Zvýšenie titra indikátorového fága indikuje prítomnosť zodpovedajúcich mikróbov v prostredí. Testovanie diagnostickej hodnoty RSF na infekciu shigella vykonal B.I. Khaimzon, T.S. Vilkomirskaya. RSF má pomerne vysokú citlivosť. Porovnanie minimálne koncentrácie Shigella vo výkaloch, zachytená bakteriologickou metódou (12,5 tisíc baktérií v 1 ml) a RSF (3,0 - 6,2 tisíc), naznačuje nadradenosť RSF.

Keďže frekvencia pozitívnych výsledkov RNF je priamo závislá od stupňa kontaminácie stolice, použitie metódy dáva najväčší efekt aj v prvých dňoch ochorenia a pri ťažších formách infekčného procesu. Vyššia citlivosť metódy však určuje jej špeciálne výhody oproti bakteriologickému vyšetreniu v neskorých štádiách ochorenia, ako aj pri vyšetrovaní pacientov s miernou, asymptomatickou a subklinickou formou infekcie, s nízkou koncentráciou patogénu v stolici. RSF sa používa aj pri vyšetrovaní pacientov, ktorí užívali antibakteriálne lieky, pretože tieto výrazne znižujú frekvenciu pozitívnych výsledkov bakteriologickej výskumnej metódy, ale majú oveľa menší vplyv na účinnosť RSF. Citlivosť RSF nie je absolútna kvôli existencii kmeňov Shigella odolných voči fágom: podiel kmeňov odolných voči fágom sa môže značne líšiť - od 1 % do 34,5 %.

Veľkou výhodou RSF je jeho vysoká špecifickosť. Pri vyšetreniach zdravých ľudí, ako aj pacientov s infekčnými ochoreniami inej etiológie, boli výsledky pozitívnej reakcie pozorované iba v 1,5% prípadov. RSF je cenná doplnková metóda na diagnostikovanie infekcie shigella. Ale dnes sa táto metóda používa zriedka kvôli jej technickej zložitosti. Ďalšie metódy sú imunologické. S ich pomocou sa zaznamená imunitná odpoveď špecifická pre patogén alebo sa pomocou imunologických metód stanovia antigény patogénov.

Vzhľadom na závažnosť špecifických infekčných alergických procesov pri infekcii šigelózou sa spočiatku používali alergologické diagnostické metódy, ktoré zahŕňali intradermálny alergický test s dyzentérínom (IDT). Liek „dysenterín“, ktorý je špecifickým alergénom Shigella bez toxických látok, získal D.A. Tsuverkalov a prvýkrát bol použitý v klinickom prostredí pri vykonávaní intradermálneho testu L.K. Korovitského v roku 1954. Podľa E.V. Golyusova a M.Z. Trokhimenko, v prítomnosti predchádzajúcej akútnej dyzentérie alebo sprievodných alergických ochorení s kožnými prejavmi (ekzém, žihľavka atď.). pozitívne výsledky VPD sa pozorujú oveľa častejšie (paraalergia). Analýza výsledkov VPD v rôzne obdobia akútna dyzentéria ukazuje, že špecifická alergia sa vyskytuje už v prvých dňoch ochorenia, maximálnu závažnosť dosiahne na 7. – 15. deň a potom postupne odznie. Pozitívne výsledky reakcie boli získané pri vyšetrení zdravých ľudí vo veku od 16 do 60 rokov v 15–20 % prípadov a u ľudí vo veku od 3 do 7 rokov – v 12,5 % prípadov. Ešte častejšie boli nešpecifické pozitívne výsledky VPD pozorované u pacientov s gastrointestinálnymi ochoreniami – v 20–36 % prípadov. Zavedenie alergénu bolo sprevádzané rozvojom lokálnej reakcie u 35,5 – 43,0 % pacientov so salmonelózou, u 74 – 87 % pacientov s coli-0124-enterokolitídou. Vážnym argumentom proti širokému používaniu VPD v klinickej praxi bol jej alergénny účinok na organizmus. Vzhľadom na vyššie uvedené môžeme povedať, že táto metóda nie je príliš špecifická. Tsuverkalov test tiež nie je druhovo špecifický. Výsledky pozitívnych reakcií boli rovnako časté pri rôznych etiologických formách dyzentérie.

Okrem VPD sa používali aj iné diagnostické reakcie s rôznym stupňom platnosti, považované za alergické, napríklad alergénová leukocytolytická reakcia (ALC), ktorej podstatou bolo špecifické poškodenie alebo úplná deštrukcia aktívne alebo pasívne senzibilizovaných neutrofilov po kontaktu s príslušným antigénom. Túto reakciu však nemožno pripísať včasným diagnostickým metódam, pretože maximálna frekvencia pozitívnych výsledkov bola pozorovaná v dňoch 6-9 choroby a predstavovala 69%. Bola tiež navrhnutá alergénová leukemická reakcia (ALE). Je založená na schopnosti leukocytov senzibilizovaného organizmu aglomerovať sa pri vystavení homologickému alergénu (dysenterínu). Pre nedostatok dôkazov o presných mechanizmoch takýchto testov a nedostatočnú zhodu ich výsledkov s etiológiou ochorenia sa tieto metódy po krátkom období ich používania v ZSSR následne nerozšírili.

Detekcia antigénov Shigella v tele je diagnosticky ekvivalentná izolácii patogénu. Hlavné výhody metód detekcie antigénu oproti bakteriologickému výskumu, ktoré ich oprávňujú klinická aplikácia, je schopnosť identifikovať nielen životaschopné mikroorganizmy, ale aj mŕtve a dokonca zničené, ktoré získava zvláštny význam pri vyšetrovaní pacientov počas alebo krátko po cykle antibakteriálnej liečby.

Jednou z najlepších metód expresnej diagnostiky dyzentérie bolo imunofluorescenčné vyšetrenie stolice (Coonsova metóda). Podstatou metódy je detekcia Shigelly ošetrením testovaného materiálu sérom obsahujúcim špecifické protilátky značené fluorochrómmi. Kombináciu značených protilátok s homológnymi antigénmi sprevádza špecifická žiara komplexov, detegovaná vo fluorescenčnom mikroskope. V praxi sa používajú dva hlavné varianty Koonsovej metódy: priama, v ktorej sa používa sérum obsahujúce značené protilátky proti antigénom Shigella, a nepriama (dvojstupňová), s použitím séra neznačeného fluorochrómom (alebo globulínovej frakcie anti- sérum Shigella) v prvej fáze. V druhom stupni sa proti globulínom séra anti-Shigella použitého v prvom stupni použije sérum značené fluorochrómom. Porovnávacia štúdia diagnostickej hodnoty dvoch variantov imunofluorescenčnej metódy neodhalila veľké rozdiely v ich špecifickosti a citlivosti. V klinickej praxi je použitie tejto metódy najúčinnejšie pri vyšetrovaní pacientov v skoré dátumy choroby, ako aj pri ťažších formách infekcie. Významnou nevýhodou imunofluorescenčnej metódy je jej nedostatočná špecifickosť. Najdôležitejší dôvod Nedostatočnou špecifickosťou imunofluorescenčnej reakcie je antigénna afinita Enterobacteriaceae rôznych rodov. Preto sa táto metóda považuje za návod na rozpoznanie infekcie shigella.

Na detekciu antigénov Shigella bez mikroskopie sa používajú rôzne reakcie. Tieto metódy umožňujú detegovať antigény patogénov vo výkaloch u 76,5 - 96,0 % pacientov s bakteriologicky potvrdenou dyzentériou, čo naznačuje ich pomerne vysokú citlivosť. Najvhodnejšie je použiť tieto metódy práve v neskorších štádiách ochorenia. Väčšina autorov hodnotí špecifickosť týchto diagnostických metód pomerne vysoko. Avšak F.M. Ivanov, ktorý použil RSC na detekciu antigénov shigella vo výkaloch, získal pozitívne výsledky pri vyšetrovaní zdravých ľudí a pacientov s črevnými infekciami inej etiológie v 13,6% prípadov. Podľa autora je použitie metódy vhodnejšie na identifikáciu špecifických antigénov v moči, pretože frekvencia nešpecifických pozitívnych reakcií je v druhom prípade oveľa nižšia. Použitie rôznych výskumných metód umožňuje zistiť antigény Shigella v moči veľkej väčšiny pacientov s bakteriologicky potvrdenou dyzentériou. Dynamika vylučovania antigénov močom má niektoré zvláštnosti - detekcia antigénnych látok je v niektorých prípadoch možná už od prvých dní ochorenia, ale s najväčšou frekvenciou a konzistenciou je možná 10. - 15. deň a aj. neskôr. Podľa B.A. Godovanny et al, podiel pozitívnych výsledkov na zistenie antigénov shigely v moči (SAC) po 10. dni choroby je 77 % (zodpovedajúci údaj pre bakteriologické vyšetrenie stolice je 47 %). V súvislosti s touto okolnosťou je vyšetrenie moču na prítomnosť antigénov patogénov cennou doplnkovou metódou pri dyzentérii, predovšetkým za účelom neskorej a retrospektívnej diagnostiky.

Podľa N.M. Nurkina, ak je protilátkové imunoreagens získané z polyklonálnych sér, sú možné pozitívne indikačné výsledky, ak sú vo vzorke prítomné príbuzné antigény. Napríklad pomocou erytrocytárneho diagnostika z vysoko aktívneho séra proti S.flexneri VI sa deteguje aj antigén S.flexneri I-V, keďže Shigella oboch poddruhov majú spoločný druhový antigén. Shigella antigény môžu byť stanovené počas obdobia ochorenia v krvnom sére aj v sekrétoch.

Lee Won Ho a kol. Ukázalo sa, že frekvencia detekcie antigénov Shigella a ich koncentrácia v krvi a moči sú vyššie v prvých dňoch ochorenia a že koncentrácia detekovaných antigénov je vyššia u stredne ťažkých prípadov ochorenia ako u ľahkých.

CM. Omirbayeva navrhla metódu indikovania Shigella antigénu, založenú na použití formalinizovaných erytrocytov ako sorbentu pre antigény zo študovaného fekálneho extraktu s následnou aglutináciou s imunitným sérom. Posúdenie špecifickosti tejto metódy si podľa nášho názoru vyžaduje ďalší výskum, keďže fekálne extrakty obsahujú významné množstvá antigény iných baktérií, ktoré nie sú pôvodcom tohto črevného ochorenia.

Množstvo výskumníkov navrhuje enzýmovú imunoanalýzu ako metódu rýchlej diagnostiky akútnej dyzentérie, ktorá je podľa mnohých autorov považovaná za vysoko citlivú a vysoko špecifickú. Zároveň najviac vysoký stupeň antigén sa deteguje v dňoch 1-4 choroby. Napriek zjavným výhodám ELISA, medzi ktoré patrí vysoká citlivosť, možnosť prísneho inštrumentálneho kvantitatívneho účtovania a jednoduché nastavenie reakcie, je rozšírené použitie tejto metódy obmedzené kvôli potrebe špeciálneho vybavenia.

Na zvýšenie senzitivity a špecifickosti rôznych sérologických metód na detekciu antigénov sa odporúča použitie monoklonálnych protilátok, imunoglobulínových fragmentov, syntetických protilátok, farbenie striebrom LPS a ďalšie technologické vylepšenia.

Často nie je možné detekovať antigén infekčného agens ani pri použití vysoko citlivých reakcií na detekciu antigénov patogénov v biologických substrátoch tela, pretože významná časť antigénnych látok sa zjavne nachádza v biovzorke vo forme imunitných komplexov. v tele. Pri vyšetrovaní pacientov s bakteriologicky potvrdenou akútnou dyzentériou boli pozitívne výsledky stanovenia antigénu pomocou RSC zaznamenané podľa niektorých údajov len v 18 % prípadov.

T.V. Remneva a kol. Navrhujú použiť ultrazvuk na dezintegráciu komplexov protilátok s časticami patogénu a potom určiť antigén patogénu v RSC v chlade. Metóda bola použitá na diagnostiku dyzentérie, ako výskumný materiál boli použité vzorky moču od pacientov s akútnymi črevnými infekciami.

Použitie precipitačnej reakcie na detekciu antigénu pri akútnej dyzentérii nie je opodstatnené pre jej nízku citlivosť a špecifickosť. Domnievame sa, že špecifickosť akýchkoľvek metód na indikáciu antigénov Shigella môže byť významne zvýšená použitím monoklonálnych protilátok proti Shigella.

Koaglutinačná reakcia je tiež jednou z metód rýchlej diagnostiky šigelózy, ako aj antigénov patogénov radu iných infekcií. Pri šigelóze možno antigény patogénov stanoviť od prvých dní ochorenia počas celého akútneho obdobia, ako aj do 1 - 2 týždňov po zastavení bakteriálnej exkrécie. Výhody koaglutinačnej reakcie sú jednoduchosť výroby diagnostických súprav, nastavenie reakcie, nákladová efektívnosť, rýchlosť, citlivosť a vysoká špecifickosť.

Pri vykonávaní diagnostiky na stanovenie antigénov Shigella od samého začiatku ochorenia je podľa mnohých autorov najúčinnejšie vyšetrenie výkalov pacientov. S progresiou ochorenia sa znižuje schopnosť detegovať antigény Shigella v moči a slinách, hoci sa nachádzajú vo výkaloch s takmer rovnakou frekvenciou ako na začiatku ochorenia. Je potrebné vziať do úvahy, že v prvých 3–4 dňoch choroby je o niečo efektívnejšie testovať výkaly na antigén v RPGA. Uprostred choroby sú RPHA a RNAb rovnako účinné a od 7. dňa je RNAb účinnejšia pri hľadaní antigénu Shigella. Tieto vlastnosti sú spôsobené postupnou deštrukciou buniek Shigella a ich antigénov v črevách pacienta v priebehu ochorenia. Antigény Shigella vylučované močom sú relatívne menšie ako antigény vo výkaloch. Preto je vhodné vyšetrovať moč v RNAt. V moči žien, na rozdiel od moču mužov, sa v dôsledku pravdepodobnej fekálnej kontaminácie rovnako často zisťujú antigény Shigella pomocou RPHA a RNAb.

Hoci antigén sa deteguje oveľa častejšie (94,5 – 100 %) v tých vzorkách stolice, z ktorých je možné izolovať Shigella, ako vo vzorkách, z ktorých Shigella nie je izolovaná (61,8 – 75,8 %), s paralelnými bakteriologickými a sérologickými (pre antigén) pri štúdiu vzoriek stolice od pacientov s dyzentériou sa vo všeobecnosti shigella izolovala len z 28,2 - 40,0 % vzoriek a antigén sa zistil v 65,9 - 91,5 % vzoriek. Je dôležité zdôrazniť, že druhová špecifickosť detegovaného antigénu vždy zodpovedá špecifickosti sérových protilátok, ktorých titer sa v dynamike čo najviac zvyšuje. Pri zameraní sa na podmienený diagnostický titer protilátok možno niekedy pozorovať nezrovnalosti v špecifickosti takýchto protilátok a detekovaného antigénu. Tento nesúlad je spôsobený nedostatočnou diagnostickou spoľahlivosťou jediného stanovenia aktivity protilátok v sére. V tomto prípade etiologická diagnóza musí vychádzať zo špecificity detegovaného antigénu.

Metóda PCR pre úlohu priamej identifikácie príznakov patogénu je blízka metódam indikovania antigénov. Umožňuje určiť DNA patogénu a je založený na princípe prirodzenej replikácie DNA, vrátane odvíjania dvojzávitnice DNA, divergencie reťazcov DNA a komplementárnej adície oboch. Replikácia DNA nemôže začať v žiadnom bode, ale len v určitých štartovacích blokoch – krátkych dvojvláknových úsekoch. Podstata metódy spočíva v tom, že označením takýchto blokov úseku DNA špecifického len pre daný druh (nie však pre iné druhy) je možné tento konkrétny úsek mnohokrát reprodukovať (zosilniť). Testovacie systémy založené na princípe amplifikácie DNA vo väčšine prípadov umožňujú odhaliť baktérie a vírusy, ktoré sú pre človeka patogénne, a to aj v prípadoch, keď ich detekciu nemožno zistiť inými metódami. Špecifickosť testovacích systémov PCR (so správnym výberom primerov špecifických pre taxón, vylúčením falošne pozitívnych výsledkov a absenciou inhibítorov amplifikácie v biologických testoch) v zásade umožňuje vyhnúť sa problémom spojeným s krížovo reagujúcimi antigénmi, čím sa zabezpečí veľmi vysoká špecifickosť. Stanovenie sa môže uskutočniť priamo na klinickom materiáli obsahujúcom živý patogén. Ale napriek tomu, že citlivosť PCR môže dosiahnuť matematicky možnú hranicu (detekcia 1 kópie templátu DNA), metóda sa v praxi diagnostiky šigelózy nepoužíva kvôli jej relatívne vysokej cene.

V rozšírenej klinickej praxi sú medzi sérologickými výskumnými metódami najrozšírenejšie tie, ktoré sú založené na stanovení hladiny a dynamiky sérových protilátok proti podozrivému pôvodcovi ochorenia.

Niektorí autori stanovili protilátky proti Shigella v koprofiltrátoch. Koproprotilátky sa objavujú oveľa skôr ako protilátky v sére. Aktivita protilátok dosahuje maximum v dňoch 9-12 a v dňoch 20-25 sa zvyčajne nezistia. R. Laplane a kol., naznačujú, že je to spôsobené deštrukciou protilátok v čreve pôsobením proteolytických enzýmov. Koproprotilátky sa nedajú zistiť u zdravých ľudí.

W. Barksdale a kol., T.N. Nikolaeva a kol. uvádzajú zvýšenie účinnosti dešifrovania diagnózy a identifikácie rekonvalescentov prostredníctvom súčasného stanovenia sérových a koproprotilátok.

Detekcia aglutinínov v diagnostických titroch je možná pri bakteriologicky potvrdenej dyzentérii len u 23,3 % pacientov. Obmedzená senzitivita RA sa prejavuje aj v nedostatočne vysokých titroch aglutinínov zistených s jej pomocou. Existujú dôkazy o nerovnakej citlivosti RA pri rôznych etiologických formách infekcie šigelózou. Podľa A.A. Klyucharev, protilátky v titri 1:200 a viac sa pomocou RA detegujú len u 8,3 % pacientov s Flexnerovou dyzentériou a ešte zriedkavejšie so Sonnovou dyzentériou. Pozitívne výsledky reakcie sú nielen častejšie, ale aj vo vyšších titroch sa pozorujú pri dyzentérii Flexner I-V a Flexner VI ako pri dyzentérii Sonne. Pozitívne výsledky RA sa objavujú od konca prvého týždňa ochorenia a najčastejšie sa zaznamenávajú v druhom alebo treťom týždni. Prvých 10 dní choroby predstavuje 39,6 % všetkých výsledkov pozitívnych reakcií. Podľa A.F. Podlevsky et al., aglutiníny v diagnostických titroch sa detegujú v prvom týždni ochorenia u 19% pacientov, v druhom týždni - u 25% a v treťom - u 33% pacientov.

Frekvencia pozitívnych výsledkov RA a výška titrov protilátok zistených s jeho pomocou sú priamo závislé od závažnosti priebehu infekcie šigelózou. Podľa V.P. Zubareva, použitie antibiotickej terapie neznižuje frekvenciu pozitívnych výsledkov RA, avšak pri predpisovaní antibiotík v prvých 3 dňoch ochorenia sa aglutiníny zisťujú v nižších titroch.

RA má obmedzenú špecifickosť. Pri vyšetrovaní zdravých ľudí boli pozitívne výsledky RA dosiahnuté v 12,7% prípadov, v 11,3% prípadov boli pozorované skupinové reakcie. Vzhľadom na antigénny vzťah baktérií Flexner I-V a Flexner VI sa krížové reakcie obzvlášť často pozorujú v zodpovedajúcich etiologických formách infekcie šigelózou.

S príchodom pokročilejších metód sérodiagnostiky infekcie šigelózou RA postupne strácala na význame. Diagnostický význam aglutinačnej reakcie („Vidalova dyzentérna reakcia“) (RA) pri dyzentérii odhadujú rôzni výskumníci nejednoznačne, avšak výsledky prác väčšiny autorov poukazujú na obmedzenú senzitivitu a špecificitu tejto metódy.

Najčastejšie sa na stanovenie protilátok používa nepriama (pasívna) hemaglutinačná reakcia (IPHA). Podrobné štúdie diagnostickej hodnoty pasívnej hemaglutinačnej reakcie (RPHA) pre infekciu shigella vykonal A.V. Lullu, L.M. Shmuter, T.V. Vlokh a množstvo ďalších výskumníkov. Ich výsledky nám umožňujú dospieť k záveru, že RPGA je jednou z najúčinnejších metód na sérologickú diagnostiku dyzentérie, hoci nie je bez niektorých spoločných nevýhod, ktoré sú vlastné metódam tejto skupiny.

Porovnávacia štúdia citlivosti pri úplavici RPGA a aglutinačnej reakcii ukazuje veľkú prevahu prvej metódy. Podľa A.V. Lullu priemerné titre RPHA pri tomto ochorení prevyšujú priemerné titre RA 15-krát (vo vrchole ochorenia 19-21-krát), protilátky vo vysokých hladinách (1:320 - RPHA) sa zistia, keď používa sa 4,5-krát častejšie ako v titri (1:160 pri vykonávaní aglutinačnej reakcie). Pri bakteriologicky potvrdenej akútnej dyzentérii sa pri vyšetrovaní 53 – 80 % pacientov zaznamená pozitívna reakcia RPHA v diagnostických titroch.

Hemaglutiníny sa detegujú od konca prvého týždňa ochorenia, frekvencia detekcie a titer protilátok sa zvyšujú, maximum dosahujú na konci druhého a tretieho týždňa, potom ich titer postupne klesá.

Existuje jasná závislosť frekvencie pozitívnych výsledkov RPGA a titrov hemaglutinínu od závažnosti a charakteru priebehu infekcie shigella. Relevantné štúdie ukázali, že pri vymazaných a subklinických formách infekcie boli pozitívne výsledky RPGA získané menej často ako pri akútnej klinicky významnej dyzentérii (52,9 a 65,0 %), zatiaľ čo iba 4 odpovedali v titroch 1:200 - 1:400 2 % sér (s klinicky výraznou formou - 31,2 %) a s predĺženými a chronickými formami boli pozitívne výsledky RPGA zaznamenané u 40,8 % pacientov, vrátane titra 1:200 – iba 2,0 %. Existujú aj správy o rozdielnej citlivosti RPHA pri určitých etiologických formách infekcie šigelózou. Podľa L.M. Schmutera, najvyššie titre hemaglutinínov sa pozorujú pri dyzentérii Sonne a výrazne nižšie pri dyzentérii Flexner I-V a Flexner VI. Antibakteriálna liečba začatá v skorých štádiách ochorenia, znížením trvania a intenzity antigénneho podráždenia, môže spôsobiť výskyt hemaglutinínov v krvnom sére v nižších titroch.

Rovnako ako aglutinačná reakcia, RPGA nie vždy umožňuje presne rozpoznať etiologickú formu infekcie šigelou, ktorá je spojená s možnosťou skupinových reakcií. Krížové reakcie sa pozorujú hlavne pri dyzentérii Flexnerovho typu - medzi dyzentériou Flexner I-V a Flexner VI. Humorálna imunitná odpoveď u mnohých pacientov je slabá. Nemožno vylúčiť možnosť skríženej aglutinácie v dôsledku bežných antigénov. Medzi výhody tejto metódy však patrí jednoduchosť reakcie, možnosť rýchleho získania výsledkov a pomerne vysoká diagnostická účinnosť. Značná nevýhoda túto metódu spočíva v tom, že diagnózu možno stanoviť najskôr 5. deň choroby, maximálne titre diagnostických protilátok možno určiť do 3. týždňa choroby, takže metódu možno klasifikovať ako „retrospektívnu“.

Na účely diagnostiky dyzentérie sa tiež navrhuje stanoviť hladinu špecifických cirkulujúcich imunitných komplexov reprezentovaných O-antigénom S. sonnei v kombinácii so špecifickou protilátkou pomocou nepriamej „sendvičovej verzie“ enzýmového imunosorbentu pre vysokú citlivosť a špecificitu, metódu sa však odporúča použiť až v 5. – 8. dni choroby.

U pacientov s dyzentériou sa od samého začiatku ochorenia zisťuje špecifické zvýšenie bakteriofixačnej aktivity krvi v dôsledku antigén-väzbovej aktivity erytrocytov. V prvých 5 dňoch ACI stanovenie antigén-väzbovej aktivity erytrocytov umožňuje stanoviť etiológiu ochorenia v 85-90% prípadov. Mechanizmus tohto javu nie je dobre pochopený. Dá sa predpokladať, že jeho základom je väzba imunitného komplexu antigén-protilátka erytrocytmi cez ich C3b receptory (u primátov vrátane človeka) alebo Fcy receptory (u iných cicavcov).

Spomedzi relatívne nových metód zaznamenávania špecifickej imunitnej odpovede na bunkovej úrovni priťahuje pozornosť stanovenie antigén viažucich lymfocytov (ABL), ktoré reagujú so špecifickým, taxonomicky významným antigénom. Detekcia ASL sa uskutočňuje rôznymi metódami - párová aglutinácia lymfocytov s antigénom, imunofluorescencia, RIA, adsorpcia lymfocytov na kolóny obsahujúce antigén, adhézia mononukleárnych buniek na sklenené kapiláry, nepriama reakcia tvorby rozety (IRRO). Je potrebné poznamenať, že takéto vysoko citlivé metódy na zaznamenávanie ASL, ako je ELISA a RIA, adsorpcia lymfocytov na kolónach obsahujúcich antigén, sú technicky relatívne zložité a nie sú vždy dostupné na široké použitie. Práca viacerých autorov preukázala vysokú senzitivitu a špecificitu RNRO na detekciu ASL pri rôznych ochoreniach. Množstvo výskumníkov identifikovalo úzky vzťah medzi obsahom ASL v krvi pacientov s rôznymi patológiami a formou, závažnosťou a dobou ochorenia, jeho prechodom do zdĺhavého, resp. chronická forma.

Niektorí autori sa domnievajú, že stanovením hladiny ASL v dynamike ochorenia možno posúdiť účinnosť terapie. Väčšina autorov sa domnieva, že ak je úspešná, množstvo ASL klesá a ak je účinnosť liečby nedostatočná, zaznamenáva sa zvýšenie alebo stabilizácia tohto ukazovateľa. Uvádza sa, že pomocou stanovenia ASL je možné kvantifikovať senzibilizáciu na tkanivové a bakteriálne antigény, ako aj na antibiotiká, čo je dôležité diagnostická hodnota. Metóda ASL sa v obmedzenej miere využíva na diagnostiku dyzentérie.

Príležitosť skoré odhalenie ASL, už v prvých dňoch po infekcii, je veľmi dôležitá pre včasnú diagnostiku a včasnú liečbu, ktorá je pre lekára nevyhnutná.

Údaje prezentované v prehľade teda ukazujú, že vzhľadom na rozšírenú prevalenciu dyzentérie, nedostatočnú citlivosť a neskoré objavenie sa pozitívnych výsledkov mnohých diagnostických metód je vhodné rozvinúť diagnostický potenciál na detekciu tejto infekcie. Údaje získané pri mnohých infekčných ochoreniach o vysokej účinnosti metódy ASL a skorý výskyt jej pozitívneho výsledku určujú vyhliadky na štúdium a použitie tejto metódy na šigelózu.

Bibliografia

1 Juščuk N.D., Brodov L.E. Diferenciálna diagnostika a liečba akútnych črevných infekcií // Ros. a. gastroenterol., hepatol., koloprotol. – 2000. – 10, č. 5. – S. 13 – 16. – Rus. – ISSN 1382-4376. – RU.

2 Shuvalova E.P., Zmushko E.I. Syndromová diagnostika infekčných chorôb. // Učebnica. – S-P.: Peter, 2001. – S. 138-141.

3 Karalnik B.V., Amireev S.A., Syzdykov M.S. Princípy a možnosti laboratórnych diagnostických metód a interpretácia ich výsledkov v práci epidemiológa // Metóda. odporúčať. - Almaty. – 1997. – 21 s.

4 Karalnik B.V. Sérologická diagnostika bakteriálnych črevných infekcií. // Metóda. odporúčania. – Almaty, 1973. – 3-20 s.

5 5. Nurkina N.M. Porovnávacia účinnosť metód sérologickej diagnostiky dyzentérie pomocou senzibilizovaných erytrocytov: Abstrakt práce. dis. Ph.D. – Almaty, 1984. – 22 s.

6 Karalnik B.V., Nurkina N.M. Komplexná sérologická diagnostika dyzentérie. // Metóda. odporúčania. – Almaty, 1983. – 24 s.

7 Erkinbeková B.K. Spôsob indikovania antigénov Shigella v sanitárnych a epidemiologických štúdiách dyzentérie: Autorský abstrakt. diss. ...kandidát lekárskych vied. – Almaty, 1995. – 18 s.

8 Nikitin V.M., Georgitsa F.I., Plugaru S.V. atď. Rýchlejšie metódy diagnostika infekčných chorôb. // Kišiňov. - 1987. - 106 s.

9 Neverov V.A. Stratégia a taktika diagnostiky a liečby akútnych črevných infekcií. // Petrohrad - 1996. – 12 s.

10 Vorobiev A.A. Lekárska mikrobiológia, virológia a imunológia. // M.- 2004.- str. 7-8.

11 Ivanov K.S., Ivanov A.I. Diagnóza akútnych hnačkových infekcií // Klin. med. – 1992. – Číslo 7-8 – S. 64-69.

12 Ciudin L., Pencu E., Mihai, I. a kol. Sérologická identifikácia kmeňov Shigella flex neri koagulačnou reakciou // Roum. Arch. Microbiol.Immunol. –1995/ — Vol/ 54(4). — S. 295 — 311.

13 Lindberg A.A., Cam P.D., Chan N. a kol. Shigellosis vo Vietname: séroepidové miologické štúdie s použitím lipopolysacharidových antigénov v enzýmových imunoanalýzach // Rev. Infikovať. Dis. – 1991. – Vol. 13, dodatok 4. - S.231 - 237.

14 Sloper S. Shigella. // In: Enterobacteriaceae-infekcia. Lipsko.- 1968.- R. 375–441.

15 Jacobs J., Rudenský B., Dresner J. a kol. Porovnanie štyroch laboratórnych testov na diagnostiku hnačky spojenej s Clostridium difficile // Eur. J. Clin. Microbiol. Infect.Dis. – 1996. – Zv. 15(7). – S. 561-566.

16 Klyucharev A.A., Poleshko D.V., Vershenya M.I. Klinické a epidemiologické znaky priebehu dyzentérie v posledných rokoch. // Zdravotníctvo Bieloruska. – 1973. – Číslo 11.- S. 54-56.

17 Gusarskaya I.L. Charakteristiky klinického priebehu Sonnovej dyzentérie v súčasnom štádiu a niektoré otázky jej prevencie. // V knihe: Problémy infekčných chorôb. - Vologda. - 1970. -S. 23-27.

18 Shitov I.A., Trinitatskaya M.I. Trvanie bakteriálnej exkrécie u pacientov s akútnou dyzentériou. // V knihe: Črevné infekcie.- Časť 2. - L. 1972. - S. 161-163.

19 Avdeeva T.A. Kvantitatívna mikrobiologická štúdia dyzentérie (výsledky vývoja a aplikácie metódy na štúdium klinických, mikrobiologických a epidemiologických vzorcov dyzentérie). Autorský abstrakt. dis. pre žiadosť o zamestnanie vedec krok. Dr. med. Sci. L., 1964, 28 s.

20 Tillet H., Thomas M. Kultivácia stolice pri diagnostike Sonnovej dyzentérie: štatistická metóda na odhad skutočnej miery izolácie. // Medzinár. J. Epidemiol.- 1974.- zv. 3.- R. 177-181.

21 Khaimzon B.I. Reakcia zvyšujúceho sa fágového titra pri diagnostike akútnej dyzentérie u dospelých. Autorský abstrakt. dis. pre žiadosť o zamestnanie vedec krok. môcť. lekárske vedy Voronež, 1965, 16 s.

22 Vilkomirskaya T.S. Materiály o štúdiu senzitivity a špecifickosti reakcie na zvýšenie fágového titra (RNF) pri diagnostike dyzentérie. // V knihe: Problematika imunológie infekčných a alergických ochorení. Ufa.- 1970.- S. 48-49.

23 Ivanov F.M. Porovnávacia hodnota metód výsevu, rastu titrafágov a detekcie antigénnych látok v rôznych štádiách dysenterického procesu. Autorský abstrakt. dis. pre žiadosť o zamestnanie vedec krok. môcť. lekárske vedy Orenburg, 1963, 10 s.

24 Vilkomirskaya T.S. O klinickom a epidemiologickom význame reakcie zvýšenia fágového titra (RNF) v diagnostike dyzentérie v Ufe. Autorský abstrakt. dis. pre žiadosť o zamestnanie vedec krok. môcť. med. Sci. Ufa, 1971, 24 s.

25 Mazurin N.D., Rozina-Itskina Ts.S. Reakcia zvyšujúceho sa titra fágov pri diagnostike dyzentérie. // JMEI. - 1963. - Číslo 1. - S. 113-116.

26 Golyusova E.V., Trochimenko M.Z. O význame Tsuverkalovho testu v diagnostike akútnej dyzentérie u detí. // Črevné infekcie (Kyjev).- 1972. - vydanie. 5. - s. 97-99.

27 Fradkin V.A., Lodinová L.M. Použitie alergénov na diagnostiku chronických črevných infekcií. // V knihe: Prenášanie baktérií a chronické formy infekčných chorôb. - Časť 2.- M.-1975.- S. 213-215.

28 Lukaševič K.K. Alergická metóda diagnostika dyzentérie. // V knihe: Niektoré otázky kliniky a alergie v infekčnej patológii Kuibyshev - 1970. - S. 41-43.

29 Chechelnitsky V.M. Význam Tsuverkalovovej reakcie v diagnostike akútnej dyzentérie. // V knihe: Imunológia a črevné infekcie.Voronež.- 1970. - S. 110-114.

30 Bogdanov I.L. Alergia v patogenéze, klinický obraz a liečba infekčných chorôb. // M. - 1974. - 245 s.

31 Gorčaková G.A. Dysenterín (liek na intradermálne testovanie na diagnostiku dyzentérie). Autorský abstrakt. dis. pre žiadosť o zamestnanie vedec krok. DR. lekárske vedy Odesa, 1969, 19 s.

32 Lyubitskaya N.A., Polyak A.I. Imunodiagnostika dyzentérie u detí //VI All-Union. conf. podľa klinického biochémia, morfológia a imunologické infekcie. bol.: Abstrakty správ. – Riga, 1983. – S. 106-107.

33 Furman A.A. Porovnávacia štúdia niektoré zrýchlené metódy laboratórnej diagnostiky dyzentérie a kolienteritídy. Autorský abstrakt. dis. Nasoisk. vedec krok. môcť. med. Sci. Kyjev, 1970, 19 s.

34 Michajlov I.F., Pers I.F. Identifikácia antigénnych spojení medzi baktériami črevnej skupiny fluorescenčná protilátková metóda. JMEI, 1975, č. 5, s. 97-103.

35 Shmuter L.M. Reakcie nepriamej hemaglutinácie a neutralizácie protilátok v diagnostike dyzentérie. Autorský abstrakt. dis. pre žiadosť o zamestnanie vedec krokový kanál med. Sci. Charkov, 1968, 19 s.

36 Evdokimova T.V., Podlevsky A.F., Yafaev R.Kh. Klinické a laboratórne paralely pri akútnej dyzentérii u dospelých. – JMEI, 1974, č. 6, s. 82-85.

37 Mogilev V.E. Pasívna hemaglutinácia pri úplavici. Abstrakt práce. pre žiadosť o zamestnanie vedec krok. môcť. med. Sci. Kuibyshev, 1968, 20 s.

38 Rybáková N.A. Využitie pasívnej hemaglutinačnej inhibičnej reakcie na diagnostiku Sonnovej dyzentérie v praktickom laboratóriu. - Laboratórium. obchod, 1975, č. 3, s. 168-170.

39 Ivanov F.M. Porovnávacia hodnota metód výsevu, rastu titrafágov a detekcie antigénnych látok v rôznych štádiách dysenterického procesu. Autorský abstrakt. dis. pre žiadosť o zamestnanie vedec krok. môcť. med. Sci. Orenburg, 1963, 10 s.

40 Godovanny B.A., Litinsky Yu.I., Bodisko V.P. a iné.Kvantitatívne stanovenie antigénu Shigella Sonne v moči pacientov a nosičov baktérií. - Laboratórium. obchod, 1974, č. 6, s. 360-363.

41 Kashkin G.S. Štúdium dynamiky mikrobiálnych antigénov v krvi a moči pri akútnej dyzentérii. – V knihe: Problémy infekčných chorôb. Vologda, 1970, s. 47-50.

42 Nurkina N.M. Porovnávacia účinnosť metód sérologickej diagnostiky dyzentérie pomocou senzibilizovaných erytrocytov: Abstrakt práce. dis. Ph.D. – Almaty, 1984. – 22 s.

43 Lee Van Ho., Rubtsov I.V., Tregub A.V., Remneva T.V. Porovnávacia diagnostická hodnota niektorých metód na identifikáciu antigénov dyzentérie v substrátoch tela pacienta. // Zh.mikrobiol. – 1989. – Číslo 1. – S. 57-61.

45 Sakal N.N. Aplikácia a hodnotenie účinnosti enzýmovej imunoanalýzy vo včasnej diagnostike a prognóze priebehu Sonnovej dyzentérie: Abstrakt práce. diss. ...sladkosti. med. Sci. – Petrohrad, 1993. – 21 s.

46 Rubtsov I.V., Pimenova G.N., Kulakova V.N. O štatistickom hodnotení klinických a laboratórnych údajov ELISA // Materiály k výročnej vedecko-praktickej práci. konferencie, venované 80. výročie vzniku oddelenia infekčných chorôb MMA pomenovaného po. I. M. Sechenov (22. – 23. mája 2003). - M.: MMA im. I. M. Sechenov. - 2003. - S. 152-153.

47 Downes F.P., Green J.K. a kol. Vývoj a vyhodnotenie enzim-linked immunosorbent assay na detekciu Shiga – ako toxínu I a Shiga – ako toxínu II // J. Clin. Microbiol. – 1989. – V. 27, č. 6. – S. 1292-1297.

48 Barbans P.S., Pantyukhina A.N. Metódy na získanie a monitorovanie fluorescenčných Fab - fragmentov protilátok proti sérovým proteínom ľudí, ktorí mali týfus // Journal of microbiol., epidemiol. a imunobiol. – 1984. – č.2. – s. 102-105.

49 Použitie syntetických antigénov na diagnostiku infekčných chorôb //Techn.ser/WHO. – 1989. – Číslo 784. – S. 1-74.

50 Ekwall E., Norberg T., Swensons S.B. a kol. špecifická identifikácia antigénu O3 salmonely séroskupiny E imunofluorescenciou a koaguláciou s antisérom identifikovaná 1 syntetickým trisacharidom – albuminglykokonjugátom hovädzieho séra // J. Clin.Microb. – 1994. – 19, č.5. – S. 699-702.

51 Lee Kuo-Ka, Ellis A.E. Rýchle a citlivé farbenie strieborno-lipopolysacharidovým farbením pomocou systému Phast v rýchlej horizontálnej polyakrylamidovej gélovej elektroforéze //Elektroforéza. - 1989. - V. 10, č.10. – S. 729-731.

52 Tempieva T.V., Yuditskaya N.M., Litinsky Yu.I., Lee Vam Ho. Ultrazvuková dezintegrácia imunitných komplexov na detekciu Shigella antigénov v moči pacientov s dyzentériou // Lab. prípad. – 1988. – Číslo 9. – s. 64-66.

53 Čajka N.A. Štúdium črevných infekcií a ich patogénov pomocou moderných imunologických metód // Akútne črevné infekcie. – L.: Leningr. Výskumný ústav epidemiológie a mikro. – 1987. – vydanie. II. – S.3-8.

54 Khazenson L.B., Čajka N.A. Imunologický základ pre diagnostiku a epidemiologickú analýzu črevných infekcií. – M.: Medicína. –1987. – 112 s.

55 Kashkin G.S. Štúdium dynamiky mikrobiálnych antigénov v krvi a moči detí s akútnou úplavicou. // V knihe: Problémy infekčných chorôb. - Vologda. – 1970.- S. 47-50.

56 Godovanny B.A., Litinsky Yu.I., Bodisko V.P. Kvantitatívne stanovenie antigénu Shigella Sonne v moči pacientov a nosičov baktérií. // Lab. prípad. – 1970. – Číslo 6. – S. 360-363.

57 Rybakova N.A., Rybakov D.A. Využitie RNGA a RNAt pri epidemiologickom vyšetrovaní chorôb dyzentérickej etiológie. – Zborník Leningradského výskumného ústavu epidemiológie. a mikrobiol. pomenovaný po Pasteurovi. -T. 56. – L., 1981. – S. 58-61.

58 Vasilyeva A.V. Porovnávacie hodnotenie rôznych metód na sérologickú diagnostiku Sonnovej dyzentérie. // Črevné infekcie. – 1972. – Vydanie. Číslo 5. – S. 129-132.

59 Dubinina I.G., Shcherbo S.N., Makarov V.B. Metódy polymerázovej reťazovej reakcie v laboratórnej praxi. // Klinická laboratórna diagnostika. – 1997, č. 7. – str. 4 – 6.

60 Turkadze K.A., Podkolzin T.A., Kokoreva L.N. Porovnávacia účinnosť použitia PCR a bakteriologickej metódy pri diagnostike salmonelózy a šigelózy // Zborník k jubileu vedecký a praktický. konferencie, venované 80. výročie vzniku oddelenia infekčných chorôb MMA pomenovaného po. I. M. Sechenov (22. – 23. mája 2003). - M.: MMA im. I. M. Sechenov. - 2003. - S. 172-173.

61 Achtamov M.A., Akhmedov A.A. Porovnávacia štúdia účinnosti niektorých sérologické reakcie v laboratórnej diagnostike akútnej dyzentérie // Med. Journal of Uzbekistan. – 1984. -№1. – s. 29-31.

62 Borisov V.A. Na porovnávacie hodnotenie niektorých sérologických metód na diagnostiku dyzentérie. - Laboratórium. prípad, 1972, č. 9, s. 564-566.

63 Laplane R., Be, gue P., Omanga V. Anticorps seriques et copro-anticorps dansles infekcie bacteriennes digests de l, enfant. // Býk. Akad. nat. med. – 1975. – Sv. 159. - Číslo 7. - S. 596-600.

64 Barksdale W., Ghoda A. Aglutinačné protilátky v sére a stolici.// J. Immunol. – 1951. – Sv. 66. – S. 395 – 401.

65 Nikolaeva T.A., Kukain E.M., Khazenson L.B. Imunochemická povaha kopro- a sérových protilátok u pacientov so Sonnovou dyzentériou a inými akútnymi ochoreniami. - Tez. správa Do vedecko-praktickej. konf., venovaný 50. výročie LeningrNIIEM im. Pasteur. L., 1973, s. 53-54.

66 Lullu A.V. Aplikácia nepriamej hemaglutinačnej reakcie na diagnostiku a štúdium imunológie akútnej dyzentérie. // Autorský abstrakt. dis. pre žiadosť o zamestnanie vedec krok. môcť. med. Sci. - Tartu. - 1963. - 10 s.

67 Kľucharev A.A. Materiály na štúdium dyzentérie v Bielorusku. Poleshko D.V., Vershenya M.I. Klinické a epidemiologické znaky priebehu dyzentérie v posledných rokoch. // Autorský abstrakt. dis. pre žiadosť o zamestnanie akademický titul DR. med. Sci. - Kaunas. - 1970. - 32 s.

68 Podlevsky A.F., Tselinskaya N.M., Zhuravleva L.V., Buchel N.E. Nepriama hemaglutinačná reakcia pri dyzentérii u pacientov rôzneho veku. // V knihe: Problematika epidemiológie a prevencie črevných a prirodzených fokálnych infekcií. L., 1971, s. 93-99.

69 Zaitlenok M.A., Eremina A.M., Subbotina Yu.L. Sérologické štúdie pri akútnych črevných infekciách bakteriologicky nepotvrdené // Imunológia a imunopatológia. – Voronež, 1983. – S. 35-37.

70 Borisov V.A., Orlík N.S., Kirilyuk M.A. Imunitná odpoveď u pacientov s úplavicou s predĺženým vylučovaním Shigelly. // All-Union. conf. klinická biochémia, morfológia a imunológia infekčných chorôb. Abstraktné. správa - Riga - 1977. - S. 377-378.

71 Čilingár A.V. Výsledky paralelnej aplikácie pľúcneho modelu, nepriamej hemaglutinačnej reakcie a aglutinačnej reakcie na detekciu protilátok proti dyzentérii v krvi zdravých ľudí. // V knihe: Akútne črevné infekcie. Dyzentéria, escherichióza, salmonelóza. – L. – 1970. – S. 93-101.

72 Patton C.M., Gangorosa E.J., Weissman J.B. a kol. Diagnostická hodnota nesprávnej hemaglutinácie v séroepidemiológii infekcií Shigella. // J. of Clin. Microb. – 1976. – Sv. – 23. – S. 143-148.

73 Martinez J. Epidemiologická štúdia bakteriálnej dyzentérie. // Bol. ofic. sanit.panamer. – 1973. – Sv. 75. – S. 213-224.

74 Musabaev I.K., Abubakirova F.Z. Bakteriálna úplavica. – Tash-kent – ​​​​1973. – 258 s.

75 Dulatova M.V., Golovacheva S.N., Savitskaya O.V. Princíp RPGA v expresnej diagnostike infekcií a imunity. // V knihe: Prípravy na expresnú diagnostiku. – L., 1981. – S. 31-42.

76 Safonova N.V. Použitie nepriamej hemaglutinačnej reakcie v ohniskách akútnej črevnej infekcie na identifikáciu infikovaných ľudí a hľadanie zdrojov. – L., 1974. – 11 s.

77 Solodovnikov Yu.P., Kalashnikova G.K., Subbotina Yu.L., Bobkin S.V. Nepriama hemaglutinačná reakcia pri štúdiu protilátok u zdravých, chorých a zotavených Sonnových dyzentérií. – JMEI, 1971, č. 1. – S.13-18.

78 Provotorov V.Ya. K problematike liečby pacientov s úplavicou. – V knihe: Komunitná starostlivosť o infekčných pacientov a problematika liečby infekčných pacientov. Saratov, 1973. – S. 153-155.

79 Karalnik B.V. Metodika a taktika imunodiagnostiky infekčnej patológie. – V knihe: Problematika klinickej imunológie a imunologickej diagnostiky. Alma-Ata, 1988. – 10 s.

80 Kaplin V.I., Klevtsova G.A., Koryukhina I.P. atď Špecifická reakcia krvi v počiatočné obdobie infekcie dyzentérie a salmonely a nové možnosti včasnej špecifickej diagnostiky akútnych črevných infekcií // VI All-Union. conf. podľa klinického biochémia, morfológia a imunol. infekčné bol.: Abstrakty správ. – Riga, 1983. – S.76-77.

81 Savilov E.D., Astafiev V.A., Mamontova L.M., Volodin Yu.F. Epidemiologické črty dyzentérie v r. Východná Sibír. //Novosibirsk “Veda”, 1994. – S.42-43.

82 Ivanov K.S., Ivanov A.I. Diagnóza akútnych hnačkových infekcií // Klin. med. – 1992. – Číslo 7-8 – S. 64-69.

83 Karalnik B.V. Červené krvinky, ich receptory a imunita. //Usp.modern biol., M. – 1992. – roč.112, č.1. – S.52-61.

84 Garib F.Yu., Zalyalieva M.V. Metódy na štúdium subpopulácie lymfocytov u ľudí za rôznych patologických stavov // Metodické odporúčania. – Taškent, 1989. – 17 s.

85 Bahrg. Modabber F.Z. // J. Immunol. Meth. – 1980. – V. 38, č. 3-4. – S. 203-216.

86 Tyagotin Yu.A. // Problematika vyšetrenia a liečby pacientov s chorobami krvného systému. – L., 1975. – S. 21-25.

87 Novikov D.K., Novikova V.I. Bunkové metódy imunodiagnostiky. // Minsk, 1979. – 222 s.

88 Smirnov B.N., Toropova N.I., Mokhova G.A. a ďalšie // Materiály vedeckej konferencie All-Union „Problémy lekárskej biotechnológie“. okt. 1988. – L., 1990. – S. 114-116.

89 Slavko E.A., Deryabin P.N., Karalnik B.V. Stanovenie lymfocytov viažucich antigén ako metóda včasnej diagnostiky salmonelózy a dyzentérie // Zdravotníctvo Kazachstanu - Almaty - 1999 - č. 5-6 - S. 43-45.

90 Karalnik B.V., Kozhageldieva A.A., Karabekov A.Zh., Denisova T.G., Raipov O.R. Monitorovanie účinnosti liečby yersiniózy spôsobenej Yersinia enterocolitica // Liek. - Almaty. - 2004. - Číslo 4. - S.51-53.

91 Karalnik B.V., Denisova T.G., Plazun A.A. a i. Antigén viažuce lymfocyty tuberkulínovej špecifickosti u králikov infikovaných M. bovis v dynamike liečby tuberkulózy // Problémy tuberkulózy a pľúcnych chorôb. -M.-2006.- č.5.-P.48-53.

92 Karalnik B.V., Karabekov A.Zh., Denisova T.G., Kozhageldieva A.A., Zhunusova G.B. Diferenciálna diagnostika brucelózy a črevnej yersiniózy spôsobenej Yersinia enterocolitica serovar O9 // Medicína. - Almaty. - 2004. - č. 3. - S. 155-157.

93 Karalnik B.V., Denisova T.G., Zhunusova G.B., Fedosov S.A., Zhankin A.A., Ospanov K.S., Mizanbaeva S.U. Účinnosť rôznych protilátkových testov a antigén viažuceho lymfocytového testu pri diagnostike brucelózy u ľudí. // Lekárska imunológia. – S.-P. - 2006. - ročník 8. - č.4. — S. 567 — 572.

94 Karalnik B.V., Denisova T.G., Grushina T.A., Tugambaev T.I. Analýza imunitnej odpovede morčiat infikovaných Brucella melitensis // Journal of microbiol.- M.-2002.- No. 1.- S.54-56

95 Karalnik B.V., Berezin V.E., Denisova T.G., Deryabin P.N., Slavko E.A. a iné Dynamika obsahu lymfocytov s receptormi pre Sendai vírus pri imunizácii vírusom a imunostimulačným komplexom jeho glykoproteínov // Izvest. Ministerstvo vedy a vyššie vzdelanie RK. Ser.biol. a lekárske - Almaty.- 1999. - č. 3. - S. 50-51.

96 Garib F.Yu., Gurariy N.I., Aliev Sh.R. Charakteristika lymfocytov viažucich antigén pri chronickej hepatitíde u detí // Imunológia - 1988. - č. s. 91-93.

97 Finlay B.B., Falkow S.A. Porovnanie mikrobiálnych stratégií druhov Salmonella, Shigella a Jersinia // Interakcia baktérie – hostiteľská bunka, Alban R. Liss. Inc. – 1988. – S. 227-243.

98 Karalnik B.V., Denisova T.G., Keshileva Z.B., Pshenichnaya L.A. a iné.Antigén viažuce lymfocyty a protilátky v diagnostike syfilisu // Sexuálne prenosné infekcie. – M. – 1999. – č.5. — s. 34–36.

99 Sakanova L.M., Karalnik B.V., Ukbaeva T.D. a iné Imunočinidlá na identifikáciu lymfocytov viažucich antigén a ich testovanie v diagnostike meningokoková infekcia// Hygiena, epidemiológia a imunobiológia - Almaty. -2002.- č.1-2.-P.69-72.

100 Slavko E.A., Deryabin P.N., Karalnik B.V., Karabekov A.Zh. O špecifickosti antigén viažucich lymfocytov zistených u pacientov s akútnymi zápalovými ochoreniami gastrointestinálneho traktu. // Hygiena, epidemiológia a imunobiológia. - Almaty. - 1999. - č.2. - S. 102 - 105.

A.M.Sadykovej

Laboratórna diagnostika dyzentérie

Tү jin: Zhedel іshek infekcielaryn baqylauda, ​​​​dyzentéria nakty diagnostika ең өзу мәсеLeсі мљселі віліп сайлади. Baktérie dyzentéria durys koyylgan diagnózy veda uaqytynda jeme zhurgizuge zhane epidémia karsy sharalardy Otkіzu ushіn manyzdy. Recenzia korzetilgénneho malimetra, dyzentéria ken taraluyn nezhey otyrup, sesimtaldygynyn zhetkіlіksіzdіgі zhane kop degen diagnosticalyk adіsterdіn on natizhesіn ің cache infikovaná bola anуқталыанана diagnostika anуқталуынанана k potenciálu maxatty tүrde damytu kerek ekenіn korsetedі.

Tү sө zder: diagnostika, úplavica, antigenbaylanystyrushy adis.

A.M.Sadycovej

Laboratórna diagnostika dyzentérie

Pokračovať: Spoľahlivá diagnostika hnačky je jedným z najdôležitejších problémov kontroly akútnej črevnej infekcie. Presná diagnostika bakterióznej hnačky má vitae význam pre správnu a presnú liečbu pacienta a tiež prijatie potrebných protiepidemických opatrení. Členovia uvedení v prieskume, berúc do úvahy rozšírené hnačky, ukazujú nedostatočnú citlivosť a neskorý výskyt pozitívnych výsledkov mnohých diagnostických metód. Je nevyhnutné zamerať sa na rozvoj diagnostického potenciálu na navrhnutie infekcie.

Kľúčové slová: diagnostika, dyzentéria, metóda antigén viažucich lymfocytov.