Rosselchoznadzor / nariadenia

federálna služba pre veterinárny a fytosanitárny dozor

Územné správy ... TU na Územie Altaj a Altajská republika TU pre oblasť Amur TU pre oblasť Belgorod TU pre oblasť Brjansk a Smolensk Vladimírska oblasť Technické špecifikácie pre regióny Voronež a Lipetsk Technické špecifikácie pre mesto Moskva, Moskvu a región Tula Technické špecifikácie pre Transbajkalské územie Kaliningradská oblasť TU pre oblasť Kaluga TU pre územie Kamčatka a autonómny región Čukotka TU pre Kirovský región a Udmurtská republika TU pre Kostromskú a Ivanovskú oblasť TU pre Krasnodarské územie a Adygejská republika TU pre Krasnojarské územie TU pre Kurganskú oblasť TU pre Magadanskú oblasť TU pre Murmanskú oblasť TU pre Región Nižný Novgorod a Republikou Mari El TU v Novgorodskej a Vologdskej oblasti TU v Novosibirskej oblasti TU v Omskej oblasti TU v Orenburgskej oblasti TU v Oryolskej a Kurskej oblasti TU v r. Permská oblasť TU pre Primorské územie a Sachalinskú oblasť TU pre republiky Khakassia a Tuva a Kemerovský región Technické špecifikácie pre Republiku Bashkortostan Technické špecifikácie pre Republiku Dagestan Technické špecifikácie pre Republiku Ingušsko Technické špecifikácie pre Republiku Karelia, región Arkhangelsk a Nenets a.o. Technické špecifikácie pre Republiku Komi Technické špecifikácie pre Krymskú republiku a mesto Sevastopoľ Technické špecifikácie pre Mordovskú republiku a región Penza Technické špecifikácie pre Republiku Sakha (Jakutsko) Technické špecifikácie pre Republiku Tatarstan Technické špecifikácie pre Regióny Rostov, Volgograd a Astrachaň a Kalmycká republika Technické špecifikácie pre regióny Rjazaň a Tambov Technické špecifikácie pre región Samara Technické špecifikácie pre región Petrohrad, Leningrad a Pskov Technické špecifikácie pre región Saratov Technické špecifikácie pre región Sverdlovsk Technické špecifikácie pre územie Stavropol a Karačajsko-čerkesskú republiku Technické špecifikácie pre oblasť Tver O. TU pre územie Chabarovsk a Židovský autonómny región TU pre Čeľabinskú oblasť TU pre Čečenskú republiku TU pre Čuvašskú republiku a Ulyanovskú oblasť TU pre oblasť Jaroslavľ

Táto sekcia obsahuje aktuálne verzie regulačné právne akty (zákony, nariadenia, vyhlášky, rozhodnutia Najvyššieho súdu Ruskej federácie atď.), ktoré sú zaujímavé pre odborníkov v oblasti veterinárnej medicíny a fytosanitárnej starostlivosti.

Ďalšie informácie Môžete ho získať položením otázky v sekcii „Elektronický príjem“.

pravidlá

Veterinárne a hygienické predpisy na prípravu hnoja, hnoja a splachov ako organických hnojív na infekčné a parazitárne choroby zvierat a vtákov

Časť 1

Všeobecné ustanovenia

1.1. Veterinárne a hygienické predpisy pre prípravu hnoja, trusu a maštaľných hnojív z chovov hospodárskych zvierat a hydiny na použitie ako organické hnojivá, ďalej len „predpisy“, sú určené na kontrolu projektovania, výstavby a prevádzky zariadení na úpravu maštaľného hnoja. , hnoja a odpadových vôd, s cieľom získať ekologické bezpečné organické hnojivá, ktoré chránia životné prostredie pred kontamináciou patogénmi infekčných a parazitárnych chorôb.

1.2. „Pravidlá“ sa pripravujú na základe legislatívnych a regulačných dokumentov:

1. zákon Ruská federácia"O veterinárnom lekárstve" zo 14. mája 1993 N 4979-1;
2. GOST 24076-84 "Tekutý hnoj. Veterinárne a hygienické požiadavky na spracovanie, skladovanie, prepravu a použitie";
3. "Všeobecné normy pre technologický návrh systémov na odstraňovanie a prípravu na použitie hnoja", ONTP 17-86, Gosagroprom ZSSR;
4. "Republikové normy pre technologický dizajn hydinárskych podnikov", RNTP 4-93;
5. "Pokyny pre laboratórnu kontrolu zariadení na spracovanie v komplexoch hospodárskych zvierat", 1980 (Ministerstvo poľnohospodárstva ZSSR);
6. "Pokyny na vykonávanie veterinárnej dezinfekcie zariadení pre hospodárske zvieratá", 1989 (Gosagroprom ZSSR);
7. "Veterinárne-hygienické a hygienické požiadavky na inštaláciu technologických liniek na odstraňovanie, spracovanie, dezinfekciu a likvidáciu hnoja získaného v dobytkárskych komplexoch a farmách", 1979 (Ministerstvo poľnohospodárstva ZSSR, Ministerstvo zdravotníctva ZSSR);
8. "Metodické odporúčania na prevenciu znečisťovania životného prostredia bezhorným hnojom komplexov a fariem hospodárskych zvierat", 1989 (Gosagroprom ZSSR a Goskompriroda ZSSR);
9. "Zavlažovacie systémy využívajúce odpad z hospodárskych zvierat. VSN 33-2.2.01-85" (Ministerstvo meliorácií a vodných zdrojov ZSSR);
10. "Veterinárne a hygienické pravidlá pre používanie maštaľných hnojív na zavlažovanie a hnojenie pasienkov", 1993 (Ministerstvo poľnohospodárstva Ruska, Katedra veterinárnej medicíny);
11. TU 10-11-887-90 „Rašelinový kompost z maštaľného hnoja“;
12. TU 64-4688624-02-91 "Vermikompost".

1.3. Tieto „Pravidlá“ platia pre všetky druhy organických hnojív získavané v existujúcich, novovybudovaných a rekonštruovaných prevádzkach živočíšnej výroby rôznych kapacít.

1.4. Výber systémov úpravní na prípravu organických hnojív sa uskutočňuje na základe technicko-ekonomického porovnania rôznych možností s prihliadnutím na špecializáciu a veľkosť podniku, klimatické, pôdne a hydrogeologické podmienky.

1.5. Projekty systémov na spracovanie, skladovanie a dezinfekciu organických hnojív podliehajú schvaľovaniu miestnych orgánov štátneho veterinárneho dozoru, štátneho hygienického a epidemiologického dozoru a Štátneho výboru ochrany prírody.

1.6. Pri výbere miesta na výstavbu zariadení na chov hospodárskych zvierat a chovov hydiny je potrebné zabezpečiť pridelenie poľnohospodárskej pôdy na likvidáciu celého ročného objemu organických hnojív alebo technológie spracovania, ktoré znižujú objem prijatých hnojív.

1.7. Zariadenia na úpravu hnoja, podstielky a odpadových vôd sa nachádzajú mimo oplotení území fariem, areálov a chovov hydiny na záveternej strane a pod zariadeniami na odber vody.

Vzdialenosť od budov k obytným budovám a budovám hospodárskych zvierat závisí od kapacity podnikov a je určená z tabuľky 1.

1.8. Všetky konštrukcie a stavebné prvky systémov prípravy organických hnojív musia byť vyhotovené s hydroizoláciou, ktorá vylučuje filtráciu hnojovice a splachovanie do vodonosných vrstiev a vsakovanie podzemných vôd do technologickej linky.

1.9. Územie zariadení na prípravu organických hnojív musí byť oplotené, chránené trvalou zeleňou, upravené a mať príjazdové cesty a spevnenú prístupovú cestu so šírkou najmenej 3,5 m.

1.10. Pri vývoji návrhov zariadení by malo byť možné umiestniť všetky druhy hnoja a splaškov do karantény najmenej 6 dní, čo je potrebné na objasnenie diagnózy v prípade podozrenia na infekčné ochorenie.

Pre karanténu podstielky a podstielky sú vybudované sekčné stanovištia so spevneným povrchom, karanténa bezpresypového hnoja sa vykonáva v špeciálnych karanténnych nádržiach spracovateľských zariadení alebo v sekciách skladovania hnoja.

Sklady hnojovice sú vybavené zariadeniami na miešanie hmoty, ich svahy a dná musia mať tvrdý povrch, uzavreté sklady musia byť vybavené poklopmi, ako aj prívodným a odsávacím vetraním.

V prípade umelého biologického čistenia tekutého hnoja ošípaných a odpadových vôd z hydinových fariem v aerotankových nádržiach a ich následného presunu do mestských čistiarní alebo vypúšťania do útvarov povrchových vôd sa karanténa vykonáva s prihliadnutím na čas, ktorý strávia v čistiarňach podnikov. .

Ak do 6 dní infekčné choroby zvierat sa neevidujú, hnoj, trus a odpadové vody sa upravujú podľa akceptovaných technológií, čistia sa odpadových vôd vypúšťané do útvarov povrchových vôd v súlade s požiadavkami „Sanitárnych pravidiel a noriem na ochranu povrchových vôd pred znečistením“ (N 4630-88).

Časť 2

Dezinfekcia hnoja, podstielky a kanalizácie

2.1. V prípade výskytu infekčných chorôb zvierat by mal mať každý podnik chovu hospodárskych zvierat a chov hydiny spôsob a technické prostriedky na dezinfekciu hnoja, podstielky a odpadových vôd. Trvanie karantény v znevýhodnených chovoch je určené aktuálnymi pokynmi o opatreniach na elimináciu konkrétnych infekčných ochorení s prihliadnutím na spôsob dezinfekcie organického odpadu, dostupnosť dezinfekčných prostriedkov a technické prostriedky, ako aj typ a odolnosť patogénu.

2.2. Keď sa na farmách vyskytnú infekčné choroby, celá hmota organických hnojív získaná počas tohto obdobia sa pred rozdelením na frakcie biologickými, chemickými alebo fyzikálnymi metódami dezinfikuje. Metódy dezinfekcie organického odpadu by sa mali zvážiť s prihliadnutím na ich fyzikálne a chemické vlastnosti, perspektívne technológie spracovania a možnosti ich využitia ako hnojív ( , ).

2.3. Pre komplexy na chov ošípaných s kapacitou 12-27 tisíc kusov ročne sa plánuje karanténa na 6 dní. a dezinfekciu od nespórotvornej patogénnej mikroflóry nedeleného hnoja dlhodobým ošetrením na 12 mesiacov. starnutie v sekčných skladovacích nádržiach, anaeróbna fermentácia v bioenergetických zariadeniach alebo chemickými prostriedkami v karanténe alebo v špeciálne navrhnutých kontajneroch.

Biologický spôsob odčervovania zahŕňa aj držanie polotekutého a tekutého prasačieho hnoja v otvorených skladoch hnoja po dobu 12 mesiacov.

Odčervovanie tekutej frakcie prasačieho hnoja sa vykonáva usadzovaním počas 6 dní. v sekčných zásobných nádržiach vybavených zariadeniami, ktoré zabraňujú vniknutiu dnových sedimentov do závlahového systému, a zariadeniami, ktoré zabezpečujú periodické vykladanie sedimentov pred ich doplnením tekutou frakciou.

2.4. Anaeróbna fermentácia tekutého prasačieho hnoja sa vykonáva v bioenergetických zariadeniach (BEU). Používanie súprav zariadení na anaeróbnu digesciu je možné na existujúcich farmách a komplexoch bez výrazných zmien v procesných linkách odstraňovania hnoja.

2.4.1. Kvapalný hnoj musí byť vopred zbavený nečistôt, má vlhkosť 90 - 96%, pomer C:N 10 - 18:1, obsah popola nie viac ako 20% (nedostatok dusíka obmedzuje proces fermentácie metánu ).

2.4.2. Skladovanie počiatočného hnoja pred fermentáciou by nemalo presiahnuť 24 - 48 hodín.

2.4.3. Hnoj z farmy vstupuje do zberného koša, vybaveného čerpadlom s mlecím a miešacím zariadením, ktoré zabezpečuje homogenizáciu hmoty pre ohrievač (špeciálna nádoba - držiak, časť mikrobiologického reaktora). Prijímače hnoja musia zabezpečiť akumuláciu aspoň 2-dňového objemu z farmy.

2.4.4. V ohrievači sa hnoj privedie na požadovanú fermentačnú teplotu, premieša sa a po častiach sa privádza do digestora. Objem ohrievača musí zodpovedať dennému výkonu hnoja z farmy.

2.4.5. Mikrobiologický proces anaeróbnej fermentácie sa riadi rovnakým princípom pre všetky druhy hnoja a všetky typy konštrukcií digestorov. Pre proces anaeróbnej fermentácie je množstvo prch mastné kyseliny vo fermentovanej hmote by mala byť v rozmedzí 600 - 2000 mg / l. Živiny s novými porciami hnojovice musia byť do digestora dodávané denne.

2.4.6. Proces metanogenézy prebieha pri teplote spracovávanej hmoty 16 - 60 °C. Voľba teplotného režimu pre anaeróbnu fermentáciu organického odpadu je daná požiadavkami na kvalitu finálnych produktov, t.j. stupeň čistenia hnojovice, dezinfekcia, odčervovanie, množstvo metánu v bioplyne, klimatické a ekonomické faktory.

2.4.7. Kapacita mikrobiologického reaktora závisí od denného množstva prijatého hnoja, zvoleného teplotného režimu, denná dávka zaťaženie, trvanie fermentácie a stupeň rozkladu organickej hmoty.

2.4.8. Mechanické, hydraulické a vzduchové (bioplynové) systémy miešania fermentovanej hmoty v bioreaktore zaisťujú rovnakú (jednotnú) teplotu spracovávaného substrátu v celom objeme fermentora, deštrukciu povrchovej krusty a šetrný režim fermentácie. Proces anaeróbnej digescie vo fermentore prebieha pri pretlaku do 200 - 400 mm vodného stĺpca (0,2 - 0,4 kPa).

2.4.9. Počet vyhnívacích nádrží by mal byť aspoň dva, poskytujúce optimálne podmienky pre anaeróbnu fermentáciu a umožňujúci v prípade prepuknutia infekčných chorôb previesť prácu bioreaktorov z prietokového na cyklický režim prevádzky.

2.4.10. Berúc do úvahy možnosť vstupu nespracovaného hnoja do vyhnívaných zón hromadného uvoľňovania, existujúce prietokové technológie s prevádzkou dvoch digestorov by mali zabezpečiť zadržiavanie vyhnítého hnoja v úpravni po dobu najmenej 3 dní. v septikoch alebo kontajneroch. Ak sú tri a viac fermentorov na fermentáciu pracujúcich v sekvenčnom režime, je zabezpečená šesťdňová karanténa spracovanej hmoty a nie sú potrebné ďalšie nádrže na fermentovaný hnoj.

V prípade infekčných ochorení sa vykonáva anaeróbna digescia hnojovice v termofilnom režime (53 - 56 °C) s ponechaním hnoja v digestoroch minimálne 3 dni. bez pridania čerstvých porcií surovej hmoty.

Ak sa kontaminovaný fermentovaný hnoj dostane do skladovacích nádrží, dezinfekcia sa dosiahne ponechaním fermentovanej hmoty v otvorenom sklade hnoja po dobu 6 mesiacov.

2.4.11. Zavedenie mikrobiálneho „zákvasu“ z teplomilných kultúr do digestora pri optimálny režim termofilná fermentácia skracuje čas dezinfekcie z asporogénnej mikroflóry na 1 deň:

1. procesná teplota - 52 - 54 °C, - vlhkosť spracovávanej hmoty - 92 - 96%,
2. koncentrácia hydroxylových iónov, pH, - 7,0 - 8,0,
3. počet termofilov - 0,6 - 1,0 milióna / ml,
4. dávka dennej záťaže - 10 - 20%,
5. frekvencia sťahovania - 1 krát za deň,
6. počet miešaní hmoty vo fermentore - 3 krát denne,
7. trvanie každého miešania je 15 - 20 minút,
8. tlak vo fermentore - 0,2 - 0,4 kPa.

2.5. Z biologických metód dezinfekcie hnojovice je účinná aj metóda aeróbnej stabilizácie (intenzívna oxidácia), keď sa hmota zahreje na 60 °C a exponuje sa 4 dni. Súčasne sa dosiahne aj dezodorizácia tekutého hnoja.

Zavedením inokula termofilných mikroorganizmov v množstve 1 milión/g spracovávanej hmoty možno skrátiť čas dezinfekcie na 2 dni.

2.6. Na implementáciu chemickej metódy dezinfekcie tekutého hnoja z fariem ošípaných by zariadenia na jeho prípravu na použitie mali navyše zahŕňať špeciálne nádoby, čerpadlá na čerpanie a pravidelnú homogenizáciu.

2.6.1. Pri dezinfekcii hnojovice formalínom by sa mal objem nádoby pre rôzne štandardné veľkosti podnikov vypočítať na základe podmienok na dezinfekciu organického odpadu iba v teplom období. Formalín sa pridáva v množstve 0,3% (podľa DV) do upraveného hnoja, hmota sa mieša 6 hodín a udržiava sa 72 hodín.Zabezpečuje smrť patogénov helmintiáz v hnoji.

2.6.2. Dezinfekcia tekutého hnoja od patogénov infekčných a parazitárnych chorôb bezvodým amoniakom sa môže vykonávať kedykoľvek počas roka, pretože pri jeho zavedení sa teplota spracovanej hmoty zvýši na 20 - 25 ° C. Amoniak sa prepravuje v cisternách MZhA-6, ZBA-3.2 pod tlakom v nádobách s objemom 6 atm., privádza sa do hnoja cez špeciálne dávkovače alebo potrubím zakončeným perforovanou ihlou (konštrukcia NIPTIZH), spúšťaným na dno nádrže. so spracovanou hmotou. Vpich ihlou sa urobí vo vzdialenosti 1 - 2 m od stien nádoby a od seba navzájom. Počas zavádzania sa hmota mieša. Upravený hnoj je pokrytý emulznými dezinfekčnými filmami (sanitárny lysol značky "Desonol", butyricaldehyd atď.). Amoniak sa privádza v množstve 2 - 3%, emulzné dezinfekčné prostriedky 0,1 - 0,3% do ošetreného substrátu a hnoj sa udržiava 3 - 5 dní.

Dekontaminovaný organický odpad sa na polia odváža mobilnou dopravou, odporúča sa privážať podložným spôsobom alebo pod pluhom.

Kvapalný hnoj upravený formalínom nie je horší ako neošetrený hnoj, pokiaľ ide o jeho účinok na výnos a upravený bezvodým amoniakom zvyšuje výnosy plodín o 15-20%.

2.6.3. V areáloch chovu ošípaných s kapacitou 54 - 216 tisíc kusov, ktoré majú dvojstupňové biochemické čistenie a biologické rybníky ako súčasť čistiarní, zabezpečujúce hĺbkové čistenie odpadových vôd od organických látok (BSK5 - 12 - 16 mg O2/l), CHSK - 40 - 100 mg / l, nerozpustné látky - 20 - 25 mg / l, rozpustený kyslík - 6 - 10 mg / l), po dohode s miestnymi orgánmi štátneho veterinárneho dozoru a štátneho hygienicko-epidemiologického dozoru dezinfekcia vyčistených odpadových vôd chlórovaním zvyškovým chlórom minimálne 1,5 mg/l je povolené v období prepuknutia infekčných chorôb po 30 min. kontakt alebo ozonizácia so zvyškovým ozónom 0,3 - 0,5 mg/l po 60 minútach. kontakt s dôkladným premiešaním čistených odpadových vôd.

Dávky vstrekovaného chlóru a ozónu sa vyberajú v každom konkrétnom prípade. Vzhľadom na to, že ozón sa ľahko a rýchlo rozkladá na kyslík, odpadá problém toxicity jeho zvyškov. Ozón je možné získať vždy v prítomnosti kyslíka a elektriny, takže nie je potrebné ho skladovať. Tento spôsob čistenia odpadových vôd je veľmi perspektívny, ale je potrebný špecifický vývoj dezinfekčných technológií pre rôzne typy ozonizátorov.

Vlhký kal zo sedimentačných nádrží a prebytočný aktivovaný kal možno dekontaminovať bezvodým amoniakom alebo anaeróbnou fermentáciou v bioenergetických zariadeniach.

2.7. Dezinfekcia neošetreného hnoja sa dosiahne ošetrením gama žiarením Co-60 z vegetatívnej patogénnej mikroflóry v dávkach 2-12 kGy, patogény tuberkulózy - 13 kGy, patogény tvoriace spóry - 20 kGy.

Po vyčistení organického odpadu na parametre: pre nerozpustné látky - 90 - 110 mg/l, BSK5 - 115 - 130 mg/l, oxidovateľnosť - 55 mg/l - dávka ionizujúceho žiarenia potrebná na inaktiváciu nespórovitej látky mikroflóra sa zníži na 2 - 10 kGy , pôvodcovia tuberkulózy - 11 kGy, spóry mikroorganizmov - 17 kGy. Pri spracovaní hnoja ošípaných bez lôžka a hnoja ionizujúcim žiarením (Co-60, CS-137) dochádza k úplnému úhynu vajíčok škrkavky od dávky 1,3 kGy, trichocefalus - 0,5 kGy, ezofagostómia - 0,3 kGy, oocysta eimeria - 2, 5 kGy. Rádioodolnosť vajíčok helmintov, oocýst eimeria klesá pridávaním minerálnych hnojív a prebublávaním hmoty v čase ožarovania.

Použitie adsorbentov na čistenie odpadových vôd aktívneho uhlia značky AG-3, ako aj aktívneho uhlia s tepelne upraveným splaškovým kalom (150 - 170 ° C), koagulovaným síranom amónnym (25 mg / l v pomere 1,0 - 2.3: 1) pri pridávaní peroxidu vodíka do kanalizácie v dávke 0,6 - 0,8 mg/l pri konštantnom ožarovaní adsorpčnej kolóny adsorbentmi nazývanými gama lúče, Co-60 umožňuje dezinfikovať čistené odpadové vody v prúde s dávkovým príkonom žiarenia 25 rad/s.

Voľba zdroja žiarenia je v každom konkrétnom prípade daná podmienkami procesu, požadovanou produktivitou a prevádzkovou spoľahlivosťou. Ochrana zdrojov žiarenia by mala zabezpečiť absenciu rádioaktivity v čistených odpadových vodách a zvýšenie rádioaktívneho pozadia prostredia (NRB-96, OSP-87 Gosatomnadzor).

2.8. Úprava hnojovice prechádzajúcej drvičom s vlhkosťou 95 - 97 % v rotujúcom elektromagnetickom poli v zariadeniach s vírivou vrstvou ABC-150 (ktorých tlmivka je napájaná striedavým prúdom s napätím 380 V a frekvenciou max. 50 Hz, príkon 1,6 kW) s feromagnetickými časticami (d - 1 - 2 mm, l - 5 - 20 mm) v pracovnej komore s hmotnosťou 400 - 700 g zabezpečuje ich dezinfekciu od vegetatívnej patogénnej mikroflóry za 60 s a s zvýšenie hmotnosti feromagnetických častíc na 800 g, dezinfekcia nastáva za 30 s. Použitie viacerých ABC zariadení v technologickej linke umožňuje dezinfikovať maštaľný hnoj v potoku.

2.9. Dezinfekcia odpadových vôd pomocou unipolárnej aktivácie v anódovej komore membránového elektrolyzéra vyžaduje ich hĺbkové čistenie na parametre: nerozpustné látky 3 - 5 mg/l, Bd5 - 1 - 3 mg/l, CHSK 26 - 32 mg/l, dusík amónnych solí - 1, 5 - 2,0 mg/l, celková tvrdosť - 5,0 - 7,7 mg/l, chloridy - 270 - 300 mg/l. Dezinfekcia odpadových vôd sa dosahuje tvorbou voľného aktívneho chlóru na anóde s jeho obsahom v odpadovej vode 17,5 - 21,5 mg/l, zvýšením pH roztoku na 10 a viac a ďalšími faktormi, ktoré ešte nie sú úplne preštudované, pri. prúdová sila 3 - 5 A, napätie 32 - 37 V a hustota prúdu na elektródach - 200 A/sq. m) Kontaktný čas výtokov, ktoré prešli anódovou zónou membránového elektrolyzéra, je 10 minút, zmiešaných katódovo-anódových výtokov - najmenej 30 minút. nasleduje držanie až do vymiznutia chlóru v odpadovej kvapaline.

2.10. Spracovanie vyčisteného hnoja v membránových mikrofiltračných zariadeniach na dutých vláknach s priemerom pórov menším ako 0,2 mikrónu pri tlaku kvapaliny 1 - 1,2 atm. sprevádzaný poklesom saprofytickej a indikátorovej mikroflóry o 97,1 - 99,4 %, nedochádza však k úplnej sanitácii od vegetatívnej patogénnej mikroflóry, preto v prípade prepuknutia infekčných ochorení v technologickej linke by sa mali použiť iné chemické alebo fyzikálne metódy dezinfekcie. s prihliadnutím na významný pokles mikroflóry v odpadových vodách filtrátu a tisícnásobné zvýšenie kondenzovanej frakcie.

2.11. Pri spracovaní splaškových vôd z chovov ošípaných v rybochovných biologických rybníkoch s ich využitím na zavlažovanie je dezinfekcia od asporogénnej patogénnej mikroflóry v období epizootií zabezpečená dlhodobým (12-mesačným) uchovávaním odpadových vôd nerozdelených na frakcie v sedimentačných nádržiach alebo v sekciách na skladovanie hnoja.

Systém chovných a biologických rybníkov zabezpečuje dezinváziu vyčistených odpadových vôd, je však nevyhnutné biotermické čistenie kalov. Pri tejto technológii je potrebné periodické (aspoň 1-krát za sezónu) vykladanie kalu z častí rybníkov (riasy a kôrovce) a jeho zavádzanie pod orbu pod plodiny, ktoré sú silážované alebo tepelne ošetrené.

2.12. Dezinfekcia hnojovice, odtoku hnoja, kvapalnej frakcie a kalu z usadzovacích nádrží pri kontaminácii vegetatívnou a spórotvornou patogénnou mikroflórou, patogénmi invazívnych chorôb by sa mala vykonávať tepelne v zariadeniach s prúdové zariadenia pri teplote 130 °C, tlaku 0,2 MPa a expozícii minimálne 10 minút. (návrh inštalácie VNIIVViM).

2.13. Pre chovy dobytka všetkých veľkostí je vhodné použiť biologickú metódu dezinfekcie uskladňovaním hnoja v sekciových skladovacích nádržiach, v ktorých je karanténa. Pri použití biologickej metódy dekontaminácie hnoja akejkoľvek vlhkosti nie je potrebná výstavba ďalších konštrukcií a nákup vybavenia, pretože sekčné sklady v blízkosti farmy sa používajú na medziskladovanie hnoja alebo jeho frakcií až na 6 mesiacov. v mimovegetačnom období.

V prípade infekčných ochorení môžu byť dve časti skladu obsadené maštaľným hnojom kontaminovaným patogénmi, pričom zvyšné časti (najmenej dve) zabezpečia kontinuitu výrobného procesu. V tomto prípade je trvanlivosť bezpečného hnoja polovičná. Po uplynutí doby uchovávania hnojovice kontaminovanej patogénmi sa používa ako organické hnojivo podľa už zavedenej technológie.

2.14. Podstielkový hnoj s vlhkosťou do 70% sa dezinfikuje biotermálnou metódou voľným ukladaním do kôp s rozmermi: výška do 2,5 m, šírka v základni do 3,5 m a ľubovoľná dĺžka.

Na vybetónovanom mieste je kopa uložená na materiáloch absorbujúcich vlhkosť (rašelina, nasekaná slama, piliny, dezinfikovaný hnoj a pod.) s vrstvou 35–40 cm a bočné plochy pokrývajú aj vrstvou 15– 20 cm.

Pri dezinfekcii tuhej frakcie hnojovice biotermálnou metódou sú limitné parametre pre zabezpečenie aktívnych procesov nasledovné: vlhkosť hmoty do 80 %, výška kopy do 3 m, šírka základne do 5 m.

Kvapalina unikajúca z hromady sa spolu s atmosférickými zrážkami zbiera a posiela do zberača kvapalín na chemickú dezinfekciu.

Za začiatok lehoty na dekontamináciu podstielkového hnoja a tuhej frakcie hnojovice sa považuje deň zvýšenia teploty v r. stredná tretina golier v hĺbke 1,5 - 2,5 m do 50 - 60 °C. Doba držania hromád v teplej sezóne je 2 mesiace, v chlade - 3 mesiace.

Odčervovanie tuhej frakcie, kompostu, podstielkového hnoja s vlhkosťou do 70% je zabezpečené biotermickou metódou, ale pri skladovaní v období jar-leto minimálne 1 mesiac, v období jeseň-zima - najmenej 2 mesiace a pri vlhkosti 75% - počas teplej sezóny najmenej 2 mesiace. a v chlade - najmenej 6 mesiacov.

2.15. Podstielka hovädzieho dobytka, kožušinových fariem a chovov hydiny s vlhkosťou vyššou ako 70 % je v karanténe a v prípade prepuknutia infekčných chorôb sa dezinfikuje dlhodobým skladovaním v priestoroch na skladovanie maštaľného hnoja alebo hlinených priekop s hydroizolačnou vrstvou, ktoré sa striedavo plnia. Úseky skladov hnoja a priekopy naplnené hnojom kontaminovaným vegetatívnymi patogénmi sa pokryjú materiálmi absorbujúcimi vlhkosť s vrstvou 15–20 cm a uchovávajú sa 12 mesiacov, ak je hnoj kontaminovaný patogénom vtáčej tuberkulózy - 18 mesiacov.

Odčervovanie tuhého prasačieho hnoja s obsahom podstielky nahromadeného v blízkosti malých (rodinných) fariem si vyžaduje viac ako rok zrenia. Na urýchlenie deštrukcie patogénov helmintiáz - askarióza, trichuriáza, gemenolipidóza - je potrebné mechanické miešanie hmoty jesenného a zimného obdobia akumulácie a jej udržiavanie na miestach po dobu 5-6 mesiacov.

2.16. Polotekutý maštaľný hnoj a maštaľný hnoj s vlhkosťou 85 - 92 % je možné dekontaminovať prípravou kompostov s organickými sorbentmi (nasekaná slama, rašelina, piliny, kôra, lignín) a ukladaním na hromady (str. 2.14).

Na zabezpečenie požadovanej vlhkosti kompostovanej hmoty je potrebné zložky zmiešať v správnom pomere s prihliadnutím na ich vlhkosť.

Na prípravu kompostu na báze hnoja hospodárskych zvierat by vlhkosť zložiek nemala byť vyššia ako: hnoj - 92%, rašelina - 60%, sapropel - 50%, drevospracujúci odpad - 40 - 50%, slama - 24% .

Na prípravu kompostov na báze kuracieho hnoja je vlhkosť zložiek nasledovná: hnoj - 64 - 82%, rašelina - 50 - 60%, slama - 14 - 16%, piliny - 16 - 25%, kôra stromov - 50 - 60%, lignín - 60%, humózne pôdy - 20 - 30%, kompost - 65 - 70%.

Pre aktívny a efektívny priebeh biotermálnych procesov v kompostoch je potrebné rovnako dodržiavať každú z nasledujúcich podmienok:

1. optimálna vlhkosť kompostovej hmoty - 65 - 70%, - pomer zložiek nie je menší ako 1:1,
2. vysoká homogenita zmesi,
3. optimálna reakcia média, pH, - 6,5 - 7,7,
4. dostatočné prevzdušnenie hmoty pri procese kompostovania, t.j. voľné kladenie hromád,
5. pozitívna tepelná bilancia, optimálny pomer C-N (uhlík k dusíku) 20 - 30:1.

Keď teplota hmoty stúpne na 50 - 60 ° C vo všetkých vrstvách obojku počas prvých 10 dní. po uskladnení vydržia komposty 2 mesiace. v lete a 3 mesiace. v zimných obdobiach roka a potom sa používa podľa prijatej technológie.

Aby sa zabránilo šíreniu patogénov infekčných chorôb, hromady nie sú opätovne stohované.

Keď je hnoj kontaminovaný obzvlášť nebezpečnými spórami infekčných agens, komposty sa nepripravujú. Podstielkový hnoj a usadeniny z usadzovacích nádrží sa spaľujú. Polotekutý, tekutý hnoj a odpadové vody sa tepelne dezinfikujú v zariadeniach s prúdom pary navrhnutých spoločnosťou VNIIVViM.

Suspenzia uvoľnená z kompostov sa usmerňuje a dezinfikuje chemickými dezinfekčnými prostriedkami rovnakým spôsobom ako v bode 2.6.

2.17. Pri zrýchlenom kompostovaní hydinového a živočíšneho hnoja s použitím organických sorbentov (vlhkosť hmoty nie je vyššia ako 75 %) v zariadeniach rôznych prevedení (bioreaktory) s aktívnymi systémami vetrania vzduchu sa dezinfekcia od vegetatívnej patogénnej mikroflóry dosahuje zvýšením teploty. kompostu na 60 - 70 °C v priebehu 24 - 48 hodín a jeho následné spracovanie do 10 - 14 dní. Zavedenie inokula termofilných mikroorganizmov do kompostu skracuje čas dezinfekcie na 4–7 dní.

2.18. Technológie na prípravu vermikompostov na báze hnoja hospodárskych zvierat a trusu hydiny sa realizujú šľachtením červca kalifornského a ďalších poddruhov v pripravenom komposte. dážďovka(E.foetida). Substráty pre vermikompostovanie (pevná frakcia hnoja z chovov ošípaných, podstielka, slepačí trus a pod.) sú pripravované biotermickou úpravou a následne používané podľa akceptovanej technológie.

Vermikompostovanie sa vykonáva v dielňach so sadou technologických zariadení, ktoré poskytujú optimálne parametre prostredia (teplota 20°C +/- 2,5, vlhkosť kompostovej hmoty - nie viac ako 70%, pH - 7,0 +/- 0,5) pre materskú vermikultúru. . Materská kultúra sa zavádza do kompostu v množstve 30-50 kusov na 1 kg substrátu, vlhkosť sa udržiava na úrovni nie vyššej ako 70%.

Dielňa a miesta na vermikompostovanie sa nachádzajú na záveternej strane výrobného sektora vo vzdialenosti minimálne 60 m.

Vermikompost (biohumus) je pripravený na použitie po 4-5 mesiacoch. po položení do substrátov kultúry kalifornských červov.

Biomasa červa sa oddelí od substrátu a použije sa ako bielkovinová prísada do krmiva pre zvieratá, pričom sa zohľadnia požiadavky GOST 17536-82 "Kŕmna múka živočíšneho pôvodu, TU".

Sklad na príjem hotové výrobky(biohumus, biomasa červov) je oddelená stenou od technologického zariadenia dielne a na miestach komunikácie sú vybavené dezinfekčnými rohožami, aby sa zabránilo sekundárnej kontaminácii oportúnnou mikroflórou získaných produktov.

2.19. Keď sa drobný dobytok chová na roštových podlahách s akumuláciou hnoja bez lôžka s vlhkosťou 89 – 93 % v podzemných kanáloch, teplota v ňom je blízka teplote okolia a nedochádza k biotermickým procesom, preto v príp. ohniska infekčných chorôb, musí byť dekontaminovaný dlhodobým skladovaním v hospodárskom sklade hnoja alebo prípravou kompostov s materiálmi absorbujúcimi vlhkosť (odsek 2.14).

Pri chove hovädzieho dobytka a drobného dobytka na roštových podlahách s prídavkom slamy a zberom podstielkového hnoja v podzemných skladoch hnoja sa teplota hnoja s vlhkosťou 65-70% zvýši na 50-55°C a indikačná mikroflóra v titre menšie ako 1,0 sa uvoľňujú len z hornej vrstvy v 50 cm.Pre dezinfekciu takéhoto podzemného skladovacieho hnoja kontaminovaného vegetatívnou patogénnou mikroflórou je potrebné po odstránení zvierat prekryť ho materiálmi absorbujúcimi vlhkosť. vrstva 20–30 cm a vydržia minimálne 1 mesiac. leto a 2 mesiace. - v zime. Pri vyššej vlhkosti maštaľného hnoja sa močovka zo skladu vyberie a dezinfikuje chemickými prostriedkami a zvyšný hustý hnoj sa uchováva 10-12 mesiacov.

Odčervovanie polotekutého hnoja hovädzieho dobytka a drobného dobytka v podzemných skladoch maštaľného hnoja sa dosiahne jeho skladovaním po dobu 5 mesiacov.

2.20. Hlboká neodnímateľná podstielka pri pestovaní mladého dobytka, drobného dobytka a hydiny nie je v procese akumulácie dezinfikovaná, pretože teplota v nej nestúpa nad teplotu okolia a nedochádza k biotermickým procesom.

V prípade infekčných ochorení zvierat a hydiny sa hlboká podstielka kontaminovaná patogénmi po uvoľnení vrchnej vrstvy ukladá na hromady akceptovaných veľkostí na biotermické ošetrenie na pripravených miestach. V takýchto hromadách sú aktívne biotermálne procesy pozorované už po 48 hodinách, ale nie sú rovnomerné ani v jednej vrstve, preto sa tiež uchovávajú najmenej 2 mesiace. leto a 3 mesiace. v zime.

2.21. Organické hnojivá získané na základe spracovania podstielkového hnoja, pevnej frakcie tekutého živočíšneho hnoja a kuracieho hnoja pomocou koprofágov podľa technológií vyvinutých Novosibirskou agrárnou univerzitou, VIZH, NIIEM, zostávajú kontaminované oportúnnou mikroflórou obsiahnutou v spracovaných substrátoch . Táto technológia spracovania organického odpadu (T - 33°C) nezabezpečuje dezinfekciu a dezinsekciu spracovávanej hmoty, je potrebné dodatočné tepelné spracovanie. Pri tepelnom sušení sekundárnych produktov v režime nad 138 ° C a expozícii 10 minút. patogény helmintiáz a vegetatívna patogénna mikroflóra sú inaktivované.

Pri použití lariev koprofágov ako bielkovinového krmiva pre zvieratá musí spĺňať normu GOST 17536-82 ("Kŕmna múka živočíšneho pôvodu, TU").

2.22. Spracovanie hnoja vo veľkých hydinárskych farmách sušením v sušiarňach hnoja typ bubna so súprúdovým a protiprúdovým pohybom surovín a chladiacej kvapaliny zabezpečuje jej dezinfekciu od patogénnych baktérií, vírusov a patogénov helmintiáz. Dezinfekcia steliva v zariadeniach s priamym prúdením sa dosahuje pri teplote vstupujúcich plynov 800 - 1000 °C, vystupujúcich plynov - 120 - 140 °C a dobe pôsobenia minimálne 30 minút. V protiprúdových inštaláciách (USPP-1) je zabezpečená dezinfekcia spracovávanej hmoty pri teplote vstupujúcich plynov 600 - 700 °C, v bubne 220 - 240 °C a výstupných 100 - 110 °C s expozíciou 50 - 60 minút. Obsah vlhkosti v sušenom hnoji by nemal presiahnuť 10-12% a celková mikrobiálna kontaminácia by nemala presiahnuť 20 tisíc mikrobiálnych buniek na 1 g.

Časť 3

Kontrola dezinfekcie organických hnojív

3.1. Odber vzoriek organických hnojív na bakteriologickú kontrolu sa vykonáva po uplynutí doby expozície rôznymi spôsobmi dezinfekcie opísanými vyššie v príslušných častiach.

3.2. Vykonáva sa laboratórna kontrola účinnosti dezinfekcie organických hnojív získaných v areáloch a na farmách počas prepuknutia infekčných chorôb zvierat a hydiny mikrobiologické metódy o prežívaní indikátorových (sanitárnych-indikačných) mikroorganizmov: baktérie skupiny Escherichia coli, stafylokoky a spóry rodu Bacillus v súlade s "Pokynmi pre laboratórnu kontrolu ošetrovacích zariadení v komplexoch hospodárskych zvierat", M., 1980, a "Pokyny na veterinárnu dezinfekciu chovných zariadení" , M., 1989.

3.3. Pri anaeróbnej fermentácii hnoja a hnoja sa kontrola dezinfekcie vykonáva podľa miery prežitia E. coli a enterokokov.

3.4. Keď sú organické hnojivá kontaminované patogénmi tuberkulózy, kvalita ich dezinfekcie je riadená prežitím stafylokokov a enterokokov, pretože saprofytické mikrobaktérie nielenže zostávajú životaschopné dlhšie ako patogénne druhy, ale sa aj množia počas dlhodobého skladovania organického odpadu.

3.5. Kvalita dezinfekcie v prípade kontaminácie organického odpadu spórotvornými patogénmi antraxu, emfyzematózneho karbunkulu, bradzotu, malígnych edémov, ako aj patogénmi exotických infekcií je kontrolovaná prítomnosťou alebo neprítomnosťou aeróbnych spórotvorných mikroorganizmov rodu Bacillus.

3.6. Dezinfekcia organického odpadu sa považuje za účinnú pri absencii E. coli, stafylokokov, enterokokov alebo aeróbnych spórotvorných mikroorganizmov v 10 g (cm3) vzorky, v závislosti od typu patogénov infekčných chorôb v trojnásobnej štúdii .

Kontrolu prevádzky technologických liniek na prípravu organických hnojív vykonávajú špecialisti veterinárnej služby podnikov.

Za implementáciu týchto „pravidiel“ sú zodpovední vedúci podnikov.

3.9. Štúdie vzoriek sa uskutočňujú v súlade s metódami opísanými v,.

4. časť

Skladovanie a preprava

4.1. Tekutý, polotekutý maštaľný hnoj a odtok z maštaľného hnoja sa hromadia a uskladňujú v špeciálnych skladovacích priestoroch sekcionálneho typu. Podstielkový hnoj, sušina a komposty sa upravujú a skladujú na spevnených plochách.

4.2. Kapacita skladov maštaľného hnoja je vypočítaná na základe denného množstva výťažku maštaľného hnoja a času jeho využitia.

4.3. Sklady hnoja určené na skladovanie hnoja, ktorý nie je rozdelený na frakcie, musia byť vybavené zariadeniami na jeho miešanie. Úkosy a dná hnojísk musia mať tvrdý povrch. V uzavretých skladoch hnoja by mali byť zabezpečené šachty a prívodné a odsávacie vetranie.

4.4. Preprava všetkých druhov maštaľného hnoja, odpadových vôd a produktov ich spracovania sa realizuje mobilnými dopravnými alebo stacionárnymi zariadeniami (hydromechanická doprava).

5. časť

Použitie hnoja a hnoja

5.1. Pri využívaní hnoja, maštaľného hnoja a maštaľných hnojív ako organických hnojív na poľnohospodárskej pôde by sa mala brať do úvahy ochrana životného prostredia pred znečistením a bezpečnosť pre zdravie ľudí a zvierat. Na tento účel je potrebné prijať opatrenia, ktoré vylučujú:

1. znečistenie povrchových a podzemných vôd,
2. infekcia zvierat v kontakte so závlahovou vodou, pôdou a pestovanými plodinami.

5.2. Výber miest na použitie hnoja a odpadových vôd ako organických hnojív, preskúmanie projektov zavlažovacích systémov a uvedenie týchto zariadení do prevádzky by sa malo uskutočniť za účasti zástupcov štátnej veterinárnej služby.

5.3. Pri výbere miest na používanie organických hnojív je potrebné zabezpečiť dostupnosť požadovanej poľnohospodárskej pôdy, berúc do úvahy systémy odstraňovania, spracovania a likvidácie, pásma sanitárnej ochrany a lesné plantáže.

5.4. Maštaľný hnoj a odpad z hospodárskych zvierat sa musia prepravovať, spracovávať a používať oddelene od odpadových vôd z domácností, priemyslu a zmiešaných odpadových vôd (vrátane odpadových vôd z obytných osád). Do čistiarní areálu hospodárskych zvierat je povolené vypúšťať domové odpadové vody z jednotlivých kúpeľní umiestnených v budovách hospodárskych zvierat.

5.5. Výstavba závlahových systémov by mala byť dokončená pred uvedením komplexov do prevádzky.

5.6. Používanie hnoja a odtoku v rastlinnej výrobe sa musí vykonávať spôsobom, ktorý zabráni poškodeniu alebo kontaminácii plodín a nespôsobí dlhodobé účinky vplyv na ľudí a zvieratá.

5.7. Aplikačné dávky dusíka, fosforu a draslíka sú určené ich odstránením úrodou plodiny s prihliadnutím na faktory využitia.

5.8. Pri použití postrekovačov so stredným a dlhým prúdom je potrebné vziať do úvahy rýchlosť a smer vetra.

5.9. Pri aplikácii maštaľného hnoja a maštaľných hnojív vo vegetačnom období treba dodržať obdobie medzi poslednou hnojivou závlahou a zberom alebo jeho použitím.

5.10. Umelé biologické čistenie tekutej frakcie prasačieho hnoja je povolené vo výnimočných prípadoch pri nedostatku vhodnej pôdy a vody na zavlažovanie, ako aj pri nepriaznivých klimatických, geografických a hydrogeologických podmienkach a pri prevedení do mestských kanalizačných zariadení.

„Veterinárne a hygienické predpisy pre prípravu na použitie ako organické hnojivo hnoja, podstielky a odpadových vôd v prípade infekčných a parazitárne ochorenia zvieratá a vtáky“ boli vyvinuté Všeruským výskumným ústavom veterinárnej hygieny, hygieny a ekológie a Všeruským inštitútom helmintológie pomenovaným po K.I. Skryabinovi.

Príloha 1

Metódy prípravy vzoriek organických hnojív a ich skúmanie na prítomnosť indikátorových mikroorganizmov

1. Po dekontaminácii sa vzorky podstielky, pevnej frakcie a polotekutého hnoja odoberú z rôznych úrovní skladov alebo kôp hnoja pozdĺž uhlopriečky najmenej 100 g z každého bodu do sterilnej misky. V laboratóriu sa odvážené vzorky rozomelú v porcelánovej trecej miske, pridá sa sterilný pomer 1:5 - 10. voda z vodovodu alebo fyziologickým roztokom a prefiltrujte cez dvojitú vrstvu gázy.

Vzorky hnoja a vyčistenej odpadovej vody sa odoberajú pomocou vzorkovačov do sterilných fľaštičiek (V - 500 ml), prepravujú a skladujú podľa všeobecne uznávaných metód.

Pre výskum sa filtrát vzoriek hnoja a odpadovej vody odstredí pri 3000 ot./min., odstredivka v objeme 1 ml sa pridá do tekutého skladovacieho média a následne sa prenesie zo skúmaviek, kde sa zisťuje rast, na husté selektívne médiá.

Vzorky hnoja a splaškov po dezinfekcii chemikáliami sa tiež prefiltrujú, filtrát sa odstredí, odstredivka sa premyje 2-3 krát sterilným fyziologickým roztokom alebo vodou z vodovodu. Premytá zrazenina sa resuspenduje v 1 ml sterilného fyziologického roztoku alebo vodovodnej vody, naočkuje sa do tekutých elektívnych médií, potom sa prenesie do selektívnych pevných médií na indikáciu a identifikáciu izolovaných mikroorganizmov.

2. Na indikáciu Escherichia coli sa centrifugát naočkuje do skúmaviek glukózo-peptónovým médiom obvyklého zloženia a pláva v pomere 1:5 a inkubuje sa v termostate 24 hodín pri teplote 43 °C.

Z každej skúmavky s glukózo-peptónovým médiom, kde je zaznamenaný zákal, tvorba plynu a kyseliny, sa vykoná očkovanie slučkou ťahov na povrchu Endo média v Petriho miskách, rozdelených do 3-4 sektorov. Inokulum sa odoberie tak, aby sa získali izolované kolónie. Poháre s plodinami sa umiestnia do termostatu s viečkami nadol a inkubujú sa 18 - 20 hodín pri 37 °C.

Typické kolónie Escherichia coli pestované na Endovom médiu sú okrúhle, hladké, konvexné alebo s vyvýšeným povrchom v strede, s hladkými okrajmi, ružovej, červenej alebo karmínovej farby s kovovým leskom alebo bez neho. Berú sa však do úvahy aj bezfarebné kolónie, pretože dezinfekčné prostriedky môžu ovplyvniť farbu kolónií.

Z dvoch alebo troch rôznych typov kolónií každého sektora sa pripravia nátery, zafarbia sa podľa Grama a mikroskopujú sa a tiež sa skontroluje ich oxidázová aktivita. Kolónie gramnegatívnych a oxidázovo-negatívnych baktérií sa naočkujú do polotekutého média s glukózou a inkubujú sa 4–5 hodín pri 37 °C. Fermentácia cukru s tvorbou kyseliny a plynu naznačuje prítomnosť E. coli.

3. Na indikáciu stafylokokov sa do fyziologického roztoku BCH pridá centrifugát v objeme 1 ml s 6,5 % chloridom sodným v pomere 1:5 a kultúry sa inkubujú v termostate 24-48 hodín pri 37 °C. Zo skúmaviek, v ktorých je zistený bakteriálny rast, sa uskutoční opätovné naočkovanie na Chapmanov agar v Petriho miskách a inkubácia sa uskutoční za rovnakých podmienok. Nátery sa pripravujú z charakteristických okrúhlych, vyvýšených a farebných kolónií (biele, citrónové alebo oranžové) z Chapmanovho agaru, farbené podľa Grama a mikroskopujú sa. Prítomnosť grampozitívnych kokov v náteroch, usporiadaných vo forme hroznových zhlukov, naznačuje prítomnosť stafylokokov.

4. Indikácia enterokokov (Str.faecalis) sa uskutočňuje naočkovaním centrifugátu do kvapalného alkalicko-polymyxínového média, po ktorom nasleduje opätovný výsev zo skúmaviek, v ktorých sa detegoval rast baktérií, na husté glukózovo-kvasinkové médium s TTX. Kultúry sa inkubujú pri 37 °C počas 24-48 hodín.

Z glukózo-kvasinkového média sa charakteristické malé, konvexné kolónie s červeným stredom preosejú na MPA na kontrolu biochemické vlastnosti podľa Shermanových testov (rast v MPB s pH 9,6, fyziologický roztok MPB atď.). Prítomnosť charakteristických znakov naznačuje prítomnosť enterokokov.

5. Na označenie aeróbnych mikroorganizmov tvoriacich spóry sa filtráty vzoriek zahrievajú 30 minút. vo vodnom kúpeli pri 65 °C, potom sa odstredil a zrazenina sa naočkovala do BCH a 2 platní s MPA. Plodiny sa inkubujú 24 - 48 hodín pri 37 °C. Prítomnosť kolónií na MPA a zákal BCH indikuje prítomnosť spór aeróbnych mikroorganizmov.

príloha 2

Živné médiá

1. Glukózové peptónové médium

Médium normálnej koncentrácie obsahuje:

1. peptón - 10,0 g
2. chlorid sodný - 5,0 g
3. glukóza - 5,0 g
4. destilovaná voda - 1000 ml.

Po rozpustení uvedených zložiek sa pridá indikátor (2 ml 1,6% alkoholového roztoku brómtymolovej modrej alebo 10 ml Andrade indikátora), pH sa upraví na 7,4 - 7,6 a médium sa naleje do 10 ml skúmaviek s plavákmi. sterilizované v autokláve pri 112 °C (0,5 kg/cm) počas 12 minút.

2. Streda Endo

Pripravené zo suchého prípravku podľa predpisu na etikete.

3. Polotekuté médium s indikátorom BP a glukózou

Pripravené podľa receptu na etikete. Čas použiteľnosti - nie viac ako 7 dní.

4. Príprava činidla na stanovenie oxidázovej aktivity baktérií: 30 - 40 mg a-naftolu sa rozpustí v 2,5 ml rektifikovaného etylalkohol pridajte 7,5 ml destilovanej vody a 40 - 60 mg dimetyl-p-fenyléndiamínu. Roztok sa pripraví bezprostredne pred stanovením.

5. Chapmanov agar

1. MPA - 100 ml
2. Chlorid sodný - 8,0 g
3. Manitol - 1,0 g
4. Fenolová červená - 0,0025 g.

Médium sa naleje do baniek a sterilizuje sa pri 0,5 atm. do 20 min.

6. Alkalické-polymyxínové médium sa skladá z 3 častí:

a) kvasnicový extrakt (autolyzát) - 2 ml

1. glukóza - 1,0 g
2. chlorid sodný - 0,5 g
3. vývar - 40 ml

b) sóda uhličitá - 0,53 g

1. destilovaná voda - 25 ml

c) hydrogénfosforečnan sodný - 0,25 g

1. destilovaná voda - 25 ml.

Všetky tri časti média sa sterilizujú oddelene pri 112 °C počas 12 minút. Po sterilizácii premiešame, upravíme pH na 10,0 - 12,0 a pridáme polymyxín v množstve 200 IU / ml.

7. Glukózové peptónové médium s TTX a kryštálovou violeťou

1. Kvasnicový extrakt - 2 ml
2. Glukóza - 1,0 g
3. 0,01% kryštál vodného roztoku. fialová - 1,25 ml
4. TTX - 0,01 g
5. 2 % MPA - 100 ml
6. Do hotového sterilného média sa pred naliatím pridávajú farbivá.

Dodatok 3

Druhy hnoja a spôsoby jeho dezinfekcie

Dodatok 4

Maximálna doba prežitia patogénov infekčných chorôb vo vonkajšom prostredí