Бактериологични лабораторни изследвания. Бактериологична лаборатория - лаборатории, параклиники

Въведение

Като общата част на всяка друга наука, общата бактериология не се занимава с конкретни въпроси (да речем идентифицирането на отделни видове бактерии), а с проблеми като цяло; неговата методология обхваща основните процедури, които се използват широко в голямо разнообразие от лабораторни изследвания. Това ръководство за изследване не е предназначено да идентифицира група микроорганизми. Това е задачата на следващите публикации - по частна и санитарна микробиология. Въпреки това, методите, представени в него, могат да бъдат полезни във всяка област, където трябва да се работи с бактерии, и могат да бъдат приложени към практически проблеми, включително изолирането и типизирането на бактерии.

Бактериологията се превърна в наука едва след като бяха разработени уникални техники, които продължават да влияят и проникват в по-късно възникващи области на науката като вирусология, имунология и молекулярна биология. Техниката за използване на чисти култури, разработена от Р. Кох и имунологичните реакции и химичния анализ, въведени за първи път от Л. Пастьор, не са загубили своето значение дори и сега.

Методиката на общата бактериология е отразена в това издание с помощта на такава конструкция, която е характерна за стандартните учебници по тази дисциплина. Въпреки това, за разлика от лабораторните семинари по курса по микробиология за университетите, той е представен по-подробно в някои раздели и е само за справка. Тази структура отчита особеностите на обучението и специализацията на бактериолозите и ветеринарно-санитарните експерти. Често материалът се представя произволно, така че някои методи се споменават няколко пъти, поради желанието да се демонстрира тяхната връзка.

бактериологична лаборатория

Бактериологичните лаборатории като структурни звена са организирани като част от регионални, областни, междуобластни ветеринарни лаборатории, както и в структурата на зонални ветеринарни лаборатории. Те се организират и в центровете за санитарен и епидемиологичен надзор, в инфекциозни болници, общи болници, някои специализирани болници (например в туберкулоза, ревматология, дерматовенерология) и поликлиники. Бактериологичните лаборатории са част от специализирани изследователски институции. Постоянно се използват бактериологични лаборатории за потвърждаване или установяване на класификацията за хранителна годност на месото според ESS.

Обектите на изследване в бактериологичните лаборатории са:

1. Изхвърляне от тялото: урина, изпражнения, храчки, гной, както и кръв, патологичен и трупен материал.

2. Обекти на външната среда: вода, въздух, почва, измивания от инвентарни предмети, фуражи, технологични суровини, получени от клането на селскостопански животни.

3. Хранителни продукти, проби от месо и месни продукти, мляко и млечни продукти, които трябва да бъдат оценени за годност за хранителни цели.

Бактериологична лаборатория и оборудване на работното място

Спецификата на микробиологичната работа изисква помещението, предназначено за лабораторията, да бъде изолирано от битови помещения, хранителни блокове и други неосновни производствени помещения.

Бактериологичната лаборатория включва: лабораторни помещения за бактериологични изследвания и битови помещения; автоклав или стерилизация за обеззаразяване на отпадъчни материали и замърсени прибори; перални, оборудвани за миене на съдове; бактериологична кухня - за приготвяне, бутилиране, стерилизация и съхранение на хранителни среди; вивариум за отглеждане на опитни животни; материал за съхранение на резервни реактиви, прибори, оборудване и домакински инвентар.

Изброените битови помещения, като самостоятелни структурни единици, са част от големи бактериологични лаборатории. В малките лаборатории бактериологичната кухня и стерилизационната кухня са обединени в едно помещение; няма специално помещение за отглеждане на опитни животни.

Според степента на опасност за персонала помещенията на микробиологичните лаборатории са разделени на 2 зони:

I. "Заразна" зона - помещение или група помещения в лаборатория, в които се работи и съхраняват патогенни биологични агенти, персоналът е облечен в подходящ тип защитно облекло.

II. "Чиста" зона - помещения, в които не се работи с биологичен материал, персоналът е облечен в лично облекло.

Под лабораторните стаи, в които се извършват всички бактериологични изследвания, се разпределят най-светлите, просторни стаи. Стените в тези помещения на височина 170 см от пода са боядисани в светли цветове с блажна боя или покрити с плочки. Подът е покрит с релин или линолеум. Този вид покритие ви позволява да използвате дезинфекционни разтвори при почистване на стаята.

Във всяка стая трябва да има мивка с водопровод и рафт за бутилка дезинфекционен разтвор.

В едно от помещенията е оборудван остъклен бокс - изолирано помещение с вестибюл (предбокс) за извършване на работа в асептични условия. В кутията поставят маса за култури, табуретка, бактерицидни лампи са монтирани над работното място. В преддверието се поставя шкаф за съхранение на стерилен материал. Прозорците и вратите на помещенията на "заразната" зона трябва да са херметични. Съществуващата изпускателна вентилация от "инфекциозната" зона трябва да бъде изолирана от други вентилационни системи и оборудвана с фини въздушни филтри.

Лабораторията е оборудвана с лабораторни маси, шкафове и рафтове за съхранение на оборудване, прибори, бои и реактиви, необходими за работа.

Правилната организация на работното място на бактериолог и лаборант е много важна за работата. В близост до прозорците са монтирани лабораторни маси. Когато ги поставяте, трябва да се стремите светлината да пада отпред или отстрани на работещия, за предпочитане от лявата страна, но в никакъв случай отзад. Желателно е стаите за анализ, особено за микроскопия, да имат прозорци, ориентирани на север или северозапад, тъй като за работа е необходима дори дифузна светлина. Осветеността на повърхността на масите за работа трябва да бъде 500 лукса. За удобство на дезинфекцията повърхността на лабораторните маси е покрита с пластмаса или тапицирана с желязо. За всеки лаборант се обособява отделно работно място с размери 150х60 см.

Всички работни места са оборудвани с предмети, необходими за ежедневна бактериологична работа, чийто списък е даден в таблица 1.

Маса 1.

Необходими предмети за бактериологична работа

Име на предмета	Приблизително количество
1. Комплект бои и реактиви за оцветяване
2. Слайдове	25-50
3. Покривни стъкла	25-50
4. Чаши с дупки	5-10
5. Поставка за епруветки
6. Бактериална примка
7. Стъклени шпатули
8. Метални шпатули
9. Буркан с памук
10. Пипети градуирани 1, 2, 5, 10 ml	25 от всеки том
11. Пастьорови пипети	25-50
12. Пинсета, ножица, скалпел	до 1
13. Контейнери с дезинфекционни разтвори
14. Микроскоп с осветител
15. Лупа 5 ´
16. Маслен съд с масло за потапяне
17. Филтърна хартия	3-5 листа
18. Буркан с дезинфекционен разтвор за пипети
19. Алкохолна или газова горелка
20. Инсталация за оцветяващи препарати
21. Пясъчен часовник за 1 или 2 минути	до 1
22. Круша с гумена тръба
23. Молив върху стъкло
24. Буркан със спиртни тампони
25. Необходими стерилни съдове	-

Дезинфекция

Дезинфекцията е унищожаване на микроорганизми в обекти на околната среда.

В микробиологичните лаборатории мерките за дезинфекция се използват много широко. При приключване на работа с инфекциозен материал служителите на бактериологичните лаборатории извършват превантивна дезинфекция на ръцете и работното място.

Отработеният патологичен материал (изпражнения, урина, храчки, различни видове течности, кръв) се подлага на дезинфекция, преди да се изхвърли в канализацията.

Градуирани и пастьорови пипети, стъклени шпатули и метални инструменти, замърсени с патологичен материал или култура от микроби, веднага след употребата им се спускат в стъклени буркани с дезинфекционен разтвор, разположени на масата на всяко работно място.

Предметните стъкла и покривните стъкла, използвани в работата, също подлежат на задължителна дезинфекция, тъй като дори в фиксирана и оцветена намазка понякога остават жизнеспособни микроорганизми, които могат да бъдат източник на вътрелабораторно замърсяване. Само тези съдове, в които са отглеждани микроорганизми, не се третират с дезинфектанти. Сгъва се в метални резервоари или биксове, запечатва се и се предава за автоклавиране.

Изборът на дезинфектант, концентрацията на разтвора му, съотношението между количеството на дезинфектанта и материала, който се дезинфекцира, както и продължителността на периода на дезинфекция се определят в зависимост от конкретните условия, като се вземат предвид, първо на всичко, стабилността на микробите, които се дезинфекцират, очакваната степен на замърсяване, състава и консистенцията на материала, в който се намират.

Дезинфекция на ръцете след работа със заразен материал и при контакт с кожата.В края на работа със заразен материал ръцете се дезинфекцират профилактично. Памучен тампон или марля се навлажнява с 1% разтвор на хлорамин, първо лявата и след това дясната ръка се избърсват в следната последователност: задната част на ръката, палмарната повърхност, междупръстните пространства, нокътните легла. Така първо се третират най-слабо замърсените участъци, след което се преминава към най-силно замърсените участъци от кожата. Избършете ръцете в продължение на 2 минути с два последователни тампона. Когато ръцете са замърсени с култура от патогенен микроб или патологичен материал, замърсените участъци от кожата първо се дезинфекцират. За тази цел те се покриват за 3-5 минути с памучна вата, навлажнена с 1% разтвор на хлорамин, след което памукът се изхвърля в резервоар или кофа с отпадъци и ръцете се третират с втори тампон в същото начин, както при превантивна дезинфекция. След третиране с хлорамин ръцете се измиват с топла вода и сапун. При работа с бактерии, които образуват спори, ръцете се третират с 1% активиран хлорамин. При попадане на инфекциозен материал върху ръцете експозицията на дезинфектанта се увеличава до 5 минути.

Стерилизация

Стерилизацията, за разлика от дезинфекцията, включва унищожаване на всички вегетативни и спорови, патогенни и непатогенни микроорганизми в стерилизирания обект. Стерилизацията се извършва по различни начини: пара, сух горещ въздух, кипене, филтриране и др. Изборът на един или друг метод на стерилизация се определя от качеството и свойствата на микрофлората на обекта, който се стерилизира.

Подготовка и стерилизация на лабораторно оборудване

Преди стерилизация лабораторната стъклария се измива и подсушава. Епруветки, бутилки, бутилки, дюшеци и колби се затварят с памучно-марлени запушалки. Над запушалките на всеки съд (с изключение на епруветките) се поставят хартиени капачки.

Гумените, корковите и стъклените запушалки се стерилизират в отделен плик, завързан на гърлото на съда. Петриевите блюда се стерилизират опаковани в хартия по 1-10 бр. Пастьорови пипети 3-15 бр. увити в опаковъчна хартия. В горната част на всяка пипета се поставя парче памучна вата, за да се предотврати навлизането на материала в околната среда. Когато опаковате пипетите, трябва да се внимава много да не се счупят запечатаните краища на капилярите. По време на работа пипетите се изваждат от опаковката за горния край.

В горната част на градуираните пипети се вкарва предпазна памучна вата, както при пипетите на Пастьор, след което се увива в дебела хартия, предварително нарязана на ленти с ширина 2-2,5 см и дължина 50-70 см. Лентата се поставя на масата , левият му край е сгънат и ги увийте с върха на пипетата, след това, като завъртите пипетата, увийте върху нея хартиена лента. За да не се разгъне хартията, противоположният й край се усуква или залепва. Обемът на увитата пипета е написан на хартия. Ако има каси, в тях се стерилизират градуирани пипети.

Стерилизирайте лабораторни съдове

а) суха топлина при 180°C и 160°C съответно за 1 час и 150 минути.

б) в автоклав при налягане 1,5 atm. в рамките на 60 минути, за унищожаване на споровата микрофлора - 90 минути при 2 atm.

Стерилизация на спринцовки. Спринцовките се стерилизират разглобени: отделно цилиндъра и буталото в 2% разтвор на натриев бикарбонат за 30 минути. При работа със спороносна микрофлора стерилизацията се извършва в автоклав при 132±2°C (2 atm.) за 20 минути, при 126±2°C (1,5 atm.) - 30 минути. Стерилизираната спринцовка се събира, след като се охлади, в цилиндъра се поставя бутало, поставя се игла, след отстраняване на дорника от нея. Иглата, цилиндъра и буталото се вземат с пинсети, които се стерилизират заедно със спринцовка.

Стерилизация на метални инструменти. Металните инструменти (ножици, скалпели, пинсети и др.) се стерилизират в 2% разтвор на натриев бикарбонат, което предпазва от ръжда и загуба на острота. Препоръчително е остриетата на скалпелите и ножиците да се увият с памучна вата преди потапяне в разтвора.

Стерилизация на бактериални бримки. Бактериалните бримки, изработени от платинена или нихромова тел, се стерилизират в пламъка на алкохолна или газова горелка. Този метод на стерилизация се нарича калциниране или пламък.

Примката в хоризонтално положение се поставя в долната, най-студена част на пламъка на горелката, така че изгореният патогенен материал да не се пръска. След като изгори, примката се прехвърля във вертикално положение, като първо долната, а след това горната част на жицата се нагрява до червено и държачът на примката се изгаря. Запалването като цяло отнема 5-7 s.

Препарат за стерилизация и стерилизация на хартия, марля и памук. Памучна вата, марля, филтърна хартия се стерилизират в пещ със суха топлина при температура 160 ° C в продължение на един час от момента, в който температурата е показана с термометър или в автоклав при налягане 1 atm. в рамките на 30 минути.

Преди стерилизация хартията и марлята се нарязват на парчета, а памучната вата се навива под формата на топки или тампони с желания размер. След това всеки вид материал поотделно, едно или повече парчета, се увива в плътна хартия. Ако опаковката е счупена, стерилизираният материал трябва да се стерилизира отново, тъй като неговата стерилност е нарушена.

Стерилизация на ръкавици и други каучукови изделия. Гумени изделия (ръкавици, тръби и др.), Замърсени с вегетативна форма на микроби, се стерилизират чрез кипене в 2% разтвор на натриев бикарбонат или течаща пара в продължение на 30 минути; при замърсяване със спороносна микрофлора, в автоклав при налягане 1,5-2 atm. в рамките на 30 или 20 минути. Преди стерилизация гумените ръкавици се поръсват отвътре и отвън с талк, за да се предпазят от залепване. Между ръкавиците се поставя марля. Всеки чифт ръкавици се увиват отделно в марля и в този вид се поставят в бикс.

Стерилизация на патогенни микробни култури. Епруветки и чаши, съдържащи микробни култури, които не са необходими за по-нататъшна работа, се поставят в метален резервоар, капакът се запечатва и се предава за стерилизация. Култури от патогенни микроби, вегетативни форми, се убиват в автоклав за 30 минути при налягане 1 atm. Доставката на резервоари за стерилизация в автоклава се извършва от специално назначено лице срещу разписка. Режимът на стерилизация се записва в специален дневник. При унищожаване на култури от микроби от групи I и II на патогенност, както и материал, заразен или заподозрян за заразяване с патогени, причислени към тези групи, резервоарите с отпадъчен материал се прехвърлят върху метални тави с високи стени в присъствието на придружаващо лице, допуснато за работа със заразен материал.

Видове стерилизация

Стерилизация чрез варене. Стерилизирането чрез варене се извършва в стерилизатор. В стерилизатора се налива дестилирана вода, тъй като чешмяната вода образува котлен камък. (Стъклените предмети се потапят в студена, металните в гореща вода с добавка на натриев бикарбонат). Стерилизираните продукти се варят на слаб огън за 30-60 минути. За начало на стерилизация се счита моментът на завиране на водата в стерилизатора. В края на изваряването инструментите се вземат със стерилна пинсета, която се изварява заедно с останалите предмети.

Стерилизация със суха топлина. Стерилизацията чрез суха топлина се извършва в пещ на Пастьор. Подготвеният за стерилизация материал се поставя върху рафтовете, така че да не влиза в контакт със стените. Килерът се затваря и след това се пуска парното. Продължителността на стерилизацията при температура 150°C е 2 часа, при 165°C - 1 час, при 180°C - 40 минути, при 200°C - 10-15 минути (при 170°C хартията и памукът се обръщат жълто, а при по-висока температура овъглено). Началото на стерилизацията е моментът, когато температурата във фурната достигне желаната височина. В края на периода на стерилизация фурната се изключва, но вратите на шкафа не се отварят, докато не се охлади напълно, тъй като студеният въздух, навлизащ в шкафа, може да причини пукнатини по горещите съдове.

Парна стерилизация под налягане. Парна стерилизация под налягане се извършва в автоклав. Автоклавът се състои от два котела, поставени един в друг, корпус и капак. Външният котел се нарича водно-парна камера, вътрешният се нарича стерилизационна камера. Парата се произвежда в парен котел. Материалът за стерилизация се поставя във вътрешния котел. В горната част на стерилизационния съд има малки отвори, през които преминава парата от парната камера. Капакът на автоклава е херметически завинтен към корпуса. В допълнение към изброените основни части, автоклавът има редица части, които регулират работата му: манометър, водомерно стъкло, предпазен клапан, кранове за изпускане, въздух и конденз. Манометърът се използва за определяне на налягането, което се създава в стерилизационната камера. Нормалното атмосферно налягане (760 mm Hg. Art.) се приема за нула, следователно в неактивен автоклав стрелката на манометъра е на нула. Съществува определена връзка между показанията на манометъра и температурата (Таблица 2).

Таблица 2.

Съотношението на показанията на манометъра и точката на кипене на водата

Червената линия на скалата показва максималното допустимо работно налягане в автоклава. Предпазният клапан служи за защита срещу прекомерно натрупване на налягане. Той е настроен на предварително определено налягане, т.е. налягането, при което трябва да се извърши стерилизацията, когато стрелката на манометъра излезе извън линията, вентилът на автоклава автоматично се отваря и изпуска излишната пара, като по този начин забавя по-нататъшното повишаване на налягането .

На страничната стена на автоклава има мерно стъкло, показващо нивото на водата в парния котел. Върху тръбата на водомерното стъкло са нанесени две хоризонтални линии - долна и горна, показващи съответно допустимите долни и горни нива на водата във водно-парната камера. Въздушният кран е предназначен да отстранява въздуха от камерите за стерилизация и водна пара в началото на стерилизацията, тъй като въздухът, като лош топлопроводник, нарушава режима на стерилизация. В долната част на автоклава има кондензиращ кран за освобождаване на стерилизационната камера от кондензата, образуван при нагряването на стерилизирания материал.

Правила за автоклав. Преди да започнете работа, проверете автоклава и инструментите. В автоклавите с автоматичен контрол на парата стрелките на електровакуумния манометър на камерата за водна пара се настройват в съответствие с режима на стерилизация: долната стрелка е настроена на 0,1 atm. долна, горна - с 0,1 атм. над работното налягане водно-парната камера се напълва с вода до горната маркировка на мерителното стъкло. По време на пълнене с вода, клапата на тръбата, през която влиза парата в камерата, се държи отворена, за да може свободният въздух да излиза от котела. Стерилизационната камера на автоклава се зарежда с материала за стерилизация. След това капакът (или вратата) на автоклава се затваря, плътно закрепен с централна ключалка или болтове; за да се избегне изкривяване, болтовете се завинтват на кръст (в диаметър). След това включете източника на топлина (електрически ток, пара), като затворите вентила на тръбата, свързваща източника на пара със стерилизационната камера. С началото на изпарението и създаването на налягане в камерата за вода и пара се извършва продухване (отстранява се въздух от стерилизационния котел). Методът за отстраняване на въздуха се определя от конструкцията на автоклава. Първоначално въздухът излиза на отделни порции, след което се появява равномерна непрекъсната струя пара, което показва, че въздухът е напълно изгонен от стерилизационната камера. След отстраняване на въздуха вентилът се затваря и започва постепенно повишаване на налягането в стерилизационната камера.

Началото на стерилизацията е моментът, в който манометърът покаже зададеното налягане. След това интензивността на нагряване се намалява, така че налягането в автоклава да остане на същото ниво за необходимото време. В края на времето за стерилизация нагряването се спира. Затворете вентила в тръбопровода, подаващ пара към стерилизационната камера, и отворете клапана на тръбата за кондензат (надолу), за да намалите налягането на парата в камерата. След като стрелката на манометъра падне до нула, бавно разхлабете затягащите устройства и отворете капака на автоклава.

Температурата и продължителността на стерилизацията се определят от качеството на стерилизирания материал и свойствата на микроорганизмите, с които е заразен.

Контролът на температурата в стерилизационната камера се извършва периодично с помощта на бактериологични тестове. Биотестовете се произвеждат от бактериологичните лаборатории на Централната епидемиологична служба. Ако тези тестове не успеят, се проверява техническото състояние на автоклава.

Парна стерилизация. Стерилизирането с течна пара се извършва в апарат с течна пара на Кох или в автоклав с незавинтен капак и отворен изходен кран. Апаратът на Кох е метален кух цилиндър с двойно дъно. Пространството между горната и долната долна плоча се запълва 2/3 с вода (има кран за източване на водата, останала след стерилизацията). Капакът на апарата има отвор в центъра за термометър и няколко малки отвора за излизане на парата. Материалът за стерилизация се зарежда свободно в камерата на апарата, за да се осигури възможност за най-голям контакт с парата. Началото на стерилизацията е времето от момента, в който водата заври и парата влезе в стерилизационната камера. В апарат с течна пара се стерилизират предимно хранителни среди, чиито свойства се променят при температури над 100°C. Стерилизирането с течаща пара трябва да се повтори, тъй като еднократното нагряване при температура 100 ° C не осигурява пълна дезинфекция. Този метод се нарича фракционна стерилизация: обработката на стерилизирания материал с течаща пара се извършва в продължение на 30 минути всеки ден в продължение на 3 дни. В интервалите между стерилизациите материалът се поддържа при стайна температура, за да покълнат спорите във вегетативни форми, които умират при последващо нагряване.

Тиндализация. Тиндализацията е фракционна стерилизация при използване на температури под 100°C, предложена от Tyndall. Нагряването на материала за стерилизация се извършва във водна баня, оборудвана с термостат, за един час при температура 60-65 ° C за 5 дни или при 70-80 ° C за 3 дни. Между нагряванията обработеният материал се държи при температура 25°C, за да покълнат спорите във вегетативни форми, които умират при следващи нагрявания. Тиндализацията се използва за дехидратиране на хранителни среди, съдържащи протеин.

Механична стерилизация с бактериални ултрафилтри. Бактериалните филтри се използват за освобождаване на течността от бактериите в нея, както и за отделяне на бактерии от вируси, фаги и екзотоксини. Вирусите не се задържат от бактериални филтри и следователно ултрафилтрацията не може да се счита за стерилизация в общоприетия смисъл на думата. За производството на ултрафилтри се използват фино порести материали (каолин, азбест, нитроцелулоза и др.), които могат да улавят бактерии.

Азбестовите филтри (Seitz филтри) са азбестови плочи с дебелина 3-5 mm и диаметър 35 и 140 mm за филтриране на малки и големи обеми течност. У нас азбестовите филтри се произвеждат в два класа: “F” (филтриращи), задържащи суспендирани частици, но пропускащи бактерии, и “SF” (стерилизиращи), по-плътни, задържащи бактерии. Преди употреба азбестовите филтри се монтират във филтърни апарати и заедно с тях се стерилизират в автоклав. Азбестовите филтри се използват еднократно. Мембранните ултрафилтри са изработени от нитроцелулоза и представляват бели дискове с диаметър 35 mm и дебелина 0,1 mm.

Бактериалните филтри се различават по размер на порите и са обозначени със серийни номера (Таблица 3).

Таблица 3

Бактериални филтри

Мембранните филтри се стерилизират чрез кипене непосредствено преди употреба. Филтрите се поставят в дестилирана вода, загрята до температура 50-60°С, за да се предотврати тяхното усукване, варят се на тих огън 30 минути, като водата се сменя 2-3 пъти. Стерилизираните филтри се изваждат от стерилизатора с фламбирани и охладени пинсети с гладки върхове, за да се избегнат повреди.

За филтриране на течности бактериалните филтри се монтират в специални филтърни устройства, по-специално във филтъра Seitz.

Състои се от 2 части: горна, оформена като цилиндър или фуния, и долна опорна част на апарата, с така наречената филтърна маса, изработена от метална мрежа или чиста керамична плоча, върху която има мембранен или азбестов филтър. е поставен. Носещата част на апарата има формата на фуния, чиято заострена част е разположена в гумената запушалка на гърлото на Бунзенова колба. В работно състояние горната част на устройството е фиксирана към долната с винтове. Преди започване на филтрацията, връзките на различните части на инсталацията се запълват с парафин за създаване на херметичност. Изходната тръба на колбата е свързана с дебелостенна гумена тръба към водоструйна, маслена или велосипедна помпа. След това филтрираната течност се излива в цилиндъра или фунията на апарата и помпата се включва, създавайки вакуум в приемния съд. В резултат на получената разлика в налягането филтрираната течност преминава през порите на филтъра в приемника. Микроорганизмите остават на повърхността на филтъра.

Приготвяне на цитонамазки

За изследване на микроорганизми в оцветена форма се прави намазка върху предметно стъкло, изсушава се, фиксира се и след това се оцветява.

Тестовият материал се разстила на тънък слой върху повърхността на добре обезмаслено предметно стъкло.

Натривки се приготвят от микробни култури, патологичен материал (храчки, гной, урина, кръв и др.) И от органи на трупове.

Техниката за приготвяне на намазки се определя от естеството на изследвания материал.

Изготвяне на намазки от микробни култури с течна хранителна среда и от течен патологичен материал (урина, цереброспинална течност и др.). Малка капка от тестваната течност се нанася с бактериална примка върху предметно стъкло и примките се разпределят с кръгови движения в равномерен слой под формата на кръг с диаметър на монета от стотинка.

Изготвяне на кръвни натривки. Капка кръв се нанася върху предметното стъкло, по-близо до единия му край. Второто - полирано - стъкло, което трябва да е по-тясно от предметното стъкло, се поставя върху първото под ъгъл 45° и се доближава до капката кръв, докато влезе в контакт с нея. След като кръвта се разтече по полирания ръб, стъклото се плъзга отдясно наляво, като кръвта се разпределя равномерно в тънък слой по цялата повърхност на стъклото. Дебелината на щриха зависи от ъгъла между стъклата: колкото по-остър е ъгълът, толкова по-тънък е щрихът. Правилно приготвената намазка има светлорозов цвят и еднаква дебелина навсякъде.

Приготвяне на гъста капка. Капка кръв се нанася в средата на предметното стъкло с пастьорова пипета или стъклото се нанася директно върху изпъкналата капка кръв. Кръвта, нанесена върху стъклото, се намазва с бактериална бримка, така че диаметърът на полученото петно ​​да съответства на размера на монета от пени. Стъклото се оставя в хоризонтално положение, докато кръвта изсъхне. Кръвта в "дебелата капка" се разпределя неравномерно, образувайки неравен ръб.

Приготвяне на намазка от вискозен материал (храчка, гной). Храчките или гнойта, отложени върху предметно стъкло по-близо до тесния ръб, се покриват с друго предметно стъкло. Чашите са леко притиснати една към друга.

След това свободните краища на очилата се хващат с 1 и 2 пръста на двете ръце и се разпръскват в противоположни посоки, така че при движение двете чаши да прилягат плътно една към друга. Намазките се получават с равномерно разпределен материал, заемащ голяма площ.

Приготвяне на цитонамазка от култури с плътна хранителна среда. Капка вода се нанася в средата на чисто, добре обезмаслено предметно стъкло, в него се вкарва бактериална бримка с малко количество от изследваната микробна култура, така че капката течност да стане леко мътна. След това излишъкът от микробен материал върху примката се изгаря на пламък и намазката се приготвя по горния метод.

Приготвяне на цитонамазки от органи и тъкани. С цел дезинфекция повърхността на органа се обгаря с нагорещени клончета на пинсети, на това място се прави разрез и с остри ножици се изрязва малко парче тъкан от дълбочина, което се поставя между две предметни стъкла. . След това продължете по същия начин, както при приготвянето на намазка от гной и храчки. Ако тъканта на органа е плътна, тогава се прави изстъргване от дълбочината на разреза със скалпел. Полученият чрез остъргване материал се разнася на тънък слой върху повърхността на стъклото със скалпел или бактериална примка.

За изследване на взаимното разположение на елементите на тъканта и микроорганизмите в нея се правят намазки. За целта се улавя с пинсета малко парче тъкан, изрязано от средата на органа, и се нанася последователно няколко пъти с изрязаната повърхност върху предметното стъкло, като по този начин се получават поредица от петна-отпечатъци.

Изсушаване и фиксиране на петна. Намазка, приготвена върху предметно стъкло, се изсушава на въздух и се фиксира след пълно изсъхване. При фиксиране намазката се фиксира върху повърхността на предметното стъкло и следователно по време на последващото оцветяване на препарата микробните клетки не се отмиват. Освен това убитите микробни клетки се оцветяват по-добре от живите.

Прави се разлика между физичен метод на фиксиране, който се основава на въздействието на висока температура върху микробна клетка, и химични методи, включващи използването на агенти, които предизвикват коагулация на протеини. Невъзможно е да се фиксират петна, съдържащи патогени от I-II група на патогенност над пламъка.

Физически метод на фиксиране. Предметното стъкло с препарата се взема с пинсети или I и II пръст на дясната ръка зад ребрата с удар нагоре и с плавно движение 2-3 пъти над горната част на пламъка на горелката. Целият процес на фиксиране трябва да отнеме не повече от 2 s. Надеждността на фиксирането се проверява чрез следната проста техника: върху задната повърхност на лявата ръка се нанася повърхността на предметното стъкло, свободно от намазката. При правилно фиксиране на намазката стъклото трябва да е горещо, но да не предизвиква усещане за изгаряне.

Химическа фиксация. Химикалите и съединенията, показани в таблица 4, също се използват за фиксиране на петна.

Таблица 4

Вещества за химична фиксация

Стъклото с изсъхнало петно ​​се потапя в бутилка с фиксиращ агент и след това се суши на въздух.

Оцветяване на щрихи

Техника за оцветяване на петна. За оцветяване на петна се използват разтвори на боя или оцветяваща хартия, предложена от A.I. Син. Лекотата на приготвяне, лекотата на използване, както и възможността за съхранение на хартията за оцветяване за неопределено дълго време бяха основата за широкото им използване в различни методи за оцветяване.

Оцветяване на щрихи с хартия за оцветяване. Върху изсъхналия и фиксиран препарат се нанасят няколко капки вода, поставят се цветни хартии с размери 2х2 см. През цялото време на оцветяване хартията трябва да остане влажна и да прилепва плътно към стъклената повърхност. При сушене хартията се навлажнява допълнително с вода. Продължителността на оцветяването на цитонамазката се определя от метода на оцветяване. В края на оцветяването хартията се отстранява внимателно с пинсети, а петното се измива с чешмяна вода и се изсушава на въздух или филтърна хартия.

Оцветяване на петна с багрилни разтвори. Върху изсушения и фиксиран препарат с пипета се нанася багрило в такова количество, че да покрие цялата натривка. При оцветяване на петна с концентрирани разтвори на багрила (карбов фуксин на Ziehl, карболова тинтява или кристално виолетово), оцветяването се извършва през филтърна хартия, която задържа частиците на багрилото: лента от филтърна хартия се поставя върху фиксирана петна и върху нея се излива разтвор на багрилото. то.

За микроскопско изследване се оцветяват приготвени петна, изсушени и фиксирани. Оцветяването е просто и сложно. Простото оцветяване се състои в нанасяне на която и да е боя върху петно ​​за определен период от време. Най-често алкохол-вода (1:10) фуксин на Pfeiffer, метиленово синьо на Leffler и сафранин се използват за просто оцветяване. Еозинът, като кисело багрило, се използва само за оцветяване на цитоплазмата на клетките и оцветяване на фона. Киселинният фуксин е напълно неподходящ за оцветяване на бактерии.

снимка от lentachel.ru

Само преди сто години инфекцията по време на научни изследвания се смяташе за почти неизбежна. Много учени излагат тялото си на риск от смърт, като изучават микроби и бактерии, чиято природа е била малко известна. Днес повечето от опасните микроорганизми, които ни заобикалят, са описани и проучени, освен това има специални медицински устройства за бактериологични лаборатории, чието използване с 99% вероятност предпазва изследователите от всякакви професионални рискове.

Всички предмети, с които работят служителите на бактериологичната лаборатория, са наситени с патогенна микрофлора. За поддържане на здравословна среда в помещението, за избягване на директен контакт със замърсен материал се използват мебели, дрехи и прибори с повишени бариерни и антимикробни свойства.

Херметически затворени остъклени и метални шкафове и кутии, лабораторни маси, удобни за дезинфекция, стерилизация и автоклавно оборудване, както и заключващ се хладилник са елементи, които гарантират безопасността на хората, извършващи изследвания на заразени проби.

Всички прибори, използвани за съхранение на проби: колби, градуирани чаши, са херметически затворени, за да се избегне разпространението на микроби във въздуха на лабораторията.

За производството на контейнери се използва специално нечупливо стъкло или пластмаса с висока якост. Двойните стени, специалната стабилна форма на дъното, гумените елементи на капаците, тарелките и кюветите създават най-добрите условия за изолиране на опасни съседи като менингококи, стрептококи, стафилококи, бацили и клостридии.

Преди да започне изследването, персоналът облича специално облекло: предпазна рокля, маска, очила. За работа с много опасни вещества се използват гумирани престилки или специални рокли с водоотблъскваща импрегнация.

Правилната навременна обработка на въздуха с ултравиолетови облъчватели и бактерицидни лампи, използването на доказани модификации на измиване, снабдяването на всички служители с пълен комплект защитно облекло е общоприет стандарт, отклонението от което е административно, а в случай на тежки последици - наказателно наказуемо.

Интегрираното оборудване и прилагането на всички предпазни мерки спомагат за запазването на здравето на служителите, намаляват професионалната заболеваемост и осигуряват висока ефективност на изследванията: забелязано е, че използването на надеждни, доказани предпазни средства намалява тревожността, насърчава по-бързи и по-ефективни действия.

бактериологична лаборатория

Бактериологичната лаборатория е обособена като самостоятелно поделение през 1996г.

Ръководител - кандидат на медицинските науки, бактериолог от най-висока категория Поликарпова Светлана Вениаминовна

ПРИОРИТЕТНИ НАПРАВЛЕНИЯ НА ДЕЙНОСТ

В бактериологичната лаборатория се извършват следните видове анализи:

Бактериологично изследване на кръв (хемокултура) и цереброспинална течност;
- бактериологично изследване на храчки, трахеален аспират, бронхиални промивки;
- бактериологично изследване на възпаление, отделено от различни огнища: тонзило-фарингит, отит, синузит и др.;
- бактериологично изследване на пунктати, изливи, ексудати;
- бактериологично изследване на лигавицата на фаринкса и носа за условно патогенна микрофлора;
- бактериологично изследване на урина с определяне на степента на бактериурия;
- бактериологично изследване на изхвърлянето на гениталните органи за условно патогенна микрофлора;
- бактериологично изследване на отделящата се конюнктива;
- изследване на изпражнения за патогенна чревна флора;
- бактериологично изследване на изпражненията за дисбактериоза;
- бактериологично изследване на кърма;
- качествено определяне на антигена на стрептококи от група В;
- качествено определяне на антигена Helicobacter pylori в човешки изпражнения;
- качествено определяне на антигена на токсините А и В Clostridium труден в човешки изпражнения;
- оценка на чувствителността/резистентността на изолирани микроорганизми към антибиотици.

ПОСТИЖЕНИЯ

В бактериологичната лаборатория се провеждат изследвания за изолиране, идентифициране и определяне на чувствителността към антибиотици на патогенни и условно патогенни микроорганизми, изолирани от различни биоматериали.

Въз основа на принципите на класическата клинична микробиология, лабораторията е въвела нови методи за изследване, базирани на най-новите постижения в молекулярно-генетичните технологии.

Бактериологичната лаборатория извършва микробиологични изследвания, които отговарят на съвременните руски и международни стандарти.

Всяка година персоналът на лабораторията извършва бактериологично изследване на повече от 10 000 пациенти, хоспитализирани в болнични отделения, 6 000 пациенти и новородени от родилния дом, повече от 5 000 пациенти от CDC и EAO поликлиники, извършвайки повече от 45 000 микробиологични анализа годишно.

На базата на лабораторията е разработено и постоянно се модернизира "Автоматизирано работно място на микробиолог, епидемиолог и химиотерапевт", включващо две програми: СИСТЕМА ЗА МИКРОБИОЛОГИЧЕН МОНИТОРИНГ "МИКРОБ" (СММ). Програмите позволяват да се решат основните задачи на микробиологичната служба на болницата: непрекъснат мониторинг на микробния пейзаж и нивото на неговата антибиотична резистентност за предписване на адекватна антибиотична терапия и своевременно откриване на случаи на инфекции, свързани със здравни грижи (HAI).

За осигуряване на добро качество на микробиологичните изследвания в работата на лабораторията се въвеждат:

• Система за управление на качеството по стандарт GOST R ISO 15189-15

Медицински лаборатории. Особени изисквания за качество и компетентност”;

• Основи Постнотехнологии (Lean production) - подходи за управление на лабораторията, насочени към подобряване на качеството на работа чрез намаляване на загубите: материални, финансови, временни;
• Система 5S- инструмент за икономично производство - организиране на работното пространство с цел създаване на оптимални условия за извършване на операции, поддържане на ред, чистота, точност, спестяване на време и енергия.

От 2014 г. лабораторията участва в международната програма за контрол на антибиотичната резистентност в страните от Централна Азия и Източна Европа, организирана от СЗО(UK NEQAS) Лабораторията участва във външната оценка на качеството на лабораторните изследвания като експертна лаборатория в секция „Клинична микробиология” (ФСВОК).

В продължение на много години бактериолозите провеждат сертификационни цикли за усъвършенстване „Съвременни методи на изследване в клиничната микробиология“ на базата на болницата за служители със средно медицинско образование в московското здравно заведение.

ВИСОКА ТЕХНОЛОГИЯ

• Въвеждане на молекулярно-генетичните методи в диагностиката на инфекциозните заболявания - методът на полимеразната верижна реакция (PCR) "в реално време";

• определяне на основните механизми на развитие и разпространение на бактериална резистентност към антибактериални лекарства чрез фенотипни и генотипни методи;

• използването на имунохроматографски експресни методи (IMCT) за етиологична диагностика на патогени на инфекциозни и възпалителни заболявания;

• създаване и внедряване на електронен модул за експертни становища за бактериолози, лекуващи лекари, клинични фармаколози за интерпретиране на резултатите от определяне на чувствителността на микроорганизмите към антимикробни лекарства и идентифициране на механизми на резистентност.

НАУЧНА ДЕЙНОСТ

За времето на съществуване на звеното в лабораторията са изработени 2 докторски дисертации. Служителите на отдела редовно правят презентации на международни, общоруски, градски конгреси, конференции, симпозиуми и семинари, редовно се публикуват в научни и практически публикации.

Бактериологичната лаборатория си сътрудничи с:

• Федерален изследователски център по епидемиология и микробиология на FSBI

тях. Почетен академик Н. Ф. Гамалея на MZRF”;

• FGAU "Научен център за детско здраве" на Министерството на здравеопазването на Руската федерация;
• Федерална държавна бюджетна научна институция "Медико-генетичен изследователски център" на Руската академия на медицинските науки;
• FBUN Централен изследователски институт по епидемиология на Роспотребнадзор;
• Московски изследователски институт по епидемиология и микробиология FBUN. Г. Н. Габричевски Роспотребнадзор;
• Катедра по репродуктивна медицина и хирургия, Московски държавен университет по медицина и стоматология на името на A.I. Evdokimov (MGMSU);

Научната работа се извършва в следните области:

• микробиологична диагностика и профилактика на инфекции, свързани със здравни грижи (HAI). Микробна екология в лечебните заведения.
• особености на микробиологичната диагностика на инфекции на долните дихателни пътища при пациенти с кистозна фиброза;
• изследване на механизмите на резистентност на ентеробактериите към антимикробни лекарства;
• разработване на алгоритми за експресна диагностика на носителство на стрептококи от група В при бременни и новородени.

СТАТИИ, КОНФЕРЕНЦИИ

2016 г

ЛАБОРАТОРНО ОБОРУДВАНЕ

В момента бактериологичната лаборатория е оборудвана с модерно оборудване:

• Автоматичен анализатор за хемокултура VersaTREК(TREK Diagnostic Systems) - възможност за диагностициране на сепсис възможно най-скоро - 90% от положителните резултати се откриват в рамките на първия ден. Максималното време за протокол за изследване е 5
• Бактериологичен анализатор за идентификация и изследване на чувствителността на микроорганизми Феникс 100(BD) - средното време за получаване на резултат за идентификация е 6-8 часа, средното време за получаване на резултат за антимикробна чувствителност е 12-16 часа.
• Полуавтоматичен анализатор iEMSчитател(ThermoLabsystems), което дава възможност не само за идентифициране и определяне на чувствителността на микроорганизмите, но и за решаване на много практически и научни проблеми: определяне на микробното замърсяване на урината и други биоматериали, лабораторен контрол на ефективността на антибиотичната терапия, оценка на бактерицидната активност на кръвния серум, както и изследване на кинетични модели на растеж на микроорганизми.

В работата на лабораторията е въведена информационна лабораторна система "АЛИСА", всяко работно място на бактериолог е компютъризирано.

ЕКИП

Пивкина Надежда Василиевна

Лекар-бактериолог от най-висока категория, има професионална преквалификация по специалността "Бактериология". Член на Международната асоциация на клиничните микробиолози и антимикробни химиотерапевти (IACMAC), член на Федерацията по лабораторна медицина (FLM). Съавтор е на много научни статии по проблеми на клиничната микробиология. Трудов стаж по специалността от 1992г.

Тимофеева Олга Генадиевна

Лекар-бактериолог от най-висока категория, преминал стаж по специалността "Бактериология", преминал курс за повишаване на квалификацията на тема "PCR анализ в клинико-диагностични лаборатории". Член на Федерацията по лабораторна медицина (FLM). В момента работи върху докторската си дисертация. Има публикации по проблеми на клиничната микробиология. Трудов стаж по специалността от 1996г.

Бондаренко Наталия Александровна

Лекар-бактериолог от първа категория, член на Федерацията по лабораторна медицина (FLM). Съавтор е на много научни статии по проблеми на клиничната микробиология. Трудов стаж по специалността от 1988г.

Балина Валерия Владимировна

Доктор-бактериолог, лекар по клинична лабораторна диагностика. Преминала е стаж по специалност „Клинична лабораторна диагностика”, има професионална преквалификация по специалност „Бактериология”. Преминало повишаване на квалификацията по темата "Молекулярно-генетични методи в диагностиката на инфекциозни заболявания". Член на Федерацията по лабораторна медицина (FLM). Трудов стаж по специалността от 2013г.

Медицински персонал

Работа в лабораторията:

• 1 медицински технолог
• 1 медицински лаборант
• 5 лаборанти
• 1 лаборант
• Всички служители имат най-висока квалификационна категория.

Страница 5 от 91

Бактериологични лаборатории съществуват към болници и поликлиники или независимо от тях за микробиологични изследвания. Те получават за изследване различни материали, получени от болни хора (храчка, урина, гной, изпражнения, кръв, цереброспинална течност и др.). Освен това има санитарни и бактериологични лаборатории, в които водата, въздухът и хранителните продукти се подлагат на бактериологичен контрол.
Ролята на бактериологичните лаборатории в профилактиката на инфекциозните заболявания също е голяма. Някои хора след прекарани инфекциозни заболявания (коремен тиф, дизентерия, дифтерия и др.) Продължават да отделят патогенни (патогенни) микроби в околната среда. Това са така наречените бактерионосители. Бактерионосители има и сред здрави хора. Идентифицирайки такива бактериологични носители, бактериологичните лаборатории помагат на здравните власти при провеждането на редица превантивни мерки.
Водата и хранителните продукти, замърсени с патогенни микроорганизми, могат да причинят епидемии (масови заболявания) от коремен тиф, холера и др., Ето защо ежедневният санитарен и бактериологичен контрол върху доброто качество на питейната вода, млякото и други продукти е толкова важен.
Бактериологичната лаборатория трябва да разполага с най-малко три стаи: 1) малка стая - рецепция за получаване и издаване на тестове; 2) среда и миене - за приготвяне на хранителни среди и миене на съдове; 3) лаборатория за производство на бактериологични изследвания. Желателно е да има помещение за отглеждане на опитни животни (вивариум). Всяка стая трябва да има подходящо обзавеждане (кухненски и лабораторни маси, различни шкафове, табуретки и др.).
Следва списък на най-важните елементи, необходими за ежедневната лабораторна работа. Целта на тяхното използване, начина на работа с тях, както и принципът на устройството са описани в съответните раздели на курса.
Оптични устройства. Биологичен микроскоп с имерсионна система, лупи, аглутиноскоп.
Уреди за стерилизация и нагряване. Автоклав, апарат с течна пара, фурна, Seitz филтри, термостати, стерилизатори за инструменти.
Оборудване за готварски среди. Фуния за гореща филтрация, фуния за наливане на медия, водна баня, тенджери с различни размери, кантар калибриран с тежести, месомелачка, метални и дървени стойки за филтриране.
Инструменти. Скалпели с различни форми и размери: маски, прави, извити, тъпи, чревни, анатомични, хирургически пинсети, спринцовки.
стъклени предмети. Предметни стъкла, предметни стъкла с дупка, покривни стъкла, бактериологични епруветки, къси епруветки за серологични реакции (аглутинация), центрофуги, чаши на Хайдепрейх *, стъклени епруветки и пръчици, градуирани пипети за 1, 2, 5, 10 ml, пипети на Пастьор , стъклени бутилки за бои с пипети, стъклени чаши и колби с различни размери, бутилки с различни размери, фунии за филтриране и др.

* Към днешна дата сред повечето микробиолози и в учебниците съдовете за получаване на изолирани колонии от микроби се наричат ​​блюда на Петри, а не ястия на Хайденрайх, което не отговаря на истинското състояние на нещата. Чашите са въведени за първи път в лабораторната практика от руския микробиолог Хайденрайх.

Разни артикули. Бактериална примка, платинена тел, гумени тръби, ръчни рогови везни с тежести, стойки (дървени, метални) за епруветки, термометри, клетки за животни, апарати за фиксиране на животни, центрофуга.
Химикали, бои, материали за медии и др. Агар-агар, желатин, бял на листове, масло за потапяне, филтърна хартия, абсорбираща и обикновена вата, марля, етилов алкохол, анилинови багрила (магента, генциан и кристално виолет, везувин, метилен синьо, неутрално, сафранин и др.), боя Гимза, киселини (азотна, солна, сярна, карболова, фосфорна, пикринова, оксалова и др.), алкали (калиев хидроксид, натриев хидроксид, амоняк, сода), соли (калиев нитрат , калиев перманганат калий, натриев сулфат, натриев хлорид и др.).

лабораторна маса

За провеждане на микробиологично изследване лаборантът трябва да има подходящо оборудвано работно място. Лабораторната маса трябва да има определена височина, за да може лесно да се микроскопира, докато седите на нея (фиг. 9). По възможност масата трябва да бъде покрита с линолеум, а всяко работно място да бъде покрито с поцинкована тава или огледално стъкло. Работното място трябва да бъде оборудвано с микроскоп, стелажи за епруветки и бои, платинена бримка и игла за култури, чаша с мост за препарати, шайба, пясъчен часовник, предметни и покривни стъкла, пипети, набор от бои, филтърна хартия, спиртна или газова горелка и буркан с дезинфекционен разтвор (лизол, карболова киселина, сублимат, хлорамин или лизоформ), където се потапят за дезинфекция използвани предметни стъкла и покривни стъкла, пипети, стъклени пръчици и др. се отглеждат не могат да се дезинфекцират с химикали. Следи от дезинфектанти върху такива съдове ги правят неподходящи за растеж и размножаване на микроорганизми. След употреба съдовете се поставят в метални резервоари или кофи с капак, запечатват се и се стерилизират в автоклав. Малки инструменти (пинсети, скалпели, ножици) след употреба се поставят в стерилизатор и се варят за 30-60 минути или се потапят в 3-5% сапунено-карбов разтвор на хлорамин за 30-60 минути.

Ориз. 9. Техника за микроскопиране на бактериологични обекти.

Работното място трябва да се поддържа абсолютно чисто. Недопустимо е масата да бъде замърсена с изследвания инфекциозен материал (урина, фекалии, гной и др.). В последния случай инфекциозният материал от масата може да попадне върху други околни предмети и тогава е възможна вътрелабораторна инфекция. След приключване на работа лаборантът трябва да приведе в ред работното място, за което отговаря, и за превенция да избърше стъклото на работното място с парче памук, навлажнено с 5% разтвор на карболова киселина или хлорамин.

Правила за работа и поведение в лабораторията

Когато работят с инфекциозен материал, лабораторните работници трябва да са наясно с възможността сами да се заразят и да пренесат инфекциозно заболяване в семейството, апартамента и т.н. Затова те трябва да бъдат внимателни, внимателни, подредени и педантични в работата си.
При работа в лаборатории трябва да се спазват следните правила:

1. За да бъдете в лабораторията и още повече да работите в нея, е необходимо да носите халат и шал или шапка.
2. Не се местете без нужда от една лабораторна зала в друга и използвайте само определеното за целта работно място и оборудване.
3. Не яжте и не пушете в лабораторията.
4. При работа с инфекциозен материал и живи култури използвайте подходящите инструменти: пинсети, куки, шпатули и други предмети, които след употреба подлежат на унищожаване или неутрализиране (обгаряне на пламък на горелка, кипене и др.). Изсмуквайте течен инфекциозен материал в пипети не с устата, а с помощта на цилиндри, круши, изсипвайте течност с инфекциозен материал от един съд в друг само върху всеки приемник (тава, леген), в който се излива дезинфекциращата течност (разтвор на карбол киселина, лизол). Инокулациите и субкултивирането трябва да се извършват чрез изгаряне на епруветки, шпатули, платинени бримки, пипети и др. върху пламъка на горелка.
5. Ако съдовете се счупят или се разлее течност, съдържаща инфекциозен материал или живи култури, незабавно дезинфекцирайте замърсеното работно място, дрехите и ръцете по най-щателния начин. Всичко това трябва да се извършва в присъствието или под наблюдението на ръководителя на лабораторията, който трябва незабавно да бъде уведомен за инцидента.
6. Всички използвани и ненужни предмети и материали трябва да бъдат унищожени, ако е възможно (най-добре чрез изгаряне или внимателно изхвърляне в стерилизатори или дезинфекционни течности).

Съберете всички предмети за дезинфекция вътре в лабораторията в специални приемници, резервоари, кофи с капак и др., прехвърлете ги затворени в автоклав, където могат да бъдат дезинфекцирани в същия ден. Доставянето на инфекциозен материал в автоклава и стерилизацията му трябва да се наблюдават от специално назначени отговорни лаборанти.

1. Спазвайте стриктна чистота и ред. Дезинфекцирайте и мийте ръцете възможно най-често през работния ден и след работа.
2. Лаборантите подлежат на задължителна ваксинация срещу основни инфекциозни заболявания (предимно срещу чревни).
3. Задължително е ежедневното количествено отчитане на всички живи култури и заразени животни с вписване в специални дневници и счетоводни книги.
4. След работа всички материали и култури, необходими за по-нататъшна работа, трябва да бъдат оставени в заключващ се хладилник или сейф, а работното място трябва да бъде приведено в пълен ред.
5. Ежедневно цялостно почистване на лабораторните помещения трябва да се извършва с мокър метод с дезинфекционна течност.

Наличието на различни бактерии в червата се счита за нормално. Тези бактерии участват в процесите на преработка, както и в усвояването на храната. Правилното храносмилане и функциониране на червата се доказва от изпражненията, състоящи се от малки безструктурни частици, наречени детрит.

За изследване на микробния състав на изпражненията се извършва анализ на резервоара. Ако броят на бактериите се увеличи, тогава човек има чревни патологии, коремна болка от различен характер, в изпражненията се появяват парчета несмляна храна. Това изследване ви позволява да идентифицирате причинителите на много заболявания.

Класификация на чревните бактерии

Въпреки това, след подробно проучване, те се класифицират в следните групи:

1. Здрави бактерии: лакто- и бифидобактерии, ешехерии. Тези микроорганизми активират функционирането на червата.
2. Условно патогенни: ентерококи, кандида, клостридии, стафилококи. Тези микроорганизми стават патогенни в резултат на определени обстоятелства и са способни да провокират развитието на различни патологии.
3. Патогенни: коли, клебсиела, протей, салмонела, шинела, сарцини. Тази група бактерии провокира развитието на сериозни заболявания.

Има различни методи за изследване на изпражненията. Един от най-разпространените методи е бакаанализът.

Какво е резервоар за фекален анализ?

Бактериологичното изследване на изпражненията ви позволява да изследвате неговия микробен състав, както и да определите наличието на патогени на последващи заболявания:

• шигелоза;
• дизентерия;
• салмонелоза;
• Коремен тиф;
• холера и други заболявания.

Анализът на изпражненията в резервоара отнема доста време. Проучването се провежда преди назначаването на антибиотична терапия.

Показания за изследване

Трябва да се подчертаят основните причини за даване на анализ на изпражненията:

Копрологичните изследвания позволяват да се идентифицират патологиите, възникващи в чревната кухина:

Предписва се и анализ на резервоара за диагностициране на патологии на храносмилателните органи.

Как се прави анализ на изпражненията?

Преди да се подложи на изследването, пациентът трябва да премине специално обучение в продължение на няколко дни.

• зеленина;
• цвекло;
• червена риба;
• домати.

В допълнение, резултатите от изследването могат да бъдат повлияни от месни продукти.

При подготовката за изследването е необходимо да спрете приема на антибиотици, противовъзпалителни лекарства и лекарства, съдържащи ензими и желязо.

Събирането на материал за изследване трябва да се извършва сутрин. За събиране на изпражнения използвайте стерилен контейнер, който можете да закупите в аптеката. Продължителността на съхранение на биоматериала в хладилника е не повече от 10 часа.

Как се правят изследванията?

Бактериологичното изследване на изпражненията ви позволява да определите физическия и химичния състав на материала, неговите свойства, наличието на патологии. Това изследване помага за откриване на бактерии в тялото, промени в биобаланса.

Допълнение bakanaliza е scatological анализ на изпражненията. Това изследване ви позволява да оцените наличието на специфична миризма на изпражнения, неговата консистенция и плътност, общ външен вид, наличие или отсъствие на микроорганизми.

Проучването включва 2 етапа:

1. макроскопски анализ.
2. Микроскопичен.

Микроскопското изследване разкрива слуз, протеини, повишени нива на билирубин, кръвни съсиреци, йодофилна флора в изпражненията. Последният се образува поради активни вещества, които превръщат нишестето в глюкоза. Откриването на йодофилна флора не показва инфекция във всички случаи. Натрупването на йодни бактерии, причинено от ферментацията, свидетелства за развитието на болестта.

Тъй като детският организъм не се бори добре с патогените, много често такива бактерии се диагностицират в изпражненията на децата.

Днес се използва методът за засяване на изследвания биоматериал в специална среда с определени условия. Експертите определят способността на бактериите да се размножават и да образуват колонии. За да получите точни резултати, всички използвани инструменти, както и съдовете със събран биоматериал, трябва да бъдат стерилни.

Патогенните микроорганизми се изследват за чувствителност към различни антибактериални лекарства. Проучването се характеризира с висока точност на резултатите, според които лекарят може да предпише лекарства.

Само 10% от общото количество на изследвания материал може да бъде патогенна микрофлора.

Дешифриране на резултатите

Изследването на изпражненията ви позволява да идентифицирате, както и да установите броя на всякакви бактерии. Въз основа на получените резултати лекарят поставя диагноза и предписва лечение.

Разновидности на патогенна микрофлора, които могат да бъдат намерени в изпражненията:

1. Ешерихия коли. Те пречат на усвояването на калция от организма, както и на желязото, и обикновено показват наличието на глисти.
2. Ентеробактерии. Най-често тези бактерии причиняват развитието на дизентерия и чревни инфекции.
3. Escherichia coli, с намалена ензимна активност, свидетелстват за образуване на дисбактериоза.
4. лактозо-отрицателни бактерии. Те причиняват смущения в храносмилателния процес и стават причина за метеоризъм, киселини, бързо оригване и чувство на тежест.
5. Хемолитични бактерии. Те образуват токсини, които влияят негативно на нервната система, както и на червата. Те причиняват алергии.
6. Дрождоподобни гъбичкипровокира развитието на млечница.
7. Клебсиела, провокира образуването на гастроентерологични патологии.
8. Ентерококи, провокират появата на инфекциозни патологии на гениталните органи, отделителните пътища и пикочно-половата система.

Декодирането на резервоара за анализ е посочено във формулярите, които също показват нормалните показатели на бактериите.

Чревната дисбактериоза е много опасна патология, която унищожава здравата микрофлора. Това състояние води до развитие на дизентерия и стафилококус ауреус. За да се избегне това, се препоръчва поне веднъж годишно да се прави анализ на изпражненията за контрол на чревния биобаланс.

Анализът на Buck се счита за надеждно изследване, което предоставя информация за функционирането на важни вътрешни органи: червата и стомаха. Проучването ви позволява своевременно да идентифицирате патогенни микроорганизми, които засягат нормалната микрофлора. Предписва се както за възрастни, така и за деца.