Laboratórna diagnostika dyzentérie (prehľad literatúry). Liečba dyzentérie ľudovými prostriedkami doma

UDC 616.935-074(047)

A.M.Sadykovej

Kazašská národná lekárska univerzita

pomenovaný po S.D. Asfendiyarov, Almaty

Klinika infekčných a tropických chorôb

Spoľahlivá diagnostika dyzentérie je jednou z naliehavých úloh dohľadu nad AEI. Presná diagnóza bacilárnej dyzentérie je nevyhnutná pre správnu a včasná liečba pacienta a vykonať potrebné protiepidemické opatrenia. Údaje prezentované v prehľade ukazujú, že vzhľadom na rozšírenú prevalenciu dyzentérie, nedostatočnú citlivosť a neskoré objavenie sa pozitívnych výsledkov mnohých diagnostických metód je vhodné rozvinúť diagnostický potenciál na detekciu tejto infekcie.

Kľúčové slová: diagnostika, dyzentéria, metóda lymfocytov viažucich antigén.

Rozpoznanie infekcie shigella v klinickej praxi naráža na značné ťažkosti spôsobené objektívnymi faktormi, medzi ktoré patrí klinická patomorfóza dyzentérie, nárast počtu atypických foriem ochorenia, existencia značného počtu infekčných a neinfekčnej povahy s klinickými prejavmi podobnými úplavici. Pod diagnózou" klinická úplavica„V polovici prípadov sú skryté nerozpoznané choroby inej etiológie.

Najväčšie ťažkosti čelia lekárovi, keď vstupné vyšetrenie pacienta až do získania výsledkov paraklinických diagnostických metód. Rozpoznanie úplavice je tiež ťažké v prítomnosti sprievodné ochorenia gastrointestinálny trakt.

Od začiatku používania etiologickej laboratórnej diagnostiky dyzentérie bolo navrhnutých a testovaných pomerne veľa metód. Existuje mnoho klasifikácií metód etiologická diagnóza infekcií. Metodicky je najviac opodstatnená klasifikácia navrhnutá B.V. Punisher. Vo vzťahu k diagnostike dyzentérie boli princípy metodologicky podloženej klasifikácie použité B.V. Karalník, N.M. Nurkina, B.K. Erkinbeková..

Od laboratórne metódy Diagnóza dyzentérie je známa bakteriologická (izolácia a identifikácia patogénu) a imunologická. Posledne menované zahŕňajú imunologické metódy in vivo (Tsuverkalov test na alergiu) a in vitro. Imunologické metódy in vitro majú oproti testu Tsuverkalov jednu nepochybnú výhodu - nie sú spojené so zavedením cudzích antigénov do tela.

Väčšina výskumníkov tomu stále verí bakteriologické vyšetrenie ktorý zahŕňa izoláciu pôvodcu ochorenia v čistej kultúre s jeho následnou identifikáciou podľa morfologických, biochemických a antigénnych charakteristík, je najspoľahlivejšou metódou diagnostiky infekcie šigelózou. Frekvencia izolácie Shigella z výkalov pacientov s klinická diagnóza„akútna dyzentéria“ sa podľa rôznych autorov pohybuje od 30,8 % do 84,7 % a dokonca 91,1 %. Takýto významný rozsah medzi rôznymi autormi závisí nielen od objektívnych faktorov ovplyvňujúcich efektivitu bakteriologického výskumu, ale aj od dôslednosti diagnostiky (alebo vylúčenia) „klinickej dyzentérie“. Účinnosť bakteriologického výskumu ovplyvňujú také objektívne faktory, ako sú charakteristika priebehu ochorenia, spôsob odberu a dodania materiálu do laboratória, kvalita kultivačných médií, kvalifikácia personálu, načasovanie kontaktu pacienta. so zdravotníckymi pracovníkmi, využitie antimikrobiálne látky pred odberom materiálu na výskum. Kvantitatívna mikrobiologická štúdia výkalov pri akútnej dyzentérii ukazuje, že pre akékoľvek klinické formy infekcie dochádza k najmasívnejšiemu uvoľňovaniu patogénov v prvých dňoch choroby a počnúc 6. a najmä 10. dňom choroby koncentrácia Shigelly v stolici výrazne klesá. T.A. Avdeeva zistil, že nízky obsah Shigella a prudká prevaha nepatogénnych mikroorganizmov vo výkaloch prakticky vylučujú možnosť bakteriologickej detekcie baktérií dyzentérie.

Je známe, že bakteriologické potvrdenie infekcie shigella je najčastejšie možné pri vyšetrovaní pacientov presne v prvých dňoch ochorenia - koprodulácia patogénu sa vo veľkej väčšine prípadov najskôr izoluje pri prvom vyšetrení. Pozitívne výsledky bakteriologického vyšetrenia sa pozorujú iba v prvých 3 dňoch ochorenia u 45–49 % pacientov, v prvých 7 dňoch u 75 %. Tillett a Thomas zvažujú aj obdobie vyšetrenia pacientov dôležitým faktorom, ktorá určuje účinnosť bakteriologickej metódy na diagnostiku dyzentérie. Podľa T.A. Avdeeva, v prvých dňoch choroby sa najintenzívnejšie uvoľňovanie patogénu pozoruje pri dyzentérii Sonne, menej intenzívne pri dyzentérii Flexner a najmenej pri dyzentérii Flexner VI; V neskoré termíny ochorenie najdlhšie pretrvávajú vysoké koncentrácie pri Flexnerovej dyzentérii, kratšie obdobie - Shigella Sonne a najmenej dlho - Shigella Flexner VI.

Hoci je teda bakteriologické vyšetrenie stolice najspoľahlivejšou metódou na diagnostiku infekcie šigelózou, významnými nevýhodami sú vyššie uvedené obmedzenia jej účinnosti. Dôležité je tiež poukázať na obmedzenia včasnej diagnostiky pomocou bakteriologickej metódy, pri ktorej je trvanie rozboru 3-4 dni. V súvislosti s týmito okolnosťami má veľký praktický význam využitie ďalších laboratórnych diagnostických metód. Ďalšia mikrobiologická metóda na diagnostiku dyzentérie je tiež založená na detekcii živých Shigella. Ide o reakciu zvýšenia fágového titra (PTR) založenú na schopnosti špecifických fágov množiť sa výlučne v prítomnosti homológnych živých mikroorganizmov. Zvýšenie titra indikátorového fága indikuje prítomnosť zodpovedajúcich mikróbov v prostredí. Testovanie diagnostickej hodnoty RSF na infekciu shigella vykonal B.I. Khaimzon, T.S. Vilkomirskaya. RSF má pomerne vysokú citlivosť. Porovnanie minimálnych koncentrácií Shigella vo výkaloch zachytených bakteriologickou metódou (12,5 tisíc baktérií v 1 ml) a RSF (3,0 - 6,2 tisíc) naznačuje nadradenosť RSF.

Keďže frekvencia pozitívnych výsledkov RSF je priamo závislá od stupňa kontaminácie výkalov, použitie metódy tiež poskytuje najväčší efekt v prvých dňoch ochorenia a pri ťažších formách infekčný proces. Vyššia citlivosť metódy však určuje jej špeciálne výhody oproti bakteriologickému vyšetreniu v neskorých štádiách ochorenia, ako aj pri vyšetrovaní pacientov s miernou, asymptomatickou a subklinickou formou infekcie, s nízkou koncentráciou patogénu v stolici. RSF sa používa aj pri vyšetrovaní pacientov, ktorí užili antibakteriálne látky, pretože tieto výrazne znižujú frekvenciu pozitívnych výsledkov bakteriologickej výskumnej metódy, ale v oveľa menšej miere ovplyvňujú účinnosť RSF. Citlivosť RSF nie je absolútna kvôli existencii kmeňov Shigella odolných voči fágom: podiel kmeňov odolných voči fágom sa môže značne líšiť - od 1 % do 34,5 %.

Veľkou výhodou RSF je jeho vysoká špecifickosť. Pri vyšetreniach zdravých ľudí, ako aj pacientov s infekčnými ochoreniami inej etiológie, boli výsledky pozitívnej reakcie pozorované iba v 1,5% prípadov. RSF je cenná doplnková metóda na diagnostikovanie infekcie shigella. Ale dnes sa táto metóda používa zriedka kvôli jej technickej zložitosti. Ďalšie metódy sú imunologické. S ich pomocou sa zaznamená imunitná odpoveď špecifická pre patogén alebo sa pomocou imunologických metód stanovia antigény patogénov.

Vzhľadom na závažnosť špecifických infekčných alergických procesov pri infekcii šigelózou sa spočiatku používali alergologické diagnostické metódy, ktoré zahŕňali intradermálny alergický test s dyzentérínom (IDT). Liek „dysenterín“, ktorý je špecifickým alergénom Shigella bez toxických látok, získal D.A. Tsuverkalov a prvýkrát bol použitý v klinickom prostredí pri vykonávaní intradermálneho testu L.K. Korovitského v roku 1954. Podľa E.V. Golyusova a M.Z. Trokhimenko, v prítomnosti predchádzajúcej akútnej dyzentérie alebo sprievodných alergických ochorení s kožné prejavy(ekzém, žihľavka atď.). pozitívne výsledky VPD sa pozorujú oveľa častejšie (paraalergia). Analýza výsledkov VPD v rôzne obdobia akútna dyzentéria ukazuje, že špecifická alergia sa vyskytuje už v prvých dňoch ochorenia, maximálnu závažnosť dosiahne na 7. – 15. deň a potom postupne odznie. Pozitívne výsledky reakcie boli získané pri vyšetrení zdravých ľudí vo veku od 16 do 60 rokov v 15–20 % prípadov a u ľudí vo veku od 3 do 7 rokov – v 12,5 % prípadov. Ešte častejšie boli nešpecifické pozitívne výsledky VPD pozorované u pacientov s gastrointestinálnymi ochoreniami – v 20–36 % prípadov. Zavedenie alergénu bolo sprevádzané rozvojom lokálnej reakcie u 35,5 – 43,0 % pacientov so salmonelózou, u 74 – 87 % pacientov s coli-0124-enterokolitídou. Vážnym argumentom proti širokému používaniu VPD v klinickej praxi bol jej alergénny účinok na organizmus. Vzhľadom na vyššie uvedené môžeme povedať, že táto metóda nie je príliš špecifická. Tsuverkalov test tiež nie je druhovo špecifický. Výsledky pozitívnych reakcií boli rovnako časté pri rôznych etiologických formách dyzentérie.

Okrem VPD sa používali aj iné diagnostické reakcie s rôznym stupňom platnosti, považované za alergické, napríklad alergénová leukocytolytická reakcia (ALC), ktorej podstatou bolo špecifické poškodenie alebo úplná deštrukcia aktívne alebo pasívne senzibilizovaných neutrofilov po kontaktu s príslušným antigénom. Túto reakciu však nemožno pripísať včasným diagnostickým metódam, pretože maximálna frekvencia pozitívnych výsledkov bola pozorovaná v dňoch 6-9 choroby a predstavovala 69%. Bola tiež navrhnutá alergénová leukemická reakcia (ALE). Je založená na schopnosti leukocytov senzibilizovaného organizmu aglomerovať sa pri vystavení homologickému alergénu (dysenterínu). Pre nedostatok dôkazov o presných mechanizmoch takýchto testov a nedostatočnú zhodu ich výsledkov s etiológiou ochorenia sa tieto metódy po krátkom období ich používania v ZSSR následne nerozšírili.

Detekcia antigénov Shigella v tele je diagnosticky ekvivalentná izolácii patogénu. Hlavnými výhodami metód detekcie antigénov oproti bakteriologickému výskumu, ktoré odôvodňujú ich klinické využitie, je schopnosť identifikovať nielen životaschopné mikroorganizmy, ale aj mŕtve a dokonca zničené, ktoré získava zvláštny význam pri vyšetrovaní pacientov počas alebo krátko po cykle antibakteriálnej liečby.

Jeden z najlepšie metódy Expresnou diagnostikou dyzentérie bola imunofluorescenčná štúdia stolice (Coonsova metóda). Podstatou metódy je detekcia Shigelly ošetrením testovaného materiálu sérom obsahujúcim špecifické protilátky značené fluorochrómmi. Kombináciu značených protilátok s homológnymi antigénmi sprevádza špecifická žiara komplexov, detegovaná vo fluorescenčnom mikroskope. V praxi sa používajú dva hlavné varianty Koonsovej metódy: priama, v ktorej sa používa sérum obsahujúce značené protilátky proti antigénom Shigella, a nepriama (dvojstupňová), s použitím séra neznačeného fluorochrómom (alebo globulínovej frakcie anti- sérum Shigella) v prvej fáze. V druhom stupni sa proti globulínom séra anti-Shigella použitého v prvom stupni použije sérum značené fluorochrómom. Porovnávacia štúdia diagnostickej hodnoty dvoch variantov imunofluorescenčnej metódy neodhalila veľké rozdiely v ich špecifickosti a citlivosti. V klinickej praxi je použitie tejto metódy najúčinnejšie pri vyšetrovaní pacientov v skoré dátumy choroby, ako aj pri ťažších formách infekcie. Významnou nevýhodou imunofluorescenčnej metódy je jej nedostatočná špecifickosť. Najdôležitejším dôvodom nedostatočnej špecifickosti imunofluorescenčnej reakcie je antigénna afinita Enterobacteriaceae rôznych rodov. Preto sa táto metóda považuje za návod na rozpoznanie infekcie shigella.

Na detekciu antigénov Shigella bez mikroskopie sa používajú rôzne reakcie. Tieto metódy umožňujú detegovať antigény patogénov vo výkaloch u 76,5 - 96,0 % pacientov s bakteriologicky potvrdenou dyzentériou, čo svedčí o pomerne vysokej citlivosti. Najvhodnejšie je použiť tieto metódy práve v neskorších štádiách ochorenia. Väčšina autorov hodnotí špecifickosť týchto diagnostických metód pomerne vysoko. Avšak F.M. Ivanov, ktorý použil RSC na detekciu antigénov shigella vo výkaloch, získal pozitívne výsledky pri vyšetrovaní zdravých ľudí a pacientov s črevnými infekciami inej etiológie v 13,6% prípadov. Podľa autora je použitie metódy vhodnejšie na identifikáciu špecifických antigénov v moči, pretože frekvencia nešpecifických pozitívnych reakcií je v druhom prípade oveľa nižšia. Použitie rôzne metódyŠtúdia umožňuje zistiť antigény Shigella v moči veľkej väčšiny pacientov s bakteriologicky potvrdenou dyzentériou. Dynamika vylučovania antigénov močom má niektoré zvláštnosti - detekcia antigénnych látok je v niektorých prípadoch možná už od prvých dní ochorenia, ale s najväčšou frekvenciou a konzistenciou je možná 10. - 15. deň a aj. neskôr. Podľa B.A. Godovanny et al, podiel pozitívnych výsledkov na zistenie antigénov shigely v moči (SAC) po 10. dni choroby je 77 % (zodpovedajúci údaj pre bakteriologické vyšetrenie stolice je 47 %). V súvislosti s touto okolnosťou má pri úplavici cenný význam testovanie moču na prítomnosť antigénov patogénov. dodatočná metóda, predovšetkým za účelom neskorej a retrospektívnej diagnostiky.

Podľa N.M. Nurkina, ak je protilátkové imunoreagens získané z polyklonálnych sér, sú možné pozitívne indikačné výsledky, ak sú vo vzorke prítomné príbuzné antigény. Napríklad pomocou erytrocytárneho diagnostika z vysoko aktívneho séra proti S.flexneri VI sa deteguje aj antigén S.flexneri I-V, keďže Shigella oboch poddruhov majú spoločný druhový antigén. Shigella antigény môžu byť stanovené počas obdobia ochorenia v krvnom sére aj v sekrétoch.

Lee Won Ho a kol. Ukázalo sa, že frekvencia detekcie antigénov Shigella a ich koncentrácia v krvi a moči sú vyššie v prvých dňoch ochorenia a že koncentrácia detekovaných antigénov je vyššia v stredne ťažkých prípadoch ochorenia ako v miernych prípadoch.

CM. Omirbayeva navrhla metódu indikovania Shigella antigénu, založenú na použití formalinizovaných erytrocytov ako sorbentu pre antigény zo študovaného fekálneho extraktu s následnou aglutináciou s imunitným sérom. Posúdenie špecifickosti tejto metódy si podľa nášho názoru vyžaduje ďalší výskum, keďže fekálne extrakty obsahujú významné množstvá antigény iných baktérií, ktoré nie sú pôvodcom tohto črevného ochorenia.

Množstvo výskumníkov navrhuje enzýmovú imunoanalýzu ako metódu rýchlej diagnostiky akútnej dyzentérie, ktorá je podľa mnohých autorov považovaná za vysoko citlivú a vysoko špecifickú. Zároveň najviac vysoký stupeň antigén sa deteguje v dňoch 1-4 choroby. Napriek zjavným výhodám ELISA, medzi ktoré patrí vysoká citlivosť, možnosť prísneho inštrumentálneho kvantitatívneho účtovania a jednoduché nastavenie reakcie, je rozšírené použitie tejto metódy obmedzené kvôli potrebe špeciálneho vybavenia.

Na zvýšenie senzitivity a špecifickosti rôznych sérologických metód na detekciu antigénov sa odporúča použitie monoklonálnych protilátok, imunoglobulínových fragmentov, syntetických protilátok, farbenie striebrom LPS a ďalšie technologické vylepšenia.

Často nie je možné detegovať antigén infekčného agens ani pri použití vysoko citlivých reakcií na detekciu antigénov patogénov v biologických substrátoch tela, pretože významná časť antigénnych látok sa zjavne nachádza v biovzorke vo forme imunitné komplexy v organizme. Pri vyšetrovaní pacientov s bakteriologicky potvrdenou akútnou dyzentériou boli pozitívne výsledky stanovenia antigénu pomocou RSC zaznamenané podľa niektorých údajov len v 18 % prípadov.

T.V. Remneva a kol. Navrhujú použiť ultrazvuk na dezintegráciu komplexov protilátok s časticami patogénu a potom určiť antigén patogénu v RSC v chlade. Metóda bola použitá na diagnostiku dyzentérie, ako výskumný materiál boli použité vzorky moču od pacientov s akútnymi črevnými infekciami.

Použitie precipitačnej reakcie na detekciu antigénu pri akútnej dyzentérii nie je opodstatnené pre jej nízku citlivosť a špecifickosť. Domnievame sa, že špecifickosť akýchkoľvek metód na indikáciu antigénov Shigella môže byť významne zvýšená použitím monoklonálnych protilátok proti Shigella.

Koaglutinačná reakcia je tiež jednou z metód rýchlej diagnostiky šigelózy, ako aj antigénov patogénov radu iných infekcií. Pri šigelóze možno antigény patogénov stanoviť od prvých dní ochorenia počas celého akútneho obdobia, ako aj do 1 - 2 týždňov po zastavení bakteriálnej exkrécie. Výhody koaglutinačnej reakcie sú jednoduchosť výroby diagnostických súprav, nastavenie reakcie, nákladová efektívnosť, rýchlosť, citlivosť a vysoká špecifickosť.

Pri vykonávaní diagnostiky na stanovenie antigénov Shigella od samého začiatku ochorenia je podľa mnohých autorov najúčinnejšie vyšetrenie výkalov pacientov. S progresiou ochorenia sa znižuje schopnosť detegovať antigény Shigella v moči a slinách, hoci sa nachádzajú vo výkaloch s takmer rovnakou frekvenciou ako na začiatku ochorenia. Je potrebné vziať do úvahy, že v prvých 3–4 dňoch choroby je o niečo efektívnejšie testovať výkaly na antigén v RPGA. Uprostred choroby sú RPHA a RNAb rovnako účinné a od 7. dňa je RNAb účinnejšia pri hľadaní antigénu Shigella. Tieto vlastnosti sú spôsobené postupnou deštrukciou buniek Shigella a ich antigénov v črevách pacienta v priebehu ochorenia. Antigény Shigella vylučované močom sú relatívne menšie ako antigény vo výkaloch. Preto je vhodné vyšetrovať moč v RNAt. V moči žien, na rozdiel od moču mužov, sa v dôsledku pravdepodobnej fekálnej kontaminácie rovnako často zisťujú antigény Shigella pomocou RPHA a RNAb.

Hoci antigén sa deteguje oveľa častejšie (94,5 – 100 %) v tých vzorkách stolice, z ktorých je možné izolovať Shigella, ako vo vzorkách, z ktorých Shigella nie je izolovaná (61,8 – 75,8 %), s paralelnými bakteriologickými a sérologickými (pre antigén) pri štúdiu vzoriek stolice od pacientov s dyzentériou sa vo všeobecnosti shigella izolovala len z 28,2 - 40,0 % vzoriek a antigén sa zistil v 65,9 - 91,5 % vzoriek. Je dôležité zdôrazniť, že druhová špecifickosť detegovaného antigénu vždy zodpovedá špecifickosti sérových protilátok, ktorých titer sa v dynamike čo najviac zvyšuje. Pri zameraní sa na podmienený diagnostický titer protilátok možno niekedy pozorovať nezrovnalosti v špecifickosti takýchto protilátok a detekovaného antigénu. Tento nesúlad je spôsobený nedostatočnou diagnostickou spoľahlivosťou jediného stanovenia aktivity protilátok v sére. V tomto prípade musí byť etiologická diagnóza stanovená na základe špecifickosti detegovaného antigénu.

Metóda PCR pre úlohu priamej identifikácie príznakov patogénu je blízka metódam indikovania antigénov. Umožňuje určiť DNA patogénu a je založený na princípe prirodzenej replikácie DNA, vrátane odvíjania dvojzávitnice DNA, divergencie reťazcov DNA a komplementárnej adície oboch. Replikácia DNA nemôže začať v žiadnom bode, ale len v určitých štartovacích blokoch – krátkych dvojvláknových úsekoch. Podstata metódy spočíva v tom, že označením takýchto blokov úseku DNA špecifického len pre daný druh (nie však pre iné druhy) je možné tento konkrétny úsek mnohokrát reprodukovať (zosilniť). Testovacie systémy založené na princípe amplifikácie DNA vo väčšine prípadov umožňujú odhaliť baktérie a vírusy, ktoré sú pre človeka patogénne, a to aj v prípadoch, keď ich detekciu nemožno zistiť inými metódami. Špecifickosť testovacích systémov PCR (so správnym výberom primerov špecifických pre taxón, s výnimkou falošne pozitívne výsledky a neprítomnosť inhibítorov amplifikácie v biologických testoch) v zásade zabraňuje problémom spojeným s krížovo reaktívnymi antigénmi, čím sa zabezpečuje veľmi vysoká špecifickosť. Stanovenie sa môže uskutočniť priamo na klinickom materiáli obsahujúcom živý patogén. Ale napriek tomu, že citlivosť PCR môže dosiahnuť matematicky možnú hranicu (detekcia 1 kópie templátu DNA), metóda sa v praxi diagnostiky šigelózy nepoužíva kvôli jej relatívne vysokej cene.

V rozšírenej klinickej praxi sú medzi sérologickými výskumnými metódami najrozšírenejšie tie, ktoré sú založené na stanovení hladiny a dynamiky sérových protilátok proti podozrivému pôvodcovi ochorenia.

Niektorí autori stanovili protilátky proti Shigella v koprofiltrátoch. Koproprotilátky sa objavujú oveľa skôr ako protilátky v sére. Aktivita protilátok dosahuje maximum v dňoch 9-12 a v dňoch 20-25 sa zvyčajne nezistia. R. Laplane a kol., naznačujú, že je to spôsobené deštrukciou protilátok v čreve pôsobením proteolytických enzýmov. Koproprotilátky sa nedajú zistiť u zdravých ľudí.

W. Barksdale a kol., T.N. Nikolaeva a kol. uvádzajú zvýšenie účinnosti dešifrovania diagnózy a identifikácie rekonvalescentov prostredníctvom súčasného stanovenia sérových a koproprotilátok.

Detekcia aglutinínov v diagnostických titroch je možná pri bakteriologicky potvrdenej dyzentérii len u 23,3 % pacientov. Obmedzená senzitivita RA sa prejavuje aj v nedostatočne vysokých titroch aglutinínov zistených s jej pomocou. Existujú dôkazy naznačujúce nerovnakú citlivosť RA pri rôznych etiologických formách infekcie šigelózou. Podľa A.A. Klyuchareva, protilátky v titri 1:200 a vyššom sa pomocou RA detegujú len u 8,3 % pacientov s Flexnerovou dyzentériou a ešte zriedkavejšie so Sonnovou dyzentériou. Výsledky pozitívnych reakcií sú nielen častejšie, ale aj vo vyšších titroch pozorovaných pri dyzentérii Flexner I-V a Flexner VI ako pri dyzentérii Sonne. Pozitívne výsledky RA sa objavujú od konca prvého týždňa ochorenia a najčastejšie sa zaznamenávajú v druhom alebo treťom týždni. Prvých 10 dní choroby predstavuje 39,6 % všetkých výsledkov pozitívnych reakcií. Podľa A.F. Podlevsky et al., aglutiníny v diagnostických titroch sa detegujú v prvom týždni ochorenia u 19% pacientov, v druhom týždni - u 25% a v treťom - u 33% pacientov.

Frekvencia pozitívnych výsledkov RA a hladina titrov protilátok zistených s jeho pomocou sú priamo závislé od závažnosti infekcie shigella. Podľa V.P. Zubareva, použitie antibakteriálnej terapie neznižuje frekvenciu pozitívnych výsledkov RA, avšak pri predpisovaní antibiotík v prvých 3 dňoch ochorenia sa aglutiníny zisťujú v nižších titroch.

RA má obmedzenú špecifickosť. Pri vyšetrovaní zdravých ľudí boli pozitívne výsledky RA získané v 12,7% prípadov a skupinové reakcie boli pozorované v 11,3% prípadov. V dôsledku antigénnej príbuznosti baktérií Flexner I-V a Flexner VI sú krížové reakcie obzvlášť často pozorované v zodpovedajúcich etiologických formách infekcie shigella.

S príchodom pokročilejších metód sérodiagnostiky infekcie shigella postupne RA stratila svoj význam. Diagnostická hodnota aglutinačnej reakcie („dysenterická Vidalova reakcia“) (RA) pre dyzentériu je rôznymi výskumníkmi hodnotená nejednoznačne, avšak výsledky práce väčšiny autorov poukazujú na obmedzenú senzitivitu a špecifickosť tejto metódy.

Najčastejšie sa na stanovenie protilátok používa nepriama (pasívna) hemaglutinačná reakcia (IPHA). Podrobné štúdie diagnostickej hodnoty pasívnej hemaglutinačnej reakcie (RPHA) pre infekciu shigella vykonal A.V. Lullu, L.M. Shmuter, T.V. Vlokh a množstvo ďalších výskumníkov. Ich výsledky nám umožňujú dospieť k záveru, že RPGA je jednou z najúčinnejších metód na sérologickú diagnostiku dyzentérie, hoci nie je bez niektorých spoločných nevýhod, ktoré sú vlastné metódam tejto skupiny.

Porovnávacia štúdia citlivosti pri úplavici RPGA a aglutinačnej reakcii ukazuje veľkú prevahu prvej metódy. Podľa A.V. Lullu priemerné titre RPHA pri tomto ochorení prevyšujú priemerné titre RA 15-krát (vo vrchole ochorenia 19-21-krát), protilátky vo vysokých hladinách (1:320 - RPHA) sa zistia, keď používa sa 4,5-krát častejšie ako v titri (1:160 pri vykonávaní aglutinačnej reakcie). Pri bakteriologicky potvrdenej akútnej dyzentérii sa pri vyšetrovaní 53 – 80 % pacientov zaznamená pozitívna reakcia RPHA v diagnostických titroch.

Hemaglutiníny sa detegujú od konca prvého týždňa ochorenia, frekvencia detekcie a titer protilátok sa zvyšujú, maximum dosahujú na konci druhého a tretieho týždňa, potom ich titer postupne klesá.

Existuje jasná závislosť frekvencie pozitívnych výsledkov RPGA a titrov hemaglutinínu od závažnosti a charakteru priebehu infekcie shigella. Relevantné štúdie ukázali, že pri vymazaných a subklinických formách infekcie boli pozitívne výsledky RPGA získané menej často ako pri akútnej klinicky významnej dyzentérii (52,9 a 65,0 %), zatiaľ čo iba 4 odpovedali v titroch 1:200 - 1:400 2 % sér (s klinicky výraznou formou - 31,2 %) a s predĺženými a chronickými formami boli pozitívne výsledky RPGA zaznamenané u 40,8 % pacientov, vrátane titra 1:200 – iba 2,0 %. Existujú aj správy o rozdielnej citlivosti RPHA pri určitých etiologických formách infekcie šigelózou. Podľa L.M. Schmutera, najvyššie titre hemaglutinínov sa pozorujú pri dyzentérii Sonne a výrazne nižšie pri dyzentérii Flexner I-V a Flexner VI. Antibakteriálna úprava, začaté v skorých štádiách ochorenia, znížením trvania a intenzity antigénneho podráždenia, môže spôsobiť výskyt hemaglutinínov v krvnom sére v nižších titroch.

Rovnako ako aglutinačná reakcia, RPGA nie vždy umožňuje presne rozpoznať etiologickú formu infekcie šigelou, ktorá je spojená s možnosťou skupinových reakcií. Krížové reakcie sa pozorujú hlavne pri dyzentérii Flexnerovho typu - medzi dyzentériou Flexner I-V a Flexner VI. Humorálna imunitná odpoveď u mnohých pacientov je slabá. Nemožno vylúčiť možnosť skríženej aglutinácie v dôsledku bežných antigénov. Medzi výhody tejto metódy však patrí jednoduchosť reakcie, možnosť rýchleho získania výsledkov a pomerne vysoká diagnostická účinnosť. Značná nevýhoda túto metódu spočíva v tom, že diagnózu možno stanoviť najskôr 5. deň choroby, maximálne titre diagnostických protilátok možno určiť do 3. týždňa choroby, takže metódu možno klasifikovať ako „retrospektívnu“.

Na účely diagnostiky dyzentérie sa tiež navrhuje stanoviť hladinu špecifických cirkulujúcich imunitných komplexov reprezentovaných O-antigénom S. sonnei v kombinácii so špecifickou protilátkou pomocou nepriamej „sendvičovej verzie“ enzýmového imunosorbentu pre vysokú citlivosť a špecificitu, metódu sa však odporúča použiť až v 5. – 8. dni choroby.

U pacientov s dyzentériou sa od samého začiatku ochorenia zisťuje špecifické zvýšenie bakteriofixačnej aktivity krvi v dôsledku antigén-väzbovej aktivity erytrocytov. V prvých 5 dňoch ACI stanovenie antigén-väzbovej aktivity erytrocytov umožňuje stanoviť etiológiu ochorenia v 85-90% prípadov. Mechanizmus tohto javu nie je dobre pochopený. Dá sa predpokladať, že jeho základom je väzba imunitného komplexu antigén-protilátka erytrocytmi cez ich C3b receptory (u primátov vrátane človeka) alebo Fcy receptory (u iných cicavcov).

Spomedzi relatívne nových metód zaznamenávania špecifickej imunitnej odpovede na bunkovej úrovni priťahuje pozornosť stanovenie antigén viažucich lymfocytov (ABL), ktoré reagujú so špecifickým, taxonomicky významným antigénom. Detekcia ASL sa uskutočňuje rôznymi metódami - párová aglutinácia lymfocytov s antigénom, imunofluorescencia, RIA, adsorpcia lymfocytov na kolóny obsahujúce antigén, adhézia mononukleárnych buniek na sklenené kapiláry, nepriama reakcia tvorby rozety (IRRO). Treba poznamenať, že tak vysoko citlivé metódy registrácia ASL, ako je ELISA a RIA, adsorpcia lymfocytov na kolónach obsahujúcich antigén je technicky pomerne zložitá a nie je vždy dostupná pre široké použitie. Práca viacerých autorov preukázala vysokú senzitivitu a špecificitu RNRO na detekciu ASL pri rôznych ochoreniach. Viacerí vedci identifikovali úzky vzťah medzi obsahom ASL v krvi pacientov s rôznymi patológiami a formou, závažnosťou a obdobím ochorenia, jeho prechodom do zdĺhavej alebo chronickej formy.

Niektorí autori sa domnievajú, že stanovením hladiny ASL v dynamike ochorenia možno posúdiť účinnosť terapie. Väčšina autorov sa domnieva, že ak je úspešná, množstvo ASL klesá a ak je účinnosť liečby nedostatočná, zaznamenáva sa zvýšenie alebo stabilizácia tohto ukazovateľa. Uvádza sa, že pomocou stanovenia ASL je možné kvantifikovať senzibilizáciu na tkanivové a bakteriálne antigény, ako aj na antibiotiká, čo má dôležitú diagnostickú hodnotu. Metóda ASL sa v obmedzenej miere využíva na diagnostiku dyzentérie.

Možnosť včasnej detekcie ASL, už v prvých dňoch po infekcii, je veľmi dôležitá pre včasnú diagnostiku a včasnú liečbu, ktorá je pre lekára nevyhnutná.

Údaje prezentované v prehľade teda ukazujú, že vzhľadom na rozšírenú prevalenciu dyzentérie, nedostatočnú citlivosť a neskoré objavenie sa pozitívnych výsledkov mnohých diagnostických metód je vhodné rozvinúť diagnostický potenciál na detekciu tejto infekcie. Údaje získané pre mnohé infekčné choroby vysoká účinnosť Metóda ASL, skorý výskyt jej pozitívneho výsledku určuje vyhliadky na štúdium a použitie tejto metódy na shigelózu.

Bibliografia

1 Juščuk N.D., Brodov L.E. Diferenciálna diagnostika a liečba akútnych črevných infekcií // Ros. a. gastroenterol., hepatol., koloprotol. – 2000. – 10, č. 5. – S. 13 – 16. – Rus. – ISSN 1382-4376. – RU.

2 Shuvalova E.P., Zmushko E.I. Diagnóza syndrómu infekčné choroby. // Učebnica. – S-P.: Peter, 2001. – S. 138-141.

3 Karalnik B.V., Amireev S.A., Syzdykov M.S. Princípy a možnosti laboratórnych diagnostických metód a interpretácia ich výsledkov v práci epidemiológa // Metóda. odporúčať. - Almaty. – 1997. – 21 s.

4 Karalnik B.V. Sérologická diagnostika bakteriálnych črevných infekcií. // Metóda. odporúčania. – Almaty, 1973. – 3-20 s.

5 5. Nurkina N.M. Porovnávacia účinnosť metódy sérologickej diagnostiky dyzentérie pomocou senzibilizovaných erytrocytov: Abstrakt práce. dis. Ph.D. – Almaty, 1984. – 22 s.

6 Karalnik B.V., Nurkina N.M. Komplexná sérologická diagnostika dyzentérie. // Metóda. odporúčania. – Almaty, 1983. – 24 s.

7 Erkinbeková B.K. Spôsob indikovania antigénov Shigella v sanitárnych a epidemiologických štúdiách dyzentérie: Autorský abstrakt. diss. ...kandidát lekárskych vied. – Almaty, 1995. – 18 s.

8 Nikitin V.M., Georgitsa F.I., Plugaru S.V. a iné.Zrýchlené metódy diagnostiky infekčných chorôb. // Kišiňov. - 1987. - 106 s.

9 Neverov V.A. Stratégia a taktika diagnostiky a liečby akútnych črevných infekcií. // Petrohrad - 1996. – 12 s.

10 Vorobiev A.A. Lekárska mikrobiológia, virológia a imunológia. // M.- 2004.- str. 7-8.

11 Ivanov K.S., Ivanov A.I. Diagnóza akútnych hnačkových infekcií // Klin. med. – 1992. – Číslo 7-8 – S. 64-69.

12 Ciudin L., Pencu E., Mihai, I. a kol. Sérologická identifikácia kmeňov Shigella flex neri koagulačnou reakciou // Roum. Arch. Microbiol.Immunol. –1995/ — Vol/ 54(4). — S. 295 — 311.

13 Lindberg A.A., Cam P.D., Chan N. a kol. Shigellosis vo Vietname: séroepidové miologické štúdie s použitím lipopolysacharidových antigénov v enzýmových imunoanalýzach // Rev. Infikovať. Dis. – 1991. – Vol. 13, dodatok 4. - S.231 - 237.

14 Sloper S. Shigella. // In: Enterobacteriaceae-infekcia. Lipsko.- 1968.- R. 375–441.

15 Jacobs J., Rudenský B., Dresner J. a kol. Porovnanie štyroch laboratórnych testov na diagnostiku hnačky spojenej s Clostridium difficile // Eur. J. Clin. Microbiol. Infect.Dis. – 1996. – Zv. 15(7). – S. 561-566.

16 Klyucharev A.A., Poleshko D.V., Vershenya M.I. Klinické a epidemiologické znaky priebehu dyzentérie v posledných rokoch. // Zdravotníctvo Bieloruska. – 1973. – Číslo 11.- S. 54-56.

17 Gusarskaya I.L. Charakteristiky klinického priebehu Sonnovej dyzentérie v súčasnom štádiu a niektoré otázky jej prevencie. // V knihe: Problémy infekčných chorôb. - Vologda. - 1970. -S. 23-27.

18 Shitov I.A., Trinitatskaya M.I. Trvanie bakteriálnej exkrécie u pacientov s akútnou dyzentériou. // V knihe: Črevné infekcie.- Časť 2. - L. 1972. - S. 161-163.

19 Avdeeva T.A. Kvantitatívna mikrobiologická štúdia dyzentérie (výsledky vývoja a aplikácie metódy na štúdium klinických, mikrobiologických a epidemiologických vzorcov dyzentérie). Autorský abstrakt. dis. pre žiadosť o zamestnanie vedec krok. Dr. med. Sci. L., 1964, 28 s.

20 Tillet H., Thomas M. Kultivácia stolice pri diagnostike Sonnovej dyzentérie: štatistická metóda na odhad skutočnej miery izolácie. // Medzinár. J. Epidemiol.- 1974.- zv. 3.- R. 177-181.

21 Khaimzon B.I. Reakcia zvyšujúceho sa fágového titra pri diagnostike akútnej dyzentérie u dospelých. Autorský abstrakt. dis. pre žiadosť o zamestnanie vedec krok. môcť. lekárske vedy Voronež, 1965, 16 s.

22 Vilkomirskaya T.S. Materiály o štúdiu citlivosti a špecifickosti reakcie zvýšenia fágového titra (RFT) pri diagnostike dyzentérie. // V knihe: Problematika imunológie infekčných a alergických ochorení. Ufa.- 1970.- S. 48-49.

23 Ivanov F.M. Porovnávacia hodnota metód inokulácie, titrafágového rastu a detekcie antigénnych látok v rôznych štádiách procesu dyzentérie. Autorský abstrakt. dis. pre žiadosť o zamestnanie vedec krok. môcť. lekárske vedy Orenburg, 1963, 10 s.

24 Vilkomirskaya T.S. O klinickom a epidemiologickom význame reakcie zvýšenia fágového titra (RFT) v diagnostike dyzentérie v podmienkach Ufa. Autorský abstrakt. dis. pre žiadosť o zamestnanie vedec krok. môcť. med. Sci. Ufa, 1971, 24 s.

25 Mazurin N.D., Rozina-Itskina Ts.S. Reakcia zvyšujúceho sa titra fágov pri diagnostike dyzentérie. // JMEI. - 1963. - Číslo 1. - S. 113-116.

26 Golyusova E.V., Trochimenko M.Z. O význame Tsuverkalovho testu v diagnostike akútnej dyzentérie u detí. // Črevné infekcie (Kyjev).- 1972. - vydanie. 5. - s. 97-99.

27 Fradkin V.A., Lodinová L.M. Použitie alergénov na diagnostiku chronických črevných infekcií. // V knihe: Prenášanie baktérií a chronické formy infekčných chorôb. - Časť 2.- M.-1975.- S. 213-215.

28 Lukaševič K.K. Alergická metóda diagnostika dyzentérie. // V knihe: Niektoré klinické problémy a alergie v infekčnej patológii Kuibyshev - 1970 - str. 41-43.

29 Chechelnitsky V.M. Význam Tsuverkalovovej reakcie v diagnostike akútnej dyzentérie. // V knihe: Imunológia a črevné infekcie.Voronež.- 1970. - S. 110-114.

30 Bogdanov I.L. Alergia v patogenéze, klinický obraz a liečba infekčných chorôb. // M. - 1974. - 245 s.

31 Gorčaková G.A. Dysenterín (liek na intradermálne testovanie na diagnostiku dyzentérie). Autorský abstrakt. dis. pre žiadosť o zamestnanie vedec krok. DR. lekárske vedy Odesa, 1969, 19 s.

32 Lyubitskaya N.A., Polyak A.I. Imunodiagnostika dyzentérie u detí //VI All-Union. conf. podľa klinického biochémia, morfológia a imunologické infekcie. bol.: Abstrakty správ. – Riga, 1983. – S. 106-107.

33 Furman A.A. Porovnávacia štúdia niektoré zrýchlené metódy laboratórnej diagnostiky dyzentérie a kolienteritídy. Autorský abstrakt. dis. Nasoisk. vedec krok. môcť. med. Sci. Kyjev, 1970, 19 s.

34 Michajlov I.F., Pers I.F. Detekcia antigénnych vzťahov medzi baktériami črevnej skupiny pomocou fluorescenčných protilátok. JMEI, 1975, č. 5, s. 97-103.

35 Shmuter L.M. Reakcie nepriamej hemaglutinácie a neutralizácie protilátok v diagnostike dyzentérie. Autorský abstrakt. dis. pre žiadosť o zamestnanie vedec krokový kanál med. Sci. Charkov, 1968, 19 s.

36 Evdokimova T.V., Podlevsky A.F., Yafaev R.Kh. Klinické a laboratórne paralely pri akútnej dyzentérii u dospelých. – JMEI, 1974, č. 6, s. 82-85.

37 Mogilev V.E. Pasívna hemaglutinácia pri úplavici. Abstrakt práce. pre žiadosť o zamestnanie vedec krok. môcť. med. Sci. Kuibyshev, 1968, 20 s.

38 Rybáková N.A. Využitie pasívnej hemaglutinačnej inhibičnej reakcie na diagnostiku Sonnovej dyzentérie v praktickom laboratóriu. - Laboratórium. obchod, 1975, č. 3, s. 168-170.

39 Ivanov F.M. Porovnávacia hodnota metód inokulácie, titrafágového rastu a detekcie antigénnych látok v rôznych štádiách procesu dyzentérie. Autorský abstrakt. dis. pre žiadosť o zamestnanie vedec krok. môcť. med. Sci. Orenburg, 1963, 10 s.

40 Godovanny B.A., Litinsky Yu.I., Bodisko V.P. a iné.Kvantitatívne stanovenie antigénu Shigella Sonne v moči pacientov a nosičov baktérií. - Laboratórium. obchod, 1974, č. 6, s. 360-363.

41 Kashkin G.S. Štúdium dynamiky mikrobiálnych antigénov v krvi a moči pri akútnej dyzentérii. – V knihe: Problémy infekčných chorôb. Vologda, 1970, s. 47-50.

42 Nurkina N.M. Porovnávacia účinnosť metód sérologickej diagnostiky dyzentérie pomocou senzibilizovaných erytrocytov: Abstrakt práce. dis. Ph.D. – Almaty, 1984. – 22 s.

43 Lee Van Ho., Rubtsov I.V., Tregub A.V., Remneva T.V. Porovnávacia diagnostická hodnota niektorých metód na identifikáciu antigénov dyzentérie v substrátoch tela pacienta. // Zh.mikrobiol. – 1989. – Číslo 1. – S. 57-61.

45 Sakal N.N. Aplikácia a hodnotenie účinnosti enzýmovej imunoanalýzy vo včasnej diagnostike a prognóze priebehu Sonnovej dyzentérie: Abstrakt práce. diss. ...sladkosti. med. Sci. – Petrohrad, 1993. – 21 s.

46 Rubtsov I.V., Pimenova G.N., Kulakova V.N. O štatistickom hodnotení klinických a laboratórnych údajov ELISA // Materiály k výročnej vedecko-praktickej práci. konferencie, venované 80. výročie vzniku oddelenia infekčných chorôb MMA pomenovaného po. I. M. Sechenov (22. – 23. mája 2003). - M.: MMA im. I. M. Sechenov. - 2003. - S. 152-153.

47 Downes F.P., Green J.K. a kol. Vývoj a vyhodnotenie enzim-linked immunosorbent assay na detekciu Shiga – ako toxínu I a Shiga – ako toxínu II // J. Clin. Microbiol. – 1989. – V. 27, č. 6. – S. 1292-1297.

48 Barbans P.S., Pantyukhina A.N. Metódy na získanie a monitorovanie fluorescenčných Fab - fragmentov protilátok proti sérovým proteínom ľudí, ktorí mali týfus // Journal of microbiol., epidemiol. a imunobiol. – 1984. – č.2. – s. 102-105.

49 Použitie syntetických antigénov na diagnostiku infekčných chorôb //Techn.ser/WHO. – 1989. – Číslo 784. – S. 1-74.

50 Ekwall E., Norberg T., Swensons S.B. a kol. špecifická identifikácia antigénu O3 salmonely séroskupiny E imunofluorescenciou a koaguláciou s antisérom identifikovaná 1 syntetickým trisacharidom – albuminglykokonjugátom hovädzieho séra // J. Clin.Microb. – 1994. – 19, č.5. – S. 699-702.

51 Lee Kuo-Ka, Ellis A.E. Rýchle a citlivé farbenie strieborno-lipopolysacharidovým farbením pomocou systému Phast v rýchlej horizontálnej polyakrylamidovej gélovej elektroforéze //Elektroforéza. – 1989. – V. 10, č.10. – S. 729-731.

52 Tempieva T.V., Yuditskaya N.M., Litinsky Yu.I., Lee Vam Ho. Ultrazvuková dezintegrácia imunitných komplexov na detekciu Shigella antigénov v moči pacientov s dyzentériou // Lab. prípad. – 1988. – Číslo 9. – s. 64-66.

53 Čajka N.A. Štúdium črevných infekcií a ich patogénov pomocou moderných imunologické metódy// Akútne črevné infekcie. – L.: Leningr. Výskumný ústav epidemiológie a mikro. – 1987. – vydanie. II. – S.3-8.

54 Khazenson L.B., Čajka N.A. Imunologický základ pre diagnostiku a epidemiologickú analýzu črevných infekcií. – M.: Medicína. –1987. – 112 s.

55 Kashkin G.S. Štúdium dynamiky mikrobiálnych antigénov v krvi a moči detí s akútnou úplavicou. // V knihe: Problémy infekčných chorôb. - Vologda. – 1970.- S. 47-50.

56 Godovanny B.A., Litinsky Yu.I., Bodisko V.P. Kvantitatívne stanovenie antigénu Shigella Sonne v moči pacientov a nosičov baktérií. // Lab. prípad. – 1970. – Číslo 6. – S. 360-363.

57 Rybakova N.A., Rybakov D.A. Využitie RNGA a RNAt pri epidemiologickom vyšetrovaní chorôb dyzentérickej etiológie. – Zborník Leningradského výskumného ústavu epidemiológie. a mikrobiol. pomenovaný po Pasteurovi. -T. 56. – L., 1981. – S. 58-61.

58 Vasilyeva A.V. Porovnávacie hodnotenie rôznych metód na sérologickú diagnostiku Sonnovej dyzentérie. // Črevné infekcie. – 1972. – Vydanie. Číslo 5. – S. 129-132.

59 Dubinina I.G., Shcherbo S.N., Makarov V.B. Metódy polymerázovej reťazovej reakcie v laboratórnej praxi. // Klinická laboratórna diagnostika. – 1997, č. 7. – str. 4 – 6.

60 Turkadze K.A., Podkolzin T.A., Kokoreva L.N. a iné.Porovnávacia účinnosť použitia PCR a bakteriologickej metódy v diagnostike salmonelózy a šigelózy // Materiály výročnej vedeckej a praktickej práce. konferencie, venované 80. výročie vzniku oddelenia infekčných chorôb MMA pomenovaného po. I. M. Sechenov (22. – 23. mája 2003). - M.: MMA im. I. M. Sechenov. - 2003. - S. 172-173.

61 Achtamov M.A., Akhmedov A.A. Porovnávacia štúdia účinnosti niektorých sérologické reakcie v laboratórnej diagnostike akútnej dyzentérie // Med. časopis z Uzbekistanu. – 1984. -№1. – s. 29-31.

62 Borisov V.A. Ku komparatívnemu hodnoteniu niektorých sérologických metód na diagnostiku dyzentérie. - Laboratórium. obchod, 1972, č. 9, s. 564-566.

63 Laplane R., Be, gue P., Omanga V. Anticorps seriques et copro-anticorps dansles infekcie bacteriennes digests de l, enfant. // Býk. Akad. nat. med. – 1975. – Sv. 159. - Číslo 7. - S. 596-600.

64 Barksdale W., Ghoda A. Aglutinačné protilátky v sére a stolici.// J. Immunol. – 1951. – Sv. 66. – S. 395 – 401.

65 Nikolaeva T.A., Kukain E.M., Khazenson L.B. Imunochemická povaha kopro- a sérových protilátok u pacientov so Sonnovou dyzentériou a inými akútnymi ochoreniami. - Tez. správa Do vedecko-praktickej konf., venovaný 50. výročie LeningradNIIEM pomenované po. Pasteur. L., 1973, s. 53-54.

66 Lullu A.V. Aplikácia nepriamej hemaglutinačnej reakcie na diagnostiku a štúdium imunológie akútnej dyzentérie. // Autorský abstrakt. dis. pre žiadosť o zamestnanie vedec krok. môcť. med. Sci. - Tartu. - 1963. - 10 s.

67 Kľucharev A.A. Materiály na štúdium dyzentérie v Bielorusku. Poleshko D.V., Vershenya M.I. Klinické a epidemiologické znaky priebehu dyzentérie v posledných rokoch. // Autorský abstrakt. dis. pre žiadosť o zamestnanie akademický titul DR. med. Sci. - Kaunas. - 1970. - 32 s.

68 Podlevsky A.F., Tselinskaya N.M., Zhuravleva L.V., Buchel N.E. Nepriama hemaglutinačná reakcia pri dyzentérii u pacientov rôzneho veku. // V knihe: Problematika epidemiológie a prevencie črevných a prirodzených fokálnych infekcií. L., 1971, s. 93-99.

69 Zaitlenok M.A., Eremina A.M., Subbotina Yu.L. Sérologické štúdie pri akútnych črevných infekciách bakteriologicky nepotvrdené // Imunológia a imunopatológia. – Voronež, 1983. – S. 35-37.

70 Borisov V.A., Orlík N.S., Kirilyuk M.A. Imunitná odpoveď u pacientov s úplavicou s predĺženým vylučovaním Shigelly. // All-Union. conf. klinická biochémia, morfológia a imunológia infekčných chorôb. Abstraktné. správa - Riga - 1977. - S. 377-378.

71 Čilingár A.V. Výsledky paralelnej aplikácie pľúcneho modelu, nepriamej hemaglutinačnej reakcie a aglutinačnej reakcie na detekciu protilátok proti dyzentérii v krvi zdravých ľudí. // V knihe: Akútne črevné infekcie. Dyzentéria, escherichióza, salmonelóza. – L. – 1970. – S. 93-101.

72 Patton C.M., Gangorosa E.J., Weissman J.B. a kol. Diagnostická hodnota nesprávnej hemaglutinácie v séroepidemiológii infekcií Shigella. // J. of Clin. Microb. – 1976. – Sv. – 23. – S. 143-148.

73 Martinez J. Epidemiologická štúdia bakteriálnej dyzentérie. // Bol. ofic. sanit.panamer. – 1973. – Sv. 75. – S. 213-224.

74 Musabaev I.K., Abubakirova F.Z. Bakteriálna úplavica. – Tash-kent – ​​​​1973. – 258 s.

75 Dulatova M.V., Golovacheva S.N., Savitskaya O.V. Princíp RPGA v expresnej diagnostike infekcií a imunity. // V knihe: Prípravy na expresnú diagnostiku. – L., 1981. – S. 31-42.

76 Safonova N.V. Použitie nepriamej hemaglutinačnej reakcie v ohniskách akútnej črevnej infekcie na identifikáciu infikovaných ľudí a hľadanie zdrojov. – L., 1974. – 11 s.

77 Solodovnikov Yu.P., Kalashnikova G.K., Subbotina Yu.L., Bobkin S.V. Nepriama hemaglutinačná reakcia pri štúdiu protilátok u zdravých, chorých a zotavených Sonnových dyzentérií. – JMEI, 1971, č. 1. – S.13-18.

78 Provotorov V.Ya. K problematike liečby pacientov s úplavicou. – V knihe: Komunitná starostlivosť o infekčných pacientov a problematika liečby infekčných pacientov. Saratov, 1973. – S. 153-155.

79 Karalnik B.V. Metodika a taktika imunodiagnostiky infekčnej patológie. – V knihe: Problematika klinickej imunológie a imunologickej diagnostiky. Alma-Ata, 1988. – 10 s.

80 Kaplin V.I., Klevtsova G.A., Koryukhina I.P. a iné.Špecifická reakcia krvi v počiatočnom období dyzentérie a salmonelovej infekcie a nové možnosti včasnej špecifickej diagnostiky akútnych črevných infekcií // VI All-Union. conf. podľa klinického biochémia, morfológia a imunol. infekčné bol.: Abstrakty správ. – Riga, 1983. – S.76-77.

81 Savilov E.D., Astafiev V.A., Mamontova L.M., Volodin Yu.F. Epidemiologické črty dyzentérie v r. Východná Sibír. //Novosibirsk “Veda”, 1994. – S.42-43.

82 Ivanov K.S., Ivanov A.I. Diagnóza akútnych hnačkových infekcií // Klin. med. – 1992. – Číslo 7-8 – S. 64-69.

83 Karalnik B.V. Červené krvinky, ich receptory a imunita. //Usp.modern biol., M. – 1992. – roč.112, č.1. – S.52-61.

84 Garib F.Yu., Zalyalieva M.V. Metódy na štúdium subpopulácie lymfocytov u ľudí za rôznych patologických stavov // Metodické odporúčania. – Taškent, 1989. – 17 s.

85 Bahrg. Modabber F.Z. // J. Immunol. Meth. – 1980. – V. 38, č. 3-4. – S. 203-216.

86 Tyagotin Yu.A. // Problematika vyšetrenia a liečby pacientov s chorobami krvného systému. – L., 1975. – S. 21-25.

87 Novikov D.K., Novikova V.I. Bunkové metódy imunodiagnostika. // Minsk, 1979. – 222 s.

88 Smirnov B.N., Toropova N.I., Mokhova G.A. a ďalšie // Materiály vedeckej konferencie All-Union „Problémy lekárskej biotechnológie“. okt. 1988. – L., 1990. – S. 114-116.

89 Slavko E.A., Deryabin P.N., Karalnik B.V. Stanovenie lymfocytov viažucich antigén ako metóda včasnej diagnostiky salmonelózy a dyzentérie // Zdravotníctvo Kazachstanu - Almaty - 1999 - č. 5-6 - S. 43-45.

90 Karalnik B.V., Kozhageldieva A.A., Karabekov A.Zh., Denisova T.G., Raipov O.R. Monitorovanie účinnosti liečby yersiniózy spôsobenej Yersinia enterocolitica // Liek. - Almaty. - 2004. - Číslo 4. - S.51-53.

91 Karalnik B.V., Denisova T.G., Plazun A.A. a i. Antigén viažuce lymfocyty tuberkulínovej špecifickosti u králikov infikovaných M. bovis v dynamike liečby tuberkulózy // Problémy tuberkulózy a pľúcnych chorôb. -M.-2006.- č.5.-P.48-53.

92 Karalnik B.V., Karabekov A.Zh., Denisova T.G., Kozhageldieva A.A., Zhunusova G.B. Diferenciálna diagnostika brucelózy a črevnej yersiniózy spôsobenej Yersinia enterocolitica serovar O9 // Medicína. - Almaty. - 2004. - č. 3. - S. 155-157.

93 Karalnik B.V., Denisova T.G., Zhunusova G.B., Fedosov S.A., Zhankin A.A., Ospanov K.S., Mizanbaeva S.U. Účinnosť rôznych protilátkových testov a antigén viažuceho lymfocytového testu pri diagnostike brucelózy u ľudí. // Lekárska imunológia. – S.-P. - 2006. - ročník 8. - č.4. — S. 567 — 572.

94 Karalnik B.V., Denisova T.G., Grushina T.A., Tugambaev T.I. Analýza imunitnej odpovede morčiat infikovaných Brucella melitensis // Journal of microbiol.- M.-2002.- No. 1.- S.54-56

95 Karalnik B.V., Berezin V.E., Denisova T.G., Deryabin P.N., Slavko E.A. a iné Dynamika obsahu lymfocytov s receptormi pre Sendai vírus pri imunizácii vírusom a imunostimulačným komplexom jeho glykoproteínov // Izvest. Ministerstvo vedy a vyššie vzdelanie RK. Ser.biol. a lekárske - Almaty.- 1999. - č. 3. - S. 50-51.

96 Garib F.Yu., Gurariy N.I., Aliev Sh.R. Charakteristika lymfocytov viažucich antigén v chronická hepatitída u detí // Imunológia - 1988. - č.5. s. 91-93.

97 Finlay B.B., Falkow S.A. Porovnanie mikrobiálnych stratégií druhov Salmonella, Shigella a Jersinia // Interakcia baktérie – hostiteľská bunka, Alban R. Liss. Inc. – 1988. – S. 227-243.

98 Karalnik B.V., Denisova T.G., Keshileva Z.B., Pshenichnaya L.A. a iné.Antigén viažuce lymfocyty a protilátky v diagnostike syfilisu // Sexuálne prenosné infekcie. – M. – 1999. – č.5. — S. 34–36.

99 Sakanova L.M., Karalnik B.V., Ukbaeva T.D. a iné Imunočinidlá na identifikáciu lymfocytov viažucich antigén a ich testovanie v diagnostike meningokoková infekcia// Hygiena, epidemiológia a imunobiológia - Almaty. -2002.- č.1-2.-P.69-72.

100 Slavko E.A., Deryabin P.N., Karalnik B.V., Karabekov A.Zh. Na špecifickosť antigén viažucich lymfocytov zistených u pacientov s akút zápalové ochorenia gastrointestinálny trakt. // Hygiena, epidemiológia a imunobiológia. - Almaty. - 1999. - č.2. — S. 102 — 105.

A.M.Sadykovej

Diagnostika laboratórií dyzentérie

Tү jin: Zhedel іshek infekcielaryn baqylauda, ​​​​dyzentéria nakty diagnostika ең өзу мәсеLeсі мљселі віліп сайлади. Baktérie dyzentéria durys koyylgan diagnózy veda uaqytynda jeme zhurgizuge zhane epidémia karsy sharalardy Otkіzu ushіn manyzdy. Recenzia korzetilgénneho malimetra, dyzentéria ken taraluyn nezhey otyrup, sesimtaldygynyn zhetkіlіksіzdіgі zhane kop degen diagnosticalyk adіsterdіn on natizhesіn ің cache infikovaná bola anуқталыанана diagnostika anуқталуынанана k potenciálu maxatty tүrde damytu kerek ekenіn korsetedі.

Tү sө zder: diagnóza, úplavica, antigenbaylanystyrushy adis.

A.M.Sadycovej

Laboratórna diagnostika dyzentérie

Pokračovať: Spoľahlivá diagnóza hnačky je jednou z najdôležitejších otázok na kontrolu presnej črevnej infekcie. Presná diagnostika bakterióznej hnačky má vitae význam pre správnu a presnú liečbu pacienta a tiež prijatie potrebných protiepidemických opatrení. Členovia uvedení v prieskume, berúc do úvahy rozšírené hnačky, ukazujú nedostatočnú citlivosť a neskorý výskyt pozitívnych výsledkov mnohých diagnostických metód. Je nevyhnutné cielene rozvíjať diagnostický potenciál na určenie infekcie.

Kľúčové slová: diagnostika, dyzentéria, metóda antigén viažucich lymfocytov.

Bakteriálna dyzentéria alebo šigelóza je infekčné ochorenie spôsobené baktériami rodu Shigella, ktoré postihuje predovšetkým hrubé črevo. Názov rodu je spojený s K. Shigi, ktorý objavil jeden z patogénov

úplavica.

Taxonómia a klasifikácia. Pôvodcovia dyzentérie patria do oddelenia Gracilicutes, čeľade Enterobacteriaceae, rodu Shigella.

Morfológia a farbiace vlastnosti. Shigella sú gramnegatívne tyčinky so zaoblenými koncami, 2-3 µm dlhé, 0,5-7 µm hrubé (pozri obr. 10.1); netvoria spóry, nemajú bičíky a sú nepohyblivé. Mnohé kmene majú spoločný typ klkov a pohlavných pili. Niektoré Shigella majú mikrokapsulu.

Kultivácia. Bacily úplavice sú fakultatívne anaeróby. Sú nenáročné na živné pôdy a dobre rastú pri teplote 37 °C a pH 7,2-7,4. Na hustých médiách tvoria malé priehľadné kolónie, v tekutých médiách -

difúzne zakalenie. Selenitový bujón sa najčastejšie používa ako obohacovacie médium na kultiváciu Shigella.

Enzýmová aktivita. Shigella má menšiu enzymatickú aktivitu ako iné enterobaktérie. Fermentujú sacharidy za vzniku kyseliny. Dôležitým znakom, ktorý umožňuje odlíšiť Shigelly, je ich vzťah k manitolu: S. dysenteriae nefermentuje manitol, zástupcovia skupín B, C, D sú na manitol pozitívni. Biochemicky najaktívnejšie sú S. sonnei, ktoré dokážu pomaly (do 2 dní) fermentovať laktózu. Na základe vzťahu S. sonnei k ramnóze, xylóze a maltóze sa rozlišuje 7 biochemických variantov.

Antigénna štruktúra. Shigella má O-antigén, jej heterogenita umožňuje rozlíšiť sérovary a subserovary v rámci skupín; Niektorí členovia rodu vykazujú K-antigén.

Faktory patogenity. Všetky bacily dyzentérie tvoria endotoxín, ktorý má enterotropný, neurotropný a pyrogénny účinok. Okrem toho S. dysenteriae (sérovar I) - Shigella Grigoriev-Shiga - vylučujú exotoxín, ktorý má na organizmus enterotoxický, neurotoxický, cytotoxický a nefrotoxický účinok, čo následne narúša metabolizmus voda-soľ a činnosť centrálneho nervového systému, vedie k smrti epiteliálnych buniek hrubého čreva, poškodeniu renálnych tubulov. Tvorba exotoxínu je spojená so závažnejším priebehom dyzentérie spôsobenej týmto patogénom. Iné druhy Shigella môžu tiež produkovať exotoxín. Bol objavený faktor RF permeability, ktorý spôsobuje poškodenie ciev. Faktory patogenity zahŕňajú aj invazívny proteín, ktorý podporuje ich penetráciu do epiteliálnych buniek, ako aj proteíny pili a vonkajšej membrány zodpovedné za adhéziu a mikrokapsulu.

Odpor. Shigella má nízku odolnosť voči rôzne faktory. Odolnejší je S. sonnei, ktorý vo vode z vodovodu prežije až 2"/2 mesiace, vo vode z otvorených nádrží až 5/2 mesiaca. S. sonnei dokáže prežiť nielen pomerne dlho, ale aj množiť vo výrobkoch, najmä mliečnych výrobkoch.

Epidemiológia. Dyzentéria je antroponotická infekcia: zdrojom sú chorí ľudia a nosiči. Mechanizmus prenosu infekcií je fekálno-orálny. Cesty prenosu môžu byť rôzne – pri Sonnovej dyzentérii prevláda potravná cesta, pri Flexnerovej – voda, pre Grigorievovu-Šigovu dyzentériu je typická cesta kontakt – domácnosť. Dyzentéria sa vyskytuje v mnohých krajinách sveta. V nedávnej

V priebehu rokov došlo k prudkému nárastu výskytu tejto infekcie. Postihnutí sú ľudia všetkých vekových kategórií, ale deti vo veku od 1 do 3 rokov sú najviac náchylné na úplavicu. Počet pacientov stúpa v júli - septembri. Rôzne druhy Shigella jednotlivo

regióny sú rozdelené nerovnomerne.

Patogenéza. Shigella vstupuje cez ústa gastrointestinálny trakt a dostať sa do hrubého čreva. Vďaka tropizmu pre svoj epitel sa patogény pripájajú k bunkám pomocou pili a proteínov vonkajšej membrány. Vďaka invazívnemu faktoru prenikajú do vnútra buniek, tam sa množia, v dôsledku čoho bunky odumierajú. V črevnej stene sa tvoria ulcerácie, na mieste ktorých sa potom tvoria jazvy. Endotoxín, ktorý sa uvoľňuje pri zničení baktérií, spôsobuje celkovú intoxikáciu, zvýšenú črevnú motilitu a hnačku. Krv zo vzniknutých vredov končí v stolici. V dôsledku pôsobenia exotoxínu sa pozoruje výraznejšia porucha metabolizmu voda-soľ, činnosť centrálneho nervového systému a poškodenie obličiek.

Klinický obraz. Inkubačná doba trvá od 1 do 5 dní. Ochorenie začína akútne zvýšením telesnej teploty na 38-39 °C, objavujú sa bolesti brucha a hnačky. V stolici je prímes krvi a hlienu. Grigoriev-Shiga dyzentéria je najťažšia.

Imunita. Po chorobe je imunita nielen druhovo, ale aj variantne špecifická. Je krátkodobý a krehký. Často choroba postupuje do chronická forma.

Mikrobiologická diagnostika. Ako materiál, ktorý sa má študovať, sa berú pacientove výkaly. Základom diagnostiky je bakteriologická metóda, ktorá umožňuje identifikovať patogén a určiť jeho citlivosť na

antibiotiká, vykonať intrašpecifickú identifikáciu (určiť biochemický variant, sérovar alebo kolicinogenovar). V prípade protrahovanej dyzentérie možno použiť ako pomocnú sérologickú metódu, ktorá spočíva v diagnostike RA, RNGA (zvýšením titra protilátok pri opakovaní reakcie možno potvrdiť diagnózu).

Liečba. Pacienti s ťažkými formami Grigorievovej-Shigovej a Flexnerovej dyzentérie sú liečení širokospektrálnymi antibiotikami s povinným zvážením antibiogramu, keďže Shigella často zahŕňa nielen rezistenciu na antibiotiká

aktívne, ale aj na antibiotikách závislé formy. Pri miernych formách dyzentérie sa antibiotiká nepoužívajú, pretože ich použitie vedie k dysbakterióze, ktorá zhoršuje patologický proces a narúša procesy obnovy v sliznici hrubého čreva.

Prevencia. Jediným liekom, ktorý možno použiť v ohniskách infekcie na profylaktické účely, je bakteriofág dyzentérie. Hlavnú úlohu zohráva nešpecifická prevencia.

Dyzentéria - ide o bolestivú infekciu sprevádzanú hnačkou s uvoľňovaním krvi, hnisu a hlienu, bolesťami brucha a príznakmi celkovej intoxikácie, vyskytujúcimi sa pri primárnom poškodení hrubého čreva, spôsobená rôznymi druhmi rodu Shigella(baktérie úplavice).

Patogény dyzentérie patria do oddelenia Gracilicutes, rodina Enterobacteriaceae, rodina Shigella.
Dyzentéria , volal Shigella dysenteriae, je závažnejšia ako choroby spôsobené inými Shigellami, keďže okrem endotoxínu, ktorý spôsobuje zápal čriev, produkuje tento typ baktérie silný exotoxín, ktorý pôsobí ako neurotoxín

Bakteriálna úplavica alebo shigelóza, je infekčné ochorenie spôsobené baktériami rodu Shigella,

Dyzentéria.Morfológia a farbiace vlastnosti.
Shigella sú gramnegatívne tyčinky so zaoblenými koncami, dlhé 2-3 mikróny, hrubé 0,5-7 mikrónov, netvoria spóry, nemajú bičíky a sú nepohyblivé. V mnohých kmeňoch sa nachádzajú klky všeobecného typu a sexuálne pili. Niektoré Shigella majú mikrokapsulu.

Dyzentéria. Kultivácia.
Bacily úplavice sú fakultatívne anaeróby. Sú nenáročné na živné pôdy a dobre rastú pri teplote 37 °C a pH 7,2-7,4. Na hustých médiách tvoria malé priehľadné kolónie, v tekutých médiách - difúzny zákal. Selenitový bujón sa najčastejšie používa ako obohacovacie médium na kultiváciu Shigella.

Dyzentéria.Enzýmová aktivita.
Shigella má menšiu enzymatickú aktivitu ako iné enterobaktérie. Fermentujú sacharidy za vzniku kyseliny. Dôležitým znakom umožňujúcim odlíšenie Shigelly je ich vzťah k manitolu: S. dysenteriae nefermentuje manitol, zástupcovia skupín B, C, D sú na manitol pozitívni. Biochemicky najaktívnejšie sú S. sonnei, ktoré dokážu pomaly (do 2 dní) fermentovať laktózu. Na základe vzťahu S. sonnei k ramnóze, xylóze a maltóze sa rozlišuje 7 biochemických variantov.

Dyzentéria.Antigénna štruktúra.
Shigella má O-antigén, jej heterogenita umožňuje rozlíšiť sérovary a subserovary v rámci skupín; Niektorí členovia rodu vykazujú K-antigén.

Dyzentéria.Faktory patogenity.
Všetky bacily dyzentérie tvoria endotoxín, ktorý má enterotropný, neurotropný a pyrogénny účinok. Okrem toho S. dysenteriae - Shigella Grigoriev-Shiga - vylučuje exotoxín, ktorý má enterotoxický, neurotoxický, cytotoxický a nefrotoxický účinok na telo, čo následne narúša metabolizmus voda-soľ a činnosť centrálneho nervového systému, čo vedie k smrti epitelových buniek čriev hrubého čreva, poškodenie renálnych tubulov.

Tvorba exotoxínu je spojená so závažnejším priebehom dyzentérie spôsobenej týmto patogénom. Exotoxín môžu produkovať aj iné druhy Shigella. Bol objavený faktor RF permeability, ktorý spôsobuje poškodenie ciev. Patria sem aj faktory patogenity invazívny proteín, čo uľahčuje ich penetráciu do epiteliálnych buniek, ako aj do pili a proteínov vonkajšej membrány zodpovedných za adhéziu a mikrokapsuly.

Dyzentéria.Odpor.
Shigella má nízku odolnosť voči rôznym faktorom. S. sonnei je odolnejší, vo vode z vodovodu prežije až 2,5 mesiaca a vo voľnej vode až 1,5 mesiaca. S. sonnei dokáže nielen pomerne dlho prežívať, ale aj množiť sa v produktoch, najmä mliečnych.

Dyzentéria.Epidemiológia.
Dyzentéria je antroponotická infekcia: zdrojom sú chorí ľudia a nosiči. Mechanizmus prenosu infekcií je fekálno-orálny. Cesty prenosu môžu byť rôzne – pri Sonnovej dyzentérii prevláda potravná cesta, pri Flexnerovej – voda, pre Grigoriev-Šigovu dyzentériu je typická kontaktná a domáca cesta.

Dyzentéria nachádza v mnohých krajinách sveta. V posledných rokoch došlo k prudkému nárastu výskytu tejto infekcie. Postihnutí sú ľudia všetkých vekových kategórií, ale deti vo veku od 1 do 3 rokov sú najviac náchylné na úplavicu. Počet pacientov stúpa v júli - septembri. Rôzne druhy Shigella jednotlivé regióny nerovnomerne rozložené.

Dyzentéria.Patogenéza.
Shigella vstupuje do gastrointestinálneho traktu cez ústa a dosahuje hrubé črevo. Vďaka tropizmu pre svoj epitel sa patogény pripájajú k bunkám pomocou pili a proteínov vonkajšej membrány. Vďaka invazívnemu faktoru prenikajú do vnútra buniek, tam sa množia, v dôsledku čoho bunky odumierajú.

V črevnej stene sa tvoria ulcerácie, na mieste ktorých sa potom tvoria jazvy. Endotoxín, ktorý sa uvoľňuje pri zničení baktérií, spôsobuje celkovú intoxikáciu, zvýšenú črevnú motilitu a hnačku. Krv z výsledných vredov vstupuje do výkalov. V dôsledku pôsobenia exotoxínu sa pozoruje výraznejšia porucha metabolizmu voda-soľ, činnosť centrálneho nervového systému a poškodenie obličiek.

Dyzentéria.Klinický obraz.
Inkubačná doba trvá od 1 do 5 dní. Ochorenie začína akútne zvýšením telesnej teploty na 38-39 °C, objavujú sa bolesti brucha a hnačky. V stolici je prímes krvi a hlienu. Grigoriev-Shiga dyzentéria je najťažšia.

Dyzentéria.Imunita.
Po chorobe je imunita druhovo a variantne špecifická. Je krátkodobý a krehký. Často sa choroba stáva chronickou. Označené opakujúce sa choroby aj v rámci jednej sezóny.

Dyzentéria.Laboratórium diagnostika.
Ako testovací materiál sa berú pacientove výkaly. Základom diagnostiky je bakteriologická metóda, ktorá umožňuje identifikovať patogén, určiť jeho citlivosť na antibiotiká a vykonať intrašpecifickú identifikáciu (určiť biochemický variant, sérovar alebo kolicinogenovar). Pri protrahovanom priebehu dyzentérie možno použiť ako pomocnú sérologickú metódu, ktorá spočíva v diagnostike RA, RNGA (zvýšením titra protilátok pri opakovaní reakcie možno potvrdiť diagnózu).

Dyzentéria.Liečba.
Pacienti s ťažkými formami Grigorieva-Shishovej a Flexnerovej dyzentérie sú liečení širokospektrálnymi antibiotikami s povinným zvážením antibiogramu, pretože medzi Shigellami sú často nielen rezistentné na antibiotiká, ale aj formy závislé od antibiotík. Pri miernych formách úplavice sa antibiotiká nepoužívajú, pretože ich použitie vedie k dysbakterióze, ktorá zhoršuje patologický proces, a k narušeniu procesov obnovy v sliznici hrubého čreva.

Dyzentéria.Prevencia.
Jediným liekom, ktorý možno použiť v ohniskách infekcie na profylaktické účely, je bakteriofág dyzentérie. Hlavnú úlohu zohráva nešpecifická prevencia.

Nešpecifická prevencia zahŕňa správne sanitárne a hygienické zabezpečenie života ľudí, zásobovanie kvalitnou vodou a potravinami.

V prostredí pacienta je potrebné prijať opatrenia na zabránenie šírenia patogénu.

Obsah článku

Shigella

Baktérie rodu Shigella sú pôvodcami bakteriálnej dyzentérie alebo šigelózy. Dyzentéria je polyetiologické ochorenie. Spôsobujú ho rôzne druhy baktérií, pomenované Shigella na počesť A. Shigu. V súčasnosti sú zaradené do rodu Schigella, ktorý sa delí na štyri druhy. Tri z nich - S. dysenteriae, S. flexneri a S. boydii - sa delia na sérovary a S. flexneri sa tiež delia na subserovary.

Morfológia a fyziológia

Podľa ich vlastných morfologické vlastnosti Shigella sa málo líši od Escherichia a Salmonella. Chýbajú im však bičíky, a preto sú nepohyblivé baktérie. Mnoho kmeňov Shigella má pili. Rôzne typy Shigella sú identické vo svojich morfologických vlastnostiach. Pôvodcami dyzentérie sú chemoorganotrofy, nenáročné na živné médiá. Na pevných médiách, keď sa izolujú z tela pacienta, sa zvyčajne tvoria kolónie S-formy. Shigella druhy Schigella sonnei tvoria dva typy kolónií - S-forma (I fáza) a R-forma (II fáza). Pri subkultivácii tvoria baktérie fázy I oba typy kolónií. Shigella je enzymaticky menej aktívna ako iné enterobaktérie: pri fermentácii glukózy a iných sacharidov tvoria kyslé produkty bez tvorby plynu. Shigella nerozkladá laktózu a sacharózu, s výnimkou S. sonnei, ktorá tieto cukry pomaly (na druhý deň) rozkladá. Nie je možné rozlíšiť prvé tri druhy na základe biochemických charakteristík.

Antigény

Shigella, podobne ako Escherichia a Salmonella, majú zložitú antigénnu štruktúru. Ich bunkové steny obsahujú O-, a u niektorých druhov (Shigella Flexner) aj K-antigény. Autor: chemická štruktúra sú podobné antigénom Escherichia. Rozdiely spočívajú najmä v štruktúre terminálnych väzieb LPS, ktoré určujú imunochemickú špecifickosť, čo umožňuje ich odlíšenie od iných enterobaktérií a medzi sebou navzájom. Okrem toho má Shigella skrížené antigénne vzťahy s mnohými séroskupinami enteropatogénnej Escherichie, ktoré spôsobujú najmä ochorenia podobné úplavici, a s inými enterobaktériami.

Patogenita a patogenéza

Virulencia Shigella je určená ich adhéznymi vlastnosťami. Vďaka mikrokapsule priľnú k enterocytom hrubého čreva. Potom prenikajú do enterocytov pomocou mucinázy, enzýmu, ktorý ničí mucín. Po kolonizácii enterocytov Shigella vstupuje do submukóznej vrstvy, kde je fagocytovaná makrofágmi. V tomto prípade nastáva smrť makrofágov a uvoľňuje sa veľké množstvo cytokínov, ktoré spolu s leukocytmi spôsobujú zápalový proces v submukóznej vrstve. Ako výsledok, medzibunkové kontakty a veľké množstvo Shigella preniká do nimi aktivovaných enterocytov, kde sa množia a šíria do susedných buniek bez toho, aby vyšli do vonkajšieho prostredia. To vedie k deštrukcii epitelu sliznice a rozvoju ulceróznej kolitídy. Shigella produkuje enterotoxín, ktorého mechanizmus účinku je podobný tepelne labilnému enterotoxínu Escherichia. Shigella Shiga produkuje cytotoxín, ktorý napáda enterocyty, neuróny a bunky myokardu. To naznačuje prítomnosť troch typov aktivity - enterotoxickej, neurotoxickej a cytotoxickej. Zároveň sa pri zničení Shigelly uvoľňuje endotoxín – LPS bunkovej steny, ktorý sa dostáva do krvi a pôsobí na nervový a cievny systém. Všetky informácie o faktoroch patogenity Shigella sú kódované v obrovskom plazmide a syntéza toxínu Shiga je kódovaná v chromozomálnom géne. Patogenéza dyzentérie je teda určená adhezívnymi vlastnosťami patogénov, ich penetráciou do enterocytov hrubého čreva, intracelulárnou reprodukciou a produkciou toxínov.

Imunita

Pri úplavici sa vyvíja lokálna a všeobecná imunita. Pri lokálnej imunite má zásadný význam sekrečné IgA (SIgA), ktoré sa tvorí v 1. týždni ochorenia v lymfoidných bunkách sliznice čreva. Pokrytím črevnej sliznice tieto protilátky zabraňujú prichyteniu a prenikaniu Shigella do epitelových buniek. Okrem toho sa počas infekcie zvyšuje titer sérových protilátok IgM, IgA, IgG, ktorý dosahuje maximum v 2. týždni ochorenia. Najväčšie množstvo IgM sa zistí v 1. týždni choroby. Prítomnosť špecifických sérových protilátok nie je indikátorom sily lokálnej imunity.

Ekológia a epidemiológia

Biotop Shigella je ľudské hrubé črevo, v ktorého enterocytoch sa množia. Zdrojom infekcie sú pacienti, ľudia a nosiči baktérií. K infekcii dochádza požitím kontaminovanej potravy alebo vody. Hlavnou cestou prenosu infekcie je teda výživa. Boli však opísané prípady kontaktného prenosu z domácností. Odpor odlišné typy Shigella nie je rovnaká na faktory prostredia - S. dysenteriae je najcitlivejšia, S. sonnei je najmenej citlivá, najmä v R-forme. Zostávajú vo výkaloch nie dlhšie ako 6-10 hodín.

Dyzentéria (shigelóza)

Dyzentéria je akútne alebo chronické infekčné ochorenie charakterizované hnačkou, poškodením sliznice hrubého čreva a intoxikáciou organizmu. Ide o jedno z najčastejších črevných ochorení na svete. Spôsobujú ho rôzne druhy baktérií rodu Shigella: S.dysenteriae, S.flexneri, S.boydii, S.sonnei. V povojnových rokoch v priemyselných krajinách je dyzentéria častejšie spôsobená S.flexneri a S.sonne.Na Ukrajine sa používa medzinárodná klasifikácia týchto baktérií, ktorá zohľadňuje ich biochemické vlastnosti a znaky antigénnej štruktúry. Sérovarov Shigelly je celkovo 44. Hlavná metóda mikrobiologickej diagnostiky dyzentérie je bakteriologická. Schéma izolácie patogénu je klasická: naočkovanie materiálu na obohacovacie médium a Ploskirev agar, získanie čistá kultúra, štúdium jeho biochemických vlastností a identifikáciu pomocou polyvalentných a monovalentných aglutinačných sér.

Odber materiálu na výskum

Pozitívny výsledok mikrobiologického rozboru do značnej miery závisí od včasného a správneho odberu testovaného materiálu. Vo všetkých prípadoch a baktérie často berú stolicu, menej často - zvratky a výplach vody zo žalúdka a čriev. Výkaly (1-2 g) sa odoberajú sklenenou tyčinkou z podstielky alebo plienky, vrátane kúskov hlienu a hnisu (ale nie krvi). Najlepšie je odobrať hlien (hnis) z postihnutých oblastí sliznice pri kolonoskopii na vyšetrenie. Pri zbere a pestovaní materiálu je dôležité prísne dodržiavať určité pravidlá.Bakteriologický výskum, ak je to možné, by sa mal začať pred začiatkom etiotropnej liečby. Pred zberom výkalov sa riad (nádoby, hrnce, poháre) oparí vriacou vodou a v žiadnom prípade sa neošetruje dezinfekčnými roztokmi.Shigella je veľmi citlivá. Skúmaný materiál sa musí rýchlo (pri lôžku pacienta) zasiať do obohacovacieho média a súčasne na selektívny agar v Petriho miske. Stolicu je možné odobrať bez čakania na pohyb čriev pomocou vatového tampónu alebo Ziemannových rektálnych skúmaviek.Odobratý materiál alebo naočkované médiá je potrebné ihneď doručiť do laboratória. Ak nie je možné kultivovať v nemocnici a rýchlo doručiť stolicu, uchovávajú sa v konzervačnom prostriedku (30 % glycerol + 70 % fosfátový pufor) pri teplote 4 – 6 ° C maximálne jeden deň. krvi a moču, a preto sa tieto predmety zvyčajne nezasievajú Bakteriologická analýza sekčného materiálu sa musí vykonať čo najskôr po smrti (hrubé črevo, mezenterický Lymfatické uzliny, kúsky parenchýmových orgánov). Počas prepuknutia dyzentérie sa tiež vyšetrujú produkty na jedenie, najmä mlieko, syr, kyslá smotana.

Bakteriologický výskum

Inokulácia výkalov sa vykonáva paralelne na Ploskirevovom selektívnom médiu, aby sa získali izolované kolónie, a vždy v seleničitom bujóne na akumuláciu Shigella, ak je ich v skúmanom materiáli málo. Hlienovo-purulentné kúsky sa vyberú bakteriologickou slučkou, dôkladne sa prepláchnu v 2-3 skúmavkách izotonickým roztokom chloridu sodného, ​​nanesú sa na Ploskirevovo médium a na malej ploche sa vtierajú do agaru sklenenou špachtľou. Potom sa stierka vyberie z média a zvyškový materiál sa dosucha rozotrie na zostávajúci nenaočkovaný povrch. Pri výseve v 2-3 pohároch sa na každý z nich aplikuje nová časť semien. Kúsky hlienu a hnisu sa vysievajú do seleničitanového bujónu bez oplachovania. V neprítomnosti hlienovo-hnisavých kúskov sa výkaly emulgujú v 5-10 ml 0,85% roztoku chloridu sodného a 1-2 kvapky supernatantu sa vysievajú na Ploskirevovo médium. Neemulgované stolice sa vysievajú do seleničitanového bujónu v pomere 1:5. Pri očkovaní zvratkov a oplachovej vody sa používa seleničitanový bujón dvojnásobnej koncentrácie a pomer inokula k médiu je 1:1. Kultivačné médiá naočkované pri lôžku pacienta sa umiestnia priamo do termostatu. Všetky plodiny sa pestujú 18 – 20 hodín pri teplote 37 ° C. Na druhý deň voľným okom alebo pomocou 5x – 10x lupy preskúmajte rastový vzor na Ploskirevovom médiu, kde Shigella tvorí malé, priehľadné, bezfarebné stĺpce. Shigella Sonne môže vyrábať stĺpy dvoch typov: niektoré sú ploché so zubatými okrajmi, iné sú okrúhle, konvexné, s vlhkým leskom. Mikroskopicky sa skúmajú 3-4 kolónie, všetko sa zničí a znovu sa vysadí v centre Olkenitsky, aby sa izolovala čistá kultúra. Ak na agare Ploskirev nie je žiadny rast alebo nie sú žiadne charakteristické kolónie Shigella, zasiate zo seleničitanového bujónu na agar Ploskirev alebo Endo. Ak je dostatočný počet typických kolónií, vykoná sa približná aglutinačná reakcia na skle so zmesou séra Flexner a Sonne. Na tretí deň sa berie do úvahy rastový vzor na Olkenitského médiu. Shigely spôsobujú v trojdielnom agare charakteristické zmeny (stĺpec zožltne, farba šikmej častice sa nemení, nedochádza k sčerneniu). Podozrivá kultúra sa vyseje do Hissovho média na stanovenie biochemických vlastností, prípadne sa použijú enterotesty.Sérologická identifikácia izolovaných kultúr sa vykonáva pomocou sklenenej aglutinačnej reakcie, najprv so zmesou sér proti druhom Flexner a Sonne, ktoré sa často vyskytujú a potom s monodruhovými a monoreceptorovými sérami. Nedávno sa vyrábali komerčné polyvalentné a monovalentné séra proti všetkým typom patogénov dyzentérie. Na určenie typu Shigella sa používa aj koaglutinačná reakcia. Typ patogénu je určený pozitívnou reakciou s proteínom A Staphylococcus aureus, na ktorom sú adsorbované špecifické protilátky proti Shigella. Kvapka protilátkou senzibilizovaného proteínu A sa aplikuje na typickú kolóniu, miska sa pretrepe a po 15 minútach sa pod mikroskopom pozoruje výskyt aglutinátu. Koaglutinačná reakcia sa môže uskutočniť už na druhý deň štúdie, ak je v médiu dostatočný počet laktózo-negatívnych kolónií.Pre rýchlu a spoľahlivú identifikáciu Shigelly sa vykonávajú aj priame a nepriame reakcie imunofluorescencie a enzýmových protilátok . Posledne menovaná pri dyzentérii je vysoko špecifická a stále viac sa používa pri laboratórnej diagnostike ochorenia. Na detekciu antigénov v krvi pacientov, a to aj ako súčasť cirkulujúcich imunitných komplexov, môže hemaglutinačná agregátová reakcia a metóda ELISA (Shigelaplast diagnostický testovací systém) byť použitý. Shigelové antigény vo výkaloch a moči sa detegujú pomocou RNGA, RSK a koaglutinácie. Tieto metódy sú vysoko účinné, špecifické a vhodné na včasnú diagnostiku Na zistenie, či izolované kultúry patria do rodu Shigella, sa na morčatách robí aj keratonic- ký test Do spojovky sa vloží slučka agarovej kultúry alebo kvapka bujónu vak. Dôležité je neporaniť rohovku. Nové infekcie Shigella spôsobujú ťažkú ​​keratitídu 2-5 dní po zavedení kultúry. Salmonella môže spôsobiť aj zápal spojiviek, no neovplyvňuje rohovku. Treba však pripomenúť, že experimentálnu keratokonjunktivitídu u morčiat spôsobujú aj enteroinvazívne Escherichia coli (EIEC), najmä sérovary 028, 029, 0124, 0143 atď. Bakteriologická metóda diagnostiky dyzentérie je spoľahlivá, ale v rôznych laboratóriách (v závislosti od o kvalifikácii bakteriológov a laboratórnych technikov) dáva len 50 – 70 % pozitívnych výsledkov. Okrem diagnostiky chorôb sa vykonáva aj bakteriologické testovanie na identifikáciu nosičov baktérií, najmä medzi zamestnancami potravinárskych podnikov, zariadení starostlivosti o deti a zdravotníckych zariadení. Aby sa identifikovali zdroje infekcie, určujú sa fagovary a kolicinovary Shigella.

Sérologická diagnostika

Sérologická diagnostika dyzentérie sa vykonáva len zriedka. Infekčný proces nie je sprevádzaný výrazným antigénnym podráždením, preto sú titre protilátok v sére pacientov a rekonvalescentov nízke. zisťujú sa na 5. – 8. deň choroby. Viac protilátok sa tvorí v 2.-3.týždni.Volumetrická aglutinačná reakcia s mikrobiálnou diagnostikou prebieha rovnako ako Widalova reakcia s. brušný týfus a paratýfus. Krvné sérum sa riedi od 1:50 do 1:800. Diagnostický titer protilátok proti S.flexneri u dospelých pacientov sa považuje za 1:200, u S.dysenteriae a S.sonnei - 1:100 (u detí - 1:100 a 1:50). sa získajú pri stagingu RNGA, najmä pri použití metódy párového séra. Zvýšenie titra 4 alebo viackrát má diagnostický význam. Erytrocytové diagnostika sa vyrábajú hlavne z antigénov S.flexneri a S.sonnei, pomocnú pri diagnostike má aj alergický intradermálny test s Tsuverkalovovým dyzenterinom (roztok proteínových frakcií Shigelly Flexner a Sonne). U pacientov s dyzentériou sa stáva pozitívnym od 4. dňa. Reakcia sa zaznamenáva po 24 hodinách. Keď sa objaví hyperémia a opuch kože s priemerom 35 mm alebo viac, reakcia sa hodnotí ako silne pozitívna, pri 20-34 mm - stredná a pri 10-15 mm - pochybná.

Špecifická prevencia a liečba

Prijímanie rôznych vakcín (vyhrievaných, formalizovaných, chemických) problém nevyriešilo špecifická prevencia dyzentéria, pretože všetky mali nízku účinnosť. Na liečbu sa používajú fluorochinolóny a zriedkavejšie antibiotiká.

Mikrobiológia úplavice

úplavica - infekcia, charakterizovaná všeobecnou intoxikáciou tela, hnačkou a zvláštnou léziou sliznice hrubého čreva. Ide o jedno z najčastejších akútnych črevných ochorení na svete. Choroba je od staroveku známa pod názvom „krvavá hnačka“, ale jej povaha sa ukázala byť iná. V roku 1875 ruský vedec F.A. Lesh izoloval amébu od pacienta s krvavou hnačkou. Entamoeba histolytica, v nasledujúcich 15 rokoch sa ustálila samostatnosť tohto ochorenia, pre ktoré sa zachoval názov amébóza.

Pôvodcami vlastnej dyzentérie je veľká skupina biologicky podobných baktérií zjednotených v rode Shigella. Patogén prvýkrát objavili v roku 1888 A. Chantemes a F. Vidal; v roku 1891 ju opísal A. V. Grigoriev a v roku 1898 K. Shiga pomocou séra získaného od pacienta identifikoval patogén u 34 pacientov s úplavicou, čím sa napokon dokázala etiologická úloha tejto baktérie. V nasledujúcich rokoch však boli objavení ďalší pôvodcovia dyzentérie: v roku 1900 - S. Flexner, v roku 1915 - K. Sonne, v roku 1917 - K. Stutzer a K. Schmitz, v roku 1932 - J. Boyd, v roku 1934 - D. Large, v roku 1943 - A. Sax. V súčasnosti rod Shigella zahŕňa viac ako 40 sérotypov. Všetky z nich sú krátke, nehybné gramnegatívne tyčinky, ktoré netvoria spóry alebo kapsuly, ktoré dobre rastú na bežných živných médiách a nerastú na hladových médiách s citrátom alebo malonátom ako jediným zdrojom uhlíka; netvoria H 2 S, nemajú ureázu; Voges-Proskauerova reakcia je negatívna; glukóza a niektoré ďalšie uhľohydráty sa fermentujú za vzniku kyseliny bez plynu (okrem niektorých biotypov Shigella flexneri: S. manchester A S. newcastle); Spravidla nefermentujú laktózu (s výnimkou Shigella Sonne), adonitol, salicín a inozitol, neskvapalňujú želatínu, zvyčajne tvoria katalázu a nemajú lyzíndekarboxylázu a fenylalaníndeaminázu. Obsah G + C v DNA je 49 – 53 mol%. Shigella sú fakultatívne anaeróby, optimálna teplota pre rast je 37 °C, nerastú pri teplotách nad 45 °C, optimálne pH prostredia je 6,7 - 7,2. Kolónie na hustých médiách sú okrúhle, konvexné, priesvitné, v prípade disociácie sa vytvárajú hrubé kolónie R-formy. Rast na MPB vo forme rovnomerného zákalu, drsné formy tvoria sediment. Čerstvo izolované kultúry Shigella Sonne zvyčajne tvoria kolónie dvoch typov: malé okrúhle konvexné (fáza I), veľké ploché (fáza II). Povaha kolónie závisí od prítomnosti (fáza I) alebo neprítomnosti (fáza II) plazmidu s molekulovou hmotnosťou 120 MD, čo tiež určuje virulenciu Shigella Sonne.

Medzinárodná klasifikácia Shigella je založená na ich biochemických charakteristikách (manitol-nefermentujúca, manitol-fermentujúca, pomaly laktózovo-fermentujúca Shigella) a vlastnostiach antigénnej štruktúry (tabuľka 37).

V Shigella sa našli O-antigény rôznej špecificity: spoločné pre túto rodinu Enterobacteriaceae generické, druhovo, skupinovo a typovo špecifické, ako aj K-antigény; Nemajú N-antigény.

Tabuľka 37

Klasifikácia rodu baktérií Shigella

Klasifikácia berie do úvahy iba skupinovo a typovo špecifické O-antigény. V súlade s týmito charakteristikami rod Shigella je rozdelená do 4 podskupín alebo 4 druhov a zahŕňa 44 sérotypov. V podskupine A (typ Shigella dysenteriae) zahŕňala Shigella, ktorá nefermentuje manitol. Druh zahŕňa 12 sérotypov (1 – 12). Každý sérotyp má svoj vlastný špecifický typ antigénu; antigénne spojenia medzi sérotypmi, ako aj s inými druhmi Shigella, sú slabo exprimované. Do podskupiny B (typ Shigella flexneri) patrí Shigella, ktorá zvyčajne fermentuje manitol. Shigelly tohto druhu sú si navzájom sérologicky príbuzné: obsahujú typovo špecifické antigény (I - VI), ktoré sa delia na sérotypy (1 - 6), a skupinové antigény, ktoré sa nachádzajú v rôzne kompozície každý sérotyp a podľa toho sa sérotypy delia na subsérotypy. Okrem toho tento druh zahŕňa dva antigénne varianty - X a Y, ktoré nemajú typické antigény, líšia sa súbormi skupinových antigénov. sérotyp S. flexneri 6 nemá subsérotypy, ale delí sa na 3 biochemické typy podľa charakteristík fermentácie glukózy, manitolu a dulcitolu (tabuľka 38).

Tabuľka 38

Biotypy S. flexneri 6

Poznámka. K – fermentácia s tvorbou iba kyseliny; CG – fermentácia s tvorbou kyseliny a plynu; (–) – žiadne kvasenie.

Lipopolysacharidový antigén O vo všetkých Shigella Flexner obsahuje ako hlavnú primárnu štruktúru skupinový antigén 3, 4, jeho syntéza je riadená chromozomálnym génom lokalizovaným v blízkosti his-lokusu. Typovo špecifické antigény I, II, IV, V a skupinové antigény 6, 7, 8 sú výsledkom modifikácie antigénov 3, 4 (glykozylácia alebo acetylácia) a sú určené génmi zodpovedajúcich konvertujúcich profágov, miestom integrácie z ktorých sa nachádza v lac - pro oblasti chromozómu Shigella.

V krajine sa objavil v 80. rokoch. XX storočia a prijali široké využitie nový subsérotyp S. flexneri 4(IV:7, 8) sa líši od subsérotypu 4a (IV:3, 4) a 4b (IV:3, 4, 6), vznikol z variantu S. flexneri Y(IV: 3, 4) v dôsledku lyzogenizácie jeho konvertujúcimi profágmi IV a 7, 8.

Do podskupiny C (typ Shigella boydii) patrí Shigella, ktorá zvyčajne fermentuje manitol. Členovia skupiny sa od seba sérologicky líšia. Antigénne spojenia v rámci druhu sú slabo exprimované. Tento druh zahŕňa 18 sérotypov (1 – 18), z ktorých každý má svoj vlastný hlavný typ antigénu.

V podskupine D (typ Shigella sonnei) zahŕňali Shigella, ktoré zvyčajne fermentujú manitol a sú schopné pomaly (po 24 hodinách inkubácie a neskôr) fermentovať laktózu a sacharózu. vyhliadka S. sonnei zahŕňa jeden sérotyp, ale kolónie fázy I a II majú svoje vlastné typovo špecifické antigény. Pre vnútrodruhovú klasifikáciu Shigella Sonne boli navrhnuté dve metódy:

1) ich rozdelenie na 14 biochemických typov a podtypov podľa ich schopnosti fermentovať maltózu, ramnózu a xylózu; 2) rozdelenie na typy fágov podľa citlivosti na súbor zodpovedajúcich fágov.

Tieto typizačné metódy majú hlavne epidemiologický význam. Okrem toho sú Shigella Sonne a Shigella Flexner typizované na rovnaký účel na základe ich schopnosti syntetizovať špecifické kolicíny (kolicinogenotypizácia) a citlivosti na známe kolicíny (kolicinotypizácia). Na určenie typu kolicínov produkovaných Shigellou navrhli J. Abbott a R. Shenon sady štandardných a indikátorových kmeňov Shigella a na stanovenie citlivosti Shigella na známe typy kolicíny používajú súbor referenčných kolicinogénnych kmeňov P. Fredericka.

Odpor. Shigella má pomerne vysokú odolnosť voči environmentálnym faktorom. Na bavlnenej látke a papieri prežívajú až 30 - 36 dní, v sušených výkaloch - 4 - 5 mesiacov, v pôde - 3 - 4 mesiace, vo vode - 0,5 - 3 mesiace, na ovocí a zelenine – do 2 týždňov, v mlieku a mliečnych výrobkoch – do niekoľkých týždňov; pri teplote 60 °C odumierajú za 15 – 20 minút. Citlivý na roztoky chlóramínu, aktívny chlór a iné dezinfekčné prostriedky.

Faktory patogenity. Najdôležitejšie biologická vlastnosť Shigella, ktorá určuje ich patogenitu, je schopnosť napadnúť epitelové bunky, množiť sa v nich a spôsobiť ich smrť. Tento účinok možno zistiť pomocou keratokonjunktiválneho testu (vloženie jednej slučky kultúry Shigella (2–3 miliardy baktérií) pod spodné viečko morčiatka spôsobí rozvoj serózno-hnisavej keratokonjunktivitídy, ako aj infikovaním bunkových kultúr ( cytotoxický účinok) alebo kuracích embryí (ich smrť), alebo intranazálne u bielych myší (vývoj pneumónie). Hlavné faktory patogenity Shigelly možno rozdeliť do troch skupín:

1) faktory určujúce interakciu s epitelom sliznice;

2) faktory, ktoré zaisťujú odolnosť makroorganizmu voči humorálnym a bunkovým obranným mechanizmom a schopnosť shigelly reprodukovať sa vo svojich bunkách;

3) schopnosť produkovať toxíny a toxické produkty, ktoré určujú vývoj samotného patologického procesu.

Do prvej skupiny patria adhézne a kolonizačné faktory: ich úlohu zohrávajú pili, proteíny vonkajšej membrány a LPS. Adhéziu a kolonizáciu podporujú enzýmy, ktoré ničia hlien – neuraminidáza, hyaluronidáza, mucináza. Do druhej skupiny patria invázne faktory, ktoré podporujú penetráciu Shigella do enterocytov a ich reprodukciu v nich a v makrofágoch so súčasným prejavom cytotoxického a (alebo) enterotoxického účinku. Tieto vlastnosti sú riadené génmi plazmidu s molekulovou hmotnosťou 140 MD (kóduje syntézu proteínov vonkajšej membrány, ktoré spôsobujú inváziu) a chromozomálnymi génmi Shigella: kcp A (spôsobuje keratokonjunktivitídu), cyt (zodpovedný za deštrukciu buniek ), ako aj ďalšie zatiaľ neidentifikované gény. Ochranu Shigella pred fagocytózou zabezpečuje povrchový K-antigén, antigény 3, 4 a lipopolysacharid. Okrem toho má lipid A endotoxínu Shigella imunosupresívny účinok: potláča aktivitu imunitných pamäťových buniek.

Tretia skupina faktorov patogenity zahŕňa endotoxín a dva typy exotoxínov nachádzajúcich sa v Shigella - Shiga a Shiga-like exotoxíny (SLT-I a SLT-II), ktorých cytotoxické vlastnosti sú najvýraznejšie v S. dysenteriae 1. Shiga a Shiga podobné toxíny sa našli aj v iných sérotypoch S. dysenteriae, tiež sa tvoria S. flexneri, S. sonnei, S. boydii, EHEC a niektoré salmonely. Syntéza týchto toxínov je riadená toxovými génmi konvertujúcich fágov. Enterotoxíny typu LT sa nachádzajú u Shigelly Flexner, Sonne a Boyda. Ich syntéza LT je riadená plazmidovými génmi. Enterotoxín stimuluje aktivitu adenylátcyklázy a je zodpovedný za rozvoj hnačky. Shiga toxín alebo neurotoxín nereaguje s adenylátcyklázovým systémom, ale má priamy cytotoxický účinok. Shiga a Shiga podobné toxíny (SLT-I a SLT-II) majú molekulovú hmotnosť 70 kDa a pozostávajú z podjednotiek A a B (posledná z 5 rovnakých malých podjednotiek). Receptorom pre toxíny je glykolipid bunkovej membrány.

Virulencia Shigella Sonne tiež závisí od plazmidu s molekulovou hmotnosťou 120 MD. Riadi syntézu asi 40 vonkajších membránových polypeptidov, z ktorých sedem je spojených s virulenciou. Shigella Sonne, ktorá má tento plazmid, tvorí kolónie fázy I a je virulentná. Kultúry, ktoré stratili plazmid, tvoria kolónie fázy II a nemajú virulenciu. Plazmidy s molekulovou hmotnosťou 120–140 MD sa našli u Shigelly Flexnerovej a Boyda. Lipopolysacharid Shigella je silný endotoxín.

Charakteristiky epidemiológie. Zdrojom nákazy sú len ľudia. Žiadne zviera v prírode netrpí úplavicou. V experimentálnych podmienkach sa dyzentéria môže reprodukovať iba u opíc. Spôsob infekcie je fekálno-orálny. Cesty prenosu: voda (hlavne pre Shigella Flexner), potraviny, najmä mlieko a mliečne výrobky (prevládajúca cesta infekcie pre Shigella Sonne) a kontakt v domácnosti, najmä pre druhy S. dysenteriae.

Charakteristickým znakom epidemiológie dyzentérie je zmena v druhovom zložení patogénov, ako aj biotypov Sonne a sérotypov Flexner v určitých regiónoch. Napríklad do konca 30. rokov. XX storočia na podiel S. dysenteriae 1 tvoril až 30–40 % všetkých prípadov dyzentérie a potom sa tento sérotyp začal vyskytovať čoraz menej často a takmer vymizol. Avšak v 60. – 80. rokoch 20. storočia. S. dysenteriae sa znovu objavila na historickej scéne a spôsobila sériu epidémií, ktoré viedli k vytvoreniu troch jej hyperendemických ohnísk – v Strednej Amerike, Stredná Afrika a južnej Ázie (India, Pakistan, Bangladéš a ďalšie krajiny). Príčiny zmeny v druhovom zložení patogénov dyzentérie sú pravdepodobne spojené so zmenami kolektívnej imunity a zmenami vlastností baktérií dyzentérie. Najmä návratnosť S. dysenteriae 1 a jeho rozšírená distribúcia, ktorá spôsobila tvorbu hyperendemických ložísk úplavice, je spojená s jej získavaním plazmidov, ktoré spôsobili mnohopočetné lieková rezistencia a zvýšenú virulenciu.

Charakteristiky patogenézy a kliniky. Inkubačná doba dyzentérie je 2–5 dní, niekedy menej ako jeden deň. Tvorba infekčného ložiska v sliznici zostupnej časti hrubého čreva (esovitej a rekta), kam preniká patogén dyzentérie, má cyklický charakter: adhézia, kolonizácia, zavedenie Shigelly do cytoplazmy enterocytov, ich intracelulárne reprodukcia, deštrukcia a odmietnutie epiteliálnych buniek, uvoľňovanie patogénov do lumen čriev; potom začína ďalší cyklus - adhézia, kolonizácia atď. Intenzita cyklov závisí od koncentrácie patogénov v parietálnej vrstve sliznice. V dôsledku opakovaných cyklov narastá zápalové ohnisko, vznikajúce vredy, spájajúce sa, zvyšujú obnaženie črevnej steny, v dôsledku čoho sa vo výkaloch objavuje krv, mukopurulentné hrčky a polymorfonukleárne leukocyty. Cytotoxíny (SLT-I a SLT-II) spôsobujú deštrukciu buniek, enterotoxín – hnačka, endotoxíny – celková intoxikácia. Klinický obraz dyzentérie je do značnej miery určený tým, aký typ exotoxínu je vo väčšej miere produkovaný patogénom, stupňom jeho alergénneho účinku a imunitným stavom organizmu. Mnohé otázky patogenézy dyzentérie však zostávajú nejasné, najmä: znaky priebehu dyzentérie u detí v prvých dvoch rokoch života, dôvody prechodu akútnej dyzentérie na chronickú, význam senzibilizácie, mechanizmus lokálnej imunity črevnej sliznice a pod. Najtypickejšími klinickými prejavmi dyzentérie sú hnačky, časté nutkanie: v závažných prípadoch až 50 a viackrát denne tenesmy (bolestivé kŕče konečníka) a celková intoxikácia. Charakter stolice je určený stupňom poškodenia hrubého čreva. Najťažšia dyzentéria je spôsobená S. dysenteriae 1, najľahšie - Sonnova úplavica.

Postinfekčná imunita. Ako ukázali pozorovania opíc, po prekonaní úplavice zostáva silná a pomerne dlhotrvajúca imunita. Spôsobujú ho antimikrobiálne protilátky, antitoxíny, zvýšená aktivita makrofágov a T-lymfocytov. Významnú úlohu zohráva lokálna imunita črevnej sliznice sprostredkovaná IgAs. Imunita je však typovo špecifická, silná skrížená imunita sa nevyskytuje.

Laboratórna diagnostika. Hlavná metóda je bakteriologická. Materiálom na výskum sú výkaly. Schéma izolácie patogénu: očkovanie na diferenciálne diagnostické médiá Endo a Ploskirev (paralelne na obohacovacie médium, po ktorom nasleduje očkovanie na médium Endo a Ploskirev) s cieľom izolovať izolované kolónie, získať čistú kultúru, študovať jej biochemické vlastnosti a s prihliadnutím na druhé identifikácia pomocou polyvalentných a monovalentných diagnostických aglutinačných sér. Vyrábajú sa nasledujúce komerčné séra.

1. Shigella, ktorá nefermentuje manitol:

Komu S. dysenteriae 1 A 2

Komu S. dysenteriae 3 – 7(polyvalentné a monovalentné),

Komu S. dysenteriae 8 – 12(polyvalentné a monovalentné).

2. Do manitolu fermentujúceho Shigella:

na typické antigény S. flexneri I, II, III, IV, V, VI,

na zoskupenie antigénov S. flexneri 3, 4, 6, 7, 8- polyvalentný,

na antigény S. boydii 1 – 18(polyvalentné a monovalentné), na antigény S. sonnei I fáza, II fáza,

na antigény S. flexneri I–VI+ S. sonnei– polyvalentný.

Na rýchlu identifikáciu Shigelly sa odporúča nasledujúca metóda: podozrivá kolónia (negatívna na laktózu na médiu Endo) sa subkultivuje na médiu TSI (angl. trojitý cukor železo) – trojcukrový agar (glukóza, laktóza, sacharóza) so železom na stanovenie produkcie H2S; alebo do média obsahujúceho glukózu, laktózu, sacharózu, železo a močovinu. Každý organizmus, ktorý rozkladá močovinu po 4 až 6 hodinách inkubácie, je s najväčšou pravdepodobnosťou členom rodu Proteus a môžu byť vylúčené. Mikroorganizmus, ktorý produkuje H2S alebo má ureázu, alebo produkuje kyselinu na kĺbe (fermentuje laktózu alebo sacharózu), možno vylúčiť, hoci kmene, ktoré produkujú H2S, by sa mali testovať ako možných členov druh Salmonella. Vo všetkých ostatných prípadoch by sa kultúra pestovaná na týchto médiách mala preskúmať a v prípade fermentácie glukózy (zmena farby) by mala byť izolovaná čistej forme. Zároveň sa môže študovať v sklenenej aglutinačnej reakcii s príslušnými antisérami rodu Shigella. V prípade potreby sa vykonajú ďalšie biochemické testy na kontrolu členstva v rode. Shigella, a tiež študijnú mobilitu.

Na detekciu antigénov v krvi (aj ako súčasť CEC) možno použiť moč a výkaly nasledujúce metódy: RPGA, RSK, koagulačná reakcia (v moči a stolici), IFM, RAGA (v krvnom sére). Tieto metódy sú vysoko účinné, špecifické a vhodné na včasnú diagnostiku.

Na sérologickú diagnostiku možno použiť: RPHA s príslušnou erytrocytárnou diagnostikou, imunofluorescenčnú metódu (nepriama modifikácia), Coombsovu metódu (stanovenie titra neúplných protilátok). Diagnostický význam má aj test na alergiu s dysenterínom (roztok proteínových frakcií Shigelly Flexner a Sonne). Reakcia sa berie do úvahy po 24 hodinách, považuje sa za pozitívnu v prítomnosti hyperémie a infiltrátu s priemerom 10–20 mm.

Liečba. Hlavná pozornosť sa venuje obnoveniu normálneho metabolizmu voda-soľ, racionálna výživa, detoxikácia, racionálna antibiotická terapia (berúc do úvahy citlivosť patogénu na antibiotiká). Dobrý účinok sa dosiahne skorým užívaním polyvalentného bakteriofága dyzentérie, najmä tabliet s pektínovým obalom, ktorý chráni fág pred pôsobením žalúdočnej šťavy HCl; V tenkom čreve sa pektín rozpúšťa, fágy sa uvoľňujú a uplatňujú svoj účinok. Na preventívne účely by sa mal fág podávať aspoň raz za tri dni (obdobie jeho prežívania v čreve).

Problém špecifickej prevencie. Na vytvorenie umelej imunity proti úplavici boli použité rôzne vakcíny: z usmrtených baktérií, chemikálie, alkohol, ale všetky sa ukázali ako neúčinné a boli prerušené. Vakcíny proti Flexnerovej úplavici boli vytvorené zo živej (mutantnej, na streptomycíne závislej) Shigelly Flexnerovej; ribozomálne vakcíny, ale tiež nenašli široké použitie. Preto problém špecifickej prevencie dyzentérie zostáva nevyriešený. Hlavným spôsobom boja proti úplavici je zlepšenie vodovodného a kanalizačného systému, zabezpečenie prísnych hygienických a hygienických režimov v potravinárskych podnikoch, najmä v mliekarenskom priemysle, v zariadeniach starostlivosti o deti, na verejných miestach a pri udržiavaní osobnej hygieny.