Sanitarna i helmintološka istraživanja. Istraživanje povrća, voća i bobičastog voća

Fekalni pregled

Mikroskopiranje se u početku izvodi pri malom povećanju (X80). Praživotinje se mogu zamijeniti njihovim jačim lomom svjetlosti, a neke vrste svojim kretanjem ili promjenom oblika. Predmet uočen pri malom povećanju ispituje se pri povećanju od 400 ili 600. U nedostatku iskustva, poteze gledanja treba učiniti odmah na veliko povećanje, što, međutim, značajno povećava vrijeme za proučavanje lijeka. Gledanje poteza kistom pri velikom povećanju treba biti učinjeno pod jačim osvjetljenjem, prilagođavajući ga pomoću kondenzatora.

Diferencijalne značajke pojedinačne vrste amebe u nativnom razmazu su oblik i veličina tijela, vidljivost jezgre, priroda formiranja pseudopodija, kretanje, podjela citoplazme na ekto- i endoplazmu, priroda inkluzija (fagocitirani eritrociti, itd.). Prilikom razlikovanja vrsta flagelata - veličina i oblik tijela, broj flagela, priroda kretanja, prisutnost ili odsutnost valovite membrane. Specifične značajke balantidija su veličina, oblik tijela, kretanje, trepavice, citostoma itd.

Glavni obilježje vegetativni oblici praživotinja u živom stanju služe za kretanje. Pronađen u razmazima razne vrste nepomične formacije - biljna vlakna, mišićna vlakna, spore, gljivice itd. Ne treba ih uzimati u obzir u protozoološkoj dijagnostici.

Metoda nativnog razmaza je jednostavna i dostupna svakom laboratoriju. Omogućuje, pri pronalaženju tkivnih oblika dizenteričnih ameba s fagocitiranim eritrocitima, potpuno postavljanje točna dijagnoza amebna dizenterija, a ako se otkriju balantidia i lamblia - dijagnoza balantidiasis i giardiasis.

Bojanje razmaza Lugolovom otopinom . Ova boja se koristi za dijagnosticiranje protozoa pomoću cista. Koristi se u proučavanju formiranog, poluformiranog i kašastog izmeta.

Za pripremu razmaza, kraj drvenog štapića se oboji izmetom i ispere u kapi. otopina joda(J - 1,0 g, KJ - 2 g, destilirana voda - 100 ml), nanijeti na predmetno staklo dok se ne dobije jednolika emulzija. Preparat se pokrije pokrovnim staklom i nakon 3 – 5 min. mikroskop. Bris bi trebao biti dovoljno proziran da se može pregledati u prolaznom svjetlu.

Među ostacima neprobavljena hrana, spore, gljivice, jodofilne bakterije, protozojske ciste, smeđe ili zelenkasto-žute boje, odlikuju se strogo definiranim oblikom, veličinom, karakterističnom za svaku vrstu, jasnim obrisima rubova, prisutnošću glatke, prozirne, dvokružne ljuska, sadržaj citoplazme, kao i prisutnost jezgri s nejasno definiranom strukturom. U cistama amebe vidljive su smeđe (tamnosmeđe) obojene glikogenske vakuole. Stupanj obojenosti ovih vakuola i obrisi njihovih granica variraju kod protozojskih cista iste vrste, ovisno o njihovoj zrelosti.

poglavlje III. Dijagnostika helmintijaze i metode helmintološkog istraživanja

Potrebno je pregledati sve pacijente koji se prijavljuju na helmintiju medicinska pomoć, a posebno pacijenata koji se obraćaju pedijatru, terapeutu i neurologu s pritužbama na nuspojave gastrointestinalni trakt, živčani sustav i kod anemije. Ako liječnik nije uvijek u mogućnosti koristiti laboratorijske metode istraživanja, tada je svatko dužan ispitati pacijenta o izolaciji helminta. medicinski radnik pružanje njege u ambulanti ili bolnici.

Ako postoje kliničke indikacije dane u relevantnim poglavljima, dijagnoza bi se trebala razjasniti korištenjem laboratorijske metode studije za helmintoze.

Zbog prevlasti crijevne helmintijaze najveći praktični značaj ima pregled stolice.

Metode ispitivanja stolice na helmintioze

Stolica se dostavlja u laboratorij u čistoj staklenoj posudi (otprilike četvrtina šalice stolice uzeta iz razna mjesta jedna porcija); Tijekom rutinskog pregleda dopušteno je dostaviti stolicu u laboratorij u kutijama za šibice ili udlagama.

Za kontrolu dehelmintizacije isporučuje se cjelokupni dio izmeta prikupljen nakon primjene (prema preporuci liječnika). antihelmintik i laksativ (u velikim zatvorenim staklenim posudama, kantama).

Mikroskopski pregled stolice je osnovni u dijagnostici crijevnih helmintijaza; uvijek mu treba prethoditi opći makroskopski pregled izmeta kako bi se otkrili segmenti velikih cestoda, pinworma, valjkastih crva itd.

Stolica treba biti svježa ili konzervirana (u 5% otopini formaldehida), budući da sušenje dramatično mijenja strukturu jaja. Osim toga, kada izmet stoji, brz razvoj jajašca nekih helminta (na primjer, ankilostoma), što otežava dijagnozu.

Prema uputama Ministarstva zdravstva SSSR-a potrebno je istodobno pregledati stolicu metodom po Fullebornu i nativnim razmazom.

Nativni bris

Nativni bris: komadić fecesa (veličine zrna graška) uzet šibicom, staklom ili drvenim štapićem s različitih mjesta u isporučenoj porciji temeljito se smrvi na stakalcu u kapi 50% otopine glicerola ili u slanoj otopini ili u vodi. Pokrijte pokrovnim stakalcem i lagano ga pritisnite (iglom za disekciju). Razmaz mora biti tanak, proziran i ujednačen. Koristi se samo kao dodatak drugim metodama koje osiguravaju obogaćivanje lijeka. Moraju se pregledati najmanje dva lijeka.

Za otkrivanje ličinki helminta (kao i njihovih jaja) radi se nativni bris na sljedeći način(prema Shulmanu): 2-3 g fecesa dobro se promiješa tako da se stakleni štapić “uvije” u emulziju s peterostrukom količinom. čista voda ili slana otopina. Tijekom miješanja dolazi do nakupljanja ličinki u blizini staklenog štapića, pa se odmah nakon završetka miješanja kap emulzije staklenim štapićem brzo prenese na predmetno stakalce, pokrije pokrovnim stakalcem i pregleda. S. D. Lyubchenko (1936) dokazao je da je metoda uvijanja učinkovitija od metode razmaza, posebno u pogledu jajašaca glista. Na temelju rada S. D. Lyubchenka, smatramo da je preporučljivo zamijeniti metodu razmaza metodom uvijanja.

Fullebornova metoda

Fulleborn metoda: 5-10 g izmeta uzetog s različitih mjesta stavi se u staklenku zapremine 50-100 ml i temeljito utrlja staklenim ili drvenim štapićem u zasićenu otopinu. stolna sol(400 g ove soli otopi se u 1 litri vode, zagrije do vrenja i procijedi kroz sloj vate ili gaze; otopina se koristi hladna: specifična gravitacija 1,2). Otopina se dodaje postupno dok se ne dobije jednolična suspenzija, a ukupna količina dodane otopine trebala bi biti otprilike 20 puta više količine izmet. Za miješanje izmeta Fulleborn je preporučio korištenje čaša za čaj, ali je prikladnije pripremiti suspenziju u posudama za mast kapaciteta 50-100 ml, koristeći dvije posude za svaku analizu (ili u čašama kapaciteta 100 ml).

Odmah nakon pripreme suspenzije, krupnije čestice koje su isplivale na površinu uklanjaju se s površine špatulom, metalnom lopaticom ili komadom čistog papira ( biljne formacije, neprobavljeni ostaci hrane i sl.), nakon čega se smjesa ostavi stajati 1-1,5 sat. Nakon tog vremena, cijeli film se uklanja s površine smjese dodirivanjem žice ili platinaste petlje (ravne) promjera ne većeg od 1 cm, savijene pod pravim kutom; Film se istrese na predmetno stakalce i prekrije pokrovnim stakalcem. Stavite 3-4 kapi ispod svakog pokrovnog stakalca (18x18 mm). Ukupno treba pripremiti najmanje 4 pripravka (za svaki pripravak jedno pokrovno staklo). Petlja se zagrijava na vatri i nakon svake analize ispere vodom.

Fullebornovom metodom brzo se i lako otkrivaju jajašca svih nematoda (osim neoplođenih jajašaca valjkastih glista) i jajašca patuljaste trakavice.

Bermanova metoda se koristi za ispitivanje fecesa na larve helminta (za strongiloidijazu). Ova metoda je sljedeća: 5 g izmeta na metalnoj mrežici (za ovu svrhu je prikladno cjedilo za mlijeko) stavi se na stakleni lijevak pričvršćen na tronožac. Na donji kraj lijevka postavljena je gumena cijev sa stezaljkom.

Mreža s izmetom se podigne i u lijevak se ulije voda zagrijana na otprilike 50° tako da Donji dio mrežica s izmetom uronjena je u vodu. Larve se aktivno kreću u vodu i nakupljaju u donjem dijelu gumene cijevi. Nakon 2-4 sata stezaljka se otvori i tekućina se ispusti u jednu ili dvije centrifugalne epruvete.

Nakon centrifugiranja 1-2 minute gornji dio tekućina se brzo ocijedi, a sediment se stavi u kapljicama na stakalce i pregleda pod pokrovnim stakalcem ili namaže tanki sloj na 2-3 velika stakla i zatim pregledati bez pokrovnih stakala.

Bermanova metoda također se koristi za ispitivanje tla na prisutnost ličinki ankilostoma.

Stollova metoda

Za određivanje intenziteta invazije koristi se Stollova metoda. Decinormalna otopina kaustične sode ulijeva se u posebnu staklenu tikvicu do oznake od 56 cm 3, a zatim se dodaju izmet dok razina tekućine ne dosegne 60 cm 3, odnosno 4 cm 3. Nakon mućkanja sa staklenim kuglicama uzima se 0,075 ml smjese za ispitivanje i ispituje pod jednim ili dva obična pokrovna stakalca. Dobiveni iznos se množi s 200 kako bi se dobio broj jajašaca sadržanih u 1 cm 3 izmeta.

Studija duodenalnog sadržaja

Duodenalni sok i žuč iz mokraćnog mjehura, dobiveni na uobičajeni način sondiranjem (i žuč iz mokraćnog mjehura i nakon refleksa iz žučnog mjehura), temeljito se miješaju s jednakim volumenom. etil eter; smjesa se centrifugira, nakon čega se sediment pregleda pod mikroskopom. Osim sedimenta, mikroskopski pregled pahuljice koje plutaju u tekućini, koje mogu sadržavati jaja helminta, nužno su izložene. Prilikom ispitivanja jaja helminta želučana kiselina i povraćati, možete koristiti istu tehniku.

Ako postoji sumnja na, potrebno je napraviti pretragu duodenalnog soka i želučanog sadržaja helmintičke bolesti jetre, žučnog mjehura (opistorhoza, fasciolioza, dikrocelioza) i duodenum(strongiloidijaza).

Ispitivanje sputuma

Ispljuvak se samelje na staklenoj ploči, čvrsto prekrije drugom staklenom pločom i pregleda golim okom na svijetloj i crnoj pozadini, kao i pod povećalom u propuštenom svjetlu. Pojedinačni komadići sputuma (“hrđave” nakupine, ostaci tkiva itd.) nanose se u tankom sloju na predmetno stakalce, čvrsto pokrivaju pokrovnim stakalcem i pregledavaju pod mikroskopom s malim i velikim povećanjem.

a) Za dijagnosticiranje kožne cisticerkoze, potkožno tkivo ili mišić, aseptički izrezan komad relevantnog tkiva prvo se pregledava golim okom. Područja tkiva se odmiču iglama za seciranje kako bi se otkrilo vidljivo golim okom vezikula - cisticerk (fotografija A); duljina mu je 6-20 mm, širina 5-10 mm. Kad se otkrije vezikula sumnjiva na cisticerk, zgnječi se između dva stakalca i pregleda pod mikroskopom. Cisticerkus (Cistycercus cellulosae) određen je prisutnošću skoleksa s četiri odoka i vjenčićem kukica (slika B).

Fotografija. A - cisticeri sa skoleksom okrenutim prema van; B - Glava svinjske trakavice.

b) Za dijagnosticiranje trihineloze aseptički izrezani komad mišića (biceps ili gastrocnemius) pažljivo se usitnjava u 50% otopini glicerina iglama za disekciju u najfinija vlakna. Zgnječeni mišići se stisnu između dva stakalca i pregledaju pod mikroskopom male snage u zamračenom vidnom polju. Preporuča se testiranje mišića na trihinelozu najranije 8. dana bolesti. Ličinke trihinele nalaze se u mišićima u smotanom položaju: zatvorene su u kapsulama u obliku limuna.

Fotografija. A - Ličinke trihinele u mišićima; B — Kalcificirane kapsule trihinele.

X-zraka

Najčešće se fluoroskopijom dijagnosticira ehinokokoza i rjeđe cisticerkoza. Cisticerci se otkrivaju fluoroskopijom tek nakon kalcifikacije (u slučajevima dugotrajna bolest). Iza posljednjih godina Fluoroskopija se također koristi za dijagnosticiranje ascariasis u ranom stadiju ličinke i djelomično u intestinalnom stadiju.

Tijekom razdoblja migracije ličinki okruglih (i ankilostoma) otkrivaju se nestabilni, ponekad višestruki upalni žarići u plućima; istovremeno se u krvi javlja značajna eozinofilija.

Spolno zrele valjkaste gliste jasno su vidljive na fluoroskopiji crijeva oboljelih jedinki. Ova metoda, unatoč svojoj složenosti i nezgrapnosti, treba se koristiti kao dodatna metoda za dijagnosticiranje ascariasis u slučajevima s negativnom skatološkom analizom. Prema E. S. Geselevichu, od 180 bolesnika s ascariasisom identificiranim fluoroskopijom, 54 nisu imala jaja ascarisa u stolici (vidi).

Helmintološke metode istraživanje. Metode za dijagnosticiranje helmintoza dijele se na izravne, koje se temelje na izravnoj detekciji samih helminta ili njihovih fragmenata, kao i ličinki i jajašca helminta (metode ispitivanja izmeta, urina, žuči i duodenalnog sadržaja, sputuma, krvi i tkiva, materijala dobivene struganjem s perianalnog područja i subunguvalnih prostora), i neizravne, uz pomoć kojih otkrivaju sekundarne promjene, koji nastaju u ljudskom tijelu kao rezultat vitalne aktivnosti helminta (istraživanja morfološkog sastava krvi, imunološke metode dijagnostika helmintijaza, X-zrake studije itd.). Od izravnih metoda najčešće su skatološke, koje se dijele na makro- i mikrohelmintoskopske. U nekim slučajevima koriste se posebne metode.

Makrohelmitoskopske metode istraživanja usmjeren na traženje helminta ili njihovih fragmenata (skoleks, segmenti, dijelovi strobila cestoda). Koriste se za dijagnosticiranje onih helmintija u kojima se jajašca ne izlučuju u izlučevine pacijenta ili se izlučuju u malim količinama, a ne uvijek (na primjer, kod enterobiaze, pinwormi se nalaze u izmetu, kod taeniasis - segmenti).

Da bi se otkrili pinwormi ili segmenti cestoda u izmetu, izmet se ispituje golim okom. Za diferencijalna dijagnoza taeniasis, preporuča se pregledati izmet razrijeđen s vodom u odvojenim malim obrocima u crnim fotografskim kivetama ili u Petrijevim zdjelicama na tamna pozadina. Velike formacije sumnjive na fragmente helminta ispituju se pod povećalom između dva stakalca. Ako prema kliničke indikacije sugeriraju otkrivanje malih helminta ili glavica cestoda nakon tretmana, zatim se sumnjive čestice ispituju pod povećalom u kapi glicerina, a po potrebi i pod mikroskopom.

Mikrohelmintoskopske metode istraživanja(kvalitativni) usmjereni su na identifikaciju jaja i ličinki helminta. Koristi se metoda debelog razmaza s celofanskom pokrovnom pločom po Katu. Kato mješavina sastoji se od 6 ml 3% Vodena otopina malahit zelena, 500 ml glicerin i 500 ml 6% otopina fenola. Kato ploče (hidrofilni celofan se reže na komade dimenzija 20´ 40 mm) uronjena 24 h u smjesu Kato tako da budu jedna uz drugu (3-5 ml Kato otopina na 100 ploča). 100 mg izmet se nanese na predmetno stakalce, pokrije celofanskom pokrovnom pločom prema Katu i pritisne tako da se izmet razmaže po stakalcu unutar granica celofanske ploče. Bris se ostavi na sobnoj temperaturi da posvijetli za 40-50 min, a zatim ispitati pod mikroskopom. U vrućoj sezoni, kako biste spriječili isušivanje pripravka, stavite vlažnu spužvu na tanjur pripremljenog pripravka.

Za potpunu detekciju helminta svih vrsta potrebno je koristiti Kato metodu debelog razmaza s celofanskom pokrovnom pločom u kombinaciji s jednom od metoda obogaćivanja. Najčešće od njih su Kalantaryan metoda i Fulleborn metoda.

Kalantaryan metoda: u bocama sa širokim grlom zapremine 100 ml dobro promiješajte staklenim štapićem 5 G izmet, postupnim dodavanjem zasićene otopine natrijeva nitrata (1 kg natrijev nitrat po 1 l voda kad proključa) do ruba čaše. Velike čestice koje isplivaju na površinu uklanjaju se papirnatom lopaticom. Na površinu slana otopina nanesite predmetno staklo (fiziološka otopina se dodaje dok smjesa ne dođe u potpuni dodir s predmetnim stakalcem). U 20-30 min predmetno staklo se ukloni i film se pregleda pod mikroskopom. U nedostatku ove soli, možete koristiti zasićenu otopinu kuhinjske soli prema Fhollebornu (400 G sol u 1 l kipuće vode).

S obzirom da jajašca velike specifične težine (neoplođena jajašca valjkastih glista, jajašca trematoda i velikih cestoda) ne plutaju, uz ispitivanje površinskog sloja tekućine, primjenom Fulleborn metode potrebno je ispitati 2-4 preparata iz sedimenta pod mikroskopom.

Posebne laboratorijske metode za ispitivanje raznih helmintijaza.

Trihomonijaza je vrlo česta spolno prenosiva infekcija, ali definitivno potvrditi bez laboratorijske pretrage nemoguće. U 1980-ima studije su pokazale da ako se ograničite samo na razgovor i pregled pacijenta, tada je moguće ispravno dijagnosticirati trihomonijazu samo u 12% slučajeva. Zato laboratorijska dijagnostika Trihomonijaza kod muškaraca i žena znači puno.

Za identifikaciju patogena (Trichomonas vaginalis), liječnici koriste različite metode istraživanje. Neke analize su točnije, dok su druge često pogrešne; neke su umjerene cijene, a neke su prilično skupe.

Pogledajmo koji testovi postoje za trihomonijazu kod muškaraca i žena: točnost metoda, trošak, prednosti i mane.

Ukratko o svakoj metodi: mikroskopija, kultura, PCR, ELISA, RIF

Ako sumnjate na bilo koji infekcija pacijentu je propisano opći testovi krvi i urina. Njihovi rezultati mogu signalizirati upalu, ali ne pokazuju koji je uzročnik uzrok.

Na primjer, kod upale uzrokovane Trichomonasom, razina leukocita u krvi može biti povećana - ali će također biti povišena kod upale uzrokovane drugim infekcijama. Zato ovu analizu ne kaže ništa konkretno.

Za točno određivanje patogena potrebne su druge dijagnostičke metode. Postoji nekoliko važnih različiti putevi otkriti trichomonas. Razlikuju se po složenosti implementacije, vremenu i pouzdanosti. Na ovaj ili onaj način, svi su našli svoje mjesto u dijagnostici bolesti.

Pogledajmo pobliže ove tehnike i njihovu ulogu u postavljanju točne dijagnoze.

Mikroskopija nativnog razmaza

Izraz “nativni” u medicini i biologiji odnosi se na predmet ili materijal koji je u svom prirodnom stanju - to jest, nije modificiran ili obrađivan ni na koji način. Sukladno tome, nativni bris je redoviti bris iz genitalnog odn organa za izlučivanje osoba koja nije obojena ili na bilo koji način promijenjena za istraživanje.

Proučavanje takvog razmaza pod mikroskopom najčešća je metoda za dijagnosticiranje trihomonijaze. Kako trihomonade izgledaju u nativnom brisu možete vidjeti na slici ispod.

Za ovu analizu potrebni su vam ekstrakti i neke ćelije:

• iz uretre
• vagina
• pacijentov cervikalni kanal.

Strogo govoreći, postupak se ne bi trebao nazvati "bris", već "struganje", jer za materijal uzimaju ne samo izlučevine, već i same stanice sluznice. Davanje struganja nije baš ugodno, ali ne boli.

Prikupljeni materijal se stavlja u epruvetu i šalje u laboratorij.

U laboratoriju se stanice iz struganja ispituju pod mikroskopom. Ako se među njima u razmazu nalazi Trichomonas, izdat će se:

• velika veličina (u usporedbi s ljudskim rupama)
• prisutnost flagela
• karakteristična pokretljivost.

Koristeći ovu metodu, moguće je razlikovati Trichomonas od drugih mikroba s vjerojatnošću od 80-100%.

Ali nativni bris ima i nedostataka.

Nažalost, dug transport materijala u laboratorij može značajno smanjiti točnost metode. Činjenica je da od trenutka uzimanja materijala Trichomonas svake minute gube pokretljivost, te ih je sve teže prepoznati. U idealnom slučaju, stanice iz struganja treba odmah staviti pod mikroskop. Prema pravilima, preporuča se proučavanje zavičajne građe najkasnije 10 minuta nakon struganja. Ali u uvjetima obične ruske bolnice ili laboratorija to je gotovo nemoguće.

Zbog toga točnost mikroskopije nativnog razmaza nije velika i kreće se od 40% do 80%. To jest, Trichomonas se još uvijek neće zamijeniti s drugim patogenima ako je pokretna, ali možda je uopće neće otkriti ako se ne pomiče.

Unatoč nedostacima, ova metoda može biti korisna tijekom liječničkih pregleda ili prvih posjeta venerologu. Ne zahtijeva složenu opremu i istodobno vam omogućuje prepoznavanje drugih mikroorganizama (ali ne svih) u slučaju mješovite infekcije. Osim toga, takva analiza može se uzeti apsolutno besplatno u državi zdravstvena ustanova. U privatnim klinikama cijena usluge je 150-200 rubalja.

Mikroskopija obojenog razmaza

Pregledom obojenih razmaza povećava se mogućnost otkrivanja Trichomonasa. Materijal se uzima na isti način kao i nativni bris (odnosno, ovo je zapravo i struganje). Ali za ovu studiju materijal je već posebno pripremljen: prije pregleda pod mikroskopom dodaju mu se posebne tvari. To su boje koje daju boju trihomonadi - ako je, naravno, ima u razmazu. To olakšava laboratorijskom tehničaru razlikovanje Trichomonas vaginalis od drugih stanica i čestica. Cijeli postupak ne traje duže od jednog sata.

Ali ni ova analiza nije savršena. Činjenica je da sve boje ne omogućuju razlikovanje uzročnika infekcije od ljudskih stanica.

Najčešće, metilen plava boja ili Bojenje po Gramu (složena metoda bojenje s nekoliko boja). Nažalost, ovim metodama nije moguće jasno izolirati Trichomonas među epitelnim stanicama i imunološke stanice. Mikrob je teško prepoznati jer Trichomonas nalikuje ljudskim stanicama i boji se gotovo identično s njima.

Mnogo učinkovitije bojenje metodom Romanovsky-Giemsa. Romanovsky boja ima složeni sastav, koji uključuje metilensko plavo, eozin i azur, i omogućuje vam da jasno izolirate Trichomonas iz okolnih stanica. Bojenje ovom metodom ne koristi se u svakom laboratoriju - priprema ove otopine za bojenje je prilično teška, što povećava troškove analize.

Ovisno o bojilu, cijena analize u prosjeku je 400 - 600 rubalja. U nekim je regijama analiza dostupna besplatno u sklopu programa Obvezno zdravstveno osiguranje.

U prosjeku, pouzdanost metode je 80%.

Pregled razmaza pod mikroskopom, bilo nativnog ili obojenog razmaza, još se naziva bakterioskopski pregled.

Kulturološki pregled (kultura)

Kulturološki pregled (kultura)

U usporedbi s mikroskopiranjem nativnih i obojenih razmaza, kulturalna dijagnostička metoda puno je učinkovitija. Primjerice, 1990. godine, tijekom komparativno istraživanje Kulturom je bilo moguće točno otkriti Trichomonas u 80% pacijenata.

Bit metode je da se materijal uzet od pacijenta stavlja na hranjivi medij (ako se sumnja na trihomonijazu, to je bris iz genitalija). Kada dospiju u “prehrambeni raj”, namazane trihomonade se intenzivno razmnožavaju i nakon 3-4 dana lako ih je otkriti pod mikroskopom. Ako se mikrobi nisu razmnožili - sa velika vjerojatnost nisu bili u brisu, što znači da je osoba zdrava.

Hranjivi medij je tvar ili smjesa tvari pogodna za uzgoj mikroorganizama. Svaki patogen zahtijeva svoj sastav hranjivi medij: u nekim sredinama dobro se razmnožavaju, ali u drugima se uopće ne razmnožavaju.

Trichomonas vrlo dobro raste na uvezenim hranjivim medijima, na primjer, InpouchTV i Diamond. Ali kod nas se ti mediji vrlo rijetko koriste, obično u privatnim klinikama, jer su to skupe mješavine.

Ali čak i uzimajući u obzir Ruski uvjeti Bakterijska kultura na Trichomonas je jedan od najpouzdanijih testova. Njegova točnost na visokokvalitetnim hranjivim medijima doseže 90%. Međutim, istraživanje kulture nije uvijek propisano, jer zahtijeva vrijeme i financijske troškove.

Cijena studije kreće se od 500 do 5000 rubalja, što uvelike ovisi o korištenom mediju kulture i financijskoj politici ustanove.

PCR metoda

Laboratorijskim pretragama može se gotovo točno dijagnosticirati trihomonijaza. Najpouzdaniji od njih su PCR i kulturalne studije. Ako su testovi dobiveni ovim metodama negativni, onda to gotovo 100 posto ukazuje na odsutnost bolesti, bez obzira što druge metode pokazuju.

Zapamtite da bez obzira na rezultate testa, ništa strašno ili nepopravljivo se nije dogodilo, a riješiti se ove neugodne infekcije nije nimalo teško.

Stolice se ispituju na dvije metode:

1. Makroskopski – otkriti helminte, njihove glave, segmente, fragmente strobila. Mali dijelovi izmeta pomiješaju se s vodom u ravnoj posudi ili Petrijevoj zdjelici i gledaju se pri dobrom svjetlu na tamnoj pozadini, koristeći povećalo ako je potrebno. Sve sumnjive tvorevine se pincetom prenose u drugu čašicu s vodom ili na predmetno staklo u kapi razrijeđenog glicerola.

Uz metodu braneći se Probni dio izmeta pomiješa se s vodom u staklenom cilindru i nakon taloženja se iscijedi. gornji sloj voda. To se ponavlja nekoliko puta. Kada tekućina postane bistra, ocijedi se i ispituje sediment u Petrijevoj zdjelici.

2. Mikroskopski – za otkrivanje jaja i ličinki helminta. Postoje mnoge metode istraživanja.

Nativni bris – najčešća i tehnički pristupačna metoda istraživanja. Mogu se otkriti jaja i ličinke svih helminta. Međutim, s malim brojem jajašaca nije ih uvijek moguće pronaći. Stoga se koristi metoda obogaćivanja.

1. Fülleborgova metoda – ovo je metoda obogaćivanja koja se temelji na plutanju jajašaca helmintijaze u zasićenoj otopini NaCl (1,2 – gustoća; 400 g NaCl na 1 litru vode; 40% otopina NaCl). Metoda je učinkovitija od nativnog brisa. U staklene posude Staviti 2-5 g fecesa i napuniti otopinom NaCl, promiješati i nakon 45 minuta metalnom petljom ukloniti nastali film, a na predmetno staklo staviti kap glicerina. Pregledajte pod mikroskopom. Nedostatak metode je sporo pojavljivanje jaja raznih helminta, patuljaste trakavice - nakon 15-20 minuta, valjkastih glista - 1,5 sati, bičaša - 2-3 sata.

2. Kalantaryan metoda – također metoda obogaćivanja, ali se koristi zasićena otopina NaNO 3 (gustoće 1,38). Većina jaja pluta; ispitivanje sedimenta nije potrebno. Nedostatak je što držanje jaja u otopini dulje vrijeme dovodi do činjenice da neka jaja počnu bubriti i taložiti se na dno, nestajući s površinskog filma.

3. Metoda Goryacheva – na principu odlaganja jaja, detekcija mala jaja trematode Zasićena otopina NaCl koristi se kao otopina i pažljivo se nanosi 3-4 ml otopine fecesa na vrh. Nakon 15-20 sati jaja trematoda talože se na dno. Tekućina se iscijedi, a sediment se stavi na predmetno staklo i pod mikroskop.

4. Shulmanova metoda uvijanja – za otkrivanje ličinki helminta u izmetu. Pregledava se samo svježe izlučeni izmet. 2-3 g se stavi u staklenu posudu i doda 5-struka količina vode, brzo promiješa štapićem ne dodirujući stijenke posude - 20-30 minuta, zatim se štapić brzo izvadi i kap tekućina se na kraju prenese na stakalce i mikroskopira.

5. Bermanova metoda – temelji se na sposobnosti ličinki helminta da migriraju prema toplini i služi za njihovu identifikaciju u izmetu.

6. Harada i Mori metoda (metoda uzgoja ličinki) i preporučuje se za testiranje na infekcije ankilostomama. Metoda se temelji na činjenici da se na toplini i na vlažnom filtriranom papiru jajašca ankilostomatozoida razviju u filariformne ličinke koje se lako otkrivaju. Na sredinu trake filtriranog papira nanese se 15 g fecesa, papir s fecesom se stavi u staklenku tako da se donji kraj uroni u vodu, a gornji učvrsti čepom. Staklenka se drži u termostatu na 28 0 C 5-6 dana. Za to vrijeme razvijaju se filariformne ličinke i spuštaju se u vodu. Tekućina se ispituje pod povećalom. Ako ju je teško otkriti, tekućina se centrifugira, prethodno ubivši ličinke zagrijavanjem na 60 0. Laborant mora nositi rukavice.

7. Metode za enterobiasis – identifikacija jajašaca pinworma i goveđe trakavice.

a) struganje s perianalnih nabora – pamučnim štapićem čvrsto namotanim na drveni štapić i navlaženim 50% otopinom glicerina. U laboratoriju se bris ispere s 1-2 kapi 50% vodene otopine glicerina.

b) metoda ljepljivih grinja (Graham metoda)

Ljepljiva traka se nalijepi na perianalne nabore, zatim se ljepljivi sloj nanese na predmetno staklo i pregleda pod mikroskopom.

c) struganje pomoću očnih štapića (metoda Rabinovich). Za perianalno struganje koriste se staklene očne šipke čiji je široki dio prekriven posebnim ljepilom koje omogućuje zadržavanje jajašca pinworma.

Pregled krvi, žuči, sputuma i mišića

Mikroskopija krvi otkriva ličinke filarije.

Pregled sputuma - jajašca paraganima, larve valjkastih crva, nekator, strongiloid, elementi ehinokoknog mjehura.

Pregled mišića - ako se sumnja na trihinelozu, pregledavaju se mišići bolesnika ili leša, kao i meso od kojeg se pretpostavlja da se osoba zarazila. Za potrebe trihineloskopije mišić se reže na sitne komadiće i stavlja u kompresorij, to su dva široka debela stakla koja gnječe mišiće i nalaze se larve trihinele u obliku kapsula - metoda kompresije.

Metoda probave - mišići se pune umjetnim želučanim sokom (otopina klorovodične kiseline i pepsin). Mišići se probavljaju, a ličinke se lako identificiraju. Određivanje intenziteta invazije: broj ličinki do 200 u 1 g mišićno tkivo– umjeren intenzitet invazije; do 500 – intenzivno; preko 500 – superintenzivna invazija.

Serološke metode