12. séma. Dizentéria mikrobiológiai diagnosztikája

Mikroszkópos módszer vérhas esetén a Shigella más enterobaktériumokkal való morfológiai hasonlósága miatt nem alkalmazzák.

Bakteriológiai módszer a vérhas laboratóriumi diagnózisának fő módszere . A vizsgált anyagot Petri-csészékben lévő Ploskirev és Endo táptalajokra, valamint szelenit akkumulációs táptalajra oltjuk be, amelyről 16-18 óra elteltével a meghatározott sűrű táptalajra történik az újravetés. A növényeket termosztátban 37 0 C-on 18-24 órán keresztül neveljük.

A második napon a telepek természetét tanulmányozzák. A Shigella színtelen laktóz-negatív sima telepeit az egyik poliszénhidrát táptalajra (Olkenitsky, Ressel, Kligler) tenyésztjük, hogy tiszta tenyészetet halmozzuk fel. A 3. napon figyelembe veszik a poliszénhidrát táptalajon a növekedési mintát, és az anyagot differenciált táptalajra is áttenyésztjük (Gissa et al.) az izolált tenyészet biokémiai azonosítása céljából. Az izolált tenyészet antigén szerkezetét OPA segítségével határozzuk meg, hogy azonosítani lehessen a fajok és szerovariumok szintjén. A 4. napon a biokémiai aktivitás eredményeit veszik figyelembe (14. táblázat).

14. táblázat: A Shigella biokémiai tulajdonságai

Megnevezések: „k” – a szubsztrát erjesztése sav képződésével, „+” - a jellemző jelenléte, „-“ - a jellemző hiánya, „±” - instabil jellemző.

A Shigella az Escherichiával ellentétben immobil mikroorganizmusok, nem erjesztik a laktózt, gázképződés nélkül bontják le a glükózt, és nem dekarboxilezik a lizint. A szerotipizáláshoz először az RA-t üvegre helyezzük szérumkeverékkel a területen elterjedt Shigella fajok és változatok ellen, majd az RA-t üvegre helyezzük monoreceptor típusú szérummal. Meghatározzuk az izolált tenyészet polivalens vérhas bakteriofággal és antibiotikumokkal szembeni érzékenységét is. Epidemiológiai célból meghatározzuk az izolált Shigella fagovárát és colicinvarját. A Shigella egyik tulajdonsága, hogy keratitist okozhat tengerimalacok(keratoconjunctiva teszt)

Szerológiai módszer. A vérhasban (általában krónikus formában) szenvedő betegek vérében lévő antitestek meghatározására vörösvértestes shigella diagnosztizáló RNGA-t használnak. Diagnosztikai titerek: Flexner Shigella esetén felnőtteknél - 1:400, 3 év alatti gyermekeknél - 1:100, 3 évesnél idősebb gyermekeknél - 1:200, egyéb Shigella esetében - 1:200. A reakció általában megismétlődik legalább 7 nappal később vett vérszérummal; diagnosztikai érték négyszeres vagy többszeresére nő az antitesttiter.

Expressz módszerek vérhas esetén - direkt és indirekt RIF, ko-agglutinációs reakció, ELISA, RNGA antitestekkel eritrocita diagnosztika a Shigella gyors kimutatására a vizsgálati anyagban (általában székletben), valamint PCR-re.

Vérhas.

A vérhas egy fertőző betegség, amelyet a szervezet általános mérgezése, laza széklet és a vastagbél nyálkahártyájának sajátos elváltozása jellemez. Ez az egyik leggyakoribb akut bélbetegség a világon. A betegség ősidők óta ismert „véres hasmenés” néven, de természete más volt. 1875-ben Lesh orosz tudós amőbát izolált egy véres hasmenéses betegtől Entamoeba histolytica, a következő 15 év során kialakult a betegség függetlensége, amelyre az amoebiasis nevet megtartották. A vérhas kórokozói a biológiailag hasonló baktériumok nagy csoportja, amelyek a nemzetségben egyesülnek. Shigelta. A kórokozót először 1888-ban fedezték fel. A. Chantemes és Vidal; 1891-ben A.V. Grigorjev írta le, és 1898-ban. K. Shiga a betegtől nyert szérum felhasználásával 34 vérhasban szenvedő betegnél azonosította a kórokozót, végül bizonyítva e baktérium etiológiai szerepét. A következő években azonban a vérhas más kórokozóit is felfedezték: 1900-ban. - S. Flexner, 1915-ben - K. Sonne, 1917-ben - Stutzer K. és Schmitz K., 1932-ben. - J. Boyd, 1934-ben - D. Nagy, 1943-ban - A. Sax.

Jelenleg nemzetség Shigella több mint 40 szerotípust tartalmaz. Mindegyik rövid, mozdulatlan gram-negatív pálca, amelyek nem képeznek spórákat vagy kapszulákat, amelyek (jól nőnek a közönségesen tápközeg ah, ne nőj olyan táptalajon, amelynek egyetlen szénforrása a citrát; nem képeznek H2S-t, nem tartalmaznak ureázt; Voges-Proskauer reakciója negatív; a glükózt és néhány más szénhidrátot erjesztik, hogy sav keletkezzen gáz nélkül (kivéve néhány biotípust Shigella flexneri: S.manchesterÉs ewcastle);Általában nem fermentálnak laktózt (kivéve a Shigella Sonne), adonitot, inozitot, nem cseppfolyósítják a zselatint, általában katalázt képeznek, és nem tartalmaznak lizin-dekarboxilázt és fenilalanin-deaminázt. A DNS G+C tartalma 49-53 mol%. A Shigella fakultatív anaerob, a növekedés optimális hőmérséklete 37 ° C, nem nőnek 45 ° C felett, a környezet optimális pH-ja 6,7-7,2. A sűrű táptalajokon a telepek kerekek, domborúak, áttetszőek, asszociáció esetén durva R alakú telepek képződnek. Növekedés MPB-n egyenletes zavarosság formájában, a durva formák üledéket képeznek. A Shigella Sonne J4HO frissen izolált tenyészetei kétféle kolóniát képeznek: kicsi, kerek konvex (I. fázis), nagy lapos (2. fázis). A telep jellege függ egy mm 120 MD plazmid jelenlététől (I. fázis) vagy hiányától (II. fázis), amely a Shigella Sonne virulenciáját is meghatározza.

A Shigellában eltérő specifitású O-antigéneket találtak: közösek a családban Enterobacteriaceae generikus, faj-, csoport- és típusspecifikus, valamint K-antigének; Nem rendelkeznek N-antigénekkel.

Az osztályozás csak a csoport- és típusspecifikus O-antigéneket veszi figyelembe. E jellemzőknek megfelelően a nemzetség Shigella 4 alcsoportra vagy 4 fajra oszlik, és 44 szerotípust tartalmaz. Az A alcsoportban (típus Shigella dysenteriae) tartalmazta a Shigella-t, amely nem erjeszti a mannitot. A faj 12 szerotípust tartalmaz (1-12). Minden sztereotípiának megvan a maga specifikus típusú antigénje; A szerotípusok közötti antigén kapcsolatok, valamint más Shigella fajok között gyengén expresszálódnak. A B alcsoportba (típus Shigella flexneri) közé tartozik a Shigella, amely általában mannitot erjeszt. Ennek a fajnak a shigellái szerológiailag rokonok egymással: típusspecifikus antigéneket (I-VI) tartalmaznak, amelyeket szerotípusokra (1-6) és csoportos antigéneket tartalmaznak, amelyek különböző kompozíciók minden szerotípust, és amely szerint a szerotípusokat alszerotípusokra osztják. Ezenkívül ez a faj két antigénváltozatot tartalmaz - X és Y, amelyek nem rendelkeznek tipikus antigénekkel; csoportos antigénkészletekben különböznek. Szerotípus S.flexneri 6 nincs alszerotípusa, de 3 biokémiai típusra oszlik a glükóz, mannit és dulcitol fermentációs jellemzői alapján.

A C alcsoportba (típus Shlgella boydll) közé tartozik a Shigella, amely általában mannitot erjeszt. A csoport tagjai szerológiailag különböznek egymástól. A fajon belüli antigén kapcsolatok gyengén kifejeződnek. A faj 18 szerotípust (1-18) tartalmaz, amelyek mindegyikének megvan a maga fő típusú antigénje.

A D alcsoportban (típus Shlgella sonnel) ide tartozik a Shigella, amely általában mannitot erjeszt, és lassan (24 órás inkubáció után és később) képes a laktóz és szacharóz fermentálására. Kilátás S. sonnei egy szerotípust tartalmaz, de az I. és II. fázisú telepek saját típusspecifikus antigénekkel rendelkeznek. A Shigella Sonne fajokon belüli osztályozására két módszert javasoltak:

1) 14 biokémiai típusra és altípusra osztva őket maltóz, ramnóz és xilóz fermentációs képességük szerint;

2) fágtípusokra osztás a megfelelő fágok csoportjával szembeni érzékenység szerint.

Ezeknek a tipizálási módszereknek főként epidemiológiai jelentősége van. Ezenkívül a Shigella Sonne és a Shigella Flexner ugyanarra a célra van tipizálva, azon képességük alapján, hogy képesek specifikus kolicinek szintetizálására (kolicinogenotipizálás) és ismert kolicinekre való érzékenységük alapján (kolicinotipizálás). A Shigella által termelt colicinek típusának meghatározásához J. Abbott és R. Shenon standard és indikátor Shigella törzseket javasolt, valamint a Shigella érzékenységét a Shigella-ra. ismert típusai colicinek P. Frederick referencia colicinogén törzseit használják.

Ellenállás. A Shigella meglehetősen nagy ellenállással rendelkezik a környezeti tényezőkkel szemben. Túlélnek pamutszöveten és papíron akár 30-36 napig, szárított székletben - 4-5 hónapig, talajban - 3-4 hónapig, vízben - 0,5-3 hónapig, gyümölcsökön és zöldségeken - legfeljebb 2 étel, tejben és tejtermékekben - akár több hétig; 60 °C-on 15-20 perc alatt elpusztulnak.

Érzékeny a klóramin oldatokra, aktív klórra és egyéb fertőtlenítőszerekre.

Patogenitási tényezők. A Shigella legfontosabb biológiai tulajdonsága, amely meghatározza patogenitását, az a képesség, hogy behatolnak a hámsejtekbe, szaporodnak bennük és halálukat okozzák. Ez a hatás keratoconjunctivális teszttel (a tengerimalac alsó szemhéja alá egy Shigella tenyészet (2-3 milliárd baktérium) bejuttatása savós-gennyes keratoconjunctivitis kialakulását okozza), valamint sejtkultúrák fertőzésével is kimutatható. (citotoxikus hatás), vagy csirkeembriók (pusztulásuk), vagy intranazálisan fehér egerekben (tüdőgyulladás kialakulása). A Shigella fő patogenitási tényezői három csoportra oszthatók:

1) a nyálkahártya hámjával való kölcsönhatást meghatározó tényezők;

2) olyan tényezők, amelyek biztosítják a makroorganizmus humorális és sejtes védekező mechanizmusaival szembeni rezisztenciát, valamint a Shigella szaporodási képességét a sejtekben;

3) a toxinok és mérgező termékek előállításának képessége, amelyek meghatározzák a kóros folyamat kialakulását.

Az első csoportba tartoznak az adhéziós és kolonizációs faktorok: szerepüket a pili, a külső membránfehérjék és az LPS töltik be. Az adhéziót és a kolonizációt a nyálkát elpusztító enzimek - neuraminidáz, hialuronidáz, mucináz - segítik elő. A második csoportba azok az inváziós faktorok tartoznak, amelyek elősegítik a Shigella behatolását az enterocitákba és szaporodását bennük és a makrofágokban, a citotoxikus és (vagy) enterotoxikus hatás egyidejű megnyilvánulásával. Ezeket a tulajdonságokat az m.m. plazmid génjei szabályozzák. 140 MD (az inváziót okozó külső membránfehérjék szintézisét kódolja) és a Shigella kromoszómális génjeit: KSR A (keratoconjunctivitist okoz), cyt (a sejtpusztulásért felelős), valamint más, még nem azonosított géneket. A Shigella fagocitózis elleni védelmét a felszíni K-antigén, a 3-as, 4-es antigének és a lipopoliszacharid biztosítják. Ezenkívül a Shigella endotoxin lipid A immunszuppresszív hatással rendelkezik - elnyomja az immunmemória sejtek aktivitását.

A patogenitási faktorok harmadik csoportjába tartozik az endotoxin és a Shigellában található kétféle exotoxin - Shiga és Shiga-szerű exotoxinok (SLT-I és SLT-II), amelyek citotoxikus tulajdonságai a legkifejezettebbek S. dysenteriae 1. Shiga és Shiga-szerű toxinokat más szerotípusokban is találtak S. dysenteriae, is kialakulnak S.flexneri, S.sonnei, S.boydii, ETEC és némi szalmonella. Ezeknek a toxinoknak a szintézisét a konvertáló fágok toxgénjei szabályozzák. Az LT típusú enterotoxinok Shigella Flexner, Sonne és Boyd esetében találhatók. LT szintézisüket plazmidgének szabályozzák. Az enterotoxin serkenti az adenilát-cikláz aktivitását, és felelős a hasmenés kialakulásáért. A Shiga toxin vagy neurotoxin nem lép reakcióba az adenilát-cikláz rendszerrel, de közvetlen citotoxikus hatása van. A Shiga és Shiga-szerű toxinok (SLT-I és SLT-II) m.m. -70 kDa, és A és B alegységből áll (az utóbbi 5 egyforma kis alegységből áll). A toxinok receptora a sejtmembrán glikolipidje.

A Shigella Sonne virulenciája az m.m. plazmidtól is függ. 120 MD. Körülbelül 40 külső membrán polipeptid szintézisét szabályozza, ezek közül hét virulenciával kapcsolatos. Ezzel a plazmiddal rendelkező Shigella Sonne I. fázisú telepeket képez és virulens. Azok a tenyészetek, amelyek elvesztették a plazmidot, II. fázisú telepeket képeznek, és nincs virulenciája. Plazmidok m.m. 120-140 MD-t találtak Shigella Flexnernél és Boydnál. A Shigella lipopoliszacharid erős endotoxin.

Az epidemiológia jellemzői. A fertőzés forrása csak az ember. A természetben egyetlen állat sem szenved vérhasban. Kísérleti körülmények között a vérhas csak majmokban reprodukálható. A fertőzés módja széklet-orális. Átterjedési útvonalak: víz (a Shigella Flexnera esetében túlnyomórészt), élelmiszer, különösen tej és tejtermékek (a Shigella Sonne esetében a fertőzés túlnyomó módja) és háztartási érintkezés, különösen a faj esetében S. dysenteriae.

A vérhas epidemiológiájának sajátossága a kórokozók fajösszetételének megváltozása, valamint egyes régiókban a Sonne biotípusok és Flexner szerotípusok. Például a 20. század 30-as éveinek végéig a részesedés S.dysenteriae 1 az összes vérhas 30-40%-át tette ki, majd ez a szerotípus egyre ritkábban kezdett előfordulni és szinte eltűnt. Azonban a 60-80 S.dysenteriaeújra megjelent a történelmi színtéren, és járványsorozatot okozott, amelyek három hiperendémiás góc kialakulásához vezettek - Közép-Amerikában, Közép-Afrikában és Dél-Ázsiában (India, Pakisztán, Banglades és más országok). A dizentériás kórokozók fajösszetételének változásának okai valószínűleg változásokkal függnek össze csorda immunitásés a vérhasbaktériumok tulajdonságainak megváltozásával. Különösen a visszatérés S.dysenteriae 1és széleskörű elterjedése, amely a vérhas hiperendémiás gócainak kialakulását okozta, a multidrog rezisztenciát és a virulencia növekedését okozó plazmidok megszerzésével függ össze.

A patogenezis és a klinika jellemzői. A dizentéria lappangási ideje 2-5 nap, néha kevesebb, mint egy nap. A fertőző fókusz kialakulása a vastagbél leszálló részének (szigmoid és végbél) nyálkahártyájában, ahol a vérhas kórokozója behatol, ciklikus jellegű: adhézió, kolonizáció, a Shigella bejutása az enterociták citoplazmájába, azok intracelluláris. a hámsejtek szaporodása, elpusztítása és kilökődése, kórokozók felszabadulása a bél lumenébe; ezt követően kezdődik a következő ciklus - adhézió, kolonizáció stb. A ciklusok intenzitása a kórokozók koncentrációjától függ a nyálkahártya parietális rétegében. Az ismétlődő ciklusok hatására a gyulladásos fókusz megnő, a kialakuló fekélyek, összekötődve növelik a bélfal expozícióját, aminek következtében vér, nyálkahártya-csomók, polimorfonukleáris leukociták jelennek meg a székletben. A citotoxinok (SLT-I és SLT-II) sejtpusztulást, enterotoxinok - hasmenést, endotoxinok - általános mérgezést okoznak. A vérhas klinikai képét nagymértékben meghatározza az, hogy a kórokozó milyen típusú exotoxinokat termel nagyobb mértékben, milyen allergiás hatásának, ill. immunállapot test. A dizentéria patogenezisének számos kérdése azonban tisztázatlan, különösen: a vérhas lefolyásának jellemzői az első két életévben élő gyermekeknél, az akut vérhas krónikussá válásának okai, az érzékenyítés jelentősége, a mechanizmus. a bélnyálkahártya helyi immunitása stb. A vérhas legjellemzőbb klinikai megnyilvánulásai a hasmenés, gyakori késztetések - súlyos esetekben akár napi 50-szer vagy többször is, tenezmus (a végbél fájdalmas görcsei) és az általános mérgezés. A széklet jellegét a vastagbél károsodásának mértéke határozza meg. A legsúlyosabb vérhas az okozza S.dysenteriae 1, legkönnyebben - Sonne vérhas.

A fertőzés utáni immunitás. Amint a majmok megfigyelései kimutatták, a vérhas után is erős és meglehetősen hosszan tartó immunitás marad fenn. Antimikrobiális antitestek, antitoxinok, a makrofágok és a T-limfociták fokozott aktivitása okozza. Jelentős szerepet játszik a bélnyálkahártya IgA-k által közvetített helyi immunitása. Az immunitás azonban típusspecifikus, erős keresztimmunitás nem fordul elő.

Laboratóriumi diagnosztika. A fő módszer bakteriológiai. A kutatás anyaga a széklet. Kórokozó izolálási séma: Endo és Ploskirev differenciáldiagnosztikai táptalajon történő beoltás (párhuzamosan dúsító táptalajra, majd Endo és Ploskirev táptalajra oltás) izolált telepek izolálására, tiszta tenyészet előállítása, biokémiai tulajdonságainak tanulmányozása és az utóbbi figyelembevételével azonosítás polivalens és monovalens diagnosztikai agglutináló szérumok felhasználásával. A következő kereskedelmi szérumokat gyártják:

1. A mannitot nem erjesztő Shigellához: ahhoz S.dysenteriae 1-2 S.dysenteriae 3-7(polivalens és egyértékű), hogy S.dysenteriae 8-12(polivalens és egyértékű).

2. A mannitot erjesztő Shigella:

tipikus antigénekhez S.flexneri I, II, III, IV, V, VI,

az antigének csoportosítására S.flexneri 3, 4, 6,7,8- többértékű,

az antigénekhez S.boydii 1-18(polivalens és egyértékű),

az antigénekhez S. sonnei I fázis, II fázis,

az antigénekhez S.flexneri I-VI+ S.sonnei- többértékű.

Az antigének kimutatására a vérben (beleértve a CEC részét is), a vizeletben és a székletben a következő módszerek használhatók: RPHA, RSK, koagglutinációs reakció (vizeletben és székletben), IFM, RPHA (vérszérumban). Ezek a módszerek rendkívül hatékonyak, specifikusak és alkalmasak korai diagnózis.

Mert szerológiai diagnosztika használhatók: RPHA a megfelelő eritrocita diagnosztikával, immunfluoreszcens módszer (indirekt módosítás), Coombs módszer (inkomplett antitestek titerének meghatározása). A dysenterinnel (Shigella Flexner és Sonne fehérjefrakcióinak oldata) végzett allergiateszt szintén diagnosztikus értékű. A reakciót 24 óra elteltével vesszük figyelembe, hiperémia és 10-20 mm átmérőjű infiltrátum esetén pozitívnak tekintjük.

Kezelés. A fő figyelmet a normál víz-só anyagcsere helyreállítására, a racionális táplálkozásra, a méregtelenítésre, a racionális antibiotikum-terápiára fordítják (figyelembe véve a kórokozó antibiotikum-érzékenységét). Jó hatás lehetővé teszi a polivalens dizentériás bakteriofág korai alkalmazását, különösen pektinbevonattal tablettázva, amely megvédi a fágot a HC1 gyomornedv hatásától; A vékonybélben a pektin feloldódik, fágok szabadulnak fel és fejtik ki hatásukat. Megelőző célokra a fágot legalább háromnaponta egyszer kell beadni (a bélben való túlélés időszaka).

Probléma specifikus megelőzés. A vérhas elleni mesterséges immunitás megteremtésére különféle vakcinákat használtak: elölt baktériumok ellen, vegyszereket, alkoholt, de mindegyik hatástalannak bizonyult, és beszüntették. A Flexner-dizentéria elleni vakcinákat élő (mutáns, sztreptomicin-függő) Shigella Flexnerből hoztak létre; riboszómális vakcinák, de ezek sem találtak széles körben elterjedt alkalmazásra. Ezért a vérhas specifikus megelőzésének problémája továbbra is megoldatlan. A vérhas elleni küzdelem fő módja a vízellátás és a csatornarendszer javítása, a szigorú egészségügyi és higiéniai szabályok biztosítása az élelmiszeripari vállalkozásokban, különösen a tejiparban, a gyermekgondozási intézményekben, a nyilvános helyeken és a személyi higiénia fenntartásában.

A kolera mikrobiológiája

A WHO szerint a kolera olyan betegség, amelyet a Vibrio cholerae fertőzés következtében fellépő akut, súlyos, kiszáradó hasmenés jellemez, rizsvízszerű széklettel. A kolera az egyik legveszélyesebb fertőzés, tekintettel arra, hogy kifejezett járványterjedési képessége, súlyos lefolyása és magas mortalitása jellemzi.

A kolera történelmi őshazája India, pontosabban a Gangesz és a Brahmaputra folyó deltája (ma Kelet-India és Banglades), ahol időtlen idők óta létezik (ezen a területen kolerajárványok azóta is megfigyelhetők 500 Kr.e. év). A kolera endemikus forrásának hosszú távú fennállása számos okkal magyarázható. A Vibrio cholerae nemcsak hosszú ideig képes túlélni a vízben, hanem kedvező körülmények között - +12 ° C feletti hőmérsékleten és szerves anyagok jelenlétében - is szaporodni képes. Mindezek a feltételek Indiában elérhetőek - trópusi éghajlat (az éves átlagos hőmérséklet +25 +29 °C-ig), bőséges csapadék és mocsarasság, nagy népsűrűség, különösen a Gangesz deltájában, nagy mennyiségű szerves anyag a vízben, folyamatos vízszennyezés szennyvízzel és ürülékkel, alacsony anyagi életszínvonal valamint a lakosság sajátos vallási és kultikus rituáléi.

A kolera kórokozója Vibrio cholerae 1883-ban nyitották meg. R. Koch ötödik világjárványa során azonban a vibriót először 1854-ben fedezték fel hasmenéses betegek székletében. F. Pacini.

V.cholerae családhoz tartozik Vibrionaceae amely több nemzetséget foglal magában (Vibrio, Aeromonas, Plesiomonas, Photobacterium). Nemzetség Vibrió baktérium 1985 óta több mint 25 faja van, amelyek közül a legfontosabbak az emberek számára V.cholerae, V.parahaemolyticus, V.alginolyticus, dnificusÉs V. fluvialis.

A nemzetség főbb jellemzői Vibrió baktérium : rövid, nem képző spórák és kapszulák, ívelt vagy egyenes Gram-negatív rudak, 0,5 µm átmérőjű, 1,5-3,0 µm hosszú, mozgékony ( V.cholerae- monotrich, egyes fajok két vagy több polárisan elhelyezkedő flagellával rendelkeznek); jól és gyorsan nőnek közönséges táptalajokon, kemoorganotrófokon, erjesztik a szénhidrátokat savképződéssel gáz nélkül (a glükóz fermentációja az Embden-Meyerhof útvonalon keresztül történik). Oxidáz pozitív, indolt képez, a nitrátokat nitritté redukálja (V. cholerae pozitív nitrozo-indol reakciót ad), lebontják a zselatint, gyakran pozitív Voges-Proskauer reakciót adnak (azaz acetil-metil-karbinolt képeznek), nincs ureázuk, nem képeznek H S-t. van lizin és ornitin dekarboxiláz, de nincs arginin-dihidroláz.

A Vibrio cholerae nagyon szerény a tápközeggel szemben. Jól és gyorsan szaporodik 1%-os lúgos (pH 8,6-9,0) pepton vízben (PV), amely 0,5-1,0% NaCl-t tartalmaz, megelőzve más baktériumok szaporodását. A Proteus növekedésének visszaszorítása érdekében 4-1% (PV) kálium-tellurit hozzáadása javasolt (végső hígítás 1:100 000). Az 1% PV a legjobb dúsító közeg a Vibrio cholerae számára. Növekedése során a PV felületén 6-8 óra elteltével finom, laza, szürkés filmet képez, amely megrázva könnyen lebomlik és pelyhek formájában a fenékre hullik, a PV közepesen zavarossá válik. . Különféle szelektív táptalajokat javasoltak a Vibrio cholerae izolálására: lúgos agar, sárgája-só agar, lúgos albuminát, lúgos véragar, laktóz-szacharóz és más táptalajok. A legjobb táptalaj a TCBS (tioszulfát-citrát-brómtimol-szacharóz agar) és annak módosításai. Leggyakrabban azonban lúgos MPA-t használnak, amelyen a Vibrio cholerae sima, üveges-átlátszó korong alakú telepeket képez, viszkózus konzisztenciájú, kékes árnyalattal.

Zselatinoszlopba injektálással vetve a vibrio 2 nap elteltével 22-23 °C-on buborék formájában cseppfolyósodást okoz a felületről, majd tölcsér alakú és végül rétegről rétegre.

A tejben a vibrio gyorsan felszaporodik, 24-48 óra elteltével alvadást okoz, majd a tej peptonizálódása következik be, majd 3-4 nap múlva a vibrio elhal a tej pH-jának savas oldalra való eltolódása miatt.

B. Heiberg a mannóz, szacharóz és arabinóz fermentációs képessége alapján az összes vibriót (kolera és koleraszerű) számos csoportra osztotta, amelyek száma ma már 8. A Vibrio cholerae Heiberg első csoportjába tartozik.

A kolerához morfológiai, kulturális és biokémiai jellemzőit tekintve hasonló vibrációkat különbözőképpen nevezték és nevezik: paracholera, koleraszerű, NAG-vibriók (nem agglutináló vibriók); nem a 01-es csoportba tartozó vibriók. A vezetéknév hangsúlyozza a legpontosabban a Vibrio cholerae-hoz való viszonyukat. Amint azt A. Gardner és K. Venkatraman megállapította, a kolerának és a koleraszerű vibriónak közös H-antigénje van, de O-antigénekben különböznek. Az O-antigén szerint a kolerát és a koleraszerű vibriókat jelenleg 139 O-szerocsoportra osztják, számuk azonban folyamatosan növekszik. A Vibrio cholerae a 01-es csoportba tartozik. Van egy közös A-antigénje és két típusspecifikus antigénje - B és C, amelyek három szerotípust különböztetnek meg. V.cholerae- Ogawa szerotípus (AB), Inaba szerotípus (AS) és Gikoshima szerotípus (ABC). A disszociációs stádiumban lévő Vibrio cholerae OR antigénnel rendelkezik. Ezzel kapcsolatban az azonosítás érdekében V.cholerae O-szérumot, OR-szérumot és típusspecifikus Inaba és Ogawa szérumokat használnak.

Patogenitási tényezők V.cholerae :

1. Mobilitás.

2. Kemotaxis. Ezen tulajdonságok segítségével a vibrio legyőzi iszaprétegés kölcsönhatásba lép a hámsejtekkel. A Che" mutánsokban (amelyek elvesztették a kemotaxis képességét) a virulencia élesen lecsökken. A Mot" mutánsok virulenciája (amelyek elvesztették mobilitásukat) vagy teljesen eltűnik, vagy 100-1000-szeresére csökken.

3. Adhéziós és kolonizációs faktorok, melyek segítségével a vibrio a mikrobolyhokhoz tapad és megtelepedik a vékonybél nyálkahártyáján.

4. Enzimek: mucináz, proteázok, neuraminidáz, lecitináz stb.

Elősegítik az adhéziót és a kolonizációt, mivel elpusztítják a nyálkahártyát alkotó anyagokat. A neuraminidáz a sziálsavat az epiteliális glikoproteinekből lehasítva „leszállási” helyet hoz létre a vibriók számára. Ezenkívül növeli a koleragénreceptorok számát azáltal, hogy a tri- és diszialogangliozidokat monoszialogangliozid Gmb-vé módosítja, amely a koleragén receptoraként szolgál.

5. A patogenitás fő tényezője V.cholerae egy exotoxin-kolerogén, amely meghatározza a kolera patogenezisét. A kolerogén molekulának van egy m.m. 84 kDa, és két fragmentumból áll – A és B. Az A fragmens két peptidből – A1 és A2 – áll, és a koleratoxin specifikus tulajdonságával rendelkezik. A B fragmens 5 egyforma alegységből áll, és két funkciót lát el: 1) felismeri az enterocita receptorát (monosialogangliozid) és kötődik hozzá;

2) intramembrán hidrofób csatornát képez az A alegység áthaladásához. Az A 2 Cl peptidet az A és B fragmentumok összekapcsolására használják. A tényleges toxikus funkciót az A t peptid látja el. Kölcsönhatásba lép a NAD-dal, ennek hidrolízisét okozza, és a keletkező ADP-ribóz az adenilát-cikláz szabályozó alegységéhez kötődik. Ez a GTP hidrolízisének gátlásához vezet. A keletkező GTP + adenilát-cikláz komplex az ATP hidrolízisét okozza cAMP képződésével. (A cAMP felhalmozásának másik módja a cAMP-t 5-AMP-vé hidrolizáló enzim elnyomása a kolerogénekkel).

6. A Vibrio cholerae a koleragén mellett a kapillárisok permeabilitását növelő faktort szintetizál és választ ki.

7. Más exotoxinokat is találtak a Vibrio cholerae-ben, különösen az LT, ST és SLT típusokban.

8. Endotoxin. Lipopoliszacharid V.cholerae erős endotoxikus tulajdonságokkal rendelkezik. Felelős a test általános mérgezéséért és hányásért. Az endotoxin elleni antitestek kifejezett vibriocid hatást fejtenek ki (komplement jelenlétében feloldják a vibriókat), és fontos összetevője fertőzés utáni és vakcinázás utáni immunitás.

A 01-es csoportba nem tartozó vibriók azon képessége, hogy emberekben szórványos vagy csoportos hasmenéses betegségeket okoznak, LT vagy ST típusú enterotoxinok jelenlétével függnek össze, amelyek az adenilát, illetve a guanilát cikláz rendszert stimulálják.

A kolerogén szintézis a legfontosabb tulajdonság V.cholerae. A kolerogén A- és B-fragmensek szintézisét szabályozó gének a vctAB vagy ctxB operonba egyesülnek, a vibrio kromoszómán helyezkednek el. A Vibrio cholerae egyes törzseinek két ilyen nem tandem operonja van. Az operon működését két szabályozó gén szabályozza. A toxR gén pozitív kontrollt biztosít; ennek a génnek a mutációi a toxintermelés 1000-szeres csökkenéséhez vezetnek. A htx gén negatív kontrollt fejt ki, ennek a génnek a mutációi 3-7-szeresére növelik a toxintermelést.

A kolerogének kimutatására a következő módszerek használhatók:

1. Biológiai vizsgálatok nyulakon. Amikor a kolera vibriókat intraintesztinálisan injektálják szopós nyulakba (legfeljebb 2 hetesek), tipikus kolerogén szindróma alakul ki bennük: hasmenés, kiszáradás és a nyúl elpusztulása. A boncoláskor - éles injekció a gyomor és a kis edények számára
belek, néha tiszta folyadék halmozódik fel benne. De a vastagbélben bekövetkező változások különösen jellemzőek - megnagyobbodott, és teljesen átlátszó, szalmaszínű folyadékkal van feltöltve, pelyhekkel és gázbuborékokkal. Amikor a kolera vibriókat a vékonybél lekötött területére juttatják felnőtt nyulakba, ugyanazokat a változásokat tapasztalják a vastagbélben, mint amikor a szopós nyulak fertőzöttek.

2. Kolerogén közvetlen kimutatása immunfluoreszcens vagy enzimkapcsolt immunszorbens módszerekkel vagy passzív immunhemolízis reakcióval (a kolerogének a vörösvértestek Gm1-jéhez kötődnek, és antitoxikus antitestek és komplement hozzáadásával lizálódnak).

3. A celluláris adenilát-cikláz stimulálása sejttenyészetekben.

4. Kromoszómafragmens alkalmazása DNS-próbaként V.cholerae, operonkolerogént hordozó.

A hetedik világjárvány idején törzseket izoláltak V.cholerae különböző fokú virulenciával: kolerogén (virulens), gyengén kolerogén (alacsony virulens) és nem kolerogén (nem virulens). Nem kolerogén V.cholerae,általában hemolitikus aktivitással rendelkeznek, a koleradiagnosztikai fág 5 (CDF-5) nem lizálja őket, és nem okoznak emberi betegségeket.

Fág tipizáláshoz V.cholerae(beleértve V.eltor) S. Mukherjee megfelelő fágkészleteket javasolt, amelyeket aztán Oroszországban más fágokkal egészítettek ki. Az ilyen fágok (1-7) halmaza lehetővé teszi a megkülönböztetést V.cholerae 16 fagotípus. A HDF-3 szelektíven lizálja a klasszikus típusú kolera vibriókat, a HDF-4 - El-Tor vibriókat, a HDF-5 pedig csak a kolerogén (virulens) vibriókat mindkét típusból, és nem lizálja a nem kolerogén vibriókat.

A kolerogén vibriók általában nem rendelkeznek hemolitikus aktivitással, a HDF-5 lizálja és kolerát okoz az emberben.

A kolera kórokozóival szembeni rezisztencia. A Vibrios cholerae jól túlél alacsony hőmérsékleten: jégben akár 1 hónapig is életképesek maradnak; V tengervíz- legfeljebb 47 napig, folyóvízben - 3-5 naptól több hétig, főtt ásványvízben több mint 1 évig, talajban - 8 naptól 3 hónapig, friss székletben - legfeljebb 3 napig , főtt ételeken (rizs, tészta, hús, gabonafélék stb.) 2-5 napig, nyers zöldségeken - 2-4 napig, gyümölcsökön - 1-2 napig, tejben és tejtermékekben - 5 napig; hidegen tárolva a túlélési idő 1-3 nappal megnő: a széklettel szennyezett vászonon legfeljebb 2 napig, nedves anyagon pedig egy hétig tartanak. A kolera vibriók 80 °C-on 5 perc alatt, 100 °C-on azonnal elpusztulnak; nagyon érzékeny a savakra; klóramin és egyéb fertőtlenítőszerek hatására 5-15 percen belül elpusztulnak. Érzékenyek a kiszáradásra és a közvetlen napfényre, de jól és sokáig megőrződnek, sőt nyílt tározókban és szerves anyagokban gazdag, lúgos pH-jú és 10-12 °C feletti hőmérsékletű szennyvízben is szaporodnak. Klórra erősen érzékeny: 30 perc alatt 0,3-0,4 mg/l víz aktív klór adagja megbízható fertőtlenítést eredményez a Vibrio cholerae ellen.

Az epidemiológia jellemzői. A fertőzés fő forrása csak egy személy - kolerás vagy vibriohordozó, valamint az általa szennyezett víz. A természetben egyetlen állat sem szenved kolerában. A fertőzés módja széklet-orális. Fertőzési útvonalak: a) fő - ivóvíz, fürdés és háztartási szükségletek útján; b) érintkezés és háztartás, valamint c) élelmiszer útján. Az összes jelentős kolerajárvány és világjárvány vízi eredetű volt. A Vibrios cholerae olyan adaptív mechanizmusokkal rendelkezik, amelyek biztosítják populációik létezését mind az emberi testben, mind a nyílt víztestek bizonyos ökoszisztémáiban. A Vibrio cholerae által okozott súlyos hasmenés a belek megtisztulásához vezet a versengő baktériumoktól, és hozzájárul a kórokozó széleskörű elterjedéséhez a környezetben, elsősorban a szennyvízben és a nyílt víztestekben, ahová kibocsátják. A kolerás ember hatalmas mennyiségben választja ki a kórokozót - 100 milliótól 1 milliárdig 1 ml ürülékben; egy vibriohordozó 100-100 000 vibriót választ ki 1 ml-enként, a fertőző dózis körülbelül 1 millió vibrio. A kolera vibrio izolálásának időtartama egészséges hordozók 7-42 nap, a felépülteknél pedig 7-10 nap. A hosszabb váladékozás rendkívül ritka.

A kolera sajátossága, hogy utána általában nincs hosszú távú hordozás, és nem képződnek tartós endemikus gócok. A nyílt víztestek nagy mennyiségű szerves anyagot, tisztítószert és konyhasót tartalmazó szennyvízzel való szennyeződése miatt azonban, mint fentebb már említettük, nyáron a Vibrio cholerae nem csak, hogy sokáig fennmarad bennük, de még el is szaporodik.

Epidemiológiai jelentőséggel bír az a tény, hogy a 01. csoportba tartozó vibrios cholerae, mind nem toxikus, mind toxigén, hosszú ideig fennmaradhat különféle vízi ökoszisztémákban, nem művelt formában. A polimeráz láncreakció segítségével, negatív bakteriológiai vizsgálatokkal, a FÁK számos endemikus területén, különböző víztestekben fedeztek fel nem művelt formájú állatgyógyászati ​​géneket. V.cholerae.

Kolerabetegségek előfordulásakor járványellenes intézkedések sorozatát hajtják végre, amelyek közül a vezető és meghatározó az akut és atipikus formájú és egészséges vibriohordozók aktív időben történő azonosítása és izolálása (kórházba helyezés, kezelés); intézkedéseket tesznek a fertőzés lehetséges terjedésének megakadályozására; kiemelt figyelmet fordítanak a vízellátásra (ivóvíz klórozása), az egészségügyi és higiéniai szabályok betartására az élelmiszeripari vállalkozásoknál, a gyermekgondozási intézményekben és a nyilvános helyeken; A nyílt víztestek felett szigorú ellenőrzést végeznek, beleértve a bakteriológiai ellenőrzést, a lakosság immunizálását stb.

A patogenezis és a klinika jellemzői. A kolera lappangási ideje néhány órától 6 napig terjed, leggyakrabban 2-3 nap. A vékonybél lumenébe jutva a kolera vibriók a nyálkahártyára irányítják a nyálkahártya motilitása és kemotaxisa miatt. Az áthatoláshoz a vibriók számos enzimet termelnek: neuraminidázt, mucinázt, proteázokat, lecitinázt, egyesek elpusztítják a nyálkahártyában lévő anyagokat, és megkönnyítik a vibriók mozgását a hámsejtekbe. Tapadás útján a vibriók a hám glikokalixjához tapadnak, és a mobilitást elvesztve intenzív szaporodásnak indulnak, kolonizálva a vékonybél mikrobolyhjait, és egyúttal nagy mennyiségű exotoxin-kolerogént termelnek. A kolerogén molekulák a Gm1 monoszialogangliozidhoz kötődve áthatolnak a sejtmembránon, aktiválják az adenilát-cikláz rendszert, a felhalmozódó cAMP pedig folyadék, kationok és anionok Na +, HCO 3 ~, K +, SG hiperszekrécióját okozza az enterocitákból, ami kolera hasmenéshez vezet, kiszáradás és sótalanító test. Háromféle betegség létezik:

1. heves, súlyos kiszáradásos hasmenéses betegség, amely néhány órán belül a beteg halálához vezet;

2. kevésbé súlyos lefolyású, vagy kiszáradás nélküli hasmenés;

3. a betegség tünetmentes lefolyása (vibriohordozás).

A kolera súlyos formáiban a betegeknél hasmenés alakul ki, a széklet gyakoribbá válik, a székletürítés megnövekszik, vizenyőssé válik, elveszíti székletszagát és rizsvízhez hasonlít (zavaros folyadék, amelyben nyálkamaradékok és hámsejtek úsznak). Ezután jön a legyengítő hányás, először béltartalommal, majd a hányás rizsvíz megjelenését ölti. A páciens testhőmérséklete a normál alá csökken, a bőr elkékül, ráncos és hideg lesz - kolera algid. A kiszáradás következtében a vér besűrűsödik, cianózis alakul ki, oxigén éhezés alakul ki, a veseműködés élesen romlik, görcsök jelentkeznek, a beteg eszméletét veszti és halál következik be. A kolera halálozási aránya a hetedik világjárvány idején a fejlett országok 1,5%-ától a fejlődő országok 50%-áig terjedt.

A fertőzés utáni immunitás a tartós, hosszan tartó, visszatérő betegségek ritkák. Az antitoxikus és antimikrobiális immunitást az antitestek (az antitoxinok tovább tartanak, mint az antimikrobiális antitestek), az immunmemóriasejtek és a fagociták okozzák.

Laboratóriumi diagnosztika. Fő és döntő módszer A kolera diagnózisa bakteriológiai. A páciens kutatásának anyaga széklet és hányás; az ürüléket megvizsgálják vibrio hordozóra; a kolerában elhunyt személyektől a vékonybél és az epehólyag egy lekötött szegmensét veszik kutatásra; A környezeti objektumok közül leggyakrabban a nyílt tározók vizét és a szennyvizet vizsgálják.

Vezetéskor bakteriológiai kutatás A következő három feltételnek kell teljesülnie:

1) a lehető leggyorsabban oltsa be az anyagot a betegből (a vibrio cholera rövid ideig megmarad a székletben);

2) a tartályt, amelyben az anyagot veszik, nem szabad vegyszerekkel fertőtleníteni, és nem tartalmazhat nyomokat, mivel a Vibrio cholerae nagyon érzékeny rájuk;

3) kizárja mások fertőzésének és fertőzésének lehetőségét.

Azokban az esetekben, ahol vannak V.cholerae nem 01-csoportok, azokat más szerocsoportok megfelelő agglutináló szérumával kell tipizálni. Hasmenéses (beleértve a koleraszerűt is) beteg elbocsátása V.cholerae A nem 01-es csoport ugyanazokat a járványellenes intézkedéseket teszi szükségessé, mint az elkülönítés esetében V.cholerae 01-csoportok. Szükség esetén a koleragén szintézisének képességét vagy a koleragén gének jelenlétét izolált koleravibriókban DNS-szondával határozzák meg a módszerek egyikével.

A kolera szerológiai diagnózisa kiegészítő. Erre a célra agglutinációs reakciót lehet alkalmazni, de célszerűbb a vibriocid antitestek vagy antitoxinok titerének meghatározása (a kolerogén antitesteket enzimhez kötött immunszorbens vagy immunfluoreszcens módszerekkel határozzák meg).

Kezelés a kolerás betegek esetében elsősorban a folyadékpótlásból és a normál víz-só anyagcsere helyreállításából kell állnia. Erre a célra ajánlott sóoldatokat használni, például a következő összetételű: NaCl - 3,5; NaHC03 - 2,5; KS1 - 1,5 és glükóz - 20,0 g 1 liter vízben. Az ilyen patogenetikai alapú kezelés racionális antibiotikum-terápiával kombinálva 1%-ra vagy kevesebbre csökkentheti a kolera halálozási arányát.

Specifikus megelőzés. Különféle vakcinákat javasoltak mesterséges immunitás létrehozására, beleértve az elölt Inaba és Ogawa törzseket; Kolerogén toxoid szubkután alkalmazásra és enterális kémiai bivalens vakcina, sos

A Shigella nemzetségbe tartozó baktériumok által okozott akut bélfertőzés, amelyet a kóros folyamatok túlnyomórészt a vastagbél nyálkahártyájában történő lokalizációja jellemez. A vérhas fekális-orális úton (élelmiszer vagy víz) terjed. Klinikailag a vérhasban szenvedő beteg hasmenést, hasi fájdalmat, tenezmust és mérgezési szindrómát (gyengeség, gyengeség, hányinger) tapasztal. A vérhas diagnózisát úgy állapítják meg, hogy a kórokozót a beteg székletéből, a Grigoriev-Shiga vérhasnál a vérből izolálják. A kezelést főleg ambulánsan végzik, és rehidratálásból, antibakteriális és méregtelenítő terápiából áll.

Általános információ

A Shigella nemzetségbe tartozó baktériumok által okozott akut bélfertőzés, amelyet a kóros folyamatok túlnyomórészt a vastagbél nyálkahártyájában történő lokalizációja jellemez.

A kórokozó jellemzői

A vérhas kórokozóit - a Shigella-t jelenleg négy faj képviseli (S. dysenteriae, S.flexneri, S. boydii, S. Sonnei), amelyek mindegyike (a Shigella Sonne kivételével) szerovariánsokra oszlik, amelyekből jelenleg több mint ötven van. A S. sonnei populációja homogén antigén összetételű, de különbözik a különböző enzimek termelő képességétől. A Shigella egy nem mozgó gram-negatív rúd, nem képez spórákat, jól szaporodik táptalajokon, és általában nem túl stabil a külső környezetben.

A Shigella optimális hőmérsékleti környezete 37 ° C, a Sonne bacillusok 10-15 ° C hőmérsékleten képesek szaporodni, tejben és tejtermékekben kolóniákat képezhetnek, vízben hosszú ideig életképesek maradhatnak (mint a Shigella Flexner) és ellenállnak az antibakteriális szereknek. A Shigella hevítés közben gyorsan elpusztul: azonnal - forraláskor, 10 perc múlva - 60 fok feletti hőmérsékleten.

A vérhas tározója és forrása egy személy - beteg vagy tünetmentes hordozó. Legnagyobb járványügyi jelentőséggel bírnak a vérhas enyhe vagy kiürült formáiban szenvedő betegek, különösen az élelmiszeriparban és a közétkeztetésben szenvedők. A Shigella kiszabadul a fertőzött személy szervezetéből, a klinikai tünetek megjelenésének első napjaitól kezdve a fertőzőképesség 7-10 napig fennáll, ezt követi a lábadozási időszak, amely során azonban baktériumok felszabadulása is lehetséges (néha ez több hétig és hónapig is eltarthat).

A Flexner-dizentéria a leginkább hajlamos a krónikussá válásra; a legkevésbé a krónikussá váló hajlam a Sonne baktériumok által okozott fertőzéseknél figyelhető meg. A vérhas a széklet-orális mechanizmuson keresztül főként táplálékkal (Sonne-féle vérhas) vagy vízzel (Flexner-dizentéria) terjed. A Grigoriev-Shiga vérhas átvitele során az átviteli útvonal túlnyomórészt kontaktuson és háztartáson keresztül történik.

Az emberek nagy természetes fogékonysággal rendelkeznek a fertőzésekre, vérhas elszenvedése után instabil típus-specifikus immunitás alakul ki. A Flexner-dizentériából felépültek megőrizhetik a fertőzés utáni immunitását, amely több évig véd a visszatérő betegségek ellen.

A vérhas patogenezise

A Shigella étellel vagy vízzel kerül az emésztőrendszerbe (részben elhal a gyomor savas tartalmának és normál biocenózis belek) és elérik a vastagbelet, részben behatolva annak nyálkahártyájába, és előidézve gyulladásos reakció. A Shigella által érintett nyálkahártya hajlamos az eróziós területek, fekélyek és vérzések kialakulására. A baktériumok által kibocsátott toxinok megzavarják az emésztést, a Shigella jelenléte pedig tönkreteszi a természetes bioegyensúlyt bélflóra.

Osztályozás

Jelenleg a vérhas klinikai osztályozását alkalmazzák. Különböző akut formája (a domináns tünetekben tipikus colitis és atipikus gasztroenterális), krónikus dizentéria (visszatérő és folyamatos) és bakteriális kiválasztás (lábadozó vagy szubklinikai).

A vérhas tünetei

Az akut vérhas lappangási ideje egy naptól egy hétig tart, leggyakrabban 2-3 nap. A dizentéria colitis változata általában akutan kezdődik, a testhőmérséklet lázas szintre emelkedik, és megjelennek a mérgezés tünetei. Az étvágy észrevehetően csökken, és előfordulhat, hogy teljesen hiányzik. Néha hányingert és hányást észlelnek. A betegek intenzív hasi fájdalomra panaszkodnak, kezdetben diffúz, később a jobb csípőrégióban és az alsó hasban koncentrálódnak. A fájdalmat gyakori (naponta legfeljebb 10-szer) hasmenés kíséri, a széklet gyorsan elveszíti székletét, szűkössé válik, és kóros szennyeződéseket tartalmaz - vért, nyálkát és néha gennyet („rektális köpet”). A székelési késztetés elviselhetetlenül fájdalmas (tenezmus), néha hamis. A napi székletürítések száma általában nem nagy.

A vizsgálat során a nyelv száraz, bevonatos, tachycardia és néha artériás hipotenzió. Az akut klinikai tünetek általában az első hét végére, a második elejére kezdenek enyhülni, végül elmúlnak, de a nyálkahártya fekélyes rendellenességei általában egy hónapon belül teljesen meggyógyulnak. A vastagbélgyulladás súlyosságát a mérgezés és a fájdalom szindróma intenzitása és időtartama határozza meg akut időszak. Nál nél súlyos lefolyású súlyos mérgezés okozta tudatzavarok figyelhetők meg, a széklet gyakorisága (mint a „végbélköpködés” vagy a „húsmaradék”) naponta több tucatszor, fájdalmas hasi fájdalom és jelentős hemodinamikai zavarok figyelhetők meg.

A gyomor-bélrendszeri változat akut vérhasát rövid lappangási idő (6-8 óra) és túlnyomórészt enterális tünetek jellemzik az általános mérgezési szindróma hátterében: hányinger, ismételt hányás. A lefolyás a szalmonellózishoz vagy a toxikus fertőzéshez hasonlít. A vérhas ebben a formájában a fájdalom az epigasztrikus régióban és a köldök környékén lokalizálódik, görcsös jellegű, a széklet laza és bőséges, nincsenek kóros szennyeződések, intenzív folyadékvesztés esetén dehidratációs szindróma léphet fel. A gastroenterikus forma tünetei hevesek, de rövid életűek.

Kezdetben a gastroenterokolitikus vérhas lefolyásában is egy élelmiszer-eredetű toxikus fertőzésre hasonlít, majd megjelennek a vastagbélgyulladás tünetei: váladék és véres csíkok a székletben. A gastroenterokolitikus forma súlyosságát a kiszáradás súlyossága határozza meg.

A kitörölt lefolyású vérhas ma elég gyakran előfordul. Kellemetlen érzés, mérsékelt fájdalom jelentkezik a hasban, pépes széklet Napi 1-2 alkalommal, többnyire szennyeződés nélkül, hipertermia és mérgezés hiányzik (vagy rendkívül jelentéktelen). A három hónapnál tovább tartó vérhas krónikusnak minősül. Jelenleg a krónikus dizentéria esetei a fejlett országokban ritkák. A visszatérő variáns az akut vérhas klinikai képének periodikus epizódjait jelenti, remissziós időszakokkal tarkítva, amikor a betegek viszonylag jól érzik magukat.

A folyamatos krónikus vérhas súlyos emésztési zavarok kialakulásához, a bélfal nyálkahártyájának szerves elváltozásaihoz vezet. Folyamatos krónikus vérhas esetén a mérgezési tünetek általában hiányoznak, állandó napi hasmenés van, a széklet pépes, zöldes árnyalatú lehet. A krónikus felszívódási zavar súlycsökkenéshez, hipovitaminózishoz és felszívódási zavar szindróma kialakulásához vezet. A lábadozó bakteriális kiürülés általában akut fertőzés elszenvedése után figyelhető meg, szubklinikai - akkor fordul elő, ha törölt formában szenvednek vérhastól.

Komplikációk

A jelenlegi orvosi ellátás mellett a szövődmények rendkívül ritkák, főként súlyos Grigoriev-Shiga vérhas esetén. Ezt a fertőzési formát fertőző-toxikus sokk, bélperforáció, hashártyagyulladás bonyolíthatja. Ezenkívül valószínű a bélparesis kialakulása.

Vérhas intenzív hosszú távú hasmenés bonyolíthatja aranyér, anális repedés, végbél prolapsus. A vérhas sok esetben hozzájárul a dysbiosis kialakulásához.

Diagnosztika

A bakteriológiai diagnosztika rendkívül specifikus. A kórokozót általában székletből, Grigoriev-Shiga vérhas esetén a vérből izolálják. Mivel a specifikus antitestek titerének növekedése meglehetősen lassan megy végbe, a szerológiai diagnosztikai módszerek (RNGA) retrospektív jelentőséggel bírnak. A vérhas diagnosztizálásának laboratóriumi gyakorlata egyre inkább magában foglalja a Shigella antigének azonosítását a székletben (általában RCA, RLA, ELISA és RNGA segítségével, antitestdiagnosztikával), a komplementkötési reakciót és a hemagglutinációs aggregátumot.

Általános diagnosztikai intézkedésekként különféle laboratóriumi technikákat alkalmaznak a folyamat súlyosságának és mértékének meghatározására, valamint az anyagcserezavarok azonosítására. A dysbacteriosis és a coprogram székletvizsgálatát végezzük. Az endoszkópos vizsgálat (szigmoidoszkópia) sokszor kétes esetekben adhatja meg a differenciáldiagnózishoz szükséges információkat. Ugyanebből a célból a vérhasban szenvedő betegeknek, annak klinikai formájától függően, gasztroenterológushoz vagy proktológushoz kell fordulniuk.

Dizentéria kezelése

A vérhas enyhe formáit ambulánsan kezelik, a fekvőbeteg-kezelést súlyos fertőzésben és komplikált formában szenvedőknek indokolják. Járványügyi okokból is kórházba kerülnek a betegek, idős korban, kísérő krónikus betegségekkel, a gyermekek pedig az első életévben. A betegeket felírják ágynyugalom lázzal és mérgezéssel, diétás élelmiszer(akut időszakban - 4. számú diéta, amikor a hasmenés alábbhagy - 13. számú táblázat).

Az akut dizentéria etiotróp terápiája 5-7 napos antibakteriális szerek (fluorokinolon, tetraciklin antibiotikumok, ampicillin, kotrimoxazol, cefalosporinok) felírásából áll. Súlyos és közepes formákban antibiotikumokat írnak fel. A képesség figyelembevétele antibakteriális gyógyszerek a dysbacteriosis súlyosbításához az eubiotikumokat 3-4 hétig kombinálva alkalmazzák.

Szükség esetén méregtelenítő terápiát végzünk (a méregtelenítés súlyosságától függően a gyógyszereket orálisan vagy parenterálisan írják fel). A felszívódási zavarokat a segítségével korrigálják enzimkészítmények(pankreatin, lipáz, amiláz, proteáz). A jelzések szerint immunmodulátorokat, görcsoldókat, összehúzó szereket és enteroszorbenseket írnak fel.

A regenerációs folyamatok felgyorsítására és a nyálkahártya állapotának javítására a lábadozás időszakában mikrobeöntés javasolt eukaliptusz és kamilla, csipkebogyó- és homoktövisolaj, valamint vinilin infúzióval. A krónikus dizentériát ugyanúgy kezelik, mint az akut vérhasat, de az antibiotikum-terápia általában kevésbé hatékony. Terápiás beöntés, fizioterápiás kezelés, bakteriális szerek előírása javasolt a normál bélmikroflóra helyreállítására.

Prognózis és megelőzés

A prognózis túlnyomórészt kedvező, a dizentéria akut formáinak időben történő komplex kezelésével a folyamat krónikussága rendkívül ritka. Egyes esetekben a fertőzés után a vastagbél reziduális működési zavarai (poszt-dizentériás vastagbélgyulladás) fennmaradhatnak.

A vérhas megelőzésére szolgáló általános intézkedések közé tartozik a higiéniai és higiéniai előírások betartása a mindennapi életben, az élelmiszer-előállító és vendéglátó üzemekben, a vízforrások állapotának figyelemmel kísérése, a szennyvíz tisztítása (különösen az egészségügyi intézményekből származó szennyvíz fertőtlenítése).

A vérhasban szenvedő betegeket legkorábban három nappal a klinikai gyógyulás után, negatív egyszeri bakteriológiai teszttel bocsátják ki a kórházból (a bakteriológiai vizsgálathoz szükséges anyagot legkorábban a kezelés befejezése után 2 nappal gyűjtik össze). Az élelmiszeripari dolgozók és más, velük egyenértékű személyek a bakteriológiai vizsgálat kétszeres negatív eredménye után elbocsáthatók.

Fáradtság, hányinger). A betegséget a Shigella nemzetséghez tartozó baktériumok okozzák, és széklet-orális úton terjed.

Statisztika. A Shigellosis a világ minden országában gyakori. Minden nemzet és korosztály érzékeny a Shigellára. A legmagasabb előfordulási arány Ázsiában, Afrikában és Latin-Amerikában, az alacsony társadalmi kultúrájú és magas népsűrűségű országokban van. Jelenleg három fő fertőzési góc van: Közép-Amerika, Délkelet-Ázsia és Közép-Afrika. Ezekről a régiókról a shigellózis különféle formáit más országokba importálják. Az Orosz Föderációban 100 ezer emberre 55 esetet regisztrálnak.

A shigellózis előfordulása és érzékenysége

• A gyermekek és az A (II) vércsoportú és negatív Rh-faktorral rendelkező emberek a leginkább érzékenyek a fertőzésekre. A betegség kifejezettebb tüneteit mutatják.
• A városlakók 3-4-szer gyakrabban betegszenek meg, mint a vidékiek. Ehhez hozzájárul a zsúfolt lakosság.
• A shigellózis az alacsony betegségben szenvedőket érinti társadalmi státusz akik nem jutnak tiszta ivóvízhez és kénytelenek olcsó élelmiszert vásárolni.
• A nyári-őszi időszakban az előfordulás növekedése figyelhető meg.

A Shigellosis Hippokratész kora óta ismert. A betegséget „dizentériának” nevezte, és e fogalom alá vont minden olyan betegséget, amelyet vérrel kevert hasmenés kísér. Az ókori orosz kéziratokban a shigellosist „myt”-nek vagy „véres méhnek” nevezték. Súlyos járványok tomboltak Japánban és Kínában a 18. században. A múlt század elején Európa-szerte végigsöprő jelentős járványok háborúkhoz kapcsolódtak.

Shigella (a baktériumok szerkezete és életciklusa)

A Shigellákat csoportokra osztják (Grigoryev-Shiga, Stutzer-Schmitz, Large-Sachs, Flexner és Sonne), ezek pedig szerovarokra, amelyekből körülbelül 50 van. Élőhelyük, a toxinok tulajdonságai különböztetik meg őket. és az általuk kiválasztott enzimek.

Fenntarthatóság a környezetben

• A Shigella számos antibakteriális gyógyszerrel szemben ellenálló, ezért nem minden antibiotikum alkalmas a shigellózis kezelésére.
• Forralva azonnal elpusztulnak, 10 percig 60 fokos hőt tartanak fenn.
• Jól bírja alacsony hőmérsékletek-160-ig és ultraibolya sugárzásnak kitéve.
• Ellenállnak a savaknak, így a savas gyomornedv nem semlegesíti őket.

A Shigella tulajdonságai

• Behatol a vastagbél nyálkahártyájának sejtjeibe.
• Képes szaporodni a hámban (a bél belső felületét bélelő sejtek).


• Méreganyagok felszabadítása.
  • A Shigellából pusztulása után endotoxin szabadul fel. Megzavarja a belek működését és befolyásolja annak sejtjeit. Ezenkívül képes behatolni a vérbe, és megmérgezi az ideg- és érrendszert.
  • Az élő Shigella által termelt exotoxin. Károsítja a bélhámsejtek membránjait.
  • Enterotoxin. Növeli a víz és a sók felszabadulását a bél lumenébe, ami híg széklethez és hasmenéshez vezet.
  • Neurotoxin – mérgező hatással van az idegrendszerre. Mérgezési tüneteket okoz: láz, gyengeség, fejfájás.

Shigellával való fertőzés esetén a baktériumok aránya a belekben megszakad. A Shigella gátolja a normál mikroflóra növekedését és elősegíti a fejlődést patogén mikroorganizmusok– fejlődik bél dysbiosis.

A Shigella életciklusa

A Shigella csak az emberi testben él. A beteg vagy a hordozó beleiből a környezetbe kerülve 5-14 napig életképesek maradnak. A közvetlen napfény 30-40 percen belül elpusztítja a baktériumokat, gyümölcsökön és tejtermékeken akár 2 hétig is kitart.

A legyek hordozhatják a betegséget. A rovarok lábain a baktériumok akár 3 napig is életképesek maradnak. Az élelmiszertermékekre szállva a legyek megfertőzik őket. Már kis mennyiségű Shigella is elég ahhoz, hogy betegséget okozzon.

Immunitás shigellosis után instabil. Talán újrafertőződés ugyanaz vagy más típusú Shigella.

Normál bél mikroflóra

A mikroflóra tulajdonságai:

• Védő akció. A normál mikroflóra részét képező baktériumok olyan anyagokat (lizozim, szerves savak, alkoholok) választanak ki, amelyek megakadályozzák a kórokozók szaporodását. A nyálkahártyából, védőbaktériumokból és enzimjeikből biofilm képződik, amely a bél belső felületét borítja. Ebben a környezetben a kórokozók nem tudnak megvetni lábukat és elszaporodni. Ezért még a kórokozó szervezetbe jutása után sem alakul ki a betegség, és a kórokozó baktériumok a széklettel együtt elhagyják a beleket.
• Részvétel az emésztésben. A mikroflóra részvételével a szénhidrátok fermentálódnak és a fehérjék lebomlanak. Ebben a formában a szervezet könnyebben felveszi ezeket az anyagokat. Baktériumok nélkül a vitaminok, a vas és a kalcium felszívódása is nehézkes.
• Szabályozási intézkedés. A baktériumok szabályozzák a belek összehúzódását, és az ételmassza átmozgatásával megakadályozzák a székrekedést. A baktériumok által kiválasztott termékek javítják a bélnyálkahártya állapotát.
• Immunstimuláló hatás. A baktériumok által kiválasztott anyagok - bakteriális peptidek - serkentik az aktivitást immunsejtekés az antitestek szintézise, ​​növeli a helyi és általános immunitást.
• Antiallergén hatás. A lakto- és bifidobaktériumok megakadályozzák a hisztamin képződését és fejlődését ételallergiák.
• Szintetizáló akció. A mikroflóra részvételével megtörténik a K-vitamin, a B-vitaminok, az enzimek és az antibiotikum-szerű anyagok szintézise.

A baktériumok fajtái

• Nyálkahártya mikroflóra- Ezek olyan baktériumok, amelyek a bélfalon a nyálkahártya vastagságában élnek a bélbolyhok és a bélredők között. Ezek a mikroorganizmusok biofilmet alkotnak, amely védi a beleket. A bélnyálkahártyán lévő enterocita receptorokhoz kapcsolódnak. A nyálkahártya mikroflórája kevésbé érzékeny a gyógyszerekre és egyéb hatásokra, köszönhetően a bélnyálka és a bakteriális poliszacharidok védőrétegének.
• Luminális mikroflóra- a bélben szabadon mozogni képes baktériumok. Részesedésük kevesebb, mint 5%.

Által mennyiségi összetétel

A Shigella fertőzés módszerei

• Beteg akut vagy krónikus formában. A legveszélyesebbek az enyhe formájú betegek, akiknél a betegség megnyilvánulása enyhe.
• Lábadozó- a betegség kezdetétől számított 2-3 héten belül felépül.
• Hordozó– olyan személy, aki kiválasztja a Shigellát, és nincsenek betegség tünetei.

A shigellózis átvitelének módjai

• Étel. A Shigella szennyezett kézzel, szennyezett vízzel való mosással, legyekkel vagy zöldségek emberi ürülékkel történő megtermékenyítésével terjed az élelmiszerre. A legveszélyesebbek a bogyók, a gyümölcsök és a tejtermékek, mivel ezek jó táptalajt jelentenek a baktériumoknak. Kompótok, saláták, krumplipüréés egyéb köretek, folyékony és félfolyékony ételek is okozhatják a betegség terjedését. Ez a módszer a leggyakoribb, a Flexner-dizentériára jellemző.


• Víz. A Shigella emberi ürülékkel és szennyvízzel, fertőzött ruhák mosásakor, valamint szennyvíztisztító telepek balesetei során kerül a vízbe. Járványügyi szempontból veszélyesek a kis és nagy víztározók és kutak, valamint az uszodák és a csapvíz az alacsony higiéniai színvonalú országokban. Ilyen víz elfogyasztásával, mosogatással vagy vízben úszva az ember baktériumokat nyel le. Nál nél vízi út terjedése egyszerre fertőz meg emberek nagy csoportját. A járványok a meleg évszakban fordulnak elő. A Shigella Sonne a víz által terjed.


• Kapcsolattartás és háztartás. A higiéniai szabályok be nem tartása esetén kis mennyiségű ürülék a háztartási cikkekre, majd onnan a szájnyálkahártyára kerül. A legveszélyesebbek ebben a tekintetben a szennyezett gyermekjátékok, ágyneműk és törölközők. A vérhas szexuális érintkezés útján is elkapható, különösen a homoszexuálisok körében. A kontakt-háztartás módszer a Grigoriev-Shiga vérhasra jellemző.

Mi történik az emberi szervezetben fertőzés után

Második fázis több szakaszt tartalmaz.

• A Shigella száma nő, és a vastagbél alsó részeit kolonizálják. A baktériumok felszínén speciális fehérjék találhatók, amelyek biztosítják a hámsejtekhez való kötődést. A receptorokra hatnak, és arra késztetik a sejtet, hogy elkapja a baktériumot. Így a kórokozó behatol a hámba.
• A Shigella a mucin enzimet választja ki. Segítségével feloldják a sejtmembránokat és kolonizálják a bélfal mély rétegeit. Megkezdődik a nyálkahártya alatti réteg gyulladása.
• A baktériumok megzavarják a bélsejtek közötti kapcsolatokat, ami elősegíti azok terjedését az egészséges területekre. A bélfal meglazul, a felszívódási folyamat megzavarodik, és nagy mennyiségű folyadék szabadul fel a bél lumenébe.
• Colitis ulcerosa alakul ki. A bélnyálkahártyán vérző eróziók, fekélyek képződnek. Ebben a szakaszban a baktériumok aktívan felszabadítják a méreganyagokat.

Shigellosis tünetei

• Hőmérséklet emelkedés. A betegség kezdete akut. A hőmérséklet éles emelkedése 38-39 fokra az immunrendszer reakciója a Shigella toxinok vérben való megjelenésére. A betegek hidegrázásról és hőérzetről panaszkodnak.
• Mámor. Az agy és a gerincvelő toxinok általi mérgezésének jelei: étvágytalanság, gyengeség, testfájdalmak, fejfájás, apátia. A betegség első óráiban alakul ki.
• A székletürítés gyakorisága (hasmenés). A hasmenés a betegség 2-3. napján alakul ki. Eleinte a váladék széklet jellegű. Idővel szűkösebbek, folyékonyabbak, sok nyálkával. A belekben az erózió kialakulásával vér- és gennycsíkok jelennek meg a székletben. A beteg naponta 10-30 alkalommal ürít. A székletürítést elviselhetetlen fájdalom kíséri, ha a gyulladt végbél feszül.
• Hasfájás akkor jelennek meg, amikor a Shigella behatol a bélnyálkahártyába, és gyulladást okoz. Ez 2 nappal a betegség kezdete után következik be. Az első órákban a fájdalom diffúz. Amikor sérült alsó szakasz belek, a fájdalom élessé válik, vágó, görcsös lesz. Leginkább a has bal felében érezhető. Kellemetlen érzések közvetlenül székletürítés előtt felerősödik és székletürítés után gyengül.
• Hányinger, néha ismételt hányás- a toxin agy hányásközpontjára gyakorolt ​​hatásának eredménye.
• Hamis fájdalmas székletürítési késztetés– tenezmus. A belek idegvégződéseinek irritációjának jele.


• Tachycardia és csökkent vérnyomás– a szívverések száma több mint 100 percenként. Mérgezés és folyadékvesztés miatt csökken a vérnyomás.

A vérhas formái

1. Fény formák- 70-80%. Hőmérséklet 37,3-37,8 ° C, enyhe hasi fájdalom, pépes széklet naponta 4-7 alkalommal.
2. Mérsékelt formák- 20-25%. Mérgezés, hasi fájdalom, 39°C-ra emelkedik a testhőmérséklet, akár 10-szeres vagy többszörös laza széklet vérrel és nyálkával, hamis székletürítési vágy.
3. Súlyos formák- 5%. Hőmérséklet 40°C-ig és afölött, nyálkás-véres széklet akár napi 30-40 alkalommal. A betegek súlyosan legyengültek és szenvednek erőteljes fájdalom egy gyomorban.

A shigellosis diagnózisa

Orvosi vizsgálat

Panaszgyűjtés. Amikor orvoshoz fordulnak, a betegek panaszkodnak:

• hőmérséklet emelkedés
• gyengeség és erővesztés
• étvágytalanság, hányinger
• hasmenés naponta több mint 10 alkalommal
• csekély, vizes széklet nyálkával és fényes vérrel keverve

• Ha megnyomja a has bal oldalát, fájdalmat érez
• vastagbél görcs - szorító érzés a bal alsó hasban
• a vakbél görcse - tömörödés a has jobb felében

• Az arcvonások hegyesek, a bőr száraz, a szem beesett – a kiszáradás eredménye.
• Bevont, száraz nyelv vastag fehér bevonattal borítva. Amikor megpróbálja eltávolítani, kis eróziók jelenhetnek meg.
• A bőr sápadt, az ajkak és az orcák fényesek lehetnek – ez a rossz keringés eredménye.
• A megnövekedett pulzusszám és a vérnyomáscsökkenés a stimuláció következménye a szív-érrendszer szimpatikus idegek.
• Súlyos formákban a központi idegrendszeri mérgezés következtében a betegek téveszméket és hallucinációkat tapasztalhatnak.
• A gyermekeknél rekedtség és nyelési nehézség alakulhat ki a nyálkahártya kiszáradása miatt.

Laboratóriumi kutatás

1. A széklet bakteriológiai vizsgálata (bakteriológiai tenyészet). Anyag: a friss székletmintát, a végbélből tamponnal vett kenetet és a hányást közvetlenül a beteg ágyánál oltják táptalajra (szelenit táptalaj, Ploskirev táptalaj). A mintákat termosztátba helyezzük 18-24 órára. A kapott telepeket újra vetjük táptalajra, hogy tiszta tenyészetet kapjunk, és termosztátban tenyésztjük. Az eredmény a 4. napon lesz kész.

   A Shigella kicsi, színtelen, átlátszó telepeket képez. 2 típusa lehet:

   • lapos, szaggatott élekkel
   • kerek és domború

   Az egyes Shigellákat nem festik meg anilinfestékkel a Gram-módszerrel. Mikroszkóp alatt színtelen, mozdulatlan pálcikáknak tűnnek.

   A Shigella faj meghatározásához használja agglutinációs reakció fajszérumokkal. A tiszta baktériumtenyészet izolálása után a Shigellát Hiss tápközeget tartalmazó kémcsövekbe helyezzük. Mindegyikhez egy-egy típusú szérumot adnak, amely egy bizonyos típusú Shigella elleni antitesteket tartalmaz. Az egyik kémcsőben ragasztott Shigellából és a megfelelő antitestekből agglutinát pelyhek keletkeznek.

2. Szerológiai expressz módszerek diagnosztika célja a shigellosis diagnózisának gyors megerősítése. Nagyon pontosak, és lehetővé teszik a betegséget okozó Shigella típusának meghatározását 2-5 órán belül. Az első vizsgálatot a betegség 5-7. napján végezzük, egy héttel később megismételjük.

   

3. Szerológiai módszerek.
   1. Közvetett (passzív) hemagglutinációs reakció(RNGA), segít a Shigella antigének kimutatásában a székletben és a vizeletben a betegség 3. napján. A pácienstől vett anyaghoz vörösvértesteket tartalmazó készítményt adnak. Felületükön antitestek vannak. Ha valaki shigellosisban szenved, a vörösvértestek összetapadnak, és pelyhek formájában a kémcső aljára süllyednek. A vérhasat megerősítő minimális antitesttiter 1:160.
   2. Komplement rögzítési reakció (CFR)– Shigella elleni antitestek kimutatására használják a páciens vérszérumában. A vizsgálat során antigéneket, komplementet és birka vörösvértesteket adnak hozzá. Shigellosisban szenvedő betegeknél a szérum antitestek antigénekhez kötődnek, és komplementet adnak hozzá. Shigellosisban szenvedő betegeknél, amikor birka vörösvértesteket adnak hozzá, vérsejtek sértetlen marad a kémcsőben. Egészséges emberekben az antigén-antitest komplex nem képződik, és a kötetlen komplement elpusztítja a vörösvérsejteket.
4. A széklet scatológiai vizsgálata. A széklet mikroszkóp alatti vizsgálata nem erősíti meg a shigellosist, hanem jelzi gyulladásos folyamat a belekben, számos bélfertőzésre jellemző.

   Shigellosis esetén a székletben a következők találhatók:

   • iszap
   • leukociták felhalmozódása túlsúlyban a neutrofilekkel (látómezőnként 30-50)
   • vörös vérsejtek
   • megváltozott bélhámsejtek.

Műszeres vizsgálatok: szigmoidoszkópia

A szigmoidoszkópia indikációi

• a dizentéria látens lefolyása székletzavar nélkül
• vér és genny ürítése a székletben
• hasmenés
• rektális betegség gyanúja

• a bélfal hiperémiája (vörössége).
• a nyálkahártya lazasága és sebezhetősége
• kisebb felületi eróziók
• zavaros nyálka csomók formájában a bélfalon
• a nyálkahártya sorvadt területei - halványszürke színű, a redők kisimulnak

Shigellosis kezelése

• a betegség mérsékelt és súlyos lefolyása
• súlyos kísérő betegségek
• gyermekekkel vagy élelmiszeripari létesítményekben dolgozó csoportok személyei
• egy év alatti gyermekek

Diéta shigellózis ellen segít normalizálni a székletet és elkerülni a kimerültséget. A betegség akut periódusában be kell tartani a 4. számú diétát, a hasmenés megszűnése után pedig a 4A. számú étrendet.

Azokon a napokon, amikor vér és nyálka van a székletben, az étkezésnek a lehető legkíméletesebbnek kell lennie, hogy ne irritálja az emésztőrendszert. Ezek a következők: rizsvíz, pürésített búzadara leves, zselé, zsírszegény húslevesek, kekszek.

Ahogy állapota javul, étrendje bővíthető. Az étlapon: túrópüré, húsleves alapú levesek, főtt darált hús, rizs zabkása, állott fehér kenyér.

3 nappal a hasmenés megszűnése után fokozatosan visszatérhet a normál étkezéshez.

A szervezet méregtelenítése

1. Kész oldatok dehidratációhoz és méregtelenítéshez minden shigellosisban szenvedő beteg számára javasolt. A sok folyadék fogyasztása pótolja a hasmenés és az ismételt hányás utáni folyadékveszteséget. Ezek az alapok feltöltik a készletet ásványok– elektrolitok, amelyek létfontosságúak a szervezet működéséhez. Ezen megoldások segítségével felgyorsul a méreganyagok eltávolítása.

   Drog	Alkalmazás módja	Terápiás hatásmechanizmus
   A betegség enyhe formája
   Enterodézis Regidron	Orális termékek. A gyógyszert a csomagoláson található utasításoknak megfelelően hígítják. Az elfogyasztott folyadék mennyiségének 50%-kal nagyobbnak kell lennie, mint a vizeletből, székletből és hányásból származó veszteség. Az oldatokat kis adagokban a nap folyamán, 10-20 percenként kell inni.	Ezek a termékek pótolják a folyadékot és az ásványi anyagokat - elektrolitokat, amelyek létfontosságúak a szervezet működéséhez. Megkötik a belekben található méreganyagokat, és elősegítik azok eltávolítását.
   A betegség mérsékelt formája
   Gastrolit Orsol	A gyógyszereket forralt vízben hígítjuk, és naponta 2-4 litert kell bevenni. Napközben 20 ml-es kis adagokban és minden székletürítés után 1 pohárral.	A vérplazma nátrium- és káliumszintjének helyreállítása. A glükóz elősegíti a méreganyagok felszívódását. Feltöltik a vízkészleteket, ezáltal növelik a vérnyomást. Javítja a vér tulajdonságait, normalizálja savasságát. Hasmenés elleni hatásuk van.
   5%-os glükóz oldat	Az elkészített oldat bármilyen formában alkalmazható: orálisan vagy intravénásan. Az oldatot kis adagokban, legfeljebb napi 2 literben lehet inni.	Pótolja a sejtaktivitáshoz szükséges energiatartalékokat. Javítja a méreganyagok eltávolítását és pótolja a folyadékvesztést.
   Súlyos mérgezés (a beteg testtömegének 10%-át elvesztette) intravénás oldatokat igényel
   10%-os albumin oldat	Intravénás csepegtetés percenként 60 csepp sebességgel. Naponta, amíg az állapot javul.	A gyógyszer donor plazmafehérjéket tartalmaz. Feltölti a folyadéktartalékokat és fehérje táplálékot biztosít a szöveteknek. Emeli artériás nyomás.
   Crystalloid oldatok: hemodez, laktaszol, acesol	Intravénásan. Napi 1 alkalommal 300-500 ml.	Megkötik a vérben keringő méreganyagokat, és a vizelettel ürülnek ki.
   5-10%-os glükóz oldat inzulinnal	Intravénásan	Feltölti a folyadéktartalékokat, növeli a vér ozmotikus nyomását, jobb szövettáplálást biztosítva. Segít semlegesíteni a méreganyagokat, javítja a máj antitoxikus funkcióját. A szervezet energiaszükségletét fedezi.

   A shigellosis otthoni kezelésekor ihat erős édes teát vagy a WHO által ajánlott oldatot kiszáradásra. Tartalma: 1 liter forralt víz, 1 ek. cukor, 1 tk. asztali só és 0,5 tk. szódabikarbóna.

2. Enteroszorbensek - Gyógyszerek, amelyek képesek megkötni és eltávolítani gyomor-bél traktus különféle anyagok. A betegség bármely formájára alkalmazzák őket a kezelés első napjaitól kezdve.

   Drog	Terápiás hatásmechanizmus	Alkalmazási mód
   Aktív szén	A baktériumok adszorbeálják a méreganyagokat a pórusokban, megkötik és eltávolítják a belekből. Csökkentik a Shigella számát a szervezetben, és enyhítik a mérgezés tüneteit (letargia, láz). Csökkentik a vérbe jutó méreganyagok mennyiségét, és ezáltal csökkentik a máj terhelését. Támogatás normál mikroflóra belek.	Szájon át 15-20 g naponta háromszor.
   Smecta		1 tasak tartalmát 100 ml vízben hígítjuk. Vegyünk 1 tasakot naponta 3-szor.
   Enterodézis		Szájon át 5 g naponta háromszor.
   Polysorb MP		3 g naponta háromszor

   
   Fontos: legalább 2 órának el kell telnie az enteroszorbens és bármely más gyógyszer bevétele között. Ellenkező esetben az enteroszorbens „felszívódik” gyógyszer anélkül, hogy megengedné annak hatását. Az enteroszorbenseket étkezés előtt 30-40 perccel használják, hogy ne szívják fel a vitaminokat és más hasznos anyagokat az élelmiszerekből.
3. Kortikoszteroid hormonok - a mellékvesekéreg által termelt anyagok, amelyek gyulladáscsökkentő hatásúak.
4. Plazmaferezis - eljárás a vérplazma toxinoktól való tisztítására. A katétert egy központi vagy perifériás vénába helyezik be. A vér egy részét kivesszük a szervezetből, és különböző kialakítású eszközökkel (centrifuga, membrán) vérsejtekre és plazmára osztják. A toxinokkal szennyezett plazmát egy speciális tartályba küldik. Ott egy membránon szűrik át, amelynek sejtjeiben nagy fehérjemolekulák maradnak meg mérgező anyagokkal. Tisztítás után ugyanannyi vér kerül vissza a szervezetbe.Az eljárás során steril eldobható eszközöket és membránokat használunk. A vértisztítás orvosi berendezések felügyelete mellett történik. A monitor figyeli a pulzust, a vérnyomást és a vér oxigéntelítettségét.

Kezelés antibiotikumokkal és antiszeptikumokkal

A gyógyszer folyékony formában és saválló bevonattal ellátott tablettákban kapható, amely megvédi a bakteriofágot a savas gyomornedvtől, valamint végbélkúpokban. Éhgyomorra 30-60 perccel étkezés előtt naponta háromszor 30-40 ml-t vagy 2-3 tablettát. Gyertyák: 1 kúp naponta 1 alkalommal. A tanfolyam időtartama a betegség formájától függ.

A bélnyálkahártya és a mikroflóra helyreállítása

A dysbacteriosis kezelését a shigellosis után egy gyógyszer-komplexszel végzik.

A shigellózis megelőzése

• ivásra csak forralt vagy palackozott vizet használjon
• ne igyon vizet csapból, nem vizsgált kutakból vagy forrásokból
• evés előtt alaposan mossa meg a zöldségeket és gyümölcsöket
• ne fogyasszon romlott gyümölcsöt, amelynek pépében baktériumok szaporodnak el
• ne vásároljon vágott görögdinnyét és dinnyét
• WC használat után alaposan mosson kezet
• tartsa távol a legyeket élelmiszer termékek
• ne fogyasszon lejárt terméket
• azokban az országokban, ahol fokozott a Shigella fertőzés kockázata, ne vásároljon olyan élelmiszert, amelyet nem hőkezeltek
• dysenteria bakteriofággal történő oltás háromszor, 3 napos időközönként:
  • családtagjait, ahol a beteget otthon hagyják
  • mindenki, aki kapcsolatba kerül a beteggel vagy a hordozóval

UDC 616.935-074(047)

A.M.Sadykova

Kazah Nemzeti Orvostudományi Egyetem

S.D.-ről nevezték el. Asfendiyarov, Almati

Fertőző és Trópusi Betegségek Osztálya

A vérhas megbízható diagnosztizálása az AEI felügyelet egyik sürgető feladata. A bakteriális vérhas pontos diagnózisa fontos a beteg helyes és időben történő kezeléséhez, valamint a szükséges járványellenes intézkedések végrehajtásához. Az áttekintésben bemutatott adatok azt mutatják, hogy tekintettel a vérhas elterjedtségére, az érzékenység hiányára és számos diagnosztikai módszer pozitív eredményének késői megjelenésére, célszerű fejleszteni a fertőzés kimutatására szolgáló diagnosztikai potenciált.

Kulcsszavak: diagnózis, vérhas, antigénkötő limfocita módszer.

A shigella fertőzés felismerése a klinikai gyakorlatban jelentős nehézségekbe ütközik olyan objektív tényezők miatt, mint a vérhas klinikai patomorfózisa, a betegség atipikus formáinak számának növekedése, jelentős számú fertőző és nem fertőző betegség fennállása. a dizentériához hasonló természetű klinikai megnyilvánulásai. A „klinikai vérhas” diagnózisa az esetek felében más etiológiájú, fel nem ismert betegségeket rejt.

A legnagyobb nehézségekkel akkor szembesül az orvos kezdeti vizsgálat a paraklinikai diagnosztikai módszerek eredményeinek kézhezvételéig. A dizentéria felismerése a gyomor-bél traktus egyidejű megbetegedései esetén is nehézkes.

A dizentéria etiológiai laboratóriumi diagnosztikájának kezdete óta számos módszert javasoltak és teszteltek. A fertőzések etiológiai diagnosztikájának módszereinek számos osztályozása létezik. Módszertanilag a B. V. által javasolt besorolás a legindokoltabb. Büntető. A vérhas diagnózisával kapcsolatban a módszertani alapú osztályozás elveit alkalmazta B.V. Karalnik, N.M. Nurkina, B.K. Erkinbekova..

A vérhas diagnosztizálására szolgáló laboratóriumi módszerek közé tartoznak a bakteriológiai (a kórokozó izolálása és azonosítása) és az immunológiai módszerek. Ez utóbbiak közé tartoznak az immunológiai módszerek in vivo (Tsuverkalov allergia teszt) és in vitro. Az in vitro immunológiai módszereknek kétségtelen előnye van a Tsuverkalov-teszttel szemben - nem kapcsolódnak idegen antigének bejuttatásához a szervezetbe.

A legtöbb kutató még mindig úgy véli, hogy a bakteriológiai kutatás magában foglalja az izolálást tiszta kultúra a betegség kórokozója, utólagos morfológiai, biokémiai és antigénjellemzők alapján történő azonosításával a legmegbízhatóbb módszer a shigellosis fertőzés diagnosztizálására. A Shigella izolálásának gyakorisága a betegek székletéből klinikai diagnózis Az „akut vérhas” különböző szerzők szerint 30,8%-tól 84,7%-ig, sőt 91,1%-ig terjed. A különböző szerzők közötti ilyen jelentős tartomány nemcsak a bakteriológiai kutatások eredményességét befolyásoló objektív tényezőktől függ, hanem a „klinikai vérhas” diagnózisának (vagy kizárásának) alaposságától is. A bakteriológiai kutatások eredményességét befolyásolják olyanok objektív tényezők, mint a betegség lefolyásának jellemzői, az anyag begyűjtésének és laboratóriumba szállításának módja, a táptalaj minősége, a személyzet képzettsége, a beteg egészségügyi dolgozókkal való érintkezésének időpontja, felhasználása antimikrobiális szerek mielőtt anyagot vesz a kutatáshoz. A széklet kvantitatív mikrobiológiai vizsgálata akut dizentériában azt mutatja, hogy a fertőzés bármely klinikai formája esetén a kórokozók legmasszívabb felszabadulása a betegség első napjaiban következik be, és a betegség 6. és különösen a 10. napjától kezdődően a kórokozók koncentrációja. A székletben lévő Shigella jelentősen csökken. T.A. Avdeeva megállapította, hogy a Shigella alacsony tartalma és a nem patogén mikroorganizmusok éles túlsúlya a székletben gyakorlatilag kizárja a dizentériás baktériumok bakteriológiai kimutatásának lehetőségét.

Ismeretes, hogy a shigella-fertőzés bakteriológiai megerősítése leggyakrabban akkor lehetséges, ha a betegeket pontosan a betegség első napjaiban vizsgálják - a kórokozó koprokultúráját az esetek túlnyomó többségében először az első vizsgálat során izolálják. A bakteriológiai vizsgálat pozitív eredménye csak a betegség első 3 napjában a betegek 45-49% -ánál, az első 7 napban - 75% -ánál. Tillett és Thomas figyelembe veszi a betegek vizsgálati időszakát is fontos tényező, amely meghatározza a vérhas diagnosztizálására szolgáló bakteriológiai módszer hatékonyságát. A T.A. Avdeeva, a betegség első napjaiban a kórokozó legintenzívebb felszabadulása Sonne-dizentériában, kevésbé intenzív a Flexner-dizentériában és a legkevésbé intenzív a Flexner VI-dizentériában; a betegség későbbi szakaszában a magas koncentráció leghosszabb ideig Flexner-dizentériában, rövidebb ideig - Shigella Sonne, legkevésbé hosszú ideig - Shigella Flexner VI.

Így, bár a széklet bakteriológiai vizsgálata a legmegbízhatóbb módszer a shigellosis fertőzés diagnosztizálására, jelentős hátránya a hatékonyságának fent felsorolt ​​korlátai. Fontos rámutatni a korai diagnózis korlátaira is a bakteriológiai módszerrel, amelyben az elemzés időtartama 3-4 nap. Ezzel összefüggésben nagy gyakorlati jelentőséggel bír az egyéb laboratóriumi diagnosztikai módszerek alkalmazása. A vérhas diagnosztizálásának másik mikrobiológiai módszere szintén az élő Shigella kimutatásán alapul. Ez egy fágtiter növelő reakció (PTR), amely azon alapul, hogy specifikus fágok képesek szaporodni kizárólag homológ élő mikroorganizmusok jelenlétében. Az indikátorfág titerének növekedése a megfelelő mikrobák jelenlétét jelzi a környezetben. Próba diagnosztikai érték A shigella-fertőzés miatti RSF-et B.I. Khaimzon, T.S. Vilkomirskaya. Az RSF-nek meglehetősen nagy az érzékenysége. Összehasonlítás minimális koncentrációk A bakteriológiai módszerrel (12,5 ezer baktérium 1 ml-ben) és az RSF-vel (3,0-6,2 ezer) befogott Shigella székletben az RSF felsőbbrendűségét jelzi.

Mivel a pozitív RSF eredmények gyakorisága közvetlenül függ a széklet szennyezettségének mértékétől, a módszer alkalmazása azt is ad. legnagyobb hatást a betegség első napjaiban és a fertőző folyamat súlyosabb formáiban. A módszer nagyobb érzékenysége azonban meghatározza különleges előnyeit a bakteriológiai vizsgálattal szemben a betegség késői szakaszában, valamint a fertőzés enyhe, tünetmentes és szubklinikai formáiban szenvedő betegek vizsgálatakor, akiknél a székletben alacsony a kórokozó koncentrációja. Az RSF-et a szedett betegek vizsgálatakor is alkalmazzák antibakteriális szerek, mivel ez utóbbiak élesen csökkentik a bakteriológiai kutatási módszer pozitív eredményeinek gyakoriságát, de sokkal kisebb mértékben befolyásolják az RSF hatékonyságát. Az RSF érzékenysége nem abszolút a fágrezisztens Shigella törzsek miatt: a fágrezisztens törzsek aránya széles skálán változhat - 1% és 34,5% között.

Az RSF nagy előnye a magas specifitás. Egészséges emberek, valamint más etiológiájú fertőző betegségben szenvedő betegek vizsgálata során csak az esetek 1,5% -ában figyeltek meg pozitív reakciót. Az RSF értékes kiegészítő módszer a shigella fertőzés diagnosztizálására. De ma ezt a módszert ritkán használják technikai összetettsége miatt. Más módszerek immunológiaiak. Segítségükkel rögzítik a kórokozó-specifikus immunválaszt, vagy immunológiai módszerekkel határozzák meg a kórokozó antigénjeit.

A shigellosis fertőzés során fellépő specifikus fertőző allergiás folyamatok súlyossága miatt kezdetben allergológiai diagnosztikai módszereket alkalmaztak, amelyek magukban foglalták a dysenterinnel végzett intradermális allergiatesztet (IDT). A "dysenterin" gyógyszer, amely egy megfosztott mérgező anyagok specifikus allergén shigella, D.A. Tsuverkalov és először alkalmazták klinikai környezetben, amikor intradermális tesztet végzett L.K. Korovitsky 1954-ben. E.V. szerint. Golyusova és M.Z. Trokhimenko, korábbi akut vérhas vagy kísérő allergiás betegségek bőrmegnyilvánulásokkal (ekcéma, csalánkiütés stb.) a VPD pozitív eredményei sokkal gyakrabban figyelhetők meg (paraallergia). A VPD eredményeinek elemzése az akut vérhas különböző időszakaiban azt mutatja, hogy egy specifikus allergia már a betegség első napjaiban fellép, a 7.-15. napra éri el maximális súlyosságát, majd fokozatosan elmúlik. A 16 és 60 év közötti egészséges emberek vizsgálatakor az esetek 15-20%-ában, a 3-7 év közöttieknél pedig az esetek 12,5%-ában születtek pozitív reakciók. Még gyakrabban észlelték a VPD nem specifikus pozitív eredményeit a gyomor-bélrendszeri betegségekben szenvedő betegeknél - az esetek 20-36% -ában. Az allergén bevezetése a szalmonellózisban szenvedő betegek 35,5-43,0%-ánál, a coli-0124-enterocolitisben szenvedő betegek 74-87%-ánál helyi reakcióval járt. Komoly érv a VPD klinikai gyakorlatban való széles körű alkalmazása ellen a szervezetre gyakorolt ​​allergén hatása volt. A fentieket figyelembe véve elmondhatjuk, hogy ez a módszer nem túl specifikus. Cuverkalov tesztje sem fajspecifikus. A pozitív reakciók egyformán gyakoriak voltak a vérhas különböző etiológiás formáiban.

A VPD mellett más diagnosztikus reakciókat is alkalmaztak, változó érvényességgel, allergiásnak tekintett, például az allergén leukocitolízis reakciót (ALC), amelynek lényege az aktívan vagy passzívan szenzitizált neutrofilek specifikus károsodása vagy teljes elpusztulása volt. érintkezik a megfelelő antigénnel. De ez a reakció nem tulajdonítható a korai diagnosztikai módszereknek, mivel a pozitív eredmények maximális gyakorisága a betegség 6-9. napján volt megfigyelhető, és 69% volt. Az allergén leukémia reakcióját (ALE) is javasolták. Egy szenzitizált szervezet leukocitáinak azon képességén alapul, hogy homológ allergénnek (dysenterinnek) kitéve agglomerálódnak. Az ilyen vizsgálatok pontos mechanizmusának bizonyításának hiánya és az eredmények elégtelen megfeleltetése miatt a betegség etiológiájával, ezek a módszerek a Szovjetunióban való rövid használatuk után a későbbiekben nem terjedtek el.

A Shigella antigének kimutatása a szervezetben diagnosztikailag egyenértékű a kórokozó izolálásával. Az antigén kimutatási módszerek főbb előnyei a bakteriológiai kutatásokkal szemben, amelyek ezeket indokolják klinikai alkalmazása, nem csak az életképes mikroorganizmusok, hanem az elpusztult, sőt elpusztult mikroorganizmusok azonosításának képessége is, ami különösen fontos az antibakteriális terápia során vagy röviddel azt követően végzett betegek vizsgálatakor.

A vérhas expressz diagnosztikájának egyik legjobb módszere a széklet immunfluoreszcens vizsgálata volt (Coons módszer). A módszer lényege a Shigella kimutatása a vizsgált anyag fluorokrómokkal jelölt, specifikus antitesteket tartalmazó szérummal történő kezelésével. A jelölt antitestek homológ antigénekkel való kombinációját a komplexek specifikus fénye kíséri, amelyet fluoreszcens mikroszkóppal detektálunk. A gyakorlatban a Koons-módszer két fő változatát alkalmazzák: direkt, amelyben Shigella antigének elleni jelölt antitesteket tartalmazó szérumot használnak, és indirekt (kétlépcsős), nem fluorokrómmal jelölt szérumot (vagy az anti-globulin frakciót) használnak. Shigella szérum) az első szakaszban. A második szakaszban fluorokrómmal jelölt szérumot használnak az első szakaszban használt anti-Shigella szérum globulinjai ellen. Az immunfluoreszcens módszer két változatának diagnosztikus értékének összehasonlító vizsgálata nem tárt fel nagy különbségeket specificitásukban és érzékenységükben. A klinikai gyakorlatban ennek a módszernek a alkalmazása a leghatékonyabb a betegség korai stádiumában lévő betegek vizsgálatakor, valamint a fertőzés súlyosabb formáiban. Az immunfluoreszcens módszer jelentős hátránya a specifitás hiánya. Az immunfluoreszcens reakció specifitásának hiányának legfontosabb oka az Enterobacteriaceae antigén affinitása. különböző fajták. Ezért ez a módszer a shigella fertőzés felismerésének útmutatója.

Különféle reakciókat alkalmaznak a Shigella antigének kimutatására mikroszkópos vizsgálat nélkül. Ezek a módszerek lehetővé teszik a kórokozó antigének kimutatását a bakteriológiailag igazolt vérhasban szenvedő betegek 76,5-96,0%-ának székletében, ami meglehetősen magas érzékenységet jelez. Ezeket a módszereket leginkább a betegség későbbi szakaszaiban célszerű alkalmazni. A legtöbb szerző meglehetősen magasra értékeli e diagnosztikai módszerek specifikusságát. Azonban F.M. Ivanov, aki RSC-t használt a shigella antigének kimutatására a székletben, az esetek 13,6%-ában pozitív eredményeket ért el egészséges emberek és más etiológiájú bélfertőzésben szenvedő betegek vizsgálatakor. A szerző szerint a módszer alkalmazása alkalmasabb vizeletben lévő specifikus antigének azonosítására, mivel ez utóbbi esetben jóval kisebb a nem specifikus pozitív reakciók gyakorisága. A különféle kutatási módszerek alkalmazása lehetővé teszi a Shigella antigének kimutatását a bakteriológiailag igazolt vérhasban szenvedő betegek túlnyomó többségének vizeletében. Az antigének vizelettel történő kiválasztásának dinamikája bizonyos sajátosságokkal rendelkezik - bizonyos esetekben az antigén anyagok kimutatása már a betegség első napjaitól lehetséges, de a legnagyobb gyakorisággal és következetességgel a 10-15. napon, sőt a későbbiekben. A B.A. Godovanny és munkatársai szerint a shigella antigének vizeletben (SAC) kimutatására vonatkozó pozitív eredmények aránya a betegség 10. napja után 77% (a széklet bakteriológiai vizsgálatának megfelelő adata 47%). Ezzel összefüggésben a kórokozó antigének jelenlétére vonatkozó vizeletvizsgálat értékes kiegészítő módszer a vérhas kezelésére, elsősorban a késői és retrospektív diagnózis céljából.

N.M. Nurkina, ha az antitest immunreagenst poliklonális szérumból nyerik, pozitív indikációs eredmények lehetségesek, ha rokon antigének vannak jelen a mintában. Például a S.flexneri VI elleni nagy aktivitású szérumból származó eritrocitadiagnosztikával az S.flexneri I-V antigén is kimutatható, mivel mindkét alfaj Shigella-jának közös faji antigénje van. A Shigella antigének a betegség ideje alatt mind vérszérumban, mind váladékban meghatározhatók.

Lee Won Ho et al. Kimutatták, hogy a Shigella antigének kimutatási gyakorisága, valamint koncentrációjuk a vérben és a vizeletben magasabb a betegség kezdeti napjaiban, és a kimutatott antigének koncentrációja magasabb a betegség közepesen súlyos eseteiben, mint enyhe esetekben.

CM. Omirbajeva egy módszert javasolt a Shigella antigén kimutatására, amely formalinizált eritrociták felhasználásán alapul a vizsgált székletkivonat antigének szorbenseként, majd immunszérummal történő agglutináción. A módszer specifitásának felmérése véleményünk szerint további kutatásokat igényel, mivel a székletkivonatok jelentős mennyiségben tartalmaznak más baktériumok antigénjeit, amelyek nem kórokozói ennek a bélbetegségnek.

Számos kutató az enzim immunoassay-t javasolja az akut vérhas gyors diagnosztizálásának módszereként, amelyet sok szerző szerint rendkívül érzékenynek és nagyon specifikusnak tartanak. Ebben az esetben a legmagasabb szintű antigént a betegség 1-4. napján észlelik. Az ELISA nyilvánvaló előnyei ellenére, amelyek közé tartozik a nagy érzékenység, a szigorú műszeres kvantitatív elszámolás lehetősége és a reakció egyszerű beállítása, ennek a módszernek a széles körű elterjedése korlátozott a speciális berendezések szükségessége miatt.

Az antigének kimutatására szolgáló különféle szerológiai módszerek érzékenységének és specificitásának fokozása érdekében monoklonális antitestek, immunglobulin fragmentumok, szintetikus antitestek, LPS ezüstfestés és egyéb technológiai fejlesztések alkalmazása javasolt.

Gyakran még akkor sem lehet kimutatni a fertőző ágens antigénjét, ha a szervezet biológiai szubsztrátjaiban lévő kórokozó antigének kimutatására rendkívül érzékeny reakciókat alkalmaznak, mivel az antigén anyagok jelentős része láthatóan megtalálható a biomintában immunkomplexek formájában. a testben. A bakteriológiailag igazolt akut dizentériában szenvedő betegek vizsgálatakor egyes adatok szerint csak az esetek 18% -ában észleltek pozitív eredményeket az RSC-vel végzett antigén-meghatározásban.

TÉVÉ. Remneva et al. Azt javasolják, hogy ultrahanggal bontsák szét a patogén részecskékkel alkotott antitestkomplexeket, majd hidegben határozzák meg a kórokozó antigénjét az RSC-ben. A módszert vérhas diagnosztizálására alkalmazták, kutatási anyagként akut bélfertőzésben szenvedő betegek vizeletmintáját használtam.

A precipitációs reakció alkalmazása antigén kimutatására akut vérhasban nem indokolt alacsony érzékenysége és specificitása miatt. Úgy gondoljuk, hogy a Shigella antigének kimutatására szolgáló bármely módszer specifitása jelentősen növelhető a Shigella elleni monoklonális antitestek alkalmazásával.

A koagglutinációs reakció a shigellózis gyors diagnosztizálásának egyik módszere, valamint számos más fertőzés kórokozóinak antigénjei. Shigellosis esetén a kórokozó antigének a betegség első napjaitól a teljes akut periódus alatt, valamint a baktériumok kiürülésének megszűnése után 1-2 héten belül meghatározhatók. A koaglutinációs reakció előnyei a diagnosztikai készletek egyszerű elkészítése, a reakció felállítása, a költséghatékonyság, a gyorsaság, az érzékenység és a nagy specificitás.

A Shigella antigének meghatározására irányuló diagnosztika során a betegség kezdetétől fogva sok szerző szerint a leghatékonyabb a betegek székletének vizsgálata. A betegség előrehaladtával csökken a Shigella antigének kimutatásának képessége a vizeletben és a nyálban, bár a székletben szinte ugyanolyan gyakorisággal találhatók meg, mint a betegség kezdetén. Figyelembe kell venni, hogy a betegség első 3-4 napjában valamivel hatékonyabb a széklet antigénvizsgálata az RPGA-ban. A betegség közepén az RPHA és az RNAb egyformán hatékony, és a 7. naptól kezdődően az RNAb hatékonyabban keresi a Shigella antigént. Ezek a tulajdonságok a Shigella-sejtek és antigénjeik fokozatos elpusztulásából adódnak a beteg beleiben a betegség során. A vizelettel kiválasztott Shigella antigének viszonylag kisebb méretűek, mint a székletben lévő antigének. Ezért tanácsos a vizeletet RNSt-ben vizsgálni. A nők vizeletében, ellentétben a férfiak vizeletével, a valószínű székletszennyezés miatt a Shigella antigének egyformán gyakran kimutathatók RPHA és RNAb segítségével.

Bár az antigént sokkal gyakrabban (94,5-100%) mutatják ki azokban a székletmintákban, amelyekből Shigella izolálható, mint azokban a mintákban, amelyekből Shigella nem izolálható (61,8 - 75,8%), párhuzamosan bakteriológiai és szerológiai (antigénre) a vérhasban szenvedő betegek székletmintáinak vizsgálatakor általában a minták 28,2-40,0%-ából izolálták a shigellát, és a minták 65,9-91,5%-ában mutattak ki antigént. Fontos hangsúlyozni, hogy a kimutatott antigén fajspecifitása mindig megfelel a szérum antitestek specificitásának, amelyek titere dinamikusan a lehető legnagyobb mértékben növekszik. Ha az antitestek feltételes diagnosztikai titerére összpontosítunk, néha eltérések figyelhetők meg az ilyen antitestek és a kimutatott antigén specificitásában. Ez az eltérés a szérum antitestaktivitás egyszeri meghatározásának elégtelen diagnosztikai megbízhatóságából adódik. Ebben az esetben az etiológiai diagnózist a kimutatott antigén specifitása alapján kell felállítani.

PCR módszer a kórokozó jeleinek közvetlen azonosításának feladatát tekintve közel áll az antigének kimutatásának módszereihez. Lehetővé teszi a kórokozó DNS-ének meghatározását, és a természetes DNS-replikáció elvén alapul, beleértve a DNS kettős hélix feltekercselését, a DNS-szálak divergenciáját és mindkettő komplementer hozzáadását. A DNS-replikáció nem kezdődhet meg bármely ponton, csak bizonyos kiindulási blokkokban - rövid, kétszálú szakaszokban. A módszer lényege, hogy ilyen blokkokkal megjelölve egy csak egy adott fajra (de más fajokra nem) specifikus DNS-szakaszt sokszor lehet reprodukálni (amplifikálni) ezt a szakaszt. A DNS-amplifikáció elvén alapuló tesztrendszerek a legtöbb esetben lehetővé teszik az emberre patogén baktériumok, vírusok kimutatását olyan esetekben is, amikor kimutatásuk más módszerrel nem mutatható ki. A PCR tesztrendszerek specifikussága (val a helyes választás meghozatala taxon-specifikus primerek, kivéve hamis pozitív eredményekés az amplifikációs inhibitorok hiánya a biológiai vizsgálatokban) elvben elkerüli a keresztreaktív antigénekkel kapcsolatos problémákat, ezáltal biztosítva a nagyon magas specificitást. A meghatározást közvetlenül élő kórokozót tartalmazó klinikai anyagon lehet elvégezni. De annak ellenére, hogy a PCR érzékenysége elérheti a matematikailag lehetséges határt (1 példány DNS-templát kimutatása), a módszert a shigellosis diagnosztizálásának gyakorlatában nem használják viszonylag magas költsége miatt.

Az elterjedt klinikai gyakorlatban a szerológiai kutatási módszerek közül a legelterjedtebbek azok, amelyek a betegség feltételezett kórokozójával szembeni szérum antitestek szintjének és dinamikájának meghatározásán alapulnak.

Egyes szerzők Shigella elleni antitesteket határoztak meg koprofiltrátumokban. A koproantitestek sokkal korábban jelennek meg, mint a szérum antitestek. Az antitestek aktivitása a 9–12. napon éri el a maximumát, és a 20–25. napon általában nem észlelhető. R. Laplane és munkatársai azt sugallják, hogy ennek oka a proteolitikus enzimek hatására a bélben lévő antitestek elpusztulása. A koproantitestek egészséges emberekben nem mutathatók ki.

W. Barksdale és munkatársai, T.N. Nikolaeva et al. a diagnózis megfejtésének és a lábadozók azonosításának hatékonyságának növekedéséről számoltak be a szérum és a koproantitestek egyidejű meghatározása révén.

Az agglutininek kimutatása a diagnosztikai titerekben bakteriológiailag igazolt vérhas esetén csak a betegek 23,3%-ában lehetséges. Az RA korlátozott érzékenysége a segítségével kimutatott agglutininok nem kellően magas titerében is megnyilvánul. Bizonyítékok vannak arra vonatkozóan, hogy az RA nem egyenlő érzékenysége a shigellosis fertőzés különböző etiológiás formáiban. Az A.A. Klyuchareva szerint 1:200-as és magasabb titerű antitesteket RA-val csak a Flexner-dizentériában szenvedő betegek 8,3% -ában, és még ritkábban a Sonne-dizentériában észleltek. Flexner I-V és Flexner VI dizentéria esetén nemcsak gyakrabban, hanem magasabb titerekben is megfigyelhető pozitív reakció, mint Sonne dizentériában. A pozitív RA eredmények a betegség első hetének végétől jelennek meg, és leggyakrabban a második vagy harmadik héten rögzítik. A betegség első 10 napja az összes pozitív reakció 39,6%-át teszi ki. Az A.F. Podlevsky és munkatársai szerint a diagnosztikai titerekben lévő agglutinineket a betegség első hetében a betegek 19% -ánál, a második héten - 25% -ánál és a harmadik héten - a betegek 33% -ánál észlelik.

A pozitív RA eredmények gyakorisága és a segítségével kimutatott antitestek titerszintje közvetlenül függ a shigella fertőzés súlyosságától. V.P. szerint Zubareva szerint az antibakteriális terápia alkalmazása nem csökkenti az RA pozitív eredményeinek gyakoriságát, azonban amikor a betegség első 3 napjában antibiotikumokat írnak fel, az agglutinineket alacsonyabb titerekben észlelik.

Az RA korlátozott specifitású. Egészséges emberek vizsgálatakor az esetek 12,7%-ában születtek pozitív RA eredmények, 11,3%-ban pedig csoportreakciókat figyeltek meg. A Flexner I-V és Flexner VI baktériumok antigén rokonsága miatt különösen gyakran figyelhetők meg keresztreakciók a shigella fertőzés megfelelő etiológiai formáiban.

A Shigella-fertőzés szerodiagnosztizálására szolgáló fejlettebb módszerek megjelenésével az RA fokozatosan elvesztette jelentőségét. Az agglutinációs reakció („dizentériás Vidal-reakció”) (RA) vérhasra vonatkozó diagnosztikus értékét a különböző kutatók kétértelműen értékelik, azonban a legtöbb szerző munkájának eredményei a módszer korlátozott szenzitivitását és specificitását jelzik.

Leggyakrabban az indirekt (passzív) hemagglutinációs reakciót (IPHA) használják az antitestek meghatározására. A passzív hemagglutinációs reakció (RPHA) diagnosztikai értékének shigella fertőzésre vonatkozó részletes vizsgálatait A.V. Lullu, L. M. Shmuter, T. V. Vlokh és számos más kutató. Eredményeik arra engednek következtetni, hogy az RPGA az egyik leghatékonyabb módszer a vérhas szerológiai diagnosztizálására, bár nem nélkülözi az e csoport módszereiben rejlő általános hátrányokat.

A dizentériás RPGA és az agglutinációs reakció érzékenységének összehasonlító vizsgálata az első módszer nagy fölényét mutatja. A. V. Lullu szerint az RPHA átlagos titere ebben a betegségben 15-szörösével haladja meg az RA átlagos titerét (a betegség magasságában 19-21-szeres), és magas szintű (1:320 - RPHA) antitesteket észlelnek, amikor 4,5-szer gyakrabban használják, mint a titerben (1:160 az agglutinációs reakció végrehajtásakor). Bakteriológiailag igazolt akut dizentéria esetén a betegek 53-80% -ának vizsgálatakor pozitív RPHA-reakciót észlelnek a diagnosztikai titerekben.

A hemagglutinineket a betegség első hetének végétől mutatják ki, a kimutatás gyakorisága és az antitesttiter növekszik, a második és harmadik hét végén érik el a maximumot, majd fokozatosan csökken a titerük.

A pozitív RPGA eredmények gyakorisága és a hemagglutinin titerek egyértelműen függenek a shigella fertőzés súlyosságától és lefolyásának természetétől. A vonatkozó vizsgálatok kimutatták, hogy a fertőzés törölt és szubklinikai formáinál ritkábban értek el pozitív RPGA-eredményeket, mint akut, klinikailag jelentős vérhas esetén (52,9, illetve 65,0%), míg csak 4-en reagáltak 1:200 és 1:400 közötti titerekkel. A szérumok 2%-a (klinikailag kifejezett formában - 31,2%), valamint az elhúzódó és krónikus formák esetén a betegek 40,8%-ánál észlelték az RPGA pozitív eredményeit, beleértve az 1:200 titert is - csak 2,0%. A shigellosis fertőzés bizonyos etiológiai formáiban az RPHA eltérő érzékenységéről is beszámoltak. L.M. Schmuter szerint a legmagasabb hemagglutinin titer Sonne-dizentériában, és szignifikánsan alacsonyabb a Flexner I-V és Flexner VI vérhasban. A betegség korai szakaszában megkezdett antibakteriális kezelés az antigén irritáció időtartamának és intenzitásának csökkentésével alacsonyabb titerű hemagglutininek megjelenését okozhatja a vérszérumban.

Az agglutinációs reakcióhoz hasonlóan az RPGA sem mindig teszi lehetővé a shigella fertőzés etiológiai formájának pontos felismerését, amely a csoportreakciók lehetőségével jár. A keresztreakciók főként Flexner típusú vérhas esetén figyelhetők meg – a Flexner I-V és a Flexner VI vérhas között. A humorális immunválasz sok betegnél gyenge. Nem zárható ki a közös antigének miatti kereszt-agglutináció lehetősége. Ennek a módszernek az előnyei közé tartozik azonban a reakció egyszerűsége, a gyors eredmények elérése és a viszonylag magas diagnosztikai hatékonyság. Jelentős hátrány ez a módszer az, hogy a diagnózis legkorábban a betegség 5. napján állapítható meg, a maximális diagnosztikai antitest titer a betegség 3. hetére határozható meg, így a módszer „retrospektív” kategóriába sorolható.

A vérhas diagnosztizálása céljából javasolják a S. sonnei O-antigénje által képviselt specifikus keringő immunkomplexek szintjének meghatározását egy specifikus antitesttel kombinálva, egy enzimhez kötött immunszorbens közvetett „szendvics változatával”. Assay nagy szenzitivitása és specificitása miatt, azonban a módszer alkalmazása csak 5-8. napos betegség esetén javasolt.

Dizentériás betegeknél a betegség kezdetétől a vér bakteriofixáló aktivitásának specifikus növekedése észlelhető az eritrociták antigénkötő aktivitása miatt. Az ACI első 5 napjában az eritrociták antigénkötő aktivitásának meghatározása lehetővé teszi a betegség etiológiájának megállapítását az esetek 85-90% -ában. Ennek a jelenségnek a mechanizmusa nem teljesen ismert. Feltételezhető, hogy ennek alapja az antigén-antitest immunkomplex vörösvértestek általi megkötése a C3b receptoraikon (főemlősökben, beleértve az embert is) vagy az Fcy receptorokon (más emlősökben) keresztül.

A specifikus immunválasz sejtszintű rögzítésének viszonylag új módszerei közül a specifikus, taxonómiailag jelentős antigénnel reagáló antigénkötő limfociták (ABL-ek) meghatározása hívja fel a figyelmet. Az ASL kimutatását különféle módszerekkel hajtják végre - a limfociták páros agglutinációja antigénnel, immunfluoreszcencia, RIA, limfociták adszorpciója antigéntartalmú oszlopokon, mononukleáris sejtek adhéziója üvegkapillárisokon, indirekt rozettaképző reakció (IRRO). Meg kell jegyezni, hogy ilyen magas érzékeny módszerek Az ASL regisztrálása, az ELISA-hoz és a RIA-hoz hasonlóan, a limfociták adszorpciója antigéntartalmú oszlopokon technikailag viszonylag bonyolult, és nem mindig elérhető széles körben. Számos szerző munkája kimutatta az RNRO nagy érzékenységét és specifikusságát az ASL kimutatására különféle betegségek. Számos kutató szoros kapcsolatot azonosított a betegek vérében található ASL-tartalom között különféle patológiák valamint a betegség formája, súlyossága és periódusa, átmenete elhúzódó ill krónikus forma.

Egyes szerzők úgy vélik, hogy a betegség dinamikájában az ASL szintjének meghatározásával meg lehet ítélni a terápia hatékonyságát. A legtöbb szerző úgy véli, hogy ha sikeres, az ASL mennyisége csökken, és ha a kezelés hatékonysága nem megfelelő, akkor ennek a mutatónak a növekedését vagy stabilizálódását rögzítik. A jelentések szerint az ASL meghatározásával számszerűsíthető a szöveti és bakteriális antigénekkel, valamint az antibiotikumokkal szembeni szenzibilizáció, aminek fontos diagnosztikai értéke van. Az ASL módszert korlátozott mértékben alkalmazták vérhas diagnosztizálására.

Az ASL korai felismerésének lehetősége, már a fertőzést követő első napokban nagyon fontos a korai diagnózis és az időben történő kezelés szempontjából, ami szükséges a klinikus számára.

Az áttekintésben bemutatott adatok tehát azt mutatják, hogy tekintettel a vérhas elterjedtségére, az érzékenység hiányára és számos diagnosztikai módszer pozitív eredményének késői megjelenésére, célszerű e fertőzés kimutatására szolgáló diagnosztikai potenciál fejlesztése. Számos fertőző betegségre kapott adatok magas hatásfok Az ASL módszer, pozitív eredményének korai megjelenése meghatározza a módszer shigellosis vizsgálatának és alkalmazásának kilátásait.

Bibliográfia

1 Juscsuk N.D., Brodov L.E. Az akut bélfertőzések differenciáldiagnosztikája és kezelése // Ros. és. gastroenterol., hepatol., koloproktol. – 2000. – 10., 5. sz. – P. 13 – 16. – Rus. – ISSN 1382-4376. – RU.

2 Shuvalova E.P., Zmushko E.I. Szindróma diagnózis fertőző betegségek. // Tankönyv. – S-P.: Péter, 2001. – P. 138-141.

3 Karalnik B.V., Amireev S.A., Syzdykov M.S. A laboratóriumi diagnosztikai módszerek elvei és lehetőségei, eredményeik értelmezése az epidemiológus munkájában // Módszer. recom. - Almati. – 1997. – 21 p.

4 Karalnik B.V. Bakteriális bélfertőzések szerológiai diagnosztikája. // Módszer. ajánlásokat. – Almaty, 1973. – 3-20 p.

5 5. Nurkina N.M. A dizentéria szerológiai diagnosztikájának módszereinek összehasonlító hatékonysága szenzitizált eritrociták felhasználásával: Tézis kivonata. dis. Ph.D. – Almaty, 1984. – 22 p.

6 Karalnik B.V., Nurkina N.M. A vérhas komplex szerológiai diagnosztikája. // Módszer. ajánlásokat. – Almaty, 1983. – 24 p.

7 Erkinbekova B.K. A Shigella antigének kimutatásának módszere vérhas egészségügyi és epidemiológiai vizsgálataiban: A szerző absztraktja. diss. ...az orvostudományok kandidátusa. – Almaty, 1995. – 18 p.

8 Nikitin V.M., Georgitsa F.I., Plugaru S.V. és mások.A fertőző betegségek diagnosztizálásának gyorsított módszerei. // Chisinau. - 1987. - 106 p.

9 Neverov V.A. Stratégia és taktika az akut bélfertőzések diagnosztizálására és kezelésére. // Szentpétervár - 1996. – 12 p.

10 Vorobiev A.A. Orvosi mikrobiológia, virológia és immunológia. // M.- 2004.- 7-8.o.

11 Ivanov K.S., Ivanov A.I. Akut hasmenéses fertőzések diagnózisa // Klin. édesem. – 1992. – 7-8. sz. – P. 64-69.

12 Ciudin L., Pencu E., Mihai, I. et al. A Shigella flex neri törzsek szerológiai azonosítása a koagglutinációs reakcióval // Roum. Boltív. Microbiol.Immunol. –1995/ – Vol/ 54(4). — 295 — 311. o.

13 Lindberg A.A., Cam P.D., Chan N. et al. Shigellosis Vietnamban: szeroepida miológiai vizsgálatok lipopoliszacharid antigének használatával enzimimmun vizsgálatokban // Rev. Megfertőzni. Dis. – 1991. – Vol. 13., 4. melléklet - 231-237.

14 Sloper S. Shigella. // In: Enterobacteriaceae-fertőzés. Lipcse.- 1968.- R. 375–441.

15 Jacobs J., Rudensky B., Dresner J. et al. Négy laboratóriumi vizsgálat összehasonlítása a Clostridium difficile-vel összefüggő hasmenés diagnosztizálására // Eur. J. Clin. Microbiol. Infect.Dis. – 1996. – 1. évf. 15. (7) bekezdése alapján. – P. 561-566.

16 Klyucharev A.A., Poleshko D.V., Vershenya M.I. A vérhas lefolyásának klinikai és epidemiológiai jellemzői az elmúlt években. // Fehéroroszország egészségügyi ellátása. – 1973. – 11. sz.- P. 54-56.

17 Gusarskaya I.L. A Sonne vérhas klinikai lefolyásának jellemzői a jelenlegi stádiumban és megelőzésének néhány kérdése. // A könyvben: A fertőző betegségek problémái. - Vologda. - 1970. -S. 23-27.

18 Shitov I.A., Trinitatskaya M.I. A bakteriális kiválasztódás időtartama akut vérhasban szenvedő betegeknél. // A könyvben: Bélfertőzések - 2. rész - L. 1972. - P. 161-163.

19 Avdeeva T.A. A vérhas kvantitatív mikrobiológiai vizsgálata (a vérhas klinikai, mikrobiológiai és epidemiológiai mintázatainak vizsgálatára szolgáló módszer kidolgozásának és alkalmazásának eredményei). A szerző absztraktja. dis. az álláspályázathoz tudós lépés. Dr. med. Sci. L., 1964, 28 p.

20 Tillet H., Thomas M. A széklet tenyésztése a Sonne-dizentéria diagnózisában: statisztikai módszer a valódi izolációs ráta becslésére. // Internat. J.Epidemiol.- 1974.- 3. köt.- R. 177-181.

21 Khaimzon B.I. A növekvő fágtiter reakciója az akut dizentéria diagnózisában felnőtteknél. A szerző absztraktja. dis. az álláspályázathoz tudós lépés. tud. Orvostudomány Voronyezs, 1965, 16 p.

22 Vilkomirskaya T.S. A fágtiter szenzitivitásának és specificitásának vizsgálatára vonatkozó anyagok a vérhas diagnosztikájában fokozzák a reakciót (RFT). // A könyvben: A fertőző és allergiás betegségek immunológiai kérdései. Ufa.- 1970.- 48-49.

23 Ivanov F.M. Az oltás, a titrafág növekedés és az antigén anyagok kimutatási módszereinek összehasonlító értéke a vérhas folyamatának különböző szakaszaiban. A szerző absztraktja. dis. az álláspályázathoz tudós lépés. tud. Orvostudomány Orenburg, 1963, 10 p.

24 Vilkomirskaya T.S. A fágtiter-növekedési reakció (RFT) klinikai és epidemiológiai jelentőségéről a dizentéria diagnosztizálásában Ufa-körülmények között. A szerző absztraktja. dis. az álláspályázathoz tudós lépés. tud. édesem. Sci. Ufa, 1971, 24 p.

25 Mazurin N.D., Rozina-Itskina Ts.S. A növekvő fágtiter reakciója a dizentéria diagnózisában. // JMEI.- 1963. - No. 1.- P. 113-116.

26 Golyusova E.V., Trokhimenko M.Z. A Tsuverkalov-teszt jelentőségéről a gyermekek akut vérhas diagnosztizálásában. // Bélfertőzések (Kijev) - 1972. - szám. 5. - 97-99.

27 Fradkin V.A., Lodinova L.M. Allergének alkalmazása krónikus bélfertőzések diagnosztizálására. // A könyvben: Baktériumhordozás és a fertőző betegségek krónikus formái. - 2. rész.- M.-1975.- P. 213-215.

28 Lukashevics K.K. Allergiás módszer vérhas diagnózisa. // A könyvben: Néhány klinikai probléma és allergia a fertőző patológiában Kuibisev - 1970 - 41-43.

29 Csecselnickij V.M. A Tsuverkalov-reakció jelentősége az akut vérhas diagnózisában. // A könyvben: Immunológia és bélfertőzések Voronyezs - 1970. - 110-114.

30 Bogdanov I.L. Allergia a fertőző betegségek patogenezisében, klinikai képében és terápiájában. // M. - 1974. - 245 p.

31 Gorchakova G.A. Dysenterin (dizentéria diagnosztizálására szolgáló intradermális vizsgálatra szolgáló gyógyszer). A szerző absztraktja. dis. az álláspályázathoz tudós lépés. Dr. Orvostudomány Odessza, 1969, 19 p.

32 Lyubitskaya N.A., Polyak A.I. A dizentéria immundiagnosztikája gyermekeknél //VI All-Union. konf. klinikai szerint biokémia, morfológia és immunológiai fertőzések. bol.: Jelentéskivonatok. – Riga, 1983. – P. 106-107.

33 Furman A.A. A dizentéria és a colienteritis laboratóriumi diagnosztizálásának néhány gyorsított módszerének összehasonlító vizsgálata. A szerző absztraktja. dis. Nasoisk. tudós lépés. tud. édesem. Sci. Kijev, 1970, 19 p.

34 Mikhailov I.F., Pers I.F. Az intesztinális csoportba tartozó baktériumok közötti antigén kapcsolatok kimutatása fluoreszcens antitestek segítségével. JMEI, 1975, 5. szám, 97-103.

35 Shmuter L.M. Az indirekt hemagglutináció és az antitestek semlegesítésének reakciói a vérhas diagnózisában. A szerző absztraktja. dis. az álláspályázathoz tudós lépés csatorna édesem. Sci. Harkov, 1968, 19 p.

36 Evdokimova T.V., Podlevsky A.F., Yafaev R.Kh. Klinikai és laboratóriumi párhuzamok akut dizentériában felnőtteknél. – JMEI, 1974, 6. szám, 82-85.

37 Mogilev V.E. Passzív hemagglutináció vérhasban. Szakdolgozat kivonata. az álláspályázathoz tudós lépés. tud. édesem. Sci. Kuibisev, 1968, 20 p.

38 Rybakova N.A. A passzív hemagglutinációs gátlási reakció alkalmazása a Sonne-féle vérhas diagnosztizálására gyakorlati laboratóriumban. - Lab. üzlet, 1975, 3. szám, 168-170.

39 Ivanov F.M. Az oltás, a titrafág növekedés és az antigén anyagok kimutatási módszereinek összehasonlító értéke a vérhas folyamatának különböző szakaszaiban. A szerző absztraktja. dis. az álláspályázathoz tudós lépés. tud. édesem. Sci. Orenburg, 1963, 10 p.

40 Godovanny B.A., Litinsky Yu.I., Bodisko V.P. és mások Shigella Sonne antigén kvantitatív meghatározása betegek és baktériumhordozók vizeletében. - Lab. üzlet, 1974, 6. szám, 360-363.

41 Kashkin G.S. A vérben és a vizeletben lévő mikrobiális antigének dinamikájának vizsgálata akut vérhasban. – A könyvben: A fertőző betegségek problémái. Vologda, 1970, 47-50.

42 Nurkina N.M. A dizentéria szerológiai diagnosztikájának módszereinek összehasonlító hatékonysága szenzitizált eritrociták felhasználásával: Tézis kivonata. dis. Ph.D. – Almaty, 1984. – 22 p.

43 Lee Van Ho., Rubtsov I.V., Tregub A.V., Remneva T.V. Néhány módszer összehasonlító diagnosztikai értéke a vérhas antigének azonosítására a páciens testének szubsztrátjaiban. // Zh.mikrobiol. – 1989. – 1. sz. – P. 57-61.

45 Sakal N.N. Az enzim immunoassay alkalmazása és hatékonyságának értékelése a Sonne vérhas korai diagnosztizálásában és lefolyásának prognózisában: Téziskivonat. diss. ...folypát. édesem. Sci. – Szentpétervár, 1993. – 21 p.

46 Rubcov I.V., Pimenova G.N., Kulakova V.N. Az ELISA klinikai és laboratóriumi adatainak statisztikai értékeléséről // A jubileumi tudományos-gyakorlati munka anyagai. konferenciák, dedikált elnevezett MMA Infektológiai Osztálya megalakulásának 80. évfordulója. I. M. Sechenov (2003. május 22-23.). - M.: MMA im. I. M. Sechenov. - 2003. - P. 152-153.

47 Downes F.P., Green J.K. et al. Enzimkapcsolt immunszorbens assay fejlesztése és értékelése Shiga – mint a toxin I és Shiga – mint a toxin II kimutatására // J. Clin. Microbiol. – 1989. – V. 27., 6. sz. – P. 1292-1297.

48 Barbans P.S., Pantyukhina A.N. Fluoreszcens Fab - tífuszban szenvedő emberek szérumfehérje elleni antitestek fragmentumai - megszerzésének és monitorozásának módszerei // Journal of mikrobiol., epidemiol. és immunobiol. – 1984. – 2. sz. – 102-105.

49 Szintetikus antigének használata fertőző betegségek diagnosztizálására //Techn.ser/WHO. – 1989. – 784. sz. – P. 1-74.

50 Ekwall E., Norberg T., Swensons S.B. et al. a szalmonella E szerocsoportú O3 antigén specifikus azonosítása immunfluoreszcenciával és antiszérummal végzett koagglutinációval, amelyet egy szintetikus triszacharid – szarvasmarha szérum albuminglikokonjugátum azonosított 1 // J. Clin.Microb. – 1994. – 19, 5. sz. – P. 699-702.

51 Lee Kuo-Ka, Ellis A.E. Gyors és érzékeny ezüst-lipopoliszacharid festés Phast System segítségével gyors vízszintes poliakrilamid gélelektroforézisben //Elektroforézis. – 1989. – V. 10., 10. sz. – P. 729-731.

52 Tempieva T.V., Yuditskaya N.M., Litinsky Yu.I., Lee Vam Ho. Immunkomplexek ultrahangos szétesése a Shigella antigének kimutatására vérhasban szenvedő betegek vizeletében // Lab. ügy. – 1988. – 9. sz. – 64-66.

53 Chaika N.A. Bélfertőzések és kórokozóik vizsgálata modern immunológiai módszerekkel // Akut bélfertőzések. – L.: Leningr. Epidemiológiai Kutatóintézet és mikro. – 1987. – szám. II. – P.3-8.

54 Khazenson L.B., Chaika N.A. A bélfertőzések diagnosztikájának és epidemiológiai elemzésének immunológiai alapjai. – M.: Orvostudomány. –1987. – 112 s.

55 Kashkin G.S. Akut vérhasban szenvedő gyermekek vérében és vizeletében lévő mikrobiális antigének dinamikájának vizsgálata. // A könyvben: A fertőző betegségek problémái. - Vologda. – 1970.- P. 47-50.

56 Godovanny B.A., Litinsky Yu.I., Bodisko V.P. A Shigella Sonne antigén kvantitatív meghatározása betegek és baktériumhordozók vizeletében. // Lab. ügy. – 1970. – 6. sz. – P. 360-363.

57 Rybakova N.A., Rybakov D.A. Az RNGA és az RNAt alkalmazása dysenteriás etiológiájú betegségek epidemiológiai vizsgálatában. – A Leningrádi Epidemiológiai Kutatóintézet közleménye. és mikrobiol. Pasteurről nevezték el. -T. 56. – L., 1981. – P. 58-61.

58 Vasziljeva A.V. A Sonne-dizentéria szerológiai diagnózisának különféle módszereinek összehasonlító értékelése. // Bélfertőzések. – 1972. – Szám. 5. szám – 129-132.

59 Dubinina I.G., Shcherbo S.N., Makarov V.B. Polimeráz láncreakciós módszerek a laboratóriumi gyakorlatban. // Klinikai laboratóriumi diagnosztika. – 1997, 7. sz. – 4 – 6. o.

60 Turkadze K.A., Podkolzin T.A., Kokoreva L.N. és mások A PCR és a bakteriológiai módszer alkalmazásának összehasonlító hatékonysága a szalmonellózis és shigellózis diagnosztikájában // A jubileumi tudományos és gyakorlati munka anyagai. konferenciák, dedikált elnevezett MMA Infektológiai Osztálya megalakulásának 80. évfordulója. I. M. Sechenov (2003. május 22-23.). - M.: MMA im. I. M. Sechenov. - 2003. - P. 172-173.

61 Akhtamov M.A., Akhmedov A.A. Egyesek hatékonyságának összehasonlító vizsgálata szerológiai reakciók az akut vérhas laboratóriumi diagnosztikájában // Med. Üzbegisztán magazin. – 1984. -№1. – 29-31.

62 Boriszov V.A. A vérhas diagnosztizálására szolgáló egyes szerológiai módszerek összehasonlító értékelése felé. - Lab. üzlet, 1972, 9. szám, 564-566.

63 Laplane R., Be, gue P., Omanga V. Anticorps seriques et copro-anticorps dansles bacteriennes digestives de l, enfant. // Bika. Acad. nat. med. – 1975. – 1. évf. 159. - 7. sz. - P. 596-600.

64 Barksdale W., Ghoda A. Agglutináló antitestek szérumban és székletben.// J. Immunol. – 1951. – 1. évf. 66. – 395. – 401. o.

65 Nikolaeva T.A., Kukain E.M., Khazenson L.B. A kopro- és szérumantitestek immunkémiai természete Sonne-féle vérhasban és más akut betegségekben szenvedő betegeknél. - Tez. jelentés Tudományos-gyakorlatira konf., dedikált Leningrád NIIEM 50. évfordulója névadója. Pasztőr. L., 1973, p. 53-54.

66 Lullu A.V. Az indirekt hemagglutinációs reakció alkalmazása akut vérhas diagnosztizálására és immunológiai vizsgálatára. // Szerzői absztrakt. dis. az álláspályázathoz tudós lépés. tud. édesem. Sci. - Tartu. - 1963. - 10 p.

67 Klyucharev A.A. Anyagok a fehéroroszországi vérhas tanulmányozásához. Poleshko D.V., Vershenya M.I. A vérhas lefolyásának klinikai és epidemiológiai jellemzői az elmúlt években. // Szerzői absztrakt. dis. az álláspályázathoz akadémiai fokozat Dr. édesem. Sci. - Kaunas. - 1970. - 32 p.

68 Podlevsky A.F., Cselinskaya N.M., Zhuravleva L.V., Buchel N.E. Közvetett hemagglutinációs reakció vérhasban különböző életkorú betegeknél. // A könyvben: A bél- és természetes gócos fertőzések epidemiológiai és megelőzési kérdései. L., 1971, 93-99.

69 Zaitlenok M.A., Eremina A.M., Subbotina Yu.L. Bakteriológiailag nem igazolt akut bélfertőzések szerológiai vizsgálatok // Immunológia és immunpatológia. – Voronyezs, 1983. – P. 35-37.

70 Boriszov V.A., Orlik N.S., Kiriljuk M.A. Immunválasz vérhasban szenvedő betegeknél, akiknél a Shigella elhúzódó kiválasztódása van. // Összszövetség. konf. a fertőző betegségek klinikai biokémiája, morfológiája és immunológiája. Absztrakt. jelentés - Riga - 1977. - P. 377-378.

71 Chilingaryan A.V. A pulmonalis modell, az indirekt hemagglutinációs reakció és az agglutinációs reakció párhuzamos alkalmazásának eredményei egészséges emberek vérében található vérhas elleni antitestek kimutatására. // A könyvben: Akut bélfertőzések. Dizentéria, escherichiosis, szalmonellózis. – L. – 1970. – P. 93-101.

72 Patton C.M., Gangorosa E.J., Weissman J.B. et al. Az inderect hemaglutináció diagnosztikai értéke a Shigella fertőzések szeroepidemiológiájában. // J. of Clin. Microb. – 1976. – 1. évf. – 23. – P. 143-148.

73 Martinez J. A bakteriális vérhas epidemiológiai vizsgálata. // Bol. ofic. sanit.panamer. – 1973. – 1. évf. 75. – P. 213-224.

74 Musabaev I.K., Abubakirova F.Z. Bakteriális vérhas. – Tash-kent – ​​1973. – 258 p.

75 Dulatova M.V., Golovacheva S.N., Savitskaya O.V. Az RPGA elve a fertőzések és az immunitás kifejezett diagnosztizálásában. // A könyvben: Előkészületek expressz diagnosztikához. – L., 1981. – P. 31-42.

76 Safonova N.V. Közvetett hemagglutinációs reakció alkalmazása az akut bélfertőzés gócaiban a fertőzöttek azonosítására és a források felkutatására. – L., 1974. – 11 p.

77 Solodovnikov Yu.P., Kalashnikova G.K., Subbotina Yu.L., Bobkin S.V. Közvetett hemagglutinációs reakció az antitestek vizsgálatában egészséges, beteg és felépült Sonne-dizentériában. – JMEI, 1971, 1. sz. – P.13-18.

78 Provotorov V.Ya. A vérhasban szenvedő betegek kezelésének kérdéséről. – A könyvben: A fertőző betegek közösségi ellátása és a fertőző betegek kezelésének kérdései. Szaratov, 1973. – P. 153-155.

79 Karalnik B.V. A fertőző patológia immundiagnosztikájának módszertana és taktikája. – A könyvben: A klinikai immunológia és immunológiai diagnosztika kérdései. Alma-Ata, 1988. – 10 p.

80 Kaplin V.I., Klevcova G.A., Koryukhina I.P. stb Specifikus vérreakció in kezdeti időszak dizentéria és szalmonella fertőzések és új lehetőségek az akut bélfertőzések korai specifikus diagnosztizálására // VI All-Union. konf. klinikai szerint biokémia, morfológia és immunol. fertőző bol.: Jelentéskivonatok. – Riga, 1983. – P.76-77.

81 Savilov E.D., Astafiev V.A., Mamontova L.M., Volodin Yu.F. A vérhas epidemiológiai jellemzői Kelet-Szibéria. //Novoszibirszk „Tudomány”, 1994. – P.42-43.

82 Ivanov K.S., Ivanov A.I. Akut hasmenéses fertőzések diagnózisa // Klin. édesem. – 1992. – 7-8. sz. – P. 64-69.

83 Karalnik B.V. A vörösvérsejtek, receptoraik és az immunitás. //Usp.modern biol., M. – 1992. – 112. évf., 1. sz. – P.52-61.

84 Garib F.Yu., Zalyalieva M.V. Módszerek a limfociták szubpopulációjának tanulmányozására emberekben különböző kóros állapotokban // Módszertani ajánlások. – Taskent, 1989. – 17 p.

85 Bahrg. Modabber F.Z. J. Immunol. Meth. – 1980. – V. 38., 3-4. – P. 203-216.

86 Tyagotin Yu.A. // Vérrendszeri betegségekben szenvedő betegek vizsgálatának és kezelésének kérdései. – L., 1975. – P. 21-25.

87 Novikov D.K., Novikova V.I. Az immundiagnosztika sejtes módszerei. // Minszk, 1979. – 222 p.

88 Smirnov B.N., Toropova N.I., Mokhova G.A. és mások // Az „Orvosi biotechnológia problémái” szövetségi tudományos konferencia anyagai. október 1988. – L., 1990. – P. 114-116.

89 Slavko E.A., Deryabin P.N., Karalnik B.V. Az antigénkötő limfociták meghatározása a szalmonellózis és vérhas korai diagnosztizálásának módszereként // Kazahsztán egészségügye - Almati - 1999. - 5-6. szám - 43-45.

90 Karalnik B.V., Kozhageldieva A.A., Karabekov A.Zh., Denisova T.G., Raipov O.R. A Yersinia enterocolitica által okozott yersiniosis kezelésének hatékonyságának nyomon követése // Gyógyászat. - Almaty - 2004. - 4. szám - P.51-53.

91 Karalnik B.V., Denisova T.G., Plazun A.A. és mások A tuberkulinspecifitás antigénkötő limfocitái M. bovis-szal fertőzött nyulakban a tuberkulózis kezelésének dinamikájában // A tuberkulózis és a tüdőbetegség problémái. -M.-2006.- 5.-P.48-53 sz.

92 Karalnik B.V., Karabekov A.Zh., Denisova T.G., Kozhageldieva A.A., Zhunusova G.B. A Yersinia enterocolitica O9 szerovar által okozott brucellózis és intestinalis yersiniosis differenciáldiagnózisa // Gyógyászat - Almaty - 2004. - 3. sz. - P. 155-157.

93 Karalnik B.V., Denisova T.G., Zhunusova G.B., Fedosov S.A., Zhankin A.A., Ospanov K.S., Mizanbaeva S.U. Különféle antitestvizsgálatok és az antigénkötő limfocita teszt hatékonysága a brucellózis diagnosztizálásában emberekben. // Orvosi immunológia. – S.-P. - 2006. - 8. évfolyam - 4. sz. — 567 — 572. o.

94 Karalnik B.V., Denisova T.G., Grushina T.A., Tugambaev T.I. Brucella melitensis-szel fertőzött tengerimalacok immunválaszának elemzése // Journal of Microbiol.- M.-2002.- No. 1.- P.54-56

95 Karalnik B.V., Berezin V.E., Denisova T.G., Deryabin P.N., Slavko E.A. és mások A Sendai vírus receptoraival rendelkező limfociták tartalmának dinamikája a vírussal és glikoproteinek immunstimuláló komplexével végzett immunizálás során // Izvest. Tudományos Minisztérium és felsőoktatás RK. Ser.biol. és orvosi - Almati - 1999. - 3. sz. - P. 50-51.

96 Garib F.Yu., Gurariy N.I., Aliev Sh.R. Az antigénkötő limfociták jellemzői a krónikus hepatitis gyermekeknél // Immunológia - 1988. - 5. sz. 91-93.

97 Finlay B.B., Falkow S.A. Salmonella, Shigella és Jersinia fajok mikrobiális stratégiáinak összehasonlítása // Baktérium – Gazdasejtek interakciója, Alban R. Liss. Inc. – 1988. – P. 227-243.

98 Karalnik B.V., Denisova T.G., Keshileva Z.B., Pshenichnaya L.A. és mások Antigénkötő limfociták és antitestek a szifilisz diagnosztizálásában // Szexuális úton terjedő fertőzések. – M. – 1999. – 5. sz. — P. 34–36.

99 Sakanova L.M., Karalnik B.V., Ukbaeva T.D. és mások. Immunreagensek antigénkötő limfociták azonosítására és tesztelésükre a diagnosztikában meningococcus fertőzés// Higiénia, epidemiológia és immunbiológia - Almaty. -2002.- 1-2.-P.69-72 sz.

100 Slavko E.A., Deryabin P.N., Karalnik B.V., Karabekov A.Zh. Az akut betegekben kimutatott antigénkötő limfociták specificitásáról gyulladásos betegségek gyomor-bél traktus. // Higiénia, epidemiológia és immunbiológia. - Almati. - 1999. - 2. sz. — 102 — 105. o.

A.M.Sadykova

Dizentériás laboratóriumi diagnosztika

Tү jin: Zhedel іshek fertőzéseklaryn baqylauda, ​​dysentery nakty diagnosztika ең өзу мәсеLeсі мљселі віліп сайлади. Bakteriális vérhas durys koyylgan diagnosztizálja tudomány uaqytynda eszünk zhurgizuge zhane járvány karsy sharalardy Otkіzu ushіn manyzdy. A corsetilgen malimeter, dysentery ken taraluyn negіzhіpіv, sesimtaldygynyn zhetkіlіxіzdіgі zhane kop degen diagnosticalyk adіsterdіn on natizhesіnі ң cache maksakfectiousanydyүps potenciales in maksaktaludyүps potenciaal in dysentery, dysentery áttekintése damytu kerek ekenіn korsetedi.

Tү val velө zder: diagnózis, vérhas, antigénbaylanystyrushy adis.

A.M.Sadycova

Dizentéria laboratóriumi diagnosztikája

Önéletrajz: A hasmenés megbízható diagnózisa az egyik legfontosabb kérdés a pontos bélfertőzés leküzdésében. A bakteriózisos hasmenés pontos diagnózisának vitae-je van a beteg helyes és pontos kezeléséhez, valamint a szükséges járványellenes intézkedések megtételéhez. A felmérésben szereplő tagok, figyelembe véve a széles körben elterjedt hasmenést, számos diagnosztikai módszer érzékenységének hiányát és a pozitív eredmény késői megjelenését mutatják. A fertőzés meghatározásához szükséges diagnosztikai potenciál fejlesztése elengedhetetlen.

Kulcsszavak: diagnosztika, vérhas, antigénkötő limfociták módszere.