Rosselchoznadzor / Przepisy prawne

Federalna Służba Nadzoru Weterynaryjnego i Fitosanitarnego

Departamenty terytorialne... TU dla Terytorium Ałtaju i Republiki Ałtaju TU dla Obwodu Amurskiego TU dla Obwodu Biełgorodskiego TU dla Obwodów Briańskiego i Smoleńskiego TU dla obwód włodzimierski TU dla obwodów woroneskiego i lipieckiego TU dla miasta Moskwy, Moskwy i obwodów Tula TU dla Terytorium Zabajkalskiego TU dla obwodu irkuckiego i Republiki Buriacji TU dla Republiki Kabardyno-Bałkarskiej i Republiki Osetii Północnej - Alania TU za Obwód Kaliningradzki TU dla regionu Kaługa TU dla Terytorium Kamczackiego i Czukockiego Okręgu Autonomicznego TU dla Obwodu Kirowskiego i Republiki Udmurckiej TU dla obwodów Kostromy i Iwanowa TU dla Terytorium Krasnodarskiego i Republiki Adygei TU dla Terytorium Krasnojarskiego TU dla Obwodu Kurgan TU dla obwodu magadańskiego TU dla obwodu murmańskiego TU dla obwodu niżnonowogrodzkiego i Republiki Mari El TU dla obwodów nowogrodzkiego i wołogdzkiego TU dla obwodu nowosybirskiego TU dla obwodu omskiego TU dla obwodu orenburgskiego TU dla obwodów Oryol i Regiony Kurska TU dla Region Permu TU dla Terytorium Primorskiego i Obwodu Sachalin TU dla Republiki Chakasji i Tywy oraz Obwodu Kemerowskiego TU dla Republiki Baszkortostanu TU dla Republiki Dagestanu TU dla Republiki Inguszetii TU dla Republiki Karelii, Obwód Archangielski. i Nenets a.o. TU dla Republiki Komi TU dla Republiki Krymu i miasta Sewastopol TU dla Republiki Mordowii i obwodu Penza TU dla Republiki Sacha (Jakucja) TU dla Republiki Tatarstanu TU dla obwodów rostowskiego, wołgogradzkiego i astrachańskiego i Republiki Kałmucji TU dla obwodów Riazań i Tambowa TU dla obwodu Samara TU dla obwodów St. Petersburga, Leningradu i Pskowa TU dla Obwód Saratowski TU wg Obwód Swierdłowska TU dla Terytorium Stawropolskiego i Republiki Karaczajo-Czerkieskiej TU dla obwodu twerskiego TU dla obwodu tomskiego TU dla obwodu tiumeńskiego, Jamalsko-Nienieckiego i Chanty-Manskiego Okręgu Autonomicznego. TU dla Terytorium Chabarowskiego i Żydowskiego Obwodu Autonomicznego TU dla Obwodu Czelabińskiego TU dla Republiki Czeczeńskiej TU dla Republiki Czuwaski i Obwodu Uljanowskiego TU dla Obwodu Jarosławskiego

W tej sekcji znajdują się aktualne wersje regulacyjnych aktów prawnych (ustaw, zarządzeń, dekretów, orzeczeń Sądu Najwyższego Federacji Rosyjskiej itp.), które interesują specjalistów z zakresu medycyny weterynaryjnej i fitosanitarnej.

Dodatkowe informacje można uzyskać zadając pytanie w dziale „Odbiór elektroniczny”.

Zasady

Przepisy weterynaryjne i sanitarne dotyczące przygotowania obornika, ściółki i ścieków do stosowania jako nawozy organiczne w leczeniu chorób zakaźnych i inwazyjnych zwierząt i drobiu

Część 1

Postanowienia ogólne

1.1. Przepisy weterynaryjne i sanitarne dotyczące przygotowania obornika, ściółki i ścieków z gospodarstw hodowlanych i drobiarskich do wykorzystania jako nawozy organiczne, zwane dalej „Przepisami”, mają na celu kontrolę projektowania, budowy i eksploatacji obiektów do przygotowania obornika , śmieci i ścieków, w celu uzyskania przyjaznych dla środowiska, bezpiecznych nawozów organicznych, które chronią środowisko przed zanieczyszczeniem patogenami chorób zakaźnych i inwazyjnych.

1.2. „Regulamin” został przygotowany w oparciu o dokumenty legislacyjne i regulacyjne:

1. Prawo Federacja Rosyjska„O medycynie weterynaryjnej” z dnia 14 maja 1993 r. N 4979-1;
2. GOST 24076-84 „Obornik. Wymagania weterynaryjne i sanitarne dotyczące przetwarzania, przechowywania, transportu i stosowania”;
3. „Normy ogólnounijne dotyczące projektowania technologicznego systemów usuwania i przygotowania obornika do wykorzystania”, ONTP 17-86, Państwowy Przemysł Rolniczy ZSRR;
4. „Republikańskie normy dotyczące projektowania technologicznego przedsiębiorstw drobiarskich”, RNTP 4-93;
5. „Instrukcja kontroli laboratoryjnej zakładów przetwórstwa w gospodarstwach hodowlanych”, 1980 (Ministerstwo Rolnictwa ZSRR);
6. „Instrukcja przeprowadzania dezynfekcji weterynaryjnej obiektów produkcji zwierzęcej”, 1989 (Gosagroprom ZSRR);
7. „Wymagania weterynaryjne, sanitarne i higieniczne dla budowy linii technologicznych do usuwania, przetwarzania, dezynfekcji i usuwania odchodów wytwarzanych w kompleksach zwierzęcych i gospodarstwach rolnych”, 1979 (Ministerstwo Rolnictwa ZSRR, Ministerstwo Zdrowia ZSRR);
8. „Zalecenia metodyczne zapobiegania zanieczyszczeniu środowiska odchodami bezściółkowymi kompleksów zwierzęcych i gospodarstw rolnych”, 1989 (Gosagroprom ZSRR i Państwowy Komitet Ochrony Przyrody ZSRR);
9. „Systemy nawadniające wykorzystujące odpady zwierzęce. VSN 33-2.2.01-85” (Ministerstwo Melioracji i Gospodarki Wodnej ZSRR);
10. „Zasady weterynaryjne i sanitarne dotyczące wykorzystania ścieków zwierzęcych do nawadniania i nawożenia pastwisk”, 1993 (Ministerstwo Rolnictwa Rosji, Departament Medycyny Weterynaryjnej);
11. TU 10-11-887-90 „Pat kompost obornikowy z grubego obornika bydło";
12. TU 64-4688624-02-91 „Wermikompost”.

1.3. Niniejsze „Zasady” mają zastosowanie do wszystkich rodzajów nawozów organicznych pozyskiwanych w istniejących, nowo budowanych i przebudowywanych gospodarstwach hodowlanych o różnej wydajności.

1.4. Dobór instalacji oczyszczania ścieków do przygotowania nawozów organicznych odbywa się na podstawie porównania techniczno-ekonomicznego różne opcje biorąc pod uwagę specjalizację i standardową wielkość przedsiębiorstwa, warunki klimatyczne, glebowe i hydrogeologiczne.

1,5. Projekty instalacji do przetwarzania, przechowywania i dezynfekcji nawozów organicznych podlegają zatwierdzeniu przez samorządy państwowego nadzoru weterynaryjnego, państwowego nadzoru sanitarno-epidemiologicznego oraz Państwowego Komitetu Ochrony Przyrody.

1.6. Przy wyborze lokalizacji pod budowę obiektów inwentarskich i ferm drobiu należy uwzględnić przeznaczenie gruntów rolnych do zbycia całej rocznej ilości nawozów organicznych lub technologie przetwórstwa zapewniające zmniejszenie ilości otrzymywanych nawozów.

1.7. Urządzenia do przygotowania obornika, ściółki i ścieków zlokalizowane są poza ogrodzeniami terytoriów gospodarstw, kompleksów i ferm drobiu, po stronie zawietrznej i poniżej obiektów ujęcia wody.

Odległość od budynków do budynków mieszkalnych i budynków inwentarskich zależy od wydajności przedsiębiorstw i jest określana zgodnie z tabelą 1.

1.8. Wszystkie konstrukcje i elementy budynków systemów przygotowania nawozów organicznych muszą być wykonane w sposób hydroizolacyjny, eliminujący filtrację gnojowicy i ścieków do warstw wodonośnych oraz przedostawanie się wód gruntowych do linii produkcyjnej.

1.9. Teren obiektów do przygotowania nawozów organicznych musi być ogrodzony, chroniony wieloletnią zielenią, zagospodarowany oraz posiadać podjazdy i drogę dojazdową o utwardzonej nawierzchni o szerokości co najmniej 3,5 m.

1.10. Przy opracowywaniu projektów budowlanych należy przewidzieć możliwość kwarantanny wszystkich rodzajów obornika i ścieków przez okres co najmniej 6 dni, niezbędną do wyjaśnienia diagnozy w przypadku podejrzenia choroby zakaźnej.

W celu kwarantanny obornika i ściółki buduje się wydzielone powierzchnie o twardej powierzchni, kwarantannę obornika bez ściółki przeprowadza się w specjalnych zbiornikach kwarantannowych obiektów przetwarzających lub w sekcjach zbiorników do przechowywania obornika.

Magazyny gnojowicy wyposażone są w urządzenia do mieszania masy, ich skarpy i dna muszą posiadać twardą powłokę, zamknięte magazyny muszą być wyposażone w włazy oraz wentylację nawiewno-wywiewną.

Podczas sztucznego biologicznego oczyszczania płynnego odchodów świńskich i ścieków z ferm drobiu w zbiornikach napowietrzających i ich późniejszego przesyłania do komunalnych oczyszczalni ścieków lub odprowadzania do zbiorników wód powierzchniowych, kwarantannę przeprowadza się z uwzględnieniem czasu ich przebywania w oczyszczalniach ścieków przedsiębiorstwa.

Jeśli w ciągu 6 dni. nie zarejestrowany choroba zakaźna zwierzęta, obornik, odchody i ścieki przetwarzane są według przyjętych technologii, oczyszczane ścieki odprowadzane do jednolitych części wód powierzchniowych zgodnie z wymogami „Przepisów i norm sanitarnych dotyczących ochrony wód powierzchniowych przed zanieczyszczeniem” (N 4630-88).

Część 2

Dezynfekcja obornika, odchodów i odpadów

2.1. W przypadku wystąpienia chorób zakaźnych zwierząt, każde przedsiębiorstwo hodowlane i ferma drobiu muszą posiadać metodę i środki techniczne umożliwiające dezynfekcję odchodów, ściółki i ścieków. Czas trwania kwarantanny w gospodarstwach znajdujących się w niekorzystnej sytuacji określają aktualne instrukcje dotyczące środków eliminujących określone choroby zakaźne, biorąc pod uwagę sposób dezynfekcji odpadów organicznych, dostępność środków dezynfekcyjnych i środki techniczne, a także rodzaj i odporność patogenu.

2.2. W przypadku wystąpienia w gospodarstwach chorób zakaźnych cała masa otrzymanych w tym okresie nawozów organicznych jest dezynfekowana przed rozdzieleniem na frakcje metodami biologicznymi, chemicznymi lub fizycznymi. Metody dezynfekcji odpadów organicznych należy projektować z uwzględnieniem ich fizyczne i chemiczne właściwości, obiecujące technologie przetwarzania i możliwość wykorzystania jako nawozy (,).

2.3. Dla kompleksów hodowli trzody chlewnej o wydajności 12 - 27 tys. sztuk rocznie wymagana jest 6-dniowa kwarantanna. oraz dezynfekcję niepodzielonego obornika z nieprzetrwalnikującej mikroflory chorobotwórczej poprzez długoterminową dezynfekcję przez 12 miesięcy. starzenie w sekcyjnych zbiornikach magazynujących, fermentacja beztlenowa w zakładach bioenergetycznych lub chemikalia w kwarantannie lub specjalnie zaprojektowanych pojemnikach.

Biologiczna metoda odrobaczania polega również na przechowywaniu półpłynnego i płynnego odchodów świńskich w otwartych magazynach przez okres 12 miesięcy.

Odrobaczenie frakcji płynnej obornika świńskiego przeprowadza się poprzez pozostawienie go do osadzenia na 6 dni. w sekcyjnych stawach retencyjnych wyposażonych w urządzenia zapobiegające przedostawaniu się osadów dennych do systemu nawadniającego oraz urządzenia zapewniające okresowy wyładunek osadów przed ich ponownym uzupełnieniem frakcją płynną.

2.4. Fermentacja beztlenowa płynnego obornika świńskiego prowadzona jest w jednostkach bioenergii (BEU). Stosowanie zestawów urządzeń do fermentacji beztlenowej jest możliwe w istniejących gospodarstwach i kompleksach bez znaczących zmian w liniach technologicznych usuwania odchodów.

2.4.1. Gnojówka musi być najpierw oczyszczona z ciał obcych, mieć wilgotność 90 - 96%, stosunek C:N 10 - 18:1 i zawartość popiołu nie większą niż 20% (brak azotu ogranicza proces metanu fermentacja).

2.4.2. Przechowywanie obornika pierwotnego przed fermentacją nie powinno przekraczać 24 – 48 godzin.

2.4.3. Obornik z gospodarstwa trafia do odbiornika obornika wyposażonego w pompę z urządzeniem rozdrabniająco-mieszającym zapewniającym homogenizację masy dla podgrzewacza (specjalny zbiornik retencyjny, sekcja reaktora mikrobiologicznego). Zbiorniki odbiorcze obornika muszą zapewniać gromadzenie objętości z gospodarstwa na co najmniej 2 dni.

2.4.4. W podgrzewaczu obornik doprowadza się do wymaganej temperatury fermentacji, miesza i porcjami wprowadza do komory fermentacyjnej. Objętość podgrzewacza musi odpowiadać dziennej wydajności obornika z gospodarstwa.

2.4.5. Mikrobiologiczny proces fermentacji beztlenowej przebiega według tej samej zasady dla wszystkich rodzajów obornika i wszystkich typów konstrukcji komór fermentacyjnych. Aby proces fermentacji beztlenowej mógł zachodzić, ilość lotnych kwasów tłuszczowych w masie fermentacyjnej musi mieścić się w przedziale 600 - 2000 mg/l. Składniki odżywcze wraz z nowymi porcjami gnojowicy muszą codziennie trafiać do komory fermentacyjnej.

2.4.6. Proces metanogenezy zachodzi w temperaturze przetwarzanej masy 16 - 60°C. Wybór reżim temperaturowy Fermentacja beztlenowa odpadów organicznych podyktowana jest wymaganiami jakościowymi produktów końcowych, tj. stopień oczyszczenia gnojowicy, dezynfekcja, odrobaczenie, zawartość metanu w biogazie, czynniki klimatyczne i ekonomiczne.

2.4.7. Wydajność reaktora mikrobiologicznego uzależniona jest od dziennej objętości otrzymywanego obornika, wybranego reżimu temperaturowego, dzienna dawka obciążenie, czas trwania fermentacji i stopień rozkładu materii organicznej.

2.4.8. Mechaniczne, hydrauliczne i powietrzne (biogazowe) systemy mieszania masy przefermentowanej w bioreaktorze zapewniają jednakową (jedną) temperaturę przetwarzanego substratu w całej objętości komory fermentacyjnej, niszczenie skorup powierzchniowych i łagodny reżim fermentacji. Proces fermentacji beztlenowej w komorze fermentacyjnej prowadzony jest przy nadciśnieniu dochodzącym do 200 – 400 mm słupa wody (0,2 – 0,4 kPa).

2.4.9. Liczba komór fermentacyjnych musi wynosić co najmniej dwa, zapewniając optymalne warunki fermentacji beztlenowej i umożliwiając przejście pracy bioreaktorów z pracy przepływowej na cykliczną w przypadku wybuchu chorób zakaźnych.

2.4.10. Biorąc pod uwagę możliwość przedostawania się nieoczyszczonego obornika do stref uwolnienia przefermentowanej masy, istniejące technologie przepływowe wykorzystujące dwie komory fermentacyjne powinny zapewniać przetrzymywanie przefermentowanego obornika w obiektach przetwarzających przez co najmniej 3 dni. w osadnikach lub kontenerach. Jeżeli w układzie działają trzy lub więcej fermentory fermentacyjne, zapewniona jest sześciodniowa kwarantanna przetworzonej masy i nie są wymagane dodatkowe pojemniki na pofermentowany obornik.

W przypadku chorób zakaźnych fermentację beztlenową gnojowicy przeprowadza się w trybie termofilnym (53 - 56°C), przy czym obornik przetrzymuje się w komorach fermentacyjnych przez co najmniej 3 dni. bez dodawania świeżych porcji nieprzetworzonej masy.

Kiedy zanieczyszczony przefermentowany nawóz dostanie się do zbiorników magazynowych, dezynfekcję osiąga się poprzez przetrzymywanie przefermentowanej masy w otwartym obiekcie do przechowywania nawozu przez 6 miesięcy.

2.4.11. Wprowadzenie „startera” mikrobiologicznego z kultur termofilnych do komory fermentacyjnej o godz tryb optymalny Fermentacja termofilna pozwala skrócić czas dezynfekcji mikroflory asporogennej do 1 dnia:

1. temperatura procesu - 52 - 54 ° C,- wilgotność masa przetworzona – 92 – 96%,
2. stężenie jonów hydroksylowych, pH, - 7,0 - 8,0,
3. liczba termofilów – 0,6 – 1,0 mln/ml,
4. dzienna dawka nasycająca – 10 – 20%,
5. częstotliwość pobierania - 1 raz dziennie,
6. liczba mieszań masy w fermentorze wynosi 3 razy dziennie,
7. czas trwania każdego mieszania wynosi 15 - 20 minut,
8. ciśnienie w fermentorze wynosi 0,2 - 0,4 kPa.

2.5. Z metody biologiczne Metoda stabilizacji tlenowej (intensywne utlenianie) poprzez podgrzanie masy do temperatury 60°C i wystawienie jej na 4 dni jest również skuteczna w dezynfekcji gnojowicy. Jednocześnie osiąga się dezodoryzację gnojowicy.

Dodatek inokulum mikroorganizmów termofilnych w ilości 1 mln/g masy poddanej zabiegowi pozwala na skrócenie czasu dezynfekcji do 2 dni.

2.6. Do wdrożenia metoda chemiczna dezynfekcja gnojowicy z hodowli trzody chlewnej, konstrukcje do jej przygotowania do użycia muszą dodatkowo zawierać specjalne pojemniki, pompy do pompowania i okresowej homogenizacji.

2.6.1. Podczas dezynfekcji gnojowicy formaliną objętość pojemnika dla różnych standardowych wielkości przedsiębiorstw należy obliczyć na podstawie warunków dezynfekcji odpadów organicznych, tylko w ciepłym sezonie. Do zarobionego obornika wprowadza się formalinę w ilości 0,3% (wg DV), masę miesza się przez 6 h i przechowuje przez 72 h. Zdezynfekowany obornik można skierować do zakładów separacji i wykorzystać na gruntach rolnych, z uwzględnieniem wymagania dotyczące jego dezynsekcji, ponieważ formalina nie zapewnia śmierci patogenów robaczycy w odchodach.

2.6.2. Dezynfekcję gnojowicy z patogenów chorób zakaźnych i inwazyjnych bezwodnym amoniakiem można przeprowadzać o każdej porze roku, gdyż po jego wprowadzeniu temperatura uzdatnionej masy wzrasta do 20 - 25°C. Amoniak transportowany jest cysternami MZHA-6, ZBA-3.2 pod ciśnieniem w zbiornikach o ciśnieniu 6 atm, podawany do obornika poprzez specjalne dozowniki lub rurą zakończoną perforowaną igłą (konstrukcja NIPTIZH), opuszczany na dno zbiornika za pomocą przetworzona masa. Wstrzyknięcie igłą wykonuje się w odległości 1 - 2 m od ścianek pojemnika i od siebie. Podczas podawania masę miesza się. Oczyszczony obornik pokryty jest emulsyjnymi foliami dezynfekującymi (lysol sanitarny marki „Dezonol”, aldehyd masłowy itp.). Do zaprawianego podłoża wprowadza się amoniak w ilości 2 - 3%, emulsje dezynfekcyjne 0,1 - 0,3% i obornik przechowuje się przez 3 - 5 dni.

Zdezynfekowane odpady organiczne wywożone są na pola transportem mobilnym, zaleca się aplikowanie metodą głęboką lub pod pługiem.

Gnojowica traktowana formaldehydem nie ustępuje obornikowi nietraktowanemu pod względem wpływu na rośliny uprawne, natomiast gnojowica traktowana bezwodnym amoniakiem zwiększa plony o 15 - 20%.

2.6.3. W kompleksach hodowli trzody chlewnej o pojemności 54 - 216 tys. sztuk, które posiadają dwustopniową oczyszczalnię biochemiczną oraz stawy biologiczne w ramach oczyszczalni, zapewniające głębokie oczyszczanie ścieków z substancji organicznych (BZT5 - 12 - 16 mg O2/l, ChZT - 40 - 100 mg/l, substancje zawieszone - 20 - 25 mg/l, tlen rozpuszczony - 6 - 10 mg/l), w porozumieniu z lokalnymi organami państwowego nadzoru weterynaryjnego i państwowego nadzoru sanitarno-epidemiologicznego, dezynfekcja ścieków oczyszczonych metodą chlorowanie jest dopuszczalne w okresach epidemii chorób zakaźnych, przy zawartości chloru resztkowego co najmniej 1,5 mg/l po 30 min. kontakt lub ozonowanie z resztkowym ozonem 0,3 - 0,5 mg/l po 60 minutach. kontakt z dokładnym wymieszaniem oczyszczonych ścieków.

Dawki wprowadzanego chloru i ozonu dobierane są każdorazowo indywidualnie. Biorąc pod uwagę fakt, że ozon łatwo i szybko rozkłada się na tlen, eliminuje się problem toksyczności jego pozostałości. Ozon można uzyskać zawsze w obecności tlenu i prądu, nie ma więc potrzeby jego magazynowania. Ta metoda oczyszczania ścieków jest bardzo obiecująca, wymaga jednak szczególnego rozwoju technologii dezynfekcji. różne rodzaje ozonatory.

Osad surowy z osadników i osad nadmierny czynny można dezynfekować bezwodnym amoniakiem lub fermentacją beztlenową w zakładach bioenergetycznych.

2.7. Dezynfekcja nieoczyszczonych ścieków obornikowych odbywa się poprzez poddanie ich działaniu promieniowania gamma Co-60 pochodzącego z wegetatywnej mikroflory chorobotwórczej w dawkach 2 - 12 kGy, patogenów gruźlicy - 13 kGy, patogenów przetrwalnikujących - 20 kGy.

Po oczyszczeniu odpadów organicznych do parametrów: zawiesina – 90 – 110 mg/l, BZT5 – 115 – 130 mg/l, utlenialność – 55 mg/l – dawka promieniowania jonizującego potrzebna do inaktywacji mikroflory nieprzetrwalnikowej wynosi zmniejszona do 2 - 10 kGy, patogeny gruźlicy - 11 kGy, zarodniki mikroorganizmów - 17 kGy. Przy leczeniu pozbawionego ściółki odchodów świńskich i drenów odchodowych promieniowaniem jonizującym (Co-60, CS-137) następuje całkowita śmierć jaj glisty od dawki 1,3 kGy, trichocephalus – 0,5 kGy, przełyk – 0,3 kGy, oocysty eimeria – 2 , 5 kGy. Radioodporność jaj robaków i oocyst eimerii zmniejsza się wraz z dodatkiem nawozów mineralnych i barbotowaniem masy w czasie napromieniania.

Zastosowanie do oczyszczania ścieków adsorbentów z węglem aktywnym AG-3 oraz węgla aktywnego z osadami ściekowymi poddanymi obróbce termicznej (150 - 170°C), koagulowanymi siarczanem amonu (25 mg/l w stosunku 1,0 - 2,3:1) przy nadtlenek wodoru dodawany jest do ścieków w dawce 0,6 - 0,8 mg/l przy stałym naświetlaniu kolumny adsorpcyjnej wymienionymi adsorbentami promieniami gamma, Co-60 pozwala na dezynfekcję oczyszczonych ścieków w strumieniu z mocą dawki promieniowania 25 rad/s.

Wybór źródła promieniowania jest każdorazowo zależny od warunków procesu, wymaganej wydajności i niezawodności działania. Ochrona źródeł promieniowania powinna zapewnić brak promieniotwórczości w przetwarzanych ściekach i wzrost tła promieniotwórczego środowiska (NRB-96, OSP-87 Gosatomnadzor).

2.8. Przeróbka gnojowicy o wilgotności 95 - 97%, która przeszła przez rozdrabniacz w wirującym polu elektromagnetycznym w urządzeniach z warstwą wirową ABC-150 (którego induktor zasilany jest prądem przemiennym o napięciu 380 V i mocy częstotliwość 50 Hz, pobór mocy 1,6 kW) cząstkami ferromagnetycznymi (d - 1 - 2 mm, l - 5 - 20 mm) w komorze roboczej o masie 400 - 700 g zapewnia ich dezynfekcję z wegetatywnej mikroflory chorobotwórczej w ciągu 60 s, a gdy masa cząstek ferromagnetycznych wzrasta do 800 g, dezynfekcja następuje w ciągu 30 s. Zastosowanie w linii produkcyjnej kilku urządzeń ABC umożliwia dezynfekcję ścieków odchodowych w strumieniu.

2.9. Dezynfekcja ścieków metodą jednobiegunowej aktywacji w komorze anodowej elektrolizera membranowego wymaga głębokiego oczyszczenia do parametrów: zawiesina 3 - 5 mg/l, Bpk5 - 1 - 3 mg/l, ChZT 26 - 32 mg/l, sól amonowa azot - 1,5 - 2,0 mg/l, twardość całkowita - 5,0 - 7,7 mg/l, chlorki - 270 - 300 mg/l. Dezynfekcję ścieków osiąga się dzięki powstaniu na anodzie wolnego aktywnego chloru o jego zawartości w ściekach 17,5 - 21,5 mg/l, podniesieniu pH roztworu do 10 lub więcej oraz innym czynnikom, które nie zostały jeszcze w pełni zbadane , przy natężeniu prądu 3 - 5 A, napięciu 32 - 37 V i gęstości prądu na elektrodach - 200 A/m2. m. Czas kontaktu ścieków, które przeszły przez strefę anodową elektrolizera membranowego, wynosi 10 minut, dla ścieków mieszanych katoda-anoda - co najmniej 30 minut. a następnie przytrzymać do momentu zniknięcia chloru ze ścieków.

2.10. Oczyszczanie oczyszczonego obornika w urządzeniach do mikrofiltracji membranowej na pustych włóknach o średnicy porów mniejszej niż 0,2 mikrona pod ciśnieniem cieczy 1 - 1,2 atm. towarzyszy spadek mikroflory saprofitycznej i wskaźnikowej o 97,1 - 99,4%, jednak nie następuje całkowita sanitacja z wegetatywnej mikroflory chorobotwórczej, dlatego w przypadku wybuchu chorób zakaźnych, innych chemicznych lub metody fizyczne dezynfekcja, biorąc pod uwagę znaczne zmniejszenie mikroflory w filtracie ścieków i tysiąckrotny wzrost frakcji skondensowanej.

2.11. Przy przetwarzaniu ścieków z hodowli trzody chlewnej w hodowlanych stawach biologicznych i wykorzystaniu ich do nawadniania, dezynfekcję z asporogennej mikroflory chorobotwórczej w okresach epizootii zapewnia długotrwałe (12 miesięcy) magazynowanie ścieków niefrakcjonowanych w osadnikach lub sekcjach magazynów odchodów .

System biologicznych stawów hodowlanych zapewnia dezynfekcję oczyszczonych ścieków, ale biologicznych obróbka cieplna projekt. Technologia ta wymaga okresowego (przynajmniej raz w sezonie) wyładunku osadów mułowych z odcinków stawów (glonów i skorupiaków) i aplikowania ich pod orkę pod uprawy poddawane zakiszeniu lub obróbce cieplnej.

2.12. Dezynfekcja gnojowicy, drenażu obornika, frakcji płynnej i osadów z osadników w przypadku ich skażenia wegetatywną i zarodnikotwórczą mikroflorą chorobotwórczą, patogenami chorób inwazyjnych należy prowadzić termicznie w instalacjach z urządzenia odrzutowe w temperaturze 130°C, pod ciśnieniem 0,2 MPa i poddana działaniu przez co najmniej 10 minut. (montaż konstrukcji VNIIVViM).

2.13. W przypadku hodowli bydła dowolnej wielkości zaleca się stosowanie biologicznej metody dezynfekcji poprzez przechowywanie obornika w sekcyjnych zbiornikach magazynowych, w których jest on poddawany kwarantannie. Przy stosowaniu biologicznej metody dezynfekcji obornika o dowolnej zawartości wilgoci nie jest wymagana budowa dodatkowych konstrukcji i zakup sprzętu, gdyż w gospodarstwie stosuje się sekcyjne magazyny, przeznaczone do tymczasowego przechowywania obornika lub jego frakcji przez okres do 6 miesiące. w okresie nie wegetacyjnym.

W przypadku chorób zakaźnych obornik zanieczyszczony patogenami może zająć dwie części obiektu magazynowego, a reszta (co najmniej dwie) zapewni ciągłość procesu produkcyjnego. W tym przypadku okres przydatności do spożycia zdrowego obornika zostaje skrócony o połowę. Po upływie okresu starzenia obornik zanieczyszczony czynnikami zakaźnymi wykorzystuje się go jako nawóz organiczny, stosując przyjętą technologię.

2.14. Obornik ściółkowy o wilgotności do 70% dezynfekujemy metodą biotermiczną poprzez ułożenie go luzem w pryzmach o wymiarach: wysokość do 2,5 m, szerokość u nasady do 3,5 m i długość dowolnej wielkości.

Na betonowym placu stos układa się na materiałach pochłaniających wilgoć (torf, posiekana słoma, trociny, zdezynfekowany obornik itp.) W warstwie 35–40 cm i przykrywa nimi powierzchnie boczne warstwa 15 - 20 cm.

Przy dezynfekcji frakcji stałej gnojowicy metodą biotermiczną parametrami ograniczającymi zapewniającymi aktywne procesy są: wilgotność masowa do 80%, wysokość stosu do 3 m, szerokość u nasady do 5 m.

Wydostająca się z pryzmy ciecz wraz z opadami zbierana jest i kierowana do kolektora cieczy w celu chemicznej dezynfekcji.

Za początek okresu dezynfekcji obornika i frakcji stałej gnojowicy uważa się dzień, w którym temperatura w środkowej jednej trzeciej pryzmy na głębokości 1,5–2,5 m wzrasta do 50–60°C. Czas utrzymywania pali w sezonie ciepłym wynosi 2 miesiące, w sezonie zimnym - 3 miesiące.

Odrobaczenie frakcji stałej, kompostu i obornika o wilgotności do 70% zapewnia się metodą biotermiczną, przy składowaniu w pryzmach w okresie wiosenno-letnim co najmniej 1 miesiąc, w okresie jesienno-zimowym przez co najmniej 2 miesiące, a przy wilgotności 75% - w okresie ciepłym przez co najmniej 2 miesiące. a przy zimnej pogodzie - co najmniej 6 miesięcy.

2.15. Obornik ściółkowy od dużych i małych przeżuwaczy, ferm futerkowych i drobiu o wilgotności powyżej 70% poddawany jest kwarantannie, a w przypadku ognisk chorób zakaźnych dezynfekowany poprzez długotrwałe składowanie w sekcjach magazynów odchodów lub rowach ziemnych z warstwa hydroizolacyjna, które są wypełniane jeden po drugim. Sekcje magazynów odchodów i rowy wypełnione obornikiem zanieczyszczonym patogenami wegetatywnymi przykrywa się materiałami pochłaniającymi wilgoć warstwą 15 - 20 cm i przechowuje przez 12 miesięcy, w przypadku skażenia odchodów czynnikiem wywołującym gruźlicę ptaków - 18 miesięcy .

Odrobaczanie stałego odchodu świńskiego zawierającego ściółkę zgromadzonego wokół małych (rodzinnych) gospodarstw wymaga przechowywania przez okres dłuższy niż rok. Aby przyspieszyć niszczenie patogenów robaczycy - glistnicy, trichocefalozy, hemenolipidozy - wymagane jest mechaniczne wymieszanie masy jesienno-zimowego okresu akumulacji i trzymanie jej na stanowiskach przez 5 - 6 miesięcy.

2.16. Obornik półpłynny bezściołowy i ściółkę o wilgotności 85 - 92% można dezynfekować przygotowując komposty z sorbentami organicznymi (posiekana słoma, torf, trociny, kora, lignina) i układając je w pryzmy (pkt 2.14).

Aby zapewnić wymaganą wilgotność kompostowanej masy, składniki należy wymieszać w odpowiednich proporcjach, uwzględniając ich wilgotność.

Aby przygotować kompost na bazie obornika zwierząt hodowlanych, wilgotność składników nie powinna być większa niż: obornik – 92%, torf – 60%, sapropel – 50%, odpady drzewne – 40 – 50%, słoma – 24%.

Aby przygotować kompost na bazie odchodów kurzych, wilgotność składników jest następująca: odchody - 64 - 82%, torf - 50 - 60%, słoma - 14 - 16%, trociny - 16 - 25%, kora drzew - 50 – 60%, lignina – 60%, gleby próchniczne – 20 – 30%, kompost – 65 – 70%.

Aby procesy biotermiczne w kompostach mogły aktywnie i efektywnie zachodzić, muszą być spełnione w równym stopniu każdy z poniższych warunków:

1. optymalna wilgotność masy kompostowej wynosi 65 - 70%, - proporcja składników nie mniejsza niż 1:1,
2. wysoka jednorodność mieszanki,
3. optymalna reakcja środowiska, pH, - 6,5 - 7,7,
4. wystarczające napowietrzenie masy podczas procesu kompostowania, tj. luźne układanie pali,
5. dodatni bilans cieplny, optymalny Stosunek C-N(węgiel do azotu) 20 - 30:1.

Gdy temperatura masy wzrośnie do 50 - 60°C we wszystkich warstwach pala w ciągu pierwszych 10 dni. Komposty po przechowywaniu przechowuje się przez 2 miesiące. latem i 3 miesiące. V okresy zimowe lat i następnie użytkować zgodnie z przyjętą technologią.

Aby zapobiec rozprzestrzenianiu się patogenów chorób zakaźnych, stosy nie są ponownie układane.

Gdy obornik jest zanieczyszczony szczególnie niebezpiecznymi patogenami przetrwalnikowymi, nie przygotowuje się kompostów. Obornik i osady z osadników spalane są. Gnojówki półpłynne, gnojowice i ścieki poddawane są dezynfekcji termicznej w jednostkach parowych zaprojektowanych przez VNIIVVIM.

Gnojowicę uwolnioną z kompostów kieruje się i dezynfekuje chemicznymi środkami dezynfekcyjnymi w sposób analogiczny jak w pkt. 2.6.

2.17. Przy przyspieszonym kompostowaniu odchodów drobiowych i zwierzęcych przy użyciu sorbentów organicznych (wilgotność masy nie przekracza 75%) w instalacjach o różnej konstrukcji (bioreaktorach) wykorzystujących systemy aktywnej wentylacji powietrzem, dezynfekcja wegetatywnej mikroflory chorobotwórczej osiągana jest poprzez podwyższenie temperatury kompost do 60 – 70°C w ciągu 24 – 48 godzin, a następnie obróbkę przez 10 – 14 dni. Dodanie do kompostu inokulum mikroorganizmów termofilnych skraca czas dezynfekcji do 4 - 7 dni.

2.18. Technologie przygotowania wermikompostów na bazie odchodów zwierząt hodowlanych i ściółki drobiowej realizowane są poprzez hodowlę robaka kalifornijskiego i innych podgatunków w przygotowanym kompoście dżdżownica(E.foetida). Podłoża do wermikompostowania (frakcja stała odpadów obornikowych z hodowli trzody chlewnej, obornik ściółkowy, odchody kurczaków itp.) przygotowywane są metodą obróbki biotermicznej, a następnie wykorzystywane zgodnie z przyjętą technologią.

Wermikompostowanie prowadzi się w warsztatach wyposażonych w zestaw urządzeń technologicznych zapewniających optymalne parametry środowiskowe (temperatura 20°C +/- 2,5, wilgotność masy kompostowej - nie więcej niż 70%, pH - 7,0 +/- 0,5) dla wermikultury matecznej . Do kompostu dodaje się kulturę mateczną w ilości 30 - 50 kopii na 1 kg podłoża, wilgotność utrzymuje się na poziomie nie większym niż 70%.

Warsztat i miejsca do wermikompostowania znajdują się za wiatrem od sektora produkcyjnego, w odległości co najmniej 60 m.

Wermikompost (wermikompost) jest gotowy do użycia po 4 - 5 miesiącach. po posadzeniu w podłożu kultury czerwonego robaka kalifornijskiego.

Biomasa robaków oddzielana jest od podłoża i stosowana jako dodatek białkowy w paszach dla zwierząt, z uwzględnieniem wymagań GOST 17536-82 „Mąka paszowa pochodzenia zwierzęcego TU”.

Magazyn odbiorczy produkt końcowy(wermikompost, biomasa robaków) są oddzielone ścianą od urządzeń technologicznych warsztatu, a w obszarach komunikacyjnych zainstalowano maty dezynfekcyjne, aby zapobiec wtórnemu zanieczyszczeniu powstałych produktów oportunistyczną mikroflorą.

2.19. W przypadku chowu małego bydła na podłogach rusztowych z gromadzeniem się w kanałach podziemnych bezściółkowego obornika o wilgotności 89 - 93%, panuje w nim temperatura zbliżona do temperatury otoczenia i nie zachodzą tam żadne procesy biotermiczne, dlatego też w w przypadku wybuchu chorób zakaźnych należy je zdezynfekować poprzez długotrwałe przebywanie w przydomowych zbiornikach do przechowywania obornika lub przygotowanie kompostów z materiałów pochłaniających wilgoć (pkt 2.14).

Podczas utrzymywania dużych i małych przeżuwaczy na podłogach rusztowych z dodatkiem słomy oraz zbierania obornika ściółkowego w podziemnych magazynach nawozu temperatura obornika o wilgotności 65 - 70% wzrasta do 50 - 55°C, a mikroflora wskaźnikowa w ilościach poniżej 1,0 uwalnia się dopiero z górnej warstwy na głębokość 50 cm, dlatego w celu dezynfekcji obornika pochodzącego z podziemnych magazynów, skażonego wegetatywną mikroflorą chorobotwórczą, po usunięciu zwierząt należy go przykryć materiałami pochłaniającymi wilgoć warstwą 20 - 30 cm i pozostawić na co najmniej 1 miesiąc. latem i 2 miesiące. - w zimę. Jeżeli wilgotność obornika jest większa, gnojowicę usuwa się z magazynu i dezynfekuje środkami chemicznymi, a pozostały gęsty obornik przechowuje się przez 10 – 12 miesięcy.

Odrobaczanie odchodów półpłynnych dużych i małych przeżuwaczy w podziemnych magazynach odchodów uzyskuje się poprzez przetrzymywanie ich przez okres 5 miesięcy.

2.20. Podczas hodowli młodego bydła, drobnego bydła i drobiu, w procesie akumulacji nie dezynfekuje się głębokiej, trwałej ściółki, ponieważ temperatura w niej nie wzrasta powyżej temperatury otoczenia i nie zachodzą procesy biotermiczne.

W przypadku chorób zakaźnych zwierząt i drobiu, głęboką ściółkę zanieczyszczoną patogenami, po spulchnieniu wierzchniej warstwy, składuje się w pryzmach o przyjętej wielkości do obróbki biotermicznej na przygotowanych miejscach. W takich stosach aktywne procesy biotermiczne obserwuje się już po 48 godzinach, jednak nie są one jednolite nawet w jednej warstwie, dlatego też utrzymują się przez co najmniej 2 miesiące. latem i 3 miesiące. w zimę.

2.21. Nawozy organiczne otrzymywane w wyniku przerobu obornika, frakcji stałej płynnego odchodów zwierzęcych i odchodów kurzych przy użyciu koprofagów z wykorzystaniem technologii opracowanych przez Nowosybirski Uniwersytet Rolniczy, VIZH, NIIEM, pozostają zanieczyszczone oportunistyczną mikroflorą zawartą w przetwarzanych substratach. Ta technologia przetwarzania odpadów organicznych (T - 33°C) nie zapewnia dezynfekcji i dezynsekcji przetwarzanej masy, wymagana jest dodatkowa obróbka cieplna. Podczas termicznego suszenia produktów wtórnych w temperaturze powyżej 138 °C i czasie ekspozycji 10 minut. patogeny infekcji robakami pasożytniczymi i wegetatywna mikroflora patogenna są inaktywowane.

W przypadku stosowania larw koprofagicznych jako paszy białkowej dla zwierząt, musi ona być zgodna z GOST 17536-82 („Mąka spożywcza pochodzenia zwierzęcego, TU”).

2.22. Obróbka obornika w dużych fermach drobiu poprzez suszenie go w bębnowych suszarniach obornika z bezpośrednim i przeciwprądowym przepływem surowców i chłodziwa zapewnia jego dezynfekcję z patogennych bakterii, wirusów i robaków pasożytniczych. Dezynfekcję obornika w instalacjach z przepływem bezpośrednim osiąga się przy temperaturze gazów wejściowych 800 - 1000 °C, gazów wylotowych 120 - 140 °C i czasie ekspozycji co najmniej 30 minut. W instalacjach przeciwprądowych (USPP-1) dezynfekcja przetworzonej masy jest zapewniona w temperaturze gazów wejściowych 600 - 700°C, w bębnie 220 - 240°C i gazów wylotowych 100 - 110°C przy ekspozycji 50 - 60 minut. Wilgotność wysuszonej ściółki nie powinna przekraczać 10 - 12%, a całkowite zanieczyszczenie mikrobiologiczne nie powinno przekraczać 20 tys. komórek drobnoustrojów na 1 g.

Część 3

Kontrola dezynfekcji nawozów organicznych

3.1. Pobieranie próbek nawozów organicznych do kontroli bakteriologicznej przeprowadza się po upływie okresów narażenia, stosując różne metody dezynfekcji opisane powyżej w odpowiednich sekcjach.

3.2. Laboratoryjny monitoring skuteczności dezynfekcji nawozów organicznych uzyskanych w kompleksach i gospodarstwach w okresach ognisk chorób zakaźnych zwierząt i drobiu prowadzony jest z wykorzystaniem metod mikrobiologicznych przeżywalności mikroorganizmów wskaźnikowych (sanitarnych): bakterii z grupy E. coli, gronkowce i zarodniki rodzaju Bacillus zgodnie z „Instrukcją kontroli laboratoryjnej obiektów leczniczych w gospodarstwach hodowlanych”, M., 1980 i „Instrukcją weterynaryjnej dezynfekcji obiektów inwentarskich”, M., 1989.

3.3. Podczas fermentacji beztlenowej gnojowicy i ściółki kontrola dezynfekcji prowadzona jest w oparciu o przeżywalność coli i enterokoki.

3.4. W przypadku skażenia nawozów organicznych patogenami gruźlicy jakość ich dezynfekcji jest kontrolowana przez przeżycie gronkowców i enterokoków, ponieważ mikrobakterie saprofityczne nie tylko zachowują żywotność dłużej niż gatunki patogenne, ale także rozmnażają się podczas długotrwałego przechowywania odpadów organicznych .

3.5. Jakość dezynfekcji w przypadku zanieczyszczenia odpadów organicznych patogenami przetrwalnikującymi wąglika, karbunkula rozedmowego, zapalenia bradsitis, obrzęku złośliwego, a także patogenami egzotycznych infekcji jest kontrolowana przez obecność lub brak tlenowych mikroorganizmów przetrwalnikujących z rodzaju Bacillus.

3.6. Dezynfekcję odpadów organicznych uznano za skuteczną w przypadku braku 10 g (cm sześciennych) próbki E. coli, gronkowców, enterokoków lub tlenowych mikroorganizmów tworzących przetrwalniki, w zależności od rodzaju patogenów chorób zakaźnych, w trzykrotnym badaniu .

Kontrolę pracy linii technologicznych do przygotowania nawozów organicznych sprawują specjaliści ze służby weterynaryjnej przedsiębiorstw.

Odpowiedzialność za wdrożenie niniejszych „Zasad” spoczywa na kierownikach przedsiębiorstw.

3.9. Badania próbek przeprowadza się zgodnie z metodami opisanymi w.

Część 4

Przechowywanie i transport

4.1. Oborniki płynne, półpłynne i odpady obornikowe gromadzone są i składowane w specjalnych sekcyjnych magazynach obornika. Obornik, frakcja stała gnojowicy i komposty są przetwarzane i składowane na terenach o twardych powierzchniach.

4.2. Pojemność magazynów obornika obliczana jest na podstawie dziennej ilości wywożonego obornika oraz czasu jego wykorzystania.

4.3. Magazyny obornika przeznaczone do przechowywania obornika nierozdzielonego muszą być wyposażone w urządzenia umożliwiające jego mieszanie. Zbocza i dna obiektów do przechowywania obornika muszą mieć twardą powierzchnię. Zamknięte pomieszczenia do przechowywania obornika muszą posiadać włazy oraz wentylację nawiewno-wywiewną.

4.4. Transport wszelkiego rodzaju obornika, ścieków i produktów ich przetworzenia odbywa się transportem mobilnym lub urządzeniami stacjonarnymi (transport hydromechaniczny).

Część 5

Stosowanie obornika i gnojowicy

5.1. Wykorzystanie obornika, ściółki i odpadów zwierzęcych jako nawozów organicznych na gruntach rolnych powinno odbywać się z uwzględnieniem ochrony środowiska przed zanieczyszczeniami oraz bezpieczeństwa zdrowia ludzi i zwierząt. Aby to zrobić, konieczne jest zapewnienie środków wykluczających:

1. zanieczyszczenie wód powierzchniowych i gruntowych,
2. zarażenie zwierząt poprzez kontakt z wodą do nawadniania, glebą i uprawami.

5.2. Wybór miejsc wykorzystania obornika i ścieków jako nawozów organicznych, rozpatrzenie projektów systemów nawadniających i przyjęcie tych obiektów do eksploatacji powinno odbywać się przy udziale przedstawicieli państwowej służby weterynaryjnej.

5.3. Przy wyborze miejsc stosowania nawozów organicznych należy uwzględnić dostępność wymaganych powierzchni użytków rolnych, biorąc pod uwagę systemy usuwania, oczyszczania i unieszkodliwiania, strefy ochrony sanitarnej oraz plantacje leśne.

5.4. Obornik i odpady zwierzęce należy transportować, oczyszczać i wykorzystywać oddzielnie od ścieków bytowych, przemysłowych i mieszanych (w tym z osiedli mieszkaniowych). Dopuszcza się odprowadzanie ścieków bytowych z poszczególnych łazienek znajdujących się w pomieszczeniach inwentarskich do oczyszczalni kompleksu inwentarskiego.

5.5. Przed oddaniem kompleksów do użytku musi zostać ukończona budowa systemów nawadniających.

5.6. Wykorzystanie obornika i odpadów w produkcji roślinnej musi odbywać się bez uszkadzania lub zanieczyszczania upraw oraz bez powodowania długotrwałych skutków dla ludzi i zwierząt.

5.7. Dawki azotu, fosforu i potasu ustala się na podstawie ich pobrania w okresie zbiorów, biorąc pod uwagę stopień wykorzystania.

5.8. Stosując zraszacze średniostrumieniowe i długostrumieniowe należy uwzględnić prędkość i kierunek wiatru.

5.9. Przy stosowaniu obornika i odpadów zwierzęcych w sezonie wegetacyjnym należy uwzględnić okres pomiędzy ostatnim nawadnianiem nawozowym a zbiorem lub jego wykorzystaniem.

5.10. Sztuczne biologiczne oczyszczanie frakcji płynnej obornika pochodzącego z gospodarstw zajmujących się hodowlą trzody chlewnej jest dopuszczalne w wyjątkowych przypadkach, gdy brakuje odpowiedniej powierzchni gruntu i wody do nawadniania, a także w niesprzyjających warunkach klimatycznych, geograficznych i hydrogeologicznych oraz w przypadku przeładunku do kanalizacji miejskiej.

„Przepisy weterynaryjne i sanitarne dotyczące przygotowania obornika, ściółki i ścieków do stosowania jako nawozy organiczne dla chorób zakaźnych i choroby inwazyjne zwierzęta i ptaki” zostały opracowane przez Ogólnorosyjski Instytut Badawczy Higieny Weterynaryjnej, Higieny i Ekologii oraz Ogólnorosyjski Instytut Helmintologii im. K.I. Skriabina.

Aneks 1

Metody przygotowania próbek nawozów organicznych i badania ich na obecność mikroorganizmów wskaźnikowych

1. Po dezynfekcji pobiera się próbki ściółki, frakcji stałej i obornika półpłynnego różne poziomy urządzenia do przechowywania obornika lub stosy ukośnie co najmniej 100 g z każdego punktu do sterylnego pojemnika. W laboratorium odważone próbki rozciera się w moździerzu porcelanowym, dodaje sterylną wodę wodociągową lub sól fizjologiczną w proporcjach 1:5 - 10 i filtruje przez podwójną warstwę gazy.

Próbki obornika i oczyszczonych ścieków pobierane są za pomocą próbników do sterylnych fiolek (V - 500 ml), transportowane i przechowywane zgodnie z ogólnie przyjętymi metodami.

W celach badawczych filtrat próbek obornika i ścieków odwirowuje się przy 3000 obr./min., wirówkę w objętości 1 ml dodaje się do płynnej pożywki akumulacyjnej, a następnie z probówek, w których wykrywa się wzrost, przeprowadza się hodowlę na gęstą pożywkę selektywną.

Próbki obornika i ścieków po dezynfekcji środkami chemicznymi poddaje się również filtracji, filtrat odwirowuje się, a wirówkę przemywa się 2-3 razy sterylną solą fizjologiczną lub wodą wodociągową. Przemyty osad ponownie zawiesza się w 1 ml sterylnej soli fizjologicznej lub wody wodociągowej, inokuluje do ciekłej pożywki selektywnej, a następnie przeprowadza hodowlę subkulturową do selektywnej pożywki stałej w celu wskazania i identyfikacji wyizolowanych mikroorganizmów.

2. W celu wykrycia E. coli wirówkę zaszczepia się do probówek pożywką glukozowo-peptonową o normalnym składzie i pływa w stosunku 1:5, po czym inkubuje w termostacie przez 24 godziny w temperaturze 43 °C.

Z każdej probówki z pożywką glukozowo-peptonową, w której stwierdza się zmętnienie, powstawanie gazów i kwasów, wykonuje się inokulacje w formie pętli ze smugami na powierzchni pożywki Endo na szalkach Petriego, podzielonych na 3 - 4 sektory. Inokulum pobiera się w taki sposób, aby uzyskać izolowane kolonie. Zaszczepione szalki umieszcza się w termostacie z opuszczonymi pokrywkami i inkubuje przez 18–20 godzin w temperaturze 37°C.

Typowe kolonie Escherichia coli hodowane na podłożu Endo Okrągły kształt gładkie, wypukłe lub z wypukłą powierzchnią w środku, o gładkich krawędziach, w kolorze różowym, czerwonym lub karmazynowym, z metalicznym połyskiem lub bez. Jednakże pod uwagę brane są również kolonie bezbarwne, ponieważ środki dezynfekcyjne mogą wpływać na kolor kolonii.

Z dwóch lub trzech różnych typów kolonii w każdym sektorze przygotowuje się rozmazy, barwi je metodą Grama i bada pod mikroskopem, a także sprawdza się ich aktywność oksydazową. Kolonie bakterii Gram-ujemnych i oksydazo-ujemnych zaszczepia się w półpłynnym podłożu z glukozą i inkubuje przez 4–5 godzin w temperaturze 37°C. Fermentacja cukru w ​​celu wytworzenia kwasu i gazu wskazuje na obecność E. coli.

3. W celu wykrycia gronkowców, wirówkę o objętości 1 ml dodaje się do roztworu soli MPB zawierającego 6,5% chlorku sodu w stosunku 1:5 i hodowle inkubuje się w termostacie przez 24 - 48 godzin w temperaturze 37°C. Z probówek, w których wykryto rozwój bakterii, poprowadź hodowlę na agar Chapmana na szalkach Petriego i inkubuj hodowle w tych samych warunkach. Rozmazy sporządza się z charakterystycznych okrągłych, wypukłych i kolorowych kolonii (białych, cytrynowych lub pomarańczowych) z agaru Chapmana, barwionych metodą Grama i oglądanych pod mikroskopem. Obecność ziarniaków Gram-dodatnich w rozmazach, ułożonych w formie kiści winogron, wskazuje na obecność gronkowców.

4. Oznaczenie obecności enterokoków (Str.faecalis) przeprowadza się poprzez zaszczepienie wirówki do ciekłej pożywki alkalicznej z polimyksyną, a następnie hodowlę przesiewową z probówek, w których wykryto wzrost bakterii, na gęstą pożywkę glukozowo-drożdżową z dodatkiem TTX. Uprawy inkubuje się w temperaturze 37°C przez 24–48 godzin.

Charakterystyczne małe, wypukłe kolonie z czerwonym środkiem przesiewa się z pożywki glukozowo-drożdżowej na MPA w celu sprawdzenia właściwości biochemicznych za pomocą testów Shermana (wzrost w MPB o pH 9,6, MPB w soli itp.). Dostępność charakterystyczne cechy wskazuje na obecność enterokoków.

5. Aby wykryć mikroorganizmy tlenowe tworzące przetrwalniki, filtraty próbek ogrzewa się przez 30 minut. w łaźni wodnej o temperaturze 65°C, następnie odwirowano i osadem zaszczepiono MPB i 2 szklanki MPA. Uprawy inkubuje się przez 24–48 godzin w temperaturze 37°C. Obecność kolonii na MPA i zmętnienie MPB wskazuje na obecność zarodników mikroorganizmów tlenowych.

Załącznik 2

Media kulturowe

1. Pożywka peptonowo-glukozowa

Medium o normalnym stężeniu zawiera:

1. pepton - 10,0 g
2. chlorek sodu- 5,0 g
3. glukoza - 5,0 g
4. woda destylowana - 1000 ml.

Po rozpuszczeniu powyższych składników dodać wskaźnik (2 ml 1,6% alkoholowego roztworu błękitu bromotymolowego lub 10 ml wskaźnika Andrade), ustawić pH na 7,4 - 7,6 i wlać podłoże do 10 ml probówek z pływakami, wysterylizować w autoklaw w temperaturze 112°C (0,5 kg/cm) przez 12 min.

2. Medium endo

Przygotowany z suchego preparatu według przepisu na etykiecie.

3. Podłoże półpłynne ze wskaźnikiem BP i glukozą

Przygotować według przepisu na etykiecie. Okres przydatności do spożycia - nie więcej niż 7 dni.

4. Przygotowanie odczynnika do oznaczania aktywności oksydazowej bakterii: 30 - 40 mg a-naftolu rozpuszcza się w 2,5 ml rektyfikowanego alkohol etylowy dodać 7,5 ml wody destylowanej i 40 - 60 mg dimetylo-p-fenylenodiaminy. Roztwór przygotowuje się bezpośrednio przed oznaczeniem.

5. Agar Chapmana

1. MPA - 100 ml
2. Chlorek sodu - 8,0 g
3. Mannitol - 1,0 g
4. Czerwień fenolowa - 0,0025 g.

Pożywkę wlewa się do kolb i sterylizuje pod ciśnieniem 0,5 atm. w ciągu 20 minut

6. Podłoże alkaliczno-polimyksynowe składa się z 3 części:

a) ekstrakt drożdżowy (autolizat) - 2 ml

1. glukoza - 1,0 g
2. chlorek sodu - 0,5 g
3. bulion - 40 ml

b) węglan sody - 0,53 g

1. woda destylowana - 25 ml

c) dwuzasadowy fosforan sodu - 0,25 g

1. woda destylowana - 25 ml.

Wszystkie trzy części pożywki sterylizuje się oddzielnie w temperaturze 112°C przez 12 minut. Po sterylizacji wymieszać, ustawić pH na 10,0 - 12,0 i dodać polimyksynę w ilości 200 U/ml.

7. Pożywka peptonowo-glukozowa z TTX i fioletem krystalicznym

1. Ekstrakt drożdżowy - 2 ml
2. Glukoza - 1,0 g
3. 0,01% kryształ roztworu wodnego. fioletowy - 1,25 ml
4. TTX - 0,01 g
5. 2% MPA - 100 ml
6. Do przygotowanego sterylnego podłoża przed napełnieniem dodaje się barwniki.

Dodatek 3

Rodzaje obornika i metody jego dezynfekcji

Dodatek 4

Maksymalne czasy przeżycia patogenów chorób zakaźnych w środowisku zewnętrznym