Rossielchoznadzor / Przepisy prawne

federalna służba nadzoru weterynaryjnego i fitosanitarnego

Administracje terytorialne ... TU dla Terytorium Ałtaju i Republiki Ałtaju TU dla regionu Amur TU dla obwodu biełgorodzkiego TU dla obwodów briańskiego i smoleńskiego TU dla Obwód Władimirski Specyfikacje techniczne dla obwodów Woroneża i Lipiecka Specyfikacje techniczne dla obwodów Moskwy, Moskwy i Tuły Specyfikacje techniczne dla Terytorium Zabajkalskiego obwód kaliningradzki TU dla Obwodu Kałuskiego TU dla Terytorium Kamczackiego i Czukockiego Regionu Autonomicznego TU dla Obwodu Kirowskiego i Republiki Udmurckiej TU dla Obwodów Kostromskiego i Iwanowskiego TU dla Terytorium Krasnodarskiego i Republiki Adygei TU dla Terytorium Krasnojarskiego TU dla Obwodu Kurgan TU dla obwodu magadańskiego TU dla obwodu murmańskiego i Republiki Mari El TU w obwodach nowogrodzkim i wołogdzkim TU w obwodzie nowosybirskim TU w obwodzie omskim TU w obwodzie orenburskim TU w obwodach orłowskim i kurskim TU w Region permski Specyfikacje techniczne dla Terytorium Nadmorskiego i regionu Sachalin Specyfikacje techniczne dla republik Chakasji i Tywy oraz regionu Kemerowo Specyfikacje techniczne dla Republiki Baszkirii Specyfikacje techniczne dla Republiki Dagestanu Specyfikacje techniczne dla Republiki Inguszetii Specyfikacje techniczne dla Republiki Karelia, obwód archangielski. i Nieńcy m.in. Specyfikacje techniczne dla Republiki Komi Specyfikacje techniczne dla Republiki Krym i miasta Sewastopol Specyfikacje techniczne dla Republiki Mordowii i regionu Penza Specyfikacje techniczne dla Republiki Sacha (Jakucja) Specyfikacje techniczne dla Republiki Tatarstan Specyfikacje techniczne dla Obwody rostowskie, wołgogradzkie i astrachańskie oraz Republika Kałmucji Specyfikacje techniczne dla obwodów riazańskich i tambowskich Specyfikacje techniczne dla obwodu samarskiego TU dla obwodów petersburskiego, leningradzkiego i pskowskiego Obwód Saratowski TU wg Obwód swierdłowski Specyfikacje techniczne dla terytorium Stawropola i Republiki Karaczajo-Czerkieskiej Specyfikacje techniczne dla obwodu twerskiego Specyfikacje techniczne dla obwodu tomskiego TU dla Terytorium Chabarowskiego i Żydowskiego Obwodu Autonomicznego TU dla Obwodu Czelabińskiego TU dla Republiki Czeczeńskiej TU dla Republiki Czuwaskiej i Obwodu Uljanowskiego TU dla Obwodu Jarosławskiego

Ta sekcja zawiera aktualne wersje aktów prawnych (ustaw, zarządzeń, dekretów, orzeczeń Sądu Najwyższego Federacji Rosyjskiej itp.), które są interesujące dla specjalistów z zakresu medycyny weterynaryjnej i fitosanitarnej.

Dodatkowe informacje można uzyskać zadając pytanie w dziale „Recepcja elektroniczna”.

Zasady

Przepisy weterynaryjne i sanitarne dotyczące przygotowania obornika, obornika i odchodów jako nawozów organicznych w leczeniu chorób zakaźnych i pasożytniczych zwierząt i ptaków

Część 1

Postanowienia ogólne

1.1. Przepisy weterynaryjno-sanitarne dotyczące przygotowania do stosowania jako nawozów organicznych obornika, obornika i ścieków pochodzących z zakładów hodowlanych i drobiarskich, zwane dalej „Przepisami”, mają na celu kontrolę projektowania, budowy i eksploatacji urządzeń do przygotowania obornika , obornika i ścieków, w celu uzyskania przyjaznych dla środowiska, bezpiecznych nawozów organicznych, chroniących środowisko przed skażeniem patogenami chorób zakaźnych i pasożytniczych.

1.2. „Regulamin” przygotowywany jest na podstawie dokumentów legislacyjnych i wykonawczych:

1. Prawo Federacja Rosyjska„O medycynie weterynaryjnej” z dnia 14 maja 1993 r. N 4979-1;
2. GOST 24076-84 „Obornik. Wymagania weterynaryjne i sanitarne dotyczące przetwarzania, przechowywania, transportu i użytkowania”;
3. „Ogólnounijne normy dotyczące projektowania technologicznego systemów usuwania i przygotowania obornika”, ONTP 17-86, Gosagroprom ZSRR;
4. „Republikańskie normy dotyczące projektowania technologicznego przedsiębiorstw drobiarskich”, RNTP 4-93;
5. „Instrukcja kontroli laboratoryjnej obiektów obróbki w kompleksach hodowlanych”, 1980 (Ministerstwo Rolnictwa ZSRR);
6. „Instrukcja przeprowadzania weterynaryjnej dezynfekcji obiektów inwentarskich”, 1989 (Gosagroprom ZSRR);
7. „Wymogi weterynaryjno-sanitarne i higieniczne dotyczące instalacji linii technologicznych do usuwania, przetwarzania, dezynfekcji i usuwania obornika uzyskanego w kompleksach hodowlanych i gospodarstwach”, 1979 (Ministerstwo Rolnictwa ZSRR, Ministerstwo Zdrowia ZSRR);
8. „Zalecenia metodyczne dotyczące zapobiegania zanieczyszczaniu środowiska przez bezścienny obornik kompleksów hodowlanych i gospodarstw”, 1989 (Gosagroprom ZSRR i Goskompriroda ZSRR);
9. „Systemy nawadniania z wykorzystaniem odpadów zwierzęcych. VSN 33-2.2.01-85” (Ministerstwo Melioracji i Zasobów Wodnych ZSRR);
10. „Przepisy weterynaryjne i sanitarne dotyczące wykorzystania ścieków hodowlanych do nawadniania i nawożenia pastwisk”, 1993 (Ministerstwo Rolnictwa Rosji, Departament Medycyny Weterynaryjnej);
11. TU 10-11-887-90 „Kompost torfowo-oborowy z dużego obornika bydło";
12. TU 64-4688624-02-91 „Wermikompost”.

1.3. Niniejsze „Zasady” dotyczą wszystkich rodzajów nawozów organicznych pozyskiwanych w istniejących, nowo budowanych i przebudowywanych gospodarstwach hodowlanych o różnej wydajności.

1.4. Wybór systemów urządzeń do przygotowania nawozów organicznych dokonywany jest na podstawie porównania technicznego i ekonomicznego różne opcje z uwzględnieniem specjalizacji i standardowej wielkości przedsiębiorstwa, warunków klimatycznych, glebowych i hydrogeologicznych.

1.5. Projekty instalacji do przetwarzania, przechowywania i dezynfekcji nawozów organicznych podlegają zatwierdzeniu przez miejscowe organy państwowego nadzoru weterynaryjnego, państwowego nadzoru sanitarno-epidemiologicznego oraz Państwowego Komitetu Ochrony Przyrody.

1.6. Wybierając miejsce pod budowę obiektów inwentarskich i ferm drobiu, należy przewidzieć przeznaczenie gruntów rolnych do usuwania całej rocznej ilości nawozów organicznych lub technologii przetwarzania, które zmniejszają ilość otrzymywanych nawozów.

1.7. Obiekty przygotowania obornika, ściółki i ścieków zlokalizowane są poza ogrodzeniami terenów ferm, kompleksów i ferm drobiu po stronie zawietrznej i poniżej ujęć wody.

Odległość od budynków do budynków mieszkalnych i inwentarskich zależy od zdolności produkcyjnych przedsiębiorstw i jest określana na podstawie tabeli 1.

1.8. Wszystkie konstrukcje i elementy budowlane systemów przygotowania nawozów organicznych muszą być wykonane z hydroizolacją, która wyklucza filtrację gnojowicy i odpływów do warstw wodonośnych oraz infiltrację wód gruntowych do linii produkcyjnej.

1.9. Teren obiektów przygotowania nawozów organicznych musi być ogrodzony, chroniony zielenią wieloletnią, zagospodarowany oraz posiadać podjazdy i utwardzoną drogę dojazdową o szerokości co najmniej 3,5 m.

1.10. Przy opracowywaniu projektów obiektów powinna istnieć możliwość poddania kwarantannie wszystkich rodzajów obornika i ścieków przez co najmniej 6 dni, niezbędnych do wyjaśnienia diagnozy w przypadku podejrzenia choroby zakaźnej.

Do kwarantanny obornika ściółkowego i ściółki konstruuje się sekcje o utwardzonej powierzchni, kwarantannę obornika bezleśnego przeprowadza się w specjalnych zbiornikach kwarantannowych obiektów przetwarzania lub w sekcjach składowania obornika.

Magazyny gnojowicy wyposażone są w urządzenia do mieszania masy, ich skarpy i dna muszą mieć utwardzoną nawierzchnię, magazyny zamknięte muszą być wyposażone w włazy oraz wentylację nawiewno-wywiewną.

W przypadku sztucznego biologicznego oczyszczania płynnego obornika świńskiego i ścieków z ferm drobiu w aerotankach, a następnie ich przeniesienia do miejskich oczyszczalni lub zrzutu do wód powierzchniowych, kwarantannę przeprowadza się z uwzględnieniem czasu spędzonego w oczyszczalniach przedsiębiorstw .

Jeśli w ciągu 6 dni nie zarejestrowany choroba zakaźna zwierzęta, obornik, odchody i ścieki są oczyszczane zgodnie z przyjętymi technologiami, czyszczone ścieki odprowadzane do wód powierzchniowych zgodnie z wymaganiami „Zasad i norm sanitarnych dotyczących ochrony wód powierzchniowych przed zanieczyszczeniem” (N 4630-88).

Część 2

Dezynfekcja obornika, ściółki i kanalizacji

2.1. W przypadku wystąpienia chorób zakaźnych zwierząt, każde przedsiębiorstwo hodowlane i ferma drobiu musi zapewnić sposób i środki techniczne dezynfekcji obornika, ściółki i ścieków. Czas trwania kwarantanny w gospodarstwach znajdujących się w niekorzystnej sytuacji określają aktualne instrukcje dotyczące działań w celu wyeliminowania określonych chorób zakaźnych, uwzględniające sposób dezynfekcji odpadów organicznych, dostępność środków dezynfekujących oraz środki techniczne, a także rodzaj i odporność patogenu.

2.2. Gdy w gospodarstwach występują choroby zakaźne, cała masa nawozów organicznych uzyskanych w tym okresie jest dezynfekowana przed podziałem na frakcje metodami biologicznymi, chemicznymi lub fizycznymi. Należy rozważyć metody dezynfekcji odpadów organicznych z uwzględnieniem ich fizyczne i chemiczne właściwości obiecujących technologii przetwórczych i możliwości ich wykorzystania jako nawozów ( , ).

2.3. Dla kompleksów hodowli trzody chlewnej o wydajności 12-27 tysięcy sztuk rocznie planuje się przeprowadzenie kwarantanny przez 6 dni. oraz dezynfekcję niesporotwórczej mikroflory chorobotwórczej niepodzielonego obornika poprzez długotrwałą obróbkę przez 12 miesięcy. dojrzewanie w sekcyjnych zbiornikach magazynowych, fermentacja beztlenowa w bioenergetyce lub chemikalia w kwarantannie lub specjalnie przygotowanych pojemnikach.

Biologiczna metoda odrobaczania polega również na przechowywaniu gnojowicy półpłynnej i płynnej od świń w otwartych magazynach gnojowicy przez okres 12 miesięcy.

Odrobaczanie płynnej frakcji obornika świńskiego przeprowadza się poprzez jego osadzanie przez 6 dni. w sekcyjnych stawach retencyjnych wyposażonych w urządzenia zapobiegające przedostawaniu się osadów dennych do systemu nawadniającego oraz urządzenia zapewniające okresowy rozładunek osadów przed ich ponownym napełnieniem frakcją płynną.

2.4. Fermentacja beztlenowa gnojowicy świńskiej prowadzona jest w zakładach bioenergetycznych (BEU). Stosowanie zestawów urządzeń do fermentacji beztlenowej jest możliwe w istniejących gospodarstwach i kompleksach bez istotnych zmian w ciągach technologicznych usuwania obornika.

2.4.1. Gnojowica musi być uprzednio oczyszczona z zanieczyszczeń, posiadać wilgotność 90 - 96%, stosunek C:N 10 - 18:1, zawartość popiołu nie większą niż 20% (brak azotu ogranicza proces fermentacji metanowej) ).

2.4.2. Przechowywanie obornika wstępnego przed fermentacją nie powinno przekraczać 24 - 48 godzin.

2.4.3. Obornik z gospodarstwa trafia do odbiornika gnojowicy, wyposażonego w pompę z urządzeniem rozdrabniająco-mieszającym zapewniającym homogenizację masy do podgrzewacza (specjalny pojemnik – uchwyt, sekcja reaktora mikrobiologicznego). Odbiorniki obornika muszą zapewnić gromadzenie co najmniej 2-dniowej objętości z gospodarstwa.

2.4.4. W podgrzewaczu gnojowica doprowadzana jest do wymaganej temperatury fermentacji, mieszana i podawana porcjami do fermentora. Objętość podgrzewacza musi odpowiadać dziennej produkcji obornika z gospodarstwa.

2.4.5. Mikrobiologiczny proces fermentacji beztlenowej odbywa się na tej samej zasadzie dla wszystkich rodzajów obornika i wszystkich typów konstrukcji fermentatorów. Aby proces fermentacji beztlenowej przebiegał, ilość lotnych kwasów tłuszczowych w przefermentowanej masie powinna mieścić się w przedziale 600 – 2000 mg/l. Pożywki wraz z nowymi porcjami gnojowicy należy codziennie dostarczać do komory fermentacyjnej.

2.4.6. Proces metanogenezy zachodzi w temperaturze przetwarzanej masy 16 - 60 °C. Wybór reżim temperaturowy Fermentacja beztlenowa odpadów organicznych podyktowana jest wymaganiami jakościowymi produktów końcowych tj. stopień oczyszczenia gnojowicy, dezynfekcji, odrobaczania, ilość metanu w biogazie, czynniki klimatyczne i ekonomiczne.

2.4.7. Wydajność reaktora mikrobiologicznego zależy od dziennej objętości odbieranego obornika, wybranego reżimu temperaturowego, dzienna dawka wsadu, czasu trwania fermentacji i stopnia rozkładu materii organicznej.

2.4.8. Mechaniczny, hydrauliczny i powietrzny (biogazowy) układ mieszania przefermentowanej masy w bioreaktorze zapewniają jednakową (jednolitą) temperaturę przetwarzanego substratu w całej objętości fermentora, niszczenie powierzchniowej skorupy oraz łagodny reżim fermentacji. Proces fermentacji beztlenowej w warniku prowadzony jest przy nadciśnieniu do 200 - 400 mm słupa wody (0,2 - 0,4 kPa).

2.4.9. Liczba fermentorów powinna wynosić co najmniej dwa, zapewniając optymalne warunki do fermentacji beztlenowej i pozwalając w przypadku wybuchu epidemii chorób zakaźnych na przeniesienie pracy bioreaktorów z pracy przepływowej do pracy cyklicznej.

2.4.10. Biorąc pod uwagę możliwość przedostania się nieoczyszczonego obornika do stref wylotu przefermentowanej masy, istniejące technologie przepływowe z pracą dwóch fermentorów powinny zapewniać przetrzymywanie przefermentowanego obornika w oczyszczalni przez co najmniej 3 dni. w szambach lub pojemnikach. Przy trzech lub więcej fermentorach pracujących w trybie sekwencyjnym zapewniona jest sześciodniowa kwarantanna przetwarzanej masy i nie są wymagane dodatkowe zbiorniki na przefermentowany obornik.

W przypadku chorób zakaźnych fermentację beztlenową gnojowicy prowadzi się w reżimie termofilnym (53 - 56°C) z utrzymywaniem gnojowicy w komorach fermentacyjnych przez co najmniej 3 dni. bez dodatku świeżych porcji masy surowej.

W przypadku przedostania się zanieczyszczonego gnojowicy do zbiorników magazynowych, dezynfekcję przeprowadza się poprzez przetrzymanie przefermentowanej masy w otwartym magazynie gnojowicy przez okres 6 miesięcy.

2.4.11. Wprowadzenie mikrobiologicznego „zakwasu” z kultur ciepłolubnych do fermentora przy ul tryb optymalny fermentacja termofilna skraca czas dezynfekcji z mikroflory asporogennej do 1 dnia:

1. temperatura procesu - 52 - 54 ° C, - wilgotność przetworzona masa - 92 - 96%,
2. stężenie jonów hydroksylowych, pH, - 7,0 - 8,0,
3. liczba termofilów – 0,6 – 1,0 mln/ml,
4. dawka dziennego obciążenia - 10 - 20%,
5. częstotliwość pobierania - 1 raz dziennie,
6. ilość mieszania masy w fermentorze - 3 razy dziennie,
7. czas trwania każdego mieszania - 15 - 20 minut,
8. ciśnienie w fermentorze - 0,2 - 0,4 kPa.

2.5. Z metody biologiczne W przypadku dezynfekcji gnojowicy skuteczna jest również metoda stabilizacji tlenowej (intensywne utlenianie) po podgrzaniu masy do 60°C i ekspozycji przez 4 dni. Jednocześnie uzyskuje się również dezodoryzację gnojowicy.

Wprowadzenie inokulum mikroorganizmów termofilnych w ilości 1 mln/g przetwarzanej masy może skrócić czas dezynfekcji do 2 dni.

2.6. Do realizacji metoda chemiczna dezynfekcja gnojowicy pochodzącej z ferm trzody chlewnej, urządzenia do jej przygotowania do użycia powinny dodatkowo obejmować specjalne pojemniki, pompy do pompowania i okresowej homogenizacji.

2.6.1. Podczas dezynfekcji gnojowicy formaliną objętość pojemnika dla różnych standardowych rozmiarów przedsiębiorstw należy obliczyć na podstawie warunków dezynfekcji odpadów organicznych, tylko w ciepłym sezonie. Formalina jest wprowadzana w ilości 0,3% (wg DV) do przetwarzanego obornika, masa jest mieszana przez 6 h i przetrzymywana przez 72 h. Zapewnia śmierć patogenów robaczyc w oborniku.

2.6.2. Dezynfekcję gnojowicy z patogenów chorób zakaźnych i inwazyjnych bezwodnym amoniakiem można przeprowadzić o każdej porze roku, ponieważ po jej wprowadzeniu temperatura przetwarzanej masy wzrasta do 20 - 25 ° C. Amoniak jest transportowany w cysternach MZhA-6, ZBA-3.2 pod ciśnieniem w zbiornikach 6 atm., podawany do obornika przez specjalne dozowniki lub przez rurę zakończoną perforowaną igłą (konstrukcja NIPTIZH), opuszczany na dno zbiornika z przetworzoną masą. Nakłucie igłą wykonuje się w odległości 1 - 2 m od ścian pojemnika i od siebie. Podczas wprowadzenia masa jest mieszana. Obrobiony obornik pokrywa się emulsyjnymi foliami dezynfekującymi (lizol sanitarny marki „Desonol”, aldehyd masłowy itp.). Do traktowanego podłoża wprowadza się amoniak w ilości 2 - 3%, emulsje-dezynfektory 0,1 - 0,3% i obornik przechowuje się przez 3 - 5 dni.

Odkażone odpady organiczne wywożone są na pola transportem mobilnym, zaleca się przywożenie metodą podglebową lub pod pługiem.

Gnojówka zaprawiona formaliną nie ustępuje pod względem wpływu na plony gnojowicy nie poddanej obróbce, a potraktowana bezwodnym amoniakiem zwiększa plony o 15-20%.

2.6.3. Na kompleksach chowu trzody chlewnej o pojemności 54 – 216 tys. sztuk, które posiadają dwustopniową oczyszczalnię biochemiczną oraz stawy biologiczne w ramach oczyszczalni, zapewniające głębokie oczyszczanie ścieków z substancji organicznych (BZT5 – 12 – 16 mg O2/l, ChZT - 40 - 100 mg/l, zawiesina - 20 - 25 mg/l, tlen rozpuszczony - 6 - 10 mg/l), w porozumieniu z terenowymi organami państwowego nadzoru weterynaryjnego i państwowego nadzoru sanitarno-epidemiologicznego, dezynfekcja ścieków oczyszczonych chlorowanie resztkowym chlorem w ilości co najmniej 1,5 mg/l jest dozwolone w okresach epidemii chorób zakaźnych po 30 min. kontakt lub ozonowanie z pozostałością ozonu 0,3 - 0,5 mg/l po 60 minutach. kontakt z dokładnym wymieszaniem oczyszczonych ścieków.

Dawki wtłaczanego chloru i ozonu dobierane są indywidualnie do każdego przypadku. Biorąc pod uwagę fakt, że ozon łatwo i szybko rozkłada się do tlenu, znika problem toksyczności jego pozostałości. Ozon zawsze można otrzymać w obecności tlenu i elektryczności, więc nie ma potrzeby jego magazynowania. Ta metoda oczyszczania ścieków jest bardzo obiecująca, ale specyficzna dla rozwoju technologii dezynfekcji różne rodzaje ozonatory.

Osad surowy z osadników oraz nadmierny osad czynny można odkażać bezwodnym amoniakiem lub fermentacją beztlenową w bioenergetyce.

2.7. Dezynfekcja nieoczyszczonych oborników odbywa się poprzez poddanie ich działaniu promieniowania gamma Co-60 pochodzącego z wegetatywnej mikroflory chorobotwórczej w dawkach 2-12 kGy, patogenów gruźlicy - 13 kGy, patogenów zarodnikujących - 20 kGy.

Po oczyszczeniu odpadów organicznych do parametrów: dla zawiesin - 90 - 110 mg/l, BZT5 - 115 - 130 mg/l, utlenialność - 55 mg/l - dawka promieniowania jonizującego niezbędna do inaktywacji niesporotwórczych mikroflora jest zredukowana do 2 - 10 kGy, czynniki wywołujące gruźlicę - 11 kGy, zarodniki mikroorganizmów - 17 kGy. Przy przetwarzaniu obornika świńskiego i obornika promieniowaniem jonizującym (Co-60, CS-137) całkowita śmierć jaj glisty następuje od dawki 1,3 kGy, trichocefal - 0,5 kGy, przełyk - 0,3 kGy, oocysta eimeria - 2, 5 kGy. Odporność na promieniowanie jaj robaków, oocyst eimeria zmniejsza się wraz z dodatkiem nawozów mineralnych i bulgotaniem masy w czasie napromieniowania.

Zastosowanie adsorbentów do oczyszczania ścieków z węglem aktywnym marki AG-3, a także węglem aktywnym z osadami ściekowymi poddanymi obróbce termicznej (150 - 170°C), koagulowanymi siarczanem amonu (25 mg/l w stosunku 1,0 - 2.3: 1) po dodaniu do kanalizacji nadtlenku wodoru w dawce 0,6 - 0,8 mg/l przy stałym napromieniowaniu kolumny adsorpcyjnej adsorbentami zwanymi promieniami gamma, Co-60 umożliwia strumieniową dezynfekcję oczyszczonych ścieków z mocą dawki promieniowania 25 rad / s.

Wybór źródła promieniowania determinowany jest każdorazowo warunkami prowadzenia procesu, wymaganą wydajnością i niezawodnością działania. Ochrona źródeł promieniowania powinna zapewnić brak radioaktywności w oczyszczanych ściekach oraz wzrost tła radioaktywnego środowiska (NRB-96, OSP-87 Gosatomnadzor).

2.8. Obróbka gnojowicy przepuszczanej przez rozdrabniarkę o wilgotności 95 - 97% w wirującym polu elektromagnetycznym w urządzeniach z warstwą wirową ABC-150 (której cewka indukcyjna zasilana jest prądem przemiennym o napięciu 380 V i częstotliwości 50 Hz, pobór mocy 1,6 kW) z cząstkami ferromagnetycznymi (d - 1 - 2 mm, l - 5 - 20 mm) w komorze roboczej o masie 400 - 700 g zapewnia ich dezynfekcję z wegetatywnej mikroflory chorobotwórczej w ciągu 60 s, a przy wzrost masy cząstek ferromagnetycznych do 800 g, dezynfekcja następuje w 30 s. Zastosowanie kilku urządzeń ABC w ciągu technologicznym umożliwia dezynfekcję obornika w strumieniu.

2.9. Dezynfekcja ścieków metodą unipolarnej aktywacji w komorze anodowej elektrolizera membranowego wymaga ich głębokiego oczyszczenia do parametrów: zawiesina 3 - 5 mg/l, Bd5 - 1 - 3 mg/l, ChZT 26 - 32 mg/l, azot soli amonowych - 1,5 - 2,0 mg/l, twardość całkowita - 5,0 - 7,7 mg/l, chlorki - 270 - 300 mg/l. Dezynfekcję ścieków uzyskuje się poprzez tworzenie się na anodzie wolnego aktywnego chloru o zawartości w ściekach 17,5 - 21,5 mg/l, podwyższeniu pH roztworu do 10 lub więcej oraz innych czynników, które nie zostały jeszcze w pełni zbadane, przy o natężeniu prądu 3 - 5 A, napięciu 32 - 37 V i gęstości prądu na elektrodach - 200 A/mkw. m. Czas kontaktu ścieków, które przeszły przez strefę anodową elektrolizera membranowego, wynosi 10 minut, mieszanych ścieków katodowo-anodowych - co najmniej 30 minut. następnie przetrzymanie do zaniku chloru w cieczy odpadowej.

2.10. Przetwarzanie sklarowanego spływu gnojowicy w membranowych urządzeniach mikrofiltracyjnych na pustych włóknach o średnicy porów poniżej 0,2 mikrona pod ciśnieniem cieczy 1 - 1,2 atm. towarzyszy spadek mikroflory saprofitycznej i wskaźnikowej o 97,1 - 99,4%, jednak nie następuje całkowite oczyszczenie z wegetatywnej mikroflory chorobotwórczej, dlatego w przypadku wybuchu epidemii chorób zakaźnych stosuje się inne środki chemiczne lub fizyczne sposoby dezynfekcja uwzględniająca znaczny spadek mikroflory w filtracie ściekowym i tysiąckrotny wzrost frakcji skondensowanej.

2.11. Przy przetwarzaniu ścieków z hodowli trzody chlewnej w biologicznych stawach hodowlanych ryb z wykorzystaniem ich do nawadniania, dezynfekcję z asporogennej mikroflory chorobotwórczej w okresach epizootii zapewnia długoterminowe (12 miesięcy) przetrzymywanie ścieków w stanie nierozdzielonym na frakcje w osadnikach lub sekcjach składowania obornika.

System stawów hodowlanych i biologicznych zapewnia dezynsekcję ścieków oczyszczonych, jednak bio obróbka cieplna projekt. Technologia ta wymaga okresowego (co najmniej 1 raz w sezonie) wyładunku osadów z odcinków stawów (glony i skorupiaki) i podorania pod uprawy poddawane zakiszaniu lub obróbce cieplnej.

2.12. Dezynfekcja gnojowicy, spływu gnojowicy, frakcji płynnej i osadów ściekowych z osadników w przypadku zanieczyszczenia mikroflorą chorobotwórczą wegetatywną i zarodnikotwórczą, patogenami chorób inwazyjnych powinna być prowadzona termicznie w instalacjach z urządzenia odrzutowe w temperaturze 130 °C, ciśnieniu 0,2 MPa i ekspozycji przez co najmniej 10 minut. (projekt instalacji VNIIVViM).

2.13. W gospodarstwach hodowlanych każdej wielkości wskazane jest stosowanie biologicznej metody dezynfekcji poprzez przechowywanie obornika w sekcyjnych zbiornikach magazynowych, w których jest on poddawany kwarantannie. Przy stosowaniu biologicznej metody dekontaminacji obornika o dowolnej wilgotności nie jest wymagana budowa dodatkowych konstrukcji i zakup sprzętu, ponieważ składowe przyzagrodowe segmentowe służą do pośredniego przechowywania obornika lub jego frakcji przez okres do 6 miesięcy. w okresie niewegetatywnym.

W przypadku wystąpienia chorób zakaźnych dwie sekcje magazynu mogą zostać zajęte przez gnojowicę zanieczyszczoną patogenami, natomiast pozostałe sekcje (co najmniej dwie) zapewnią ciągłość procesu produkcyjnego. W takim przypadku okres przydatności do spożycia bezpiecznego obornika zmniejsza się o połowę. Po zakończeniu okresu utrzymywania gnojowicy zanieczyszczonej patogenami stosuje się ją jako nawóz organiczny zgodnie z wcześniej przyjętą technologią.

2.14. Obornik ściółkowy o wilgotności do 70% jest dezynfekowany metodą biotermiczną poprzez luźne układanie go w pryzmy o wymiarach: wysokość do 2,5 m, szerokość u podstawy do 3,5 m i dowolna długość.

Na zabetonowanym miejscu stos jest przechowywany na materiałach pochłaniających wilgoć (torf, posiekana słoma, trociny, zdezynfekowany obornik itp.) W warstwie 35 - 40 cm i przykryty nimi powierzchnie boczne warstwa 15 - 20 cm.

Przy dezynfekcji frakcji stałej gnojowicy metodą biotermiczną parametrami granicznymi dla zapewnienia procesów aktywnych są: wilgotność masowa do 80%, wysokość pryzmy do 3 m, szerokość podstawy do 5 m.

Ciecz wydostająca się z pryzmy wraz z opadami atmosferycznymi jest zbierana i kierowana do kolektora cieczy w celu dezynfekcji chemicznej.

Za początek terminu dekontaminacji obornika ściółkowego i frakcji stałej gnojowicy uważa się dzień wzrostu temperatury w środkowej jednej trzeciej pryzmy na głębokości 1,5–2,5 m do 50–60°C. Czas trzymania stosów w ciepłym sezonie wynosi 2 miesiące, na zimno - 3 miesiące.

Odrobaczanie frakcji stałej, kompostu, ściółki obornika o wilgotności do 70% przeprowadza się metodą biotermiczną, ale przy przechowywaniu w pryzmach w okresie wiosenno-letnim przez co najmniej 1 miesiąc, w okresie jesienno-zimowym - przez co najmniej 2 miesiące, a przy wilgotności 75% - w ciepłym sezonie przez co najmniej 2 miesiące. a na zimno - co najmniej 6 miesięcy.

2.15. obornik bydła, ferm futrzarskich i drobiarskich o wilgotności powyżej 70% poddaje się kwarantannie, a w przypadku wystąpienia ognisk chorób zakaźnych dezynfekuje poprzez długoterminowe przechowywanie w składowiskach obornika lub rowach ziemnych z warstwą hydroizolacji, które są wypełniane naprzemiennie. Sekcje magazynów gnojowicy i rowy wypełnione obornikiem zanieczyszczonym patogenami wegetatywnymi przykrywa się materiałami pochłaniającymi wilgoć warstwą 15-20 cm i przechowuje przez 12 miesięcy, jeśli obornik jest zanieczyszczony patogenem gruźlicy ptaków - 18 miesięcy.

Odrobaczanie obornika świńskiego zawierającego materiały ściółkowe zgromadzonego w pobliżu małych (rodzinnych) gospodarstw wymaga ponad roku dojrzewania. Aby przyspieszyć niszczenie patogenów robaczycy - glistnicy, trichuriozy, gemenolipidozy - wymagane jest mechaniczne mieszanie masy w okresie akumulacji jesienno-zimowej i utrzymywanie jej na stanowiskach przez 5-6 miesięcy.

2.16. Dekontaminację obornika półpłynnego i bezściennego o wilgotności 85 - 92% można wykonać przygotowując komposty z sorbentami organicznymi (słoma posiekana, torf, trociny, kora, lignina) i układając je w pryzmy (s. 2.14).

Aby zapewnić wymaganą wilgotność kompostowanej masy, należy wymieszać składniki w odpowiednich proporcjach uwzględniających ich wilgotność.

Do przygotowania kompostów na bazie obornika zwierzęcego wilgotność składników nie powinna przekraczać: obornik – 92%, torf – 60%, sapropel – 50%, odpady z obróbki drewna – 40 – 50%, słoma – 24% .

Do przygotowania kompostów na bazie obornika kurzego zawartość wilgoci w składnikach jest następująca: obornik - 64 - 82%, torf - 50 - 60%, słoma - 14 - 16%, trociny - 16 - 25%, kora drzewna - 50 - 60%, lignina - 60 %, gleby próchniczne - 20 - 30%, kompost - 65 - 70%.

Dla aktywnego i wydajnego przebiegu procesów biotermicznych w kompostach należy jednakowo przestrzegać każdego z poniższych warunków:

1. optymalna wilgotność masy kompostowej - 65 - 70%, - stosunek składników nie mniejszy niż 1:1,
2. wysoka jednorodność mieszanki,
3. optymalny odczyn podłoża, pH - 6,5 - 7,7,
4. wystarczające napowietrzenie masy podczas procesu kompostowania, tj. luźne układanie pali,
5. dodatni bilans cieplny, optymalny stosunek C-N(węgiel do azotu) 20 - 30:1.

Gdy temperatura masy wzrośnie do 50 - 60°C we wszystkich warstwach obroży w ciągu pierwszych 10 dni. po przechowywaniu komposty mogą wytrzymać 2 miesiące. latem i 3 miesiące. V okresy zimowe lat, a następnie użytkowane zgodnie z przyjętą technologią.

Aby zapobiec rozprzestrzenianiu się patogenów chorób zakaźnych, stosy nie są ponownie układane.

Gdy obornik jest zanieczyszczony szczególnie niebezpiecznymi postaciami zarodników czynników zakaźnych, komposty nie są przygotowywane. Spalane są ściółki obornika i osady z osadników. Półpłynne, gnojowica i ścieki są dezynfekowane termicznie w instalacjach parowych zaprojektowanych przez VNIIVViM.

Gnojowicę uwolnioną z kompostów kieruje się i dezynfekuje chemicznymi środkami dezynfekcyjnymi w taki sam sposób jak w pkt 2.6.

2.17. Przy przyspieszonym kompostowaniu obornika drobiowego i zwierzęcego przy użyciu sorbentów organicznych (zawartość wilgoci w masie nie przekracza 75%) w instalacjach o różnej konstrukcji (bioreaktorach) wykorzystujących systemy aktywnej wentylacji powietrza, dezynfekcję z wegetatywnej mikroflory chorobotwórczej uzyskuje się poprzez podwyższenie temperatury kompostu do temperatury 60 - 70°C w ciągu 24 - 48 h, a następnie jego dalszą obróbkę w ciągu 10 - 14 dni. Wprowadzenie inokulum mikroorganizmów termofilnych do kompostu skraca czas dezynfekcji do 4–7 dni.

2.18. Technologie przygotowania wermikompostów na bazie obornika zwierzęcego i odchodów drobiu realizowane są poprzez hodowlę w przygotowanym kompoście czerwonego kalifornijskiego robaka i innych podgatunków. dżdżownica(E.foetida). Substraty do wermikompostowania (frakcja stała obornika z ferm trzody chlewnej, obornik ściółkowy, odchody kurze itp.) są przygotowywane w drodze obróbki biotermicznej, a następnie wykorzystywane zgodnie z przyjętą technologią.

Wermikompostowanie odbywa się w warsztatach posiadających komplet urządzeń technologicznych zapewniających optymalne parametry środowiskowe (temperatura 20°C +/- 2,5, wilgotność masy kompostowej - nie więcej niż 70%, pH - 7,0 +/- 0,5) dla wermikultury matecznej . Hodowlę macierzystą wprowadza się do kompostu w ilości 30-50 sztuk na 1 kg podłoża, wilgotność utrzymuje się na poziomie nie większym niż 70%.

Warsztaty i stanowiska do wermikompostowania znajdują się po zawietrznej stronie sektora produkcyjnego w odległości co najmniej 60 m.

Wermikompost (biohumus) jest gotowy do użycia po 4-5 miesiącach. po ułożeniu w podłożach hodowli kalifornijskich robaków czerwonych.

Biomasa robaka jest oddzielana od podłoża i stosowana jako dodatek białkowy w paszach dla zwierząt, z uwzględnieniem wymagań GOST 17536-82 „Mąka paszowa pochodzenia zwierzęcego, TU”.

Magazyn do odbioru produkt końcowy(biohumus, biomasa robakowa) jest oddzielony ścianą od wyposażenia technologicznego warsztatu, aw punktach komunikacyjnych wyposażone są maty dezynfekcyjne zapobiegające wtórnemu zanieczyszczeniu mikroflorą oportunistyczną otrzymywanych produktów.

2.19. W przypadku utrzymywania bydła drobnego na podłogach rusztowych z nagromadzeniem w kanałach podziemnych gnojowicy o wilgotności 89 - 93%, temperatura w niej jest zbliżona do temperatury otoczenia i nie zachodzą tam procesy biotermiczne, dlatego w przypadku wystąpienia ogniska choroby zakaźnej należy go odkazić przez długoterminowe przechowywanie w magazynach gnojowicy lub przygotowanie kompostów z materiałami pochłaniającymi wilgoć (pkt 2.14).

W przypadku utrzymywania bydła i drobnego bydła na podłogach rusztowych z dodatkiem słomy oraz zbierania obornika w podziemnych magazynach gnojowicy, temperatura obornika o wilgotności 65-70% wzrasta do 50-55°C, a mikroflora wskaźnikowa w miana mniejsze niż 1,0 jest uwalniany tylko z górnej warstwy w 50 cm, dlatego w celu dezynfekcji takiego obornika podziemnego zanieczyszczonego wegetatywną chorobotwórczą mikroflorą konieczne jest, po usunięciu zwierząt, przykrycie go materiałami pochłaniającymi wilgoć o 20-30 cm i wytrzymują co najmniej 1 miesiąc. lato i 2 miesiące. - w zimę. Przy wyższej wilgotności obornika gnojowicę usuwa się z magazynu i dezynfekuje środkami chemicznymi, a pozostały gęsty obornik przechowuje się przez 10-12 miesięcy.

Odrobaczanie półpłynnego gnojowicy bydła i drobnego bydła w podziemnych składowiskach gnojowicy odbywa się poprzez jego przechowywanie przez okres 5 miesięcy.

2.20. Głęboka nieusuwalna ściółka podczas hodowli młodego bydła, drobnego bydła i drobiu nie jest dezynfekowana w procesie akumulacji, ponieważ temperatura w niej nie wzrasta powyżej temperatury otoczenia i nie zachodzą procesy biotermiczne.

W przypadku chorób zakaźnych zwierząt i drobiu ściółkę głęboką zanieczyszczoną patogenami, po rozluźnieniu wierzchniej warstwy, składuje się w pryzmach o akceptowalnych rozmiarach do obróbki biotermicznej na przygotowanych stanowiskach. W takich pryzmach aktywne procesy biotermiczne obserwuje się już po 48 godzinach, ale nie są one jednolite nawet w jednej warstwie, dlatego też są one przetrzymywane przez co najmniej 2 miesiące. lato i 3 miesiące. w zimę.

2.21. Nawozy organiczne otrzymane w wyniku przetwarzania obornika ściółkowego, frakcji stałej płynnego obornika zwierzęcego i obornika kurzego przy użyciu koprofagów według technologii opracowanych przez Nowosybirski Uniwersytet Rolniczy, VIZH, NIIEM, pozostają zanieczyszczone mikroflorą oportunistyczną zawartą w przetwarzanych podłożach . Ta technologia przetwarzania odpadów organicznych (T - 33 ° C) nie zapewnia dezynfekcji i dezynsekcji przetwarzanej masy, wymagana jest dodatkowa obróbka cieplna. Podczas suszenia termicznego produktów wtórnych w trybie powyżej 138 ° C i ekspozycji 10 minut. patogeny robaczyc i wegetatywna patogenna mikroflora są inaktywowane.

W przypadku stosowania larw koprofagów jako paszy białkowej dla zwierząt, musi ona być zgodna z GOST 17536-82 („Mączka paszowa pochodzenia zwierzęcego, TU”).

2.22. Obróbka obornika w dużych fermach drobiu poprzez suszenie w bębnowych suszarniach obornika z przepływem bezpośrednim i przeciwprądowym surowca oraz nośnika ciepła zapewnia jego dezynfekcję z bakterii chorobotwórczych, wirusów i patogenów robaczycy. Dezynfekcja ściółki w instalacjach bezpośredniego przepływu odbywa się przy temperaturze gazów dolotowych 800 - 1000°C, gazów wylotowych - 120 - 140°C i czasie ekspozycji co najmniej 30 minut. W instalacjach przeciwprądowych (USPP-1) dezynfekcja przetwarzanej masy jest zapewniona przy temperaturze gazów wchodzących 600 - 700 ° C, w bębnie 220 - 240 ° C i wychodzących 100 - 110 ° C przy ekspozycji 50 - 60 minut. Wilgotność wysuszonego obornika nie powinna przekraczać 10-12%, a całkowite zanieczyszczenie mikrobiologiczne nie powinno przekraczać 20 tys. komórek drobnoustrojów na 1 g.

Część 3

Kontrola dezynfekcji nawozów organicznych

3.1. Pobieranie próbek nawozów organicznych do kontroli bakteriologicznej przeprowadza się po upływie czasu ekspozycji różnymi metodami dezynfekcji opisanymi powyżej w odpowiednich rozdziałach.

3.2. Kontrola laboratoryjna skuteczności dezynfekcji nawozów organicznych uzyskanych w kompleksach i fermach podczas ognisk chorób zakaźnych zwierząt i ptaków prowadzona jest metodami mikrobiologicznymi pod kątem przeżycia mikroorganizmów wskaźnikowych (wskaźnikowo-sanitarnych): bakterii z grupy Escherichia coli, gronkowców i zarodników z rodzaju Bacillus zgodnie z „Instrukcją kontroli laboratoryjnej urządzeń leczniczych w kompleksach hodowlanych”, M., 1980 r. oraz „Instrukcją weterynaryjnej dezynfekcji obiektów inwentarskich”, M., 1989 r.

3.3. W fermentacji beztlenowej gnojowicy i obornika kontrolę dezynfekcji przeprowadza się zgodnie z przeżywalnością coli i enterokoki.

3.4. Gdy nawozy organiczne są zanieczyszczone patogenami gruźlicy, jakość ich dezynfekcji jest kontrolowana przez przeżycie gronkowców i enterokoków, ponieważ mikrobakterie saprofityczne nie tylko zachowują żywotność dłużej niż gatunki patogenne, ale także namnażają się podczas długotrwałego przechowywania odpadów organicznych.

3.5. Jakość dezynfekcji w przypadku skażenia odpadów organicznych przetrwalnikującymi patogenami wąglika, wąglika rozedmowego, bradzota, obrzęku złośliwego, a także patogenami zakażeń egzotycznych jest kontrolowana przez obecność lub brak tlenowych drobnoustrojów przetrwalnikujących z rodzaju Bakcyl.

3.6. Dezynfekcję odpadów organicznych uważa się za skuteczną pod nieobecność E. coli, gronkowców, enterokoków lub tlenowych drobnoustrojów przetrwalnikujących w 10 g (cm sześciennych) próbki, w zależności od rodzaju patogenów chorób zakaźnych w trzykrotnym badaniu .

Kontrolę pracy linii technologicznych do przygotowania nawozów organicznych przeprowadzają specjaliści służby weterynaryjnej przedsiębiorstw.

Odpowiedzialność za wdrożenie tych „Zasad” spoczywa na szefach przedsiębiorstw.

3.9. Badania próbek przeprowadza się zgodnie z metodami opisanymi w pkt.

Część 4

Przechowywanie i transport

4.1. Gnojowica płynna, półpłynna oraz spływy gnojowe są gromadzone i przechowywane w specjalnych segmentowych magazynach gnojowicy. Obornik ściółkowy, gnojowica i komposty są przetwarzane i przechowywane na utwardzonych obszarach.

4.2. Pojemność magazynów gnojowicy obliczana jest na podstawie dziennej ilości oddawanego gnojowicy i czasu jej wykorzystania.

4.3. Magazyny obornika przewidziane do przechowywania obornika niepodzielonego na frakcje muszą być wyposażone w urządzenia do jego mieszania. Skosy i dna zbiorników na obornik muszą mieć twardą powierzchnię. W zamkniętych magazynach gnojowicy należy zapewnić włazy i wentylację nawiewno-wywiewną.

4.4. Transport wszelkiego rodzaju obornika, ścieków i produktów ich przetwarzania odbywa się transportem mobilnym lub urządzeniami stacjonarnymi (transport hydromechaniczny).

Część 5

Stosowanie obornika i obornika

5.1. Stosowanie obornika, obornika i odchodów zwierzęcych jako nawozów organicznych na użytkach rolnych powinno odbywać się z uwzględnieniem ochrony środowiska przed zanieczyszczeniem oraz bezpieczeństwa dla zdrowia ludzi i zwierząt. W tym celu konieczne jest zapewnienie środków, które wykluczają:

1. zanieczyszczenie wód powierzchniowych i gruntowych,
2. zakażenia zwierząt mających kontakt z wodą do nawadniania, glebą i uprawami.

5.2. Wybór miejsc do wykorzystania obornika i ścieków jako nawozów organicznych, badanie projektów systemów nawadniających i uruchomienie tych obiektów powinno odbywać się z udziałem przedstawicieli państwowej służby weterynaryjnej.

5.3. Przy wyborze miejsc do stosowania nawozów organicznych należy zapewnić dostępność wymaganych gruntów rolnych, uwzględniając systemy usuwania, przetwarzania i unieszkodliwiania, strefy ochrony sanitarnej oraz plantacje leśne.

5.4. Obornik i ścieki zwierzęce muszą być transportowane, przetwarzane i wykorzystywane oddzielnie od ścieków bytowych, przemysłowych i zmieszanych (w tym z osiedli mieszkaniowych). Dopuszcza się odprowadzanie ścieków bytowych z poszczególnych łazienek znajdujących się w budynkach inwentarskich do oczyszczalni kompleksu inwentarskiego.

5.5. Budowa systemów nawadniających powinna zostać zakończona przed oddaniem kompleksów do użytku.

5.6. Stosowanie obornika i ścieków w produkcji roślinnej musi odbywać się w sposób zapobiegający uszkodzeniu lub zanieczyszczeniu upraw rolnych, jak również bez powodowania długotrwałych skutków dla ludzi i zwierząt.

5.7. Dawki aplikacyjne azotu, fosforu i potasu ustala się na podstawie ich usunięcia z plonem z uwzględnieniem czynników użytkowych.

5.8. Podczas stosowania zraszaczy o średnim i długim strumieniu należy wziąć pod uwagę prędkość i kierunek wiatru.

5.9. Podczas stosowania obornika i odchodów zwierzęcych w okresie wegetacji należy przestrzegać okresu między ostatnim nawodnieniem a zbiorem lub jego zastosowaniem.

5.10. Sztuczne biologiczne oczyszczanie płynnej frakcji gnojowicy świńskiej jest dozwolone w wyjątkowych przypadkach przy braku odpowiednich gruntów i wody do nawadniania, a także w przypadku niekorzystnych warunków klimatycznych, geograficznych i hydrogeologicznych oraz w przypadku odprowadzania do kanalizacji miejskiej.

„Zasady weterynaryjno-sanitarne dotyczące przygotowania do stosowania jako nawozów organicznych obornika, ściółki i ścieków w przypadku występowania chorób zakaźnych i choroby pasożytnicze zwierzęta i ptaki” zostały opracowane przez Wszechrosyjski Instytut Sanitarno-Weterynaryjny, Higieny i Ekologii oraz Wszechrosyjski Instytut Helmintologii im. K.I. Skryabina.

Aneks 1

Metody przygotowania próbek nawozów organicznych i badania ich na obecność mikroorganizmów wskaźnikowych

1. Po dekontaminacji pobiera się próbki ściółki, frakcji stałej i gnojowicy półpłynnej różne poziomy pojemniki na obornik lub obroże po przekątnej co najmniej 100 g z każdego punktu do sterylnego naczynia. W laboratorium odważone próbki rozdrabnia się w porcelanowym moździerzu, dodaje 1:5 - 10 sterylnej wody wodociągowej lub soli fizjologicznej i filtruje przez podwójną warstwę gazy.

Próbki obornika i oczyszczonych ścieków pobiera się próbnikami do sterylnych fiolek (V - 500 ml), transportuje i przechowuje zgodnie z ogólnie przyjętymi metodami.

Do badań przesącz próbek obornika i ścieków odwirowuje się z prędkością 3000 obr./min, wirówkę w objętości 1 ml dodaje się do płynnych pożywek magazynowych, a następnie przenosi się z probówek, w których wykrywa się wzrost, na gęste pożywki selektywne.

Próbki obornika i ścieków po dezynfekcji środkami chemicznymi również są filtrowane, przesącz odwirowywany, wirówkę przemywa się 2-3 razy sterylną solą fizjologiczną lub wodą wodociągową. Przemyty osad ponownie zawiesza się w 1 ml sterylnej soli fizjologicznej lub wody wodociągowej, inokuluje płynne pożywki elektywne, a następnie przenosi na wybiórcze pożywki stałe w celu wskazania i identyfikacji wyizolowanych mikroorganizmów.

2. W celu wskazania Escherichia coli wirówkę zaszczepia się w probówkach pożywką glukozowo-peptonową o zwykłym składzie i pływa w stosunku 1:5, po czym inkubuje w termostacie przez 24 godziny w temperaturze 43 °C.

Z każdej probówki z pożywką glukozowo-peptonową, w której odnotowuje się zmętnienie, tworzenie się gazów i kwasów, wykonuje się inokulacje pętlą uderzeń po powierzchni pożywki Endo na szalkach Petriego, podzielonych na 3-4 sektory. Inokulum pobiera się w taki sposób, aby uzyskać izolowane kolonie. Kubki z uprawami umieszcza się w termostacie z opuszczonymi wieczkami i inkubuje przez 18 - 20 godzin w temperaturze 37°C.

Typowe kolonie Escherichia coli hodowane na podłożu Endo Okrągły kształt, gładkie, wypukłe lub z wypukłą powierzchnią pośrodku, o gładkich krawędziach, w kolorze różowym, czerwonym lub karmazynowym, z metalicznym połyskiem lub bez. Jednak kolonie bezbarwne są również brane pod uwagę, ponieważ środki dezynfekujące mogą wpływać na kolor kolonii.

Z dwóch lub trzech różnych typów kolonii każdego sektora przygotowuje się rozmazy, barwi je metodą Grama i bada pod mikroskopem, a także sprawdza ich aktywność oksydazową. Kolonie bakterii Gram-ujemnych i oksydazo-ujemnych inokuluje się do półpłynnej pożywki z glukozą i inkubuje przez 4–5 godzin w temperaturze 37°C. Fermentacja cukru z wytworzeniem kwasu i gazu wskazuje na obecność E. coli.

3. W celu oznaczenia gronkowców wirówkę o objętości 1 ml dodaje się do roztworu BCH z 6,5% chlorkiem sodu w stosunku 1:5 i hodowle inkubuje się w termostacie przez 24-48 godzin w temperaturze 37°C. Z probówek, w których wykryto wzrost bakterii, ponownie wysiewa się na agarze Chapmana na płytkach Petriego i inkubuje w tych samych warunkach. Rozmazy przygotowuje się z charakterystycznych okrągłych, wypukłych i kolorowych kolonii (białych, cytrynowych lub pomarańczowych) z agaru Chapmana, barwionych metodą Grama i pod mikroskopem. Obecność ziarniaków Gram-dodatnich w rozmazach ułożonych w kiście winogron wskazuje na obecność gronkowców.

4. Oznaczenie enterokoków (Str.faecalis) przeprowadza się przez wysianie wirówki do płynnej alkaliczno-polimyksynowej pożywki, a następnie ponowne posianie z probówek, w których wykryto wzrost bakterii, na gęstą pożywkę glukozowo-drożdżową z TTX. Hodowle inkubuje się w temperaturze 37°C przez 24-48 godzin.

Z podłoża glukozowo-drożdżowego odsiewa się na MPA charakterystyczne małe, wypukłe kolonie z czerwonym środkiem w celu sprawdzenia właściwości biochemicznych zgodnie z testami Shermana (wzrost w MPB o pH 9,6, solance MPB itp.). Dostępność charakterystyczne cechy wskazuje na obecność enterokoków.

5. W celu wykrycia drobnoustrojów tlenowych tworzących przetrwalniki, przesącze próbki są podgrzewane przez 30 minut. w łaźni wodnej w 65°C, następnie odwirowano i osad zaszczepiono na BCH i 2 płytki z MPA. Uprawy inkubuje się przez 24-48 godzin w temperaturze 37°C. Obecność kolonii na MPA i zmętnienie BCH wskazuje na obecność zarodników mikroorganizmów tlenowych.

Załącznik 2

Pożywki

1. Pożywka peptonowa z glukozą

Medium o normalnym stężeniu zawiera:

1. pepton - 10,0 g
2. chlorek sodu- 5,0 gr
3. glukoza - 5,0 g
4. woda destylowana - 1000 ml.

Po rozpuszczeniu wskazanych składników dodaje się wskaźnik (2 ml 1,6% alkoholowego roztworu błękitu bromotymolowego lub 10 ml wskaźnika Andrade), doprowadza pH do wartości 7,4 - 7,6 i wlewa pożywkę do 10 ml probówek z pływakami , sterylizowane w autoklawie w temperaturze 112°C (0,5 kg/cm) przez 12 min.

2. Środa Endo

Sporządzany z suchego preparatu według przepisu na etykiecie.

3. Półpłynna pożywka ze wskaźnikiem BP i glukozą

Przygotowane zgodnie z recepturą na etykiecie. Okres trwałości - nie więcej niż 7 dni.

4. Przygotowanie odczynnika do oznaczania aktywności oksydazowej bakterii: 30 - 40 mg a-naftolu rozpuszcza się w 2,5 ml rektyfikowanej alkohol etylowy, dodać 7,5 ml wody destylowanej i 40 - 60 mg dimetylo-p-fenylenodiaminy. Roztwór przygotowuje się bezpośrednio przed oznaczeniem.

5. Agar Chapmana

1. MPA - 100 ml
2. Chlorek sodu - 8,0 g
3. Mannitol - 1,0 g
4. Czerwień fenolowa - 0,0025 g.

Pożywkę przelewa się do kolb i sterylizuje pod ciśnieniem 0,5 atm. w ciągu 20 minut

6. Pożywka alkaliczno-polimyksynowa składa się z 3 części:

a) ekstrakt drożdżowy (autolizat) - 2 ml

1. glukoza - 1,0 g
2. chlorek sodu - 0,5 g
3. rosół - 40 ml

b) soda węglowa - 0,53 g

1. woda destylowana - 25 ml

c) dwuzasadowy fosforan sodu - 0,25 g

1. woda destylowana - 25 ml.

Wszystkie trzy części pożywki sterylizuje się oddzielnie w temperaturze 112°C przez 12 minut. Po sterylizacji wymieszać, wyregulować pH do 10,0 - 12,0 i dodać polimyksynę w ilości 200 IU/ml.

7. Pożywka peptonowa z glukozą z TTX i fioletem krystalicznym

1. Ekstrakt drożdżowy - 2 ml
2. glukoza - 1,0 g
3. 0,01% wodny roztwór kryształów. fioletowy - 1,25 ml
4. TTX - 0,01 g
5. 2% MPA - 100 ml
6. Barwniki dodaje się do gotowego sterylnego podłoża przed wylaniem.

Załącznik 3

Rodzaje obornika i metody jego dezynfekcji

Dodatek 4

Maksymalny czas przeżycia patogenów chorób zakaźnych w środowisku zewnętrznym