Egészségügyi-helmintológiai kutatások. Zöldségek, gyümölcsök és bogyók kutatása

A széklet vizsgálata

A mikroszkópos vizsgálatot először alacsony nagyítással (X80-as) végezzük. A legegyszerűbbeket erősebb fénytöréssel, egyes fajokat pedig mozgásukkal vagy alakváltozásukkal helyettesíthetjük. Az alacsony nagyítással látott tárgyat 400-as vagy 600-as nagyítással vizsgáljuk. Tapasztalat hiányában a keneteket azonnal nagy nagyítással kell megnézni, ami azonban jelentősen megnöveli a készítmény tanulmányozásának idejét. A kenetek nagy nagyítással való megtekintését erősebb fényben kell végezni, kondenzátorral igazítva.

A natív kenetben az egyes amőbatípusok megkülönböztető jellemzői a test alakja és mérete, a sejtmag láthatósága, a pszeudopodiák képződésének jellege, a mozgás, a citoplazma ekto- és endoplazmára való osztódása, a sejtmag természete. zárványok (fagocitált eritrociták stb.). A flagellate fajok megkülönböztetésekor - a test mérete és alakja, a flagellák száma, a mozgás jellege, a hullámzó membrán jelenléte vagy hiánya. A balantidia sajátosságai a méret, a test alakja, a mozgás, a csillók, a citosztóma stb.

Az élő állapotban lévő protozoonok vegetatív formáinak fő megkülönböztető jegye a mozgás. A kenetekben különféle mozdíthatatlan képződmények találhatók - növényi rostok, izomrostok, spórák, gombák stb. Ezeket nem szabad figyelembe venni a protozoológiai diagnosztikában.

A natív kenet módszer egyszerű és bármely laboratórium számára hozzáférhető. Lehetővé teszi a dizentériás amőbák fagocitált eritrocitákkal rendelkező szöveti formáinak megtalálásakor az amőb dizentéria abszolút pontos diagnózisát, és balantidia és giardia észlelésekor a balantidiasis és a giardiasis diagnózisát.

Festési kenetek Lugol-oldattal . Ezt a foltot a protozoák ciszták általi diagnosztizálására használják. A formalizált, félig formált és pépes széklet vizsgálatára használják.

A kenet elkészítéséhez egy fapálca végét beszennyezzük az ürülékkel, és egy csepp jódoldatban (J - 1,0 g, KJ - 2 g, desztillált víz - 100 ml) mossuk egy tárgylemezre, amíg egyenletes emulziót nem kapunk. kapott. A készítményt fedőlemezzel letakarjuk és 3-5 perc múlva. mikroszkopikus. A kenetnek elég átlátszónak kell lennie ahhoz, hogy áteresztő fényben is vizsgálható legyen.

Az emésztetlen táplálék maradványai közül a barna vagy zöldessárga színű spórák, gombák, jódfil baktériumok, protozoon ciszták megkülönböztethetők szigorúan meghatározott, minden fajra jellemző alakkal, mérettel, a szélek különálló körvonalaival, sima, átlátszó, kétkörös membrán, a citoplazma tartalma, valamint a fuzzy szerkezetű magok jelenléte. Az amőba cisztákban barna (sötétbarna) színű glikogén vakuolák láthatók. E vakuolák elszíneződésének mértéke és határaik körvonalai ugyanazon fajhoz tartozó protozoon cisztákban eltérőek, érettségüktől függően.

fejezet III. A helminthiasis diagnózisa és a helmintológiai kutatás módszerei

Minden orvosi segítséget kérő beteget meg kell vizsgálni helminthiasisra, különösen azokat, akik gyomor-bélrendszeri, idegrendszeri jelenségekkel, vérszegénységgel fordulnak gyermekorvoshoz, belgyógyászhoz, neuropatológushoz. Ha az orvos nem mindig alkalmazhat laboratóriumi kutatási módszereket, akkor minden járóbeteg-szakintézetben vagy kórházban segítséget nyújtó egészségügyi dolgozó köteles megkérdezni a beteget a bélféreg felszabadulásáról.

Ha a vonatkozó fejezetekben vannak klinikai javallatok, a diagnózist a helmintiázisok vizsgálatának laboratóriumi módszereivel kell tisztázni.

Az intesztinális helmintiázisok túlsúlya kapcsán a széklet vizsgálatának van a legnagyobb gyakorlati jelentősége.

Módszerek a széklet vizsgálatára helmintiázisok esetén

Az ürüléket tiszta üvegedényben szállítják a laboratóriumba (kb. negyed csésze különböző helyekről vett ürülék egy adagban); rutinvizsgálat során engedélyezett az ürülék gyufásdobozokban vagy népszerű nyomatokban történő beszállítása a laboratóriumba.

A féregtelenítés leküzdésére a féregellenes és hashajtó bevétele után összegyűjtött ürülék teljes részét (nagy, zárt üvegedényekben, vödrökben) szállítják (az orvos előírása szerint).

A széklet mikroszkópos vizsgálata a fő a bélférgek diagnosztizálásában; mindig meg kell előznie a széklet általános makroszkópos vizsgálatát, hogy kimutathatóak legyenek a nagyméretű cestodák, gombócok, orsóférgek stb. szegmensei.

A széklet legyen friss vagy konzerv (5%-os formalinoldatban), mivel a szárítás drámaian megváltoztatja a tojás szerkezetét. Ezen túlmenően, amikor a széklet áll, egyes férgek (például kampósférgek) petéi gyorsan fejlődnek, ami megnehezíti a diagnózist.

A Szovjetunió Egészségügyi Minisztériumának utasításai szerint az ürüléket egyszerre kell megvizsgálni Fülleborn módszerrel és natív kenettel.

natív kenet

Natív kenet: a kiszállított adag különböző helyeiről gyufával, üveggel vagy fapálcikával kivett kis darab (borsó nagyságú) ürüléket üveglemezen óvatosan eldörzsölünk egy csepp 50%-os glicerines oldatban, ill. sóoldatban vagy vízben. Fedjük le fedőlemezzel, ez utóbbit kissé megnyomjuk (bonctűvel). A kenetnek vékonynak, átlátszónak és egyenletesnek kell lennie. Kizárólag más, a gyógyszert dúsító módszerek kiegészítéseként alkalmazzák. Legalább két készítményt meg kell nézni.

A féreg lárváinak (valamint petéinek) kimutatására natív kenetet készítenek a következőképpen (Shulman szerint): 2-3 g ürüléket alaposan összekeverünk üvegrúddal ötször emulzióvá „csavarva”. a tiszta víz vagy sóoldat mennyisége. A keverés során a lárvák az üvegrúdnál gyűlnek össze, ezért a keverés befejezése után azonnal egy csepp emulziót üvegrúddal gyorsan egy tárgylemezre viszünk, fedőlemezzel letakarjuk és megvizsgáljuk. S. D. Lyubchenko (1936) bebizonyította, hogy a csavaró módszer hatékonyabb, mint a kenet, különösen az ascaris tojások esetében. S. D. Ljubcsenko munkája alapján célszerűnek tartjuk a kenetmódszert a csavaros módszerrel helyettesíteni.

Fülleborn módszer

Fülleborn módszer: 5-10 g különböző helyekről vett ürüléket egy 50-100 ml-es edénybe helyezünk, és üveg- vagy farúddal alaposan eldörzsöljük telített nátrium-klorid-oldatban (ebből 400 g sót feloldunk). 1 liter vízben, forrásig melegítjük és vattarétegen vagy gézen átszűrjük; az oldatot hidegen használjuk: fajsúly ​​1,2). Az oldatot fokozatosan öntjük be, amíg egyenletes szuszpenziót nem kapunk, és az öntött oldat teljes mennyiségének körülbelül 20-szorosának kell lennie a széklet mennyiségének. Fülleborn a teáspoharak használatát javasolta a széklet keverésére, de célszerűbb a szuszpenziót 50-100 ml-es kenőcsös tégelyekben elkészíteni, elemzésenként két tégely felhasználásával (vagy 100 ml-es csészékben).

Közvetlenül a szuszpenzió elkészítése után spatulával, fémkanállal vagy tiszta papírdarabbal eltávolítjuk a felületről a felszínre úszott nagy részecskéket (növényi képződmények, emésztetlen élelmiszer-maradványok stb.), majd a keveréket 1-1,5 órán át állni hagyjuk. Ezen idő elteltével a teljes filmet eltávolítják a keverék felületéről egy legfeljebb 1 cm átmérőjű, derékszögben hajlított huzal vagy platina hurok (lapos) megérintésével; A filmet tárgylemezen lerázzuk és fedőlemezzel letakarjuk. Mindegyik fedőlemez (18x18 mm) alá tegyen 3-4 cseppet. Összesen legalább 4 készítményt kell elkészíteni (minden készítményhez egy fedőlemez). A hurkot tűzön kalcináljuk, és minden elemzés után vízzel mossuk.

A Fülleborn-módszer szerint minden fonálféreg peték (kivéve a megtermékenyített orsóféreg-petéket) és a törpegalandféreg-peték gyorsan és könnyen kimutathatóak.

A Berman-módszert bélféreg lárvák (strongyloidiasis) széklet vizsgálatára használják. Ez a módszer a következő: 5 g ürüléket fémrácson (tejszűrő alkalmas erre a célra) helyezünk egy állványra erősített üvegtölcsérre. A tölcsér alsó végére egy bilinccsel ellátott gumicsövet helyeznek.

A széklettel ellátott hálót felemeljük, és körülbelül 50 ° -ra melegített vizet öntünk a tölcsérbe úgy, hogy a háló alsó része a széklettel vízbe merüljön. A lárvák aktívan beköltöznek a vízbe, és felhalmozódnak a gumicső alsó részében. 2-4 óra elteltével a bilincset kinyitják, és a folyadékot egy vagy két centrifugacsőbe engedik le.

1-2 perces centrifugálás után a folyadék felső részét gyorsan lecsepegtetjük, majd a csapadékot tárgylemezekre cseppentve fedőlemezek alatt megvizsgáljuk, vagy 2-3 nagy tárgylemezre vékony rétegben elosztva, majd fedőlemez nélkül vizsgáljuk.

A Berman-módszert arra is használják, hogy a talajt horgosféreg-lárvák jelenlétére vizsgálják.

Stoll módszer

A Stoll-módszert az invázió intenzitásának meghatározására használják. Speciális üveglombikba 56 cm 3 -ig decinormális nátrium-hidroxid oldatot öntünk, majd ürüléket adunk hozzá, amíg a folyadék szintje el nem éri a 60 cm 3 -t, azaz a 4 cm 3 -t. Üveggyöngyökkel való felrázást követően a keverékből 0,075 ml-t veszünk vizsgálatra, és egy vagy két közönséges fedőlemez alatt megvizsgáljuk. A kapott mennyiséget megszorozzuk 200-zal, hogy megkapjuk az 1 cm 3 székletben lévő tojások számát.

A nyombél tartalmának vizsgálata

A szokásos módon szondázással nyert nyombélnedvet és cisztás epét (és cisztás epét és az epehólyagból származó reflexet követően) alaposan összekeverjük azonos térfogatú etil-éterrel; a keveréket centrifugáljuk, majd a csapadékot mikroszkóp alatt megvizsgáljuk. Az üledéken kívül mikroszkópos vizsgálatnak kell alávetni a folyadékban úszó pelyheket, amelyek féregpetéket tartalmazhatnak. A gyomornedv és a hányás helminták tojásainak vizsgálatakor ugyanazt a technikát használhatja.

A nyombélnedv és a gyomortartalom vizsgálatát a máj, az epehólyag (opisthorchiasis, fascioliasis, dicroceliasis) és a duodenum (strongyloidiasis) helmintikus betegségeinek gyanúja esetén kell elvégezni.

Köpet vizsgálata

A köpetet egy üveglapon dörzsöljük, szorosan lefedjük egy másik üveglappal, és szabad szemmel vizsgáljuk világos és fekete alapon, valamint nagyító alatt áteresztő fényben. A köpet különálló darabjait ("rozsdás" felhalmozódások, szövetmaradványok stb.) vékony rétegben egy tárgylemezre helyezzük, fedőlemezzel szorosan lefedjük, és kis és nagy nagyítású mikroszkóppal megvizsgáljuk.

a) A bőr, a bőr alatti szövet vagy az izmok cysticercosisának diagnosztizálásához a megfelelő szövet aszeptikusan levágott darabját először szabad szemmel vizsgáljuk meg. A szövetmetszeteket boncolt tűk segítségével távolítják el egymástól, hogy szabad szemmel is látható hólyagot - cysticercust - észleljenek (A fotó); hossza 6-20 mm, szélessége 5-10 mm. Ha cysticercusra gyanús buborékot találnak, azt két tárgylemez között összetörik, és mikroszkóp alatt megvizsgálják. A cysticercust (Cistycercus cellulosae) egy scolex jelenléte határozza meg, négy tapadókoronggal és egy horoggal (B fotó).

Fénykép. A - kifelé forduló scolexes cysticerci; B - Sertés galandféreg feje.

b) A trichinosis diagnosztizálásához egy aszeptikusan levágott izomdarabot (bicepsz vagy gastrocnemius) 50%-os glicerines oldatban boncolótűk segítségével a legvékonyabb rostokra tördelnek. Az összezúzott izmokat két üveglemez közé szorítják, és a mikroszkóp kis nagyításával sötét látómezőben vizsgálják. Az izmok trichinózis-vizsgálatát legkorábban a betegség 8. napján javasolt elvégezni. A trichinella lárvák az izmokban összetekeredett helyzetben vannak: citrom alakú kapszulákba vannak zárva.

Fénykép. A - Trichinella lárvák az izmokban; B - Meszesedett trichinella kapszulák.

Fluoroszkópia

Leggyakrabban a fluoroszkópiát használják az echinococcosis és ritkábban a cysticercosis diagnosztizálására. Fluoroszkópiás vizsgálat során cysticerciket csak meszesedés után találunk (hosszan tartó betegség esetén). Az utóbbi években fluoroszkópiát is alkalmaztak az ascariasis diagnosztizálására mind a korai lárvaállapotban, mind részben a bélstádiumban.

Az ascaris lárvák (és a kampósféreg) tüdőben való vándorlásának időszakában instabil, esetenként többszörös gyulladásos gócok észlelhetők; ugyanakkor a vérben jelentős eosinophilia jelenik meg.

Az ivarérett orsóférgek jól láthatóak az érintett egyedek beleinek fluoroszkópiáján. Ezt a módszert bonyolultsága és körülményessége ellenére kiegészítő módszerként kell alkalmazni az ascariasis diagnosztizálására negatív scatologiai elemzés esetén. E. S. Geselevich szerint a fluoroszkópiával azonosított 180 ascariasisban szenvedő beteg közül 54 ascaris tojást nem találtak a székletben (lásd).

Helmintológiai kutatási módszerek. A helmintiázisok diagnosztizálásának módszerei közvetlen módszerekre oszthatók, amelyek maguknak a helmintáknak vagy azok töredékeinek, valamint a helminták lárváinak és tojásainak közvetlen kimutatásán alapulnak (a széklet, a vizelet, az epe és a nyombél tartalmának, a köpet, a vér és a szövetek vizsgálatának módszerei, a perianális területről és a subungualis terekből kaparással nyert anyagok, és közvetettek, amelyek feltárják az emberi szervezetben a bélféreg aktivitása következtében fellépő másodlagos változásokat (a vér morfológiai összetételének vizsgálata, a helminthiasis diagnosztizálásának immunológiai módszerei, röntgenvizsgálatok stb.). A direkt módszerek közül a legelterjedtebbek a koprológiaiak, amelyek makro- és mikrohelmintoszkópiára oszlanak. Egyes esetekben speciális módszereket alkalmaznak.

Makrogelmitoszkópiás kutatási módszerek bélférgek vagy azok töredékeinek (scolex, szegmensek, cestodes strobila részei) felkutatására irányul. Azon helmintiázisok diagnosztizálására szolgálnak, amelyekben a peték nem ürülnek ki a beteg ürülékével, vagy kis mennyiségben és nem mindig ürülnek ki (például enterobiasis esetén pinworms található a székletben, teniidózisokkal, szegmensekkel).

Az ürülékben lévő tűférgek vagy cestodes-szegmensek kimutatásához a székletet szabad szemmel nézzük. A teniidózisok differenciáldiagnózisához ajánlott a vízzel hígított ürüléket külön kis adagokban fekete fotóküvettákban vagy Petri-csészékben sötét háttér előtt megtekinteni. A helminták töredékére gyanús nagy képződményeket nagyító alatt vizsgálják két tárgylemez között. Ha a klinikai javallatok szerint a kezelés után kis helminták vagy cestodafejek kimutatása javasolt, akkor a gyanús részecskéket egy csepp glicerinben nagyítóval, szükség esetén mikroszkóppal vizsgáljuk.

Mikrohelmintoszkópos kutatási módszerek(kvalitatív) célja a helminták tojásainak és lárváinak azonosítása. Alkalmazza a vastag kenet módszert celofán fedőlemezzel Kato szerint. A Kato keverék 6-ból áll ml 3%-os vizes malachitzöld oldat, 500 ml glicerin és 500 ml 6%-os fenolos oldat. Kato tányérok (hidrofil celofán darabokra vágva 20×40 mm) 24-re merülnek h a Kato keverékbe úgy, hogy egymás mellett legyenek (3-5 ml Kato-féle megoldás 100 tányérra). 100 mg az ürüléket üveglemezre helyezzük, Kato szerint celofán fedőlemezzel letakarjuk, és lenyomjuk, így a széklet a celofán lemezen belüli üveglemezre kenődik. A kenetet szobahőmérsékleten hagyjuk, hogy 40-50 °C-ra derüljön min, majd mikroszkóp alatt szemléljük. A forró évszakban, hogy a készítmény ne száradjon ki, nedves szivacsot helyezünk az elkészített készítmény tányérjára.

Minden típusú bélféreg teljes kimutatásához a Kato celofán fedőlemez vastag kenet módszert kell alkalmazni az egyik dúsító módszerrel együtt. Ezek közül a legelterjedtebb a Kalantaryan-módszer és a Fülleborn-módszer.

Kalantaryan módszer: 100-as széles nyakú lombikokban mlüvegrúddal alaposan keverje meg 5 G széklet, fokozatosan hozzáadva telített nátrium-nitrát oldatot (1 kg nátrium-nitrát per 1 l vizet forraláskor) a pohár széléig. A felszínre úszott nagy részecskéket papírkanállal távolítjuk el. A sóoldat felületére tárgylemezt helyezünk (sóoldatot addig adunk hozzá, amíg a keverék teljesen érintkezésbe nem kerül az üveglemezzel). 20-30 után min A tárgylemezt eltávolítjuk, és a filmet mikroszkóp alatt nézzük. Ennek a sónak a hiányában használhat telített konyhasóoldatot Fholleborn szerint (400 G só az 1-ben l forrásban lévő víz).

Tekintettel arra, hogy a nagy fajsúlyú peték (ascaridák megtermékenyítetlen petékjei, trematodák és nagy cestodák tojásai) nem lebegnek, a Fülleborn-módszer alkalmazásakor a folyadék felszíni rétegének vizsgálata mellett meg kell nézni. 2-4 készítmény az üledékből mikroszkóp alatt.

Különféle helminthiasisok speciális laboratóriumi kutatási módszerei.

A trichomoniasis nagyon gyakori szexuális úton terjedő fertőzés, de laboratóriumi vizsgálatok nélkül lehetetlen pontosan megerősíteni. Az 1980-as években a vizsgálatok kimutatták, hogy ha csak a beteg megkérdezésére és vizsgálatára szorítkozunk, akkor a trichomoniasis helyes diagnosztizálása csak az esetek 12%-ában lehetséges. Ezért a trichomoniasis laboratóriumi diagnózisa férfiaknál és nőknél sokat jelent.

A kórokozó (Trichomonas vaginalis) azonosítására az orvosok különböző kutatási módszereket alkalmaznak. Egyes elemzések pontosabbak, mások pedig gyakran tévesek; néhány mérsékelt árú, és néhány meglehetősen drágák.

Megértjük, milyen teszteket végeznek a trichomoniasisra férfiaknál és nőknél: a módszerek pontossága, költsége, előnyei és hátrányai.

Az egyes módszerekről röviden: Mikroszkópia, tenyésztés, PCR, ELISA, RIF

Ha bármilyen fertőző betegség gyanúja merül fel, a beteg általános vér- és vizeletvizsgálatot ír elő. Eredményeik gyulladást jelezhetnek, de nem mutatják ki, melyik kórokozó az oka.

Például a trichomonák okozta gyulladás esetén megemelkedhet a leukociták szintje a vérben – de más fertőzések miatti gyulladás esetén is. Ezért ez az elemzés nem mond semmi konkrétat.

A kórokozó pontos azonosításához más diagnosztikai módszerekre van szükség. Számos alapvetően eltérő módszer létezik a Trichomonas kimutatására. Különböznek a megvalósítás összetettségében, időzítésében és megbízhatóságában. Így vagy úgy, mindegyik megtalálta a helyét a betegség diagnózisában.

Nézzük meg közelebbről ezeket a technikákat és a helyes diagnózis felállításában játszott szerepüket.

Natív kenet mikroszkópos vizsgálata

Az "őshonos" kifejezés az orvostudományban és a biológiában olyan tárgyra vagy anyagra utal, amely természetes állapotában van - vagyis semmilyen módon nem változtatták vagy dolgozták fel. Ennek megfelelően a natív kenet az emberi nemi szervről vagy kiválasztó szervekről származó közönséges kenet, amelyet semmilyen módon nem festenek vagy módosítanak vizsgálat céljából.

Az ilyen kenet mikroszkóp alatti vizsgálata a leggyakoribb módszer a trichomoniasis diagnosztizálására. Hogy néz ki a Trichomonas natív kenetben, az alábbi képen látható.

Ehhez az elemzéshez kijelölésekre és néhány cellára van szüksége:

• a húgycsőből
• hüvely
• a beteg/beteg nyaki csatornája.

Szigorúan véve az eljárást nem „kenetnek”, hanem „kaparásnak” kell nevezni, mert nem csak váladékot vesznek az anyaghoz, hanem magukat a nyálkahártya sejteket is. Kaparni nem túl kellemes, de nem árt.

A kivett anyagot kémcsőbe helyezzük és a laboratóriumba küldjük.

A laboratóriumban a kaparékból származó sejteket mikroszkóp alatt vizsgálják. Ha köztük van Trichomonas a kenetben, akkor kiadják:

• nagy méret (az emberi csapokhoz képest)
• flagella jelenléte
• tipikus mobilitás.

Ezzel a módszerrel 80-100% valószínűséggel meg lehet különböztetni a Trichomonas-t más mikrobáktól.

De a natív kenetnek vannak hátrányai is.

Sajnos az anyag hosszadalmas szállítása a laboratóriumba jelentősen csökkentheti a módszer pontosságát. A helyzet az, hogy az anyag felvételének pillanatától kezdve a Trichomonas minden percben elveszíti mozgásképességét, és nehezebb felismerni őket. Ideális esetben a kaparásból származó sejteket azonnal mikroszkóp alá kell helyezni. A szabályok szerint natív anyag tanulmányozása javasolt legkésőbb 10 perccel kaparás után. De egy közönséges orosz kórház vagy laboratórium körülményei között ez szinte lehetetlen.

Ezért a natív kenetmikroszkópia pontossága nem túl magas, és 40% és 80% között mozog. Vagyis a Trichomonast továbbra sem tévesztik össze más kórokozókkal, ha mozgékonyak – de lehet, hogy egyáltalán nem észlelik, ha nem mozog.

A hiányosságok ellenére ez a módszer hasznos lehet a szakmai vizsgálatoknál vagy a venereológus első látogatásánál. Nem igényel kifinomult felszerelést, és ugyanakkor lehetővé teszi más mikroorganizmusok (de nem mindegyik) azonosítását vegyes fertőzéssel. Ezenkívül egy ilyen elemzés teljesen ingyenesen elvégezhető egy állami egészségügyi intézményben. A magánklinikákon a szolgáltatás ára 150-200 rubel.

Megfestett kenet mikroszkópos vizsgálata

A festett kenetek tanulmányozása növeli a Trichomonas kimutatásának esélyét. Az anyagot ugyanúgy veszik, mint egy natív kenetet (vagyis ez is egy kaparás). De ehhez a tanulmányhoz az anyagot már speciálisan előkészítették: a mikroszkóp alatti vizsgálat előtt speciális anyagokat adnak hozzá. Ezek olyan színezékek, amelyek színt adnak a Trichomonas-nak - kivéve, ha természetesen a kenetben van. Ez megkönnyíti a laboratóriumi asszisztens számára a trichomonas vaginalis megkülönböztetését más sejtektől és részecskéktől. Az egész eljárás nem haladja meg az egy órát.

De ez az elemzés sem tökéletes. Az a tény, hogy nem minden festék képes megkülönböztetni a fertőzés kórokozóját az emberi sejtektől.

Leggyakrabban metilénkék festéket használnak az anyag elkészítéséhez ill Gram-festés(egy összetett festési módszer több színezékkel). Sajnos ezek a módszerek nem teszik lehetővé a Trichomonas egyértelmű megkülönböztetését a hámsejtek és az immunsejtek között. A mikrobát nehéz felismerni, mert a Trichomonas emberi sejtekhez hasonlít, és szinte ugyanúgy festődik velük.

Sokkal hatékonyabb festés Romanovsky-Giemsa módszer szerint. Romanovsky festéke összetett összetételű, amely metilénkéket, eozint és azúrkéket tartalmaz, és lehetővé teszi a Trichomonas világos megkülönböztetését a környező sejtektől. Az ezzel a módszerrel történő festést nem minden laboratóriumban alkalmazzák - meglehetősen nehéz elkészíteni ezt a festőoldatot, ami növeli az elemzés költségeit.

A színezőanyagtól függően az elemzés ára átlagosan 400-600 rubel. Egyes régiókban az elemzés ingyenesen elérhető a program keretében CHI.

A módszer megbízhatósága átlagosan 80%.

A kenet mikroszkóp alatti vizsgálatát, legyen az natív vagy festett kenet, szintén ún. bakterioszkópos vizsgálat.

Kultúrakutatás (vetés)

Kultúrakutatás (vetés)

A natív és festett kenetek mikroszkópos vizsgálatához képest a kultúradiagnosztikai módszer sokkal hatékonyabb. Például 1990-ben egy összehasonlító vizsgálat során a betegek 80% -ánál sikerült pontosan azonosítani a Trichomonas-t vetés segítségével.

A módszer lényege, hogy a betegtől vett anyagot táptalajra helyezzük (trichomoniasis gyanúja esetén a nemi szervekről vett tampon). Az "élelmiszer-paradicsomba" kerülve a kenetnek számító Trichomonas intenzíven szaporodik, és 3-4 nap múlva mikroszkóp alatt könnyen kimutatható. Ha a mikrobák nem szaporodtak el, nagy valószínűséggel nem voltak a kenetben, ami azt jelenti, hogy az ember egészséges.

A tápközeg mikroorganizmusok szaporítására alkalmas anyag vagy anyagok keveréke. Minden kórokozónak szüksége van a saját táptalaj összetételére: egyes táptalajokon jól, míg másokon egyáltalán nem szaporodnak.

A Trichomonas nagyon jól növekszik importált táptalajokon, mint például az InpouchTV és a Diamond. De hazánkban ezeket a médiákat nagyon ritkán használják, általában magánklinikákon, mert ezek drága keverékek.

De még az orosz viszonyokat is figyelembe véve, a Trichomonas bakposev az egyik legmegbízhatóbb teszt. Pontossága kiváló minőségű táptalajokon eléri a 90%-ot. Ennek ellenére nem mindig írják elő a kulturális tanulmányozást, mivel az idő- és anyagi költségeket igényel.

A tanulmány ára 500 és 5000 rubel között mozog, ami nagyban függ a felhasznált tápközegtől és az intézmény pénzügyi politikájától.

PCR módszer

A laboratóriumi vizsgálatok szinte pontosan képesek diagnosztizálni a trichomoniasist. A legmegbízhatóbbak közülük PCRés a kultúrakutatás. Ha az ezekkel a módszerekkel kapott elemzések negatívak, akkor ez csaknem 100 százalékos bizonyítéka a betegség hiányának, amit más módszerekkel nem jeleznének.

Ne feledje, hogy a vizsgálati eredményektől függetlenül semmi szörnyű és helyrehozhatatlan nem történt, és egyáltalán nem nehéz megszabadulni ettől a kellemetlen fertőzéstől.

A székletet kétféleképpen vizsgálják:

1. Makroszkópos - megtalálni a helmintákat, azok fejét, szegmenseit, strobilimaradványait. Az ürülék kis adagjait lapos fürdőben vagy Petri-csészében vízzel összekeverjük, és jó fényben, sötét háttér előtt, szükség esetén nagyítóval szemléljük. Minden gyanús képződményt csipesszel átviszünk egy másik csésze vízbe vagy egy tárgylemezre egy csepp hígított glicerinben.

A módszerrel fenntartva a vizsgált ürülékrészt üveghengerben vízzel felkeverjük, ülepítés után a felső vízréteget lecsepegtetjük. Ez többször megismétlődik. Amikor a folyadék átlátszóvá válik, lecsepegtetjük, és a csapadékot Petri-csészében nézzük.

2. Mikroszkópos - a helminták tojásainak és lárváinak kimutatására. Számos kutatási módszer létezik.

natív kenet - a legelterjedtebb és technikailag elérhető kutatási módszer. Minden féreg tojása és lárvája megtalálható. Kis számú tojás esetén azonban nem mindig találhatók meg. Ezért a dúsítási módszert alkalmazzák.

1. Fülleborg módszer - ez egy dúsítási módszer, amely a helminthiasis tojások megjelenésén alapul telített NaCl-oldatban (1,2 - sűrűség; 400 g NaCl 1 liter vízben; 40% -os NaCl-oldat). A módszer hatékonyabb, mint a natív kenet. 2-5 g ürüléket üvegedényekbe helyezünk, NaCl-oldattal megtöltjük, megkeverjük, majd 45 perc múlva fémhurokkal eltávolítjuk a képződött filmet, egy csepp glicerint helyezünk egy tárgylemezre. Vizsgálja meg mikroszkóp alatt. A módszer hátránya a különböző helminták tojásainak késleltetett megjelenése, törpe galandféreg - 15-20 perc múlva, orsóféreg - 1,5 óra, ostorféreg - 2-3 óra.

2. Kalantaryan módszer - szintén dúsítási módszer, de telített NaNO 3 oldatot (1,38 sűrűségű) használnak. A tojások nagy része lebeg, az üledék vizsgálata nem szükséges. Hátránya, hogy a tojásokat sokáig oldatban tartják, ami azt eredményezi, hogy egyes tojások megduzzadnak és leülnek az aljára, eltűnnek a felületi filmből.

3. Gorjacsov módszere - petelerakódás elvén alapul, kis trematode peték kimutatása. Oldatként telített NaCl-oldatot használunk, és óvatosan 3-4 ml ürülékoldatot rétegzünk a tetejére. 15-20 óra elteltével a trematode tojások leülepednek az aljára. A folyadékot lecsepegtetjük, az üledéket egy tárgylemezen és mikroszkóp alatt helyezzük el.

4. Shulman csavaró módszer – helminth lárvák kimutatására a székletben. Csak frissen izolált székletet vizsgáljon. 2-3 g-ot egy üvegedénybe teszünk, és felöntjük 5-szörös mennyiségű vízzel, gyorsan felkavarjuk egy pálcikával, anélkül, hogy az edény falát érintené - 20-30 perc, majd gyorsan eltávolítjuk a rudat, és egy csepp végén lévő folyadékot egy tárgylemezre visszük és mikroszkóppal vizsgáljuk.

5. Berman-módszer - a helminth lárvák meleg felé vándorló képességén alapul, és a székletben való azonosításukra szolgál.

6. Harada és Mori módszere (lárvátenyésztési módszer), és ankylostomiasis vizsgálatára javasolt. A módszer azon alapul, hogy melegben és nedves szűrt papíron a kampósféreg tojásaiból filariform lárvák fejlődnek, amelyek könnyen kimutathatók. Egy szűrt papírcsík közepére 15 g ürüléket viszünk fel, az ürülékkel ellátott papírt tégelybe helyezzük úgy, hogy az alsó vége vízbe merüljön, a felső végét pedig parafával rögzítsük. Az edényt termosztátban 28 0 C-on 5-6 napig tartjuk. A filariform lárvák ezalatt fejlődnek ki, és leszállnak a vízbe. A folyadékot nagyítóval vizsgáljuk. Ha nehezen észlelhető, a folyadékot centrifugálják, miután a lárvákat 60 0-ra melegítve elpusztítják. A laboratóriumi technikusnak kesztyűt kell viselnie.

7. Az enterobiasis módszerei – pinworm peték és szarvasmarha-galandféreg azonosítása.

a) kaparás a perianalis redőkből - fából készült pálcikára erősen feltekercselt és 50%-os glicerinoldattal megnedvesített pamut törlővel. A laboratóriumban a tampont 1-2 csepp 50%-os vizes glicerinoldattal lemossák.

b) ragacsos atka módszer (Graham módszer)

A ragasztószalagot a perianális redőkre kell felhelyezni, majd ragadós réteggel a tárgylemezre és mikroszkóppal.

c) kaparás szempálcikákkal (Rabinovich módszere). A perianális kaparáshoz üveg szempálcákat használnak, amelyek legszélesebb részét speciális ragasztóval borítják, amely lehetővé teszi a gombatojások megtartását.

Vér, epe, köpet és izmok vizsgálata

Vérmikroszkópos vizsgálat - filariae lárvákat észlelnek.

Köpetvizsgálat - paraganim peték, orsóféreg lárvák, necator, strongyloid, echinococcus hólyag elemei.

Az izmok vizsgálata - trichinellózis gyanúja esetén megvizsgálják a beteg vagy a holttest izmait, valamint azt a húst, amely feltételezhetően okozta a fertőzést. A trichinoszkópia céljából az izmot apró darabokra vágják és kompresszorokba helyezik, ez két széles, vastag üveg, amely összezúzja az izmokat, és kapszulák formájában találják meg a Trichinella lárvákat - a kompressziós módszert.

Emésztési módszer - az izmokat mesterséges gyomornedvvel (sósavoldat és pepszin) öntik. Az izmok emészthetők, és a lárvák könnyen azonosíthatók. Az invázió intenzitásának meghatározása: a lárvák száma 200-ig 1 g izomszövetben - az invázió mérsékelt intenzitása; 500-ig - intenzív; 500 felett - szuperintenzív invázió.

Szerológiai módszerek