ჰელმინთოლოგიური მეთოდები. ტესტირება ენტერობიაზზე და ტენიაზზე

ჰელმინთების ფრაგმენტების გამოსავლენად განავალს ათვალიერებენ შეუიარაღებელი თვალით, შემდეგ ურევენ წყალს და მცირე ულუფებით იკვლევენ პეტრის ჭურჭელში მუქ ფონზე. ყველა საეჭვო ნაწილაკი მოთავსებულია შუშის სლაიდზე წყლის წვეთში და განიხილება გამადიდებელი შუშის ქვეშ. დღიური ნაწილი შეგიძლიათ მოათავსოთ ცილინდრში 5-10-ჯერ მეტი წყლის დამატებით. მორევის შემდეგ ჭურჭელს ტოვებენ, სანამ შეჩერებული ნაწილაკები მთლიანად არ დადნება. ზედაპირის ფენასითხეები იწურება და ასხამენ სუფთა წყალს. გარეცხილი ნალექი განიხილება მცირე ნაწილებში შეუიარაღებელი თვალით ან გამადიდებელი შუშის ქვეშ. კვერცხების აღმოსაჩენად გამოიყენება მიკროსკოპული გამოკვლევის მეთოდები.

მშობლიური ნაცხის მეთოდი. არა დიდი რაოდენობაგანავლის საწყისი სხვადასხვა ადგილებისატესტო ნაწილი იფქვება შუშის სლაიდზე 50% გლიცეროლის ხსნარის, იზოტონური ნატრიუმის ქლორიდის ხსნარში ან წყალში. ნარევს აფარებენ თავსახურს და ათვალიერებენ მიკროსკოპის ქვეშ.

Fulleborn მცურავი მეთოდი. განავლის ერთი ნაწილი შერეულია ნატრიუმის ქლორიდის გაჯერებული ხსნარის 20 ნაწილთან ( სპეციფიკური სიმძიმე 1.18), დამატებულია მცირე ნაწილებში. მსხვილი ნაწილაკები, რომლებიც ზედაპირზე ცურავს, მაშინვე ამოღებულია და ნარევი 45 წუთის განმავლობაში რჩება. ამ დროის განმავლობაში, ჰელმინთის კვერცხები, რომლებსაც აქვთ ნატრიუმის ქლორიდის ხსნარზე დაბალი ხვედრითი წონა, ცურავს ზედაპირზე. ზედაპირის ფილმი ამოღებულია მავთულის მარყუჟით დაახლოებით 1 სმ დიამეტრის და გადადის მინის სლაიდზე მიკროსკოპის ქვეშ შესამოწმებლად.

კალანტარიანი მეთოდი. მცურავი მეთოდის ეფექტურობა იზრდება ნატრიუმის ქლორიდის ნატრიუმის ნიტრატის გაჯერებული ხსნარით ჩანაცვლებისას. ამ შემთხვევაში ნარევი ინახება 10-15 წუთის განმავლობაში.

ნატრიუმის ქლორიდის ან ნატრიუმის ნიტრატის ხსნარით განავლის ნარევის ჩამოსხმის შემდეგ წარმოქმნილი ზედაპირის ფილმი ასევე შეიძლება მოიხსნას შუშის სლაიდით. ამ მიზნით განავლის ნაზავითა და მარილის ხსნარით სავსე ქილას აფარებენ შუშის სლაიდს ისე, რომ მისი ქვედა ზედაპირი კონტაქტში იყოს სითხესთან. დაბინძურების შემდეგ, შუშა ამოღებულია და სწრაფად აბრუნებს ზედაპირს, რომელზედაც მდებარეობს ფილმი, განიხილება მიკროსკოპის ქვეშ.

სპერიანალური ნაკეცების გახეხვა (ქინძის ჭიის კვერცხების და ონკოსფეროს იდენტიფიცირება მსხვილფეხა რქოსანი ლენტი) გააკეთეთ დილით ტუალეტში წასვლამდე. წყალში დასველებული ხის სპატულის ან 50%-იანი გლიცერინის ხსნარის გამოყენებით, გადაფხეხეთ ანუსის გარშემო. მიღებულ მასალას გადააქვთ შუშის სლაიდზე წყლის წვეთში ან 50%-იან გლიცეროლის ხსნარში და ათვალიერებენ მიკროსკოპის ქვეშ. სპატული შეიძლება შეიცვალოს ნესტიანი ბამბის ტამპონით, რომელიც გამოიყენება პერიანალური უბნის გასაწმენდად, შემდეგ კარგად ჩამოიბანეთ წყალში. წყალი ცენტრიფუგირებულია და ნალექი მიკროსკოპით შეისწავლება.

ბერმანის მეთოდი (ლარვების იდენტიფიცირებისთვის). შტატივში ჩასმული მინის ძაბრზე ფიქსირდება ლითონის ბადე, რომელზეც 5-6 გრ განავალია დატანილი. ძაბრის ქვედა ბოლოზე მოთავსებულია რეზინის მილი დამჭერით. ძაბრი ივსება 50°-მდე გახურებული წყლით, ისე რომ ქვედა ნაწილიგანავლის შემცველი ბადე წყალთან შევიდა. ლარვები აქტიურად გადადიან წყალში და გროვდებიან რეზინის მილის ქვედა ნაწილში. 4 საათის შემდეგ სითხე დრენირდება ცენტრიფუგის მილებში, ცენტრიფუგირდება და ნალექი მიკროსკოპით იკვლევება.

ნახველის, ცხვირის ლორწოს ანალიზი და ვაგინალური გამონადენიფილტვის ტრემატოდის პარაგონიმუსის კვერცხების იდენტიფიცირება, მრგვალი ჭიის და ანკილის ჭიის ლარვები, ჭიის კვერცხები და ექინოკოკური ბუშტის ფრაგმენტები. ლორწოს სატესტო ნაწილი (გამონადენი) იდება მინაზე და მაკროსკოპულად ათვალიერებენ შავ-თეთრ ფონზე, შემდეგ კი მიკროსკოპის ქვეშ. ტესტის მასალას შეგიძლიათ დაუმატოთ ანტიფორმინის 25%-იანი ხსნარი, კარგად შეანჯღრიოთ და 1-1,5 საათი გააჩეროთ ლორწოს გასახსნელად. ნარევი ცენტრიფუგირდება და ნალექი განიხილება მიკროსკოპის ქვეშ.

თორმეტგოჯა ნაწლავის და კუჭის წვენის ანალიზი ღვიძლის კვერცლების, ანკილის ჭიების და Strongyloides ლარვების კვერცხების გამოსავლენად. მიღებული თორმეტგოჯა ნაწლავის შიგთავსის სამივე ნაწილი ცენტრიფუგირებულია და ნალექი მიკროსკოპის ქვეშ განიხილება. ისინიც იკვლევენ.

ქსოვილის კვლევა. ტრიქინელას ლარვების იდენტიფიცირებისთვის, ბიოფსიური კუნთის ნაჭრები ფრთხილად იყოფა ბოჭკოებად, იწურება კომპრესორის ჭიქებს შორის (სქელი სათვალეები ხრახნებით) და მიკროსკოპის ქვეშ განიხილება ჩაბნელებული შუქით. ცისტიცერციების იდენტიფიცირებისთვის ხდება კუნთების ამოკვეთა გამჭრიახი ნემსებით, იზოლირებული ბუშტუკი იწმინდება მიმდებარე ქსოვილისგან, იკუმშება შუშის ორ სლაიდს შორის და იკვლევს გამადიდებელი შუშის ქვეშ.

სისხლის ტესტი (ფილარიის ლარვების გამოსავლენად). დაათვალიერეთ ჩამოკიდებული წვეთი საფარის მინაზე ვაზელინით ნაპირებზე. შეგიძლიათ შეურიოთ 0,3 მლ სისხლი 10-ჯერ მეტი 3%-იანი ხსნარით. ნარევი ცენტრიფუგირდება და ნალექი განიხილება მიკროსკოპის ქვეშ. წამლების 1 მლ-მდე გამდიდრებისთვის ვენური სისხლიდაამატეთ 3 მლ 2% ფორმალინის ხსნარი ან 5-ჯერ მეტი სითხის რაოდენობა, რომელიც შედგება 95 მლ 5% ფორმალინის ხსნარისგან, 5 მლ. ძმარმჟავადა 2 მლ ჰემატოქსილინის კონცენტრირებული ალკოჰოლური ხსნარი. ნარევი ცენტრიფუგირდება, ნალექი ირეცხება გამოხდილი წყლით და იკვლევენ მიკროსკოპის ქვეშ. დიფერენციაციისთვის სხვადასხვა სახისფილარიები გამოკვლეულია გიემსა-რომანოვსკის მეთოდით შეღებილი ნაცხის საშუალებით.

მეთოდები იმუნოლოგიური დიაგნოსტიკა. ასევე გამოიყენება ალერგიული დიაგნოსტიკური ტესტები (იხ.) შესაბამისი ტიპის ჰელმინთებით (აგლუტინაცია, კომპლემენტის ფიქსაცია).

ჰელმინთოლოგიური მეთოდებიკვლევა. ბრინჯი. ჰელმინთის კვერცხები. 1-10 - კვერცხი მრგვალი ჭიები(ნემატოდები): 1 - 3 - მრგვალი ჭიები (1 - განაყოფიერებული კვერცხუჯრედი, 2 - განაყოფიერებული კვერცხუჯრედი ალუბლის გარეშე, 3 - გაუნაყოფიერებელი კვერცხუჯრედი); 4 - კატის მრგვალი ჭიები; 5 - ხორცისმჭამელი მრგვალი ჭიები; 5 - pinworms; 7 - whipworm; 8 - ტომინქსი; 9 - hookworm; 10 - ტრიქო-სტრონგილიდი. 11-15 - კვერცხი ლენტის ჭიები(კესტოდები): 11 - მსხვილფეხა რქოსანი ლენტი; 12 - ჯუჯა ლენტი; 13 - ვირთხის ლენტი; 14 - გოგრის ლენტი; 15 ფართო ლენტი. 16 - 24 - ფლუკების კვერცხები (ტრემატოდები): 16 - ტრემატოდები (შისტოსომები) იაპონური; 17 - ტრემატოდები (შისტოსომები) შარდი - სქესობრივი; 18 - ტრემატოდები (შისტოსომები) მუნსონი; 19 - ტრემატოდები (პაროგონიმუსი) ფილტვისმიერი; 20 - ტრემატოდები (opisthorchis) ციმბირული (კატის); 21 - trematodes (clonorchis) chinensis; 22 - ნაწლავის ტრემატოდები (მეტაგონიმუსი); 23 - ღვიძლის ტრემატოდები (ფასციოლები); 24 - ტრემატოდები (დიკროცელიუმი) ლანცოლატი.

ჰელმინთოლოგიური კვლევის ეფექტური და მოსახერხებელი მეთოდია სქელი ნაცხის შესწავლა კატოს მიხედვით, რომლის არსი მდგომარეობს იმაში, რომ ჰელმინთის კვერცხები აღმოაჩინოს გლიცერინით გასუფთავებულ და მალაქიტის მწვანე განავლით სქელ ნაცხში. კატო ნარევის შემადგენლობა - 6 მლ 3% წყალხსნარიმალაქიტის მწვანე, 500 მლ გლიცერინი, 500 მლ 6% ფენოლის ხსნარი. ხსნარი სტაბილურია და შეიძლება ინახებოდეს ოთახის ტემპერატურაზე. პრეპარატების მოსამზადებლად, ბარდის ზომის განავლის ნაჭრებს სვამენ შუშის სლაიდზე, აფარებენ ჰიდროფილური ცელოფნის ფილას, რომელიც ინახება კატოს ნარევში 24 საათის განმავლობაში, და აჭერენ მინაზე. ერთგვაროვანი განაწილებამასალა. 40-60 წუთის განმავლობაში გაწმენდილი ნაცხი მიკროსკოპით იკვლევენ. აღმოჩენილი ჰელმინთის კვერცხები ითვლიან და მორფოლოგიური მახასიათებლებიგანსაზღვრეთ მათი სახეობები. მეთოდი საშუალებას გაძლევთ ამოიცნოთ მრგვალი ჭიების, მათრახის ჭიების, კესტოდების, ტრემატოდების და, უფრო მცირე ზომით, ანკილის ჭიების და ჯუჯა ჭიების კვერცხები.

ასევე ფართოდ გამოიყენება გამდიდრების მეთოდები. ფლოტაციის მეთოდების პრინციპია განავლის შეჩერება მარილიან ხსნარში, რომელსაც აქვს უფრო მაღალი ფარდობითი სიმკვრივე ჰელმინთის კვერცხებთან შედარებით, რის შედეგადაც ისინი ცურავს ზედაპირზე. ზედაპირის ფილმის შინაარსი შესწავლილია მიკროსკოპის ქვეშ. გამდიდრების ნარევებად გამოიყენება შემდეგი ხსნარები: სუფრის მარილი - 400გრ 1ლ წყალში (ფარდობითი სიმკვრივე ფულბორნის მიხედვით -1,18); ნატრიუმის ნიტრატი - 1 კგ 1 ლიტრ წყალში (ფარდობითი სიმკვრივე "კალანტარიან-1.38" მიხედვით); ნატრიუმის ნიტრატი - 900 გ და კალიუმის ნიტრატი - 400 გ 1 ლიტრ წყალში (შეფარდობითი სიმკვრივე ბრუდასტოვისა და კრასნონოსის მიხედვით - 1.48). ხსნარებს ადუღებენ და აცივებენ.
კვლევისთვის ჭიქაში ან თიხის ჭიქაში ჩაამატეთ 5-10 გრ განავალი, დაუმატეთ 100-200 მლ. მარილიანი ხსნარიდა საფუძვლიანად აურიეთ. შემდეგ მცურავი მსხვილი ნაწილაკები ამოღებულია ხის სპატულით ან ქაღალდის ან მუყაოსგან დამზადებული სკუპით და დაუყოვნებლივ ვრცელდება ფართო სლაიდი ზედაპირის ფილმზე ისე, რომ მარილიანი ხსნარი და სლაიდი იყოს სრულ კონტაქტში. მას შემდეგ, რაც ნარევი დადნება 30-40 წუთის განმავლობაში, სლაიდს აშორებენ, ათავსებენ მიკროსკოპის ქვეშ ფენით ზემოთ და მთელი ზედაპირი საგულდაგულოდ შეისწავლება. გაშრობის თავიდან ასაცილებლად, შეგიძლიათ დაამატოთ 2-3 წვეთი გლიცერინის 50%-იანი ხსნარი. ზედაპირის ფილმი ასევე შეიძლება მოიხსნას მავთულის მარყუჟით. ფლოტაციის მეთოდების ეფექტურობა იზრდება მარილწყალში ხსნარების ფარდობითი სიმკვრივის მატებასთან ერთად. ამ მეთოდების გამოყენებით შესაძლებელია ნემატოდების, ცესტოდების და ტრემატოდების კვერცხების აღმოჩენა.

განავალში კვერცხების გამოსავლენად გამოიყენება კრასილნიკოვის დალექვის მეთოდი. განავალი შერეულია 1% სარეცხი ხსნარით ( სარეცხი ფხვნილი„ლოტუსი“ და ა.შ.) 1:10 თანაფარდობით სუსპენზიის წარმოქმნამდე. სარეცხი საშუალების გავლენით იხსნება განავლის სხვადასხვა კომპონენტი (ცილები, ცხიმები, ქსოვილის ელემენტები). 30 წუთის შემდეგ მილის შიგთავსს 1-2 წუთის განმავლობაში ურევენ, რის შემდეგაც ცენტრიფუგირდება 5 წუთის განმავლობაში. პრეპარატებს ამზადებენ ნალექისგან და ამოწმებენ მიკროსკოპის ქვეშ.
IN საველე პირობები, ისევე როგორც მოსახლეობის მასობრივი გამოკვლევების დროს ჰელმინთური ინვაზიის დროს, მოსახერხებელია კატოს სქელი ნაცხის მეთოდის გამოყენება. IN სტაციონარული პირობებიპაციენტების გასინჯვისას სასურველია ფლოტაციის ყველაზე ეფექტური მეთოდების გამოყენება. მიკროსკოპის დროს ამ მეთოდების გამოყენებისას სასურველია პრეპარატში აღმოჩენილი კვერცხების დათვლა. თუ განავლის შესასწავლად აღებული ნიმუში ან მოცულობა სტანდარტიზებულია (მაგალითად, 1 ჩაის კოვზი ან სუფრის კოვზი) და მარილიანი ხსნარების მუდმივი ერთგვაროვანი მოცულობა, შეიძლება უხეშად ვიმსჯელოთ შეჭრის ინტენსივობაზე. ეს რაოდენობრივი აღრიცხვა შეიძლება სასარგებლო იყოს დადგენილი მკურნალობის დასასაბუთებლად და ჭიების ამოღების ეფექტურობის შესაფასებლად. გარდა ამისა, სხვა უფრო ზუსტი რაოდენობრივი მეთოდები, კერძოდ, Stoll მეთოდი, შეიძლება გამოყენებულ იქნას ინფექციის ინტენსივობის დასადგენად.

ტენიარინქოზისა და ენტერობიოზის დიაგნოსტიკისთვისგამოიყენება პერიანალურ-რექტალური სკრაპინგის შესწავლის მეთოდი. 50%-იან გლიცერინის ხსნარში დასველებული ხის სპატულით დილით, დეფეკაციის წინ, პერიანალური ნაკეცები გახეხეთ გარშემოწერილობით. ანუსისდა ქვედა სექციებისწორი ნაწლავი. მიღებული მასალა, გაწმენდილი სპატულიდან საფარის ნაპირით, მოთავსებულია შუშის სლაიდზე 50% გლიცერინის ხსნარის წვეთში, დაფარულია საფარის სლოპით და გამოკვლეულია მიკროსკოპის ქვეშ. თქვენ ასევე შეგიძლიათ შეამოწმოთ ცელულოზის ლენტის ზოლი, რომელიც ჯერ წებოვანი მხარით დაჭერით პერინალურ ნაკეცებზე, შემდეგ მოათავსეთ მინის სლაიდზე და შეისწავლება მიკროსკოპულად.

ნემატოდის ლარვების გამოვლენა განავალში ბერმანის მეთოდით. მეთოდი დაფუძნებულია ლარვების თერმოტროპულ თვისებებზე. კვლევისთვის აიღეთ 1 სუფრის კოვზი განავალი და მოათავსეთ ლითონის ბადეში ან მარლის რამდენიმე ფენის ბადეში მავთულის ჩარჩოზე. ბადე დამონტაჟებულია სამფეხზე დამაგრებულ ძაბრში. ძაბრზე მიმაგრებულია რეზინის მილი დამჭერით. ბადის აწევის შემდეგ ძაბრი ივსება წყლით (ტემპერატურა +40°...+50°C) ისე, რომ ბადის ქვედა ნაწილი ჩაეფლო წყალში. განავალიდან ლარვები აქტიურად მიგრირებენ თბილი წყალიდა, დასახლება, გროვდება ძაბრის ქვედა ნაწილში. 2-4 საათის შემდეგ იხსნება დამჭერი, წყალს ასხამენ ცენტრიფუგის მილში და ცენტრიფუგირებენ 2-3 წუთის განმავლობაში. შემდეგ ხდება სუპერნატანტის სითხის დრენირება, ნალექი გადადის შუშის სლაიდზე და იკვლევენ მიკროსკოპის ქვეშ, სადაც გვხვდება სტრონგილოიდიოზის გამომწვევი აგენტის მობილური ლარვები.

ჰარადას მეთოდი და მორი შესაძლებელს ხდის განასხვავოს ანკილის ჭია და ნეკატორის ლარვები. Hookworm-ის ლარვები კულტივირებულია ფილტრის ქაღალდზე. ამ მიზნით, 0,5გრ ახალი განავალი, რომელიც პაციენტისგან იღება დეფეკაციის შემდეგ არაუგვიანეს 1 საათისა, დაასხით ფილტრის ქაღალდის ზოლებზე ზომით 12X1,5 სმ, ზოლის ორივე ბოლო სუფთად რჩება. ზოლის ერთი ბოლო ჩაეფლო საცდელ მილში, რომლის მეოთხედი წყლით ივსება, მეორე კი ჩამაგრებულია საცობით. საცდელი მილები მოთავსებულია თერმოსტატში +26... + 28°C ტემპერატურაზე. კვერცხებიდან განვითარებული ლარვები ეშვება ფილტრის ქაღალდის მეშვეობით და ჩერდება ტესტის მილის ძირში. 5-6 დღის შემდეგ ქაღალდის ზოლს აშორებენ და სინჯარაში დარჩენილ სითხეს ათვალიერებენ გამადიდებელი შუშის ქვეშ ან ცენტრიფუგირებენ. ცენტრიფუგაციის დროს წარმოქმნილი ნალექი განიხილება სინათლის მიკროსკოპით. ტესტი მილების ნაცვლად ოთხკუთხა მინის ქილების (ზომის 15xxx7 სმ) გამოყენებისას, კედლებზე დამაგრებული 4 ქაღალდის ზოლებით, იზრდება ანალიზების ეფექტურობა (გ.მ. მარუაშვილი და სხვ., 1966).

შისტოსომიოზის ტესტის მეთოდები . განავლის გამოკვლევა - განავლის ნაწილს ურევენ 250 მლ წყალს, ფილტრავენ მარლის 3 ფენით კონუსურ ჭურჭელში, რომელიც ზემოდან ივსება წყლით. 30 წუთის შემდეგ, თხევადი ფენა გაჟღენთილია და წყლის ახალი ნაწილი ემატება ნალექს. ნალექი ირეცხება მანამ, სანამ არ მიიღება გამჭვირვალე სუპერნატანტი და შეისწავლება მიკროსკოპის ქვეშ.

ლარვოსკოპიის მეთოდი - 20-25 გრ განავალი მოთავსებულია ერლენმაიერის კოლბაში გვერდით შედუღებული შუშის მილით, ზემოთ მიმართული და გარეცხილია. ონკანის წყალი. შემდეგ კოლბას აფარებენ მუქი ქაღალდით, ტოვებენ შედუღებული მინის მილს სინათლეზე +25...+30°C ტემპერატურაზე. გამოჩეკილი მირაციდიები კონცენტრირებულია გვერდითი მილის მენისკზე, სადაც მათი დანახვა შესაძლებელია გამადიდებელი შუშით ან შეუიარაღებელი თვალით. შარდის გამოკვლევა - 100 მლ შარდის შეგროვება დილის 10 საათიდან საღამოს 14 საათამდე, ან ყოველდღიური ნაწილი, წყდება და შემდეგ ცენტრიფუგირდება 1500 rpm-ზე. შედეგად მიღებული ნალექი გამოიყენება* მინის სლაიდზე და განიხილება მიკროსკოპის ქვეშ. ჯანმო გვირჩევს შარდის მთელი ნიმუშის ფილტრაციის მეთოდს. ფილტრაციის შემდეგ ფილტრებს ამუშავებენ ფორმალდეჰიდით ან აცხელებენ (კვერცხების მოსაკლავად) და შემდეგ ატენიანებენ ნინჰიდრინის წყალხსნარით. ხმელ პრეპარატებში კვერცხის ემბრიონები იძენენ მეწამულ ფერს.

იმუნოლოგიური გამოყენება შისტოსომიოზის დიაგნოსტიკის კვლევის მეთოდები დაკავშირებულია სირთულეებთან, რადგან ზრდასრული შისტოსომები და მათი კვერცხები შეიცავს დიდი რაოდენობით ანტიგენებს, რომლებიც იწვევენ იმუნური რეაქციები, რომლებიც არ არის სპეციფიკური სახეობებისთვის (D. Bradley, 1979).

ჩვენს ქვეყანაში ჰელმინთოზის დროს იმუნოლოგიური რეაქციების დასადგმელად იწარმოება მთელი სერიასტანდარტული დიაგნოსტიკა. პრაქტიკული აპლიკაციააქვს ალერგია კანის ტესტიექინოკოკოზისა და ალვეოკოკოზის დროს, RLA ექინოკოკური ანტიგენით, RSC სიცივეში, ნალექის რეაქცია სიცივეში სხვადასხვა მოდიფიკაციაში (რგოლი ნალექი, ნალექი სინჯარებში ან კაპილარებში, რომლებიც მოთავსებულია ტრიქინოზის, ცისტიცერკოზისა და მიგოასკარიოზის ანტიგენებით). სტანდარტული სადიაგნოსტიკო კომპლექტები ზემოაღნიშნული სეროლოგიური რეაქციების შესასრულებლად მზადდება ბაქტერიული პრეპარატების მწარმოებელი საწარმოების მიერ. მწარმოებელი მოიცავს წარმოებულ სადიაგნოსტიკო კომპლექტებს დეტალური ინსტრუქციებიშენახვის წესებზე, პრეპარატის შენახვის ვადაზე და ინსტრუქციებზე რეაქციის სტადიონის ტექნიკით შესაბამისი ანტიგენების გამოყენების შესახებ.

IN ბოლო წლებშიმნიშვნელოვნად გაფართოვდა ჰელმინთოზის დიაგნოსტიკისთვის გამოყენებული სეროლოგიური რეაქციების ჩამონათვალი. ამ მიზნებისათვის გამოიყენება შემდეგი რეაქციები: RIGA, არაპირდაპირი იმუნოფლუორესცენცია (RIF), იმუნოდიფუზია გელში (RID), იმუნოელექტროფორეზის საწინააღმდეგო (CIEF), CEMA. ეს რეაქციები შეიძლება გამოყენებულ იქნას ასკარიოზის, ტოქსოკარიოზის, ტრიქინოზის, ანკილოზის დაავადების, ფილარიოზის, ექინოკოკოზის და ალვეოკოკოზის, ოპისტორქიაზის, შისტოსომიოზის, პარაგონიმიოზის დროს. თუმცა, ჩვენს ქვეყანაში ამ რეაქციებისთვის სტანდარტული დიაგნოსტიკური ტესტები არ გაიცემა და მათი დიაგნოსტიკის ტექნიკა არ არის მოწესრიგებული. ცალკეული ლაბორატორიები, ძირითადად სამეცნიერო, დამოუკიდებლად ამზადებენ სპეციფიკურ ანტიგენებს და იყენებენ მათ სხვადასხვა მოდიფიკაციაში. ამ მეთოდების აღწერა ფართოდ არის წარმოდგენილი ლიტერატურაში და არ არის მკაცრად ერთიანი. იმუნოლოგიური ანალიზის მონაცემების ინტერპრეტაცია უნდა ეფუძნებოდეს იმუნური პასუხის დინამიკის შესწავლას, თითოეული გამოყენებული მეთოდის სპეციფიკისა და მგრძნობელობის დონის გათვალისწინებით. სეროლოგიური რეაქცია. ამიტომ, დიაგნოზის დასმისას, ისევე როგორც მოსახლეობის სეროეპიდემიოლოგიური გამოკვლევების დროს, მიზანშეწონილია გამოიყენოთ რამდენიმე ყველაზე მგრძნობიარე რეაქცია. ამ თვალსაზრისით, VIEF-ისა და REMA-ს რეაქციები, რომლებიც განსხვავდება ერთმანეთისგან, კარგად დაამტკიცა მაღალი მგრძნობელობადა საკმაოდ მაღალი სპეციფიკა (P. Ambroise-Thomas, 1978; I. E. Ballad, 1979; G. M. Negreanu, 1980; A. M. Ponomareva, 1981; A. Ya. Lysenko, 1978 და სხვ.). REMA-ს ეფექტურობა შემოწმებულია ამებიაზის, ლეიშმანიოზის, ტრიპანოსომიოზისა და ტოქსოპლაზმოზის დროს (G. A. Ermolin, 1980).

თავი III. ჰელმინთოზის დიაგნოსტიკა და ჰელმინთოლოგიური კვლევის მეთოდები

აუცილებელია ყველა პაციენტის გამოკვლევა ჰელმინთოზზე სამედიცინო დახმარებადა განსაკუთრებით პაციენტები, რომლებიც მიმართავენ პედიატრს, თერაპევტს და ნევროლოგს გვერდითი მოვლენების ჩივილებით კუჭ-ნაწლავის ტრაქტი, ნერვული სისტემადა ანემიით. თუ ექიმს ყოველთვის არ შეუძლია გამოიყენოს ლაბორატორიული კვლევის მეთოდები, მაშინ ყოველი სამედიცინო მუშაკი, რომელიც უზრუნველყოფს ამბულატორიულ კლინიკაში ან საავადმყოფოში ზრუნვას, მოეთხოვება პაციენტის გასაუბრება ჰელმინთების იზოლაციის შესახებ.

თუ არსებობს კლინიკური ჩვენებები მოცემული შესაბამის თავებში, დიაგნოზი უნდა დაზუსტდეს გამოყენებით ლაბორატორიული მეთოდებიკვლევები ჰელმინთოზებისთვის.

უპირატესობის გამო ნაწლავის ჰელმინთოზებიუდიდესი პრაქტიკული მნიშვნელობააქვს განავლის გამოკვლევა.

ჰელმინთოზისთვის განავლის ტესტირების მეთოდები

განავალი ლაბორატორიაში მიეწოდება სუფთა შუშის ჭურჭელში (დაახლოებით მეოთხედი ჭიქა განავალი აღებულია სხვადასხვა ადგილიდან ერთ პორციაში); რუტინული გამოკვლევის დროს ნებადართულია განავლის ლაბორატორიაში მიტანა ასანთის კოლოფში ან სლინტის ყუთებში.

ჭიების მოცილების გასაკონტროლებლად, შეყვანის შემდეგ შეგროვებული განავლის მთელი ნაწილი მიეწოდება (ექიმის დანიშნულებით). ანტიჰელმინთურიდა საფაღარათო (დიდი დახურულ მინის ქილებში, თაიგულებში).

ნაწლავის ჰელმინთოზების დიაგნოსტიკაში ფუნდამენტურია განავლის მიკროსკოპული გამოკვლევა; მას ყოველთვის წინ უნდა უძღოდეს განავლის ზოგადი მაკროსკოპული გამოკვლევა დიდი კესტოდების, ჭიების, მრგვალი ჭიების სეგმენტების გამოსავლენად.

განავალი უნდა იყოს ახალი ან დაკონსერვებული (5% ფორმალდეჰიდის ხსნარში), რადგან გაშრობა მკვეთრად ცვლის კვერცხების სტრუქტურას. გარდა ამისა, როდესაც განავალი დგას, სწრაფი განვითარებაზოგიერთი ჰელმინთების კვერცხები (მაგალითად, ჭიაყელა), რაც ართულებს დიაგნოზს.

სსრკ ჯანდაცვის სამინისტროს ინსტრუქციის თანახმად, აუცილებელია განავლის გამოკვლევა ერთდროულად ფულბორნის მეთოდით და ნაცხის გამოყენებით.

მშობლიური ნაცხი

მშობლიური ნაცხი: განავლის პატარა ნაჭერი (დაახლოებით ბარდის ზომის), მიღებული ასანთი, მინის ან ხის ჯოხით მიტანილი ნაწილის სხვადასხვა ადგილიდან, საფუძვლიანად დაფქვა შუშის სლაიდზე 50% გლიცერინის ხსნარის წვეთში ან მარილიან ხსნარში ან წყალში. გადააფარეთ გადასაფარებელი, ამ უკანასკნელზე მსუბუქად დაჭერით (გამჭრელი ნემსით). ნაცხი უნდა იყოს თხელი, გამჭვირვალე და ერთგვაროვანი. იგი გამოიყენება მხოლოდ როგორც დანამატი სხვა მეთოდებისა, რომლებიც უზრუნველყოფენ პრეპარატის გამდიდრებას. მინიმუმ ორი პრეპარატი უნდა გადაიხედოს.

ჰელმინთის ლარვების (ისევე როგორც მათი კვერცხების) აღმოსაჩენად, ნაცხი კეთდება შემდეგნაირად (შულმანის მიხედვით): 2-3 გრ განავალს საფუძვლიანად ურევენ შუშის ღეროს ემულსიაში ხუთ-ხუთიანი "გადატრიალებით". გაამრავლეთ სუფთა წყალი ან მარილიანი ხსნარი. მორევისას ლარვები გროვდება შუშის ღეროსთან, ამიტომ მორევის დასრულებისთანავე ემულსიის წვეთი სწრაფად გადააქვთ შუშის ღეროზე, აფარებენ თავსახურს და იკვლევენ. S. D. Lyubchenko (1936) დაამტკიცა, რომ გრეხილის მეთოდი უფრო ეფექტურია, ვიდრე ნაცხის მეთოდი, განსაკუთრებით მრგვალი ჭიის კვერცხებთან დაკავშირებით. S. D. ლიუბჩენკოს ნაშრომიდან გამომდინარე, მიზანშეწონილად მიგვაჩნია ნაცხის მეთოდის შეცვლა გრეხილის მეთოდით.

Fulleborn მეთოდი

ფულბორნის მეთოდი: სხვადასხვა ადგილიდან ამოღებულ 5-10 გ განავალს ათავსებენ 50-100 მლ მოცულობის ქილაში და კარგად შეიზილეთ ჭიქით ან ხის ღეროთი გაჯერებულ ხსნარში. სუფრის მარილი(ამ მარილის 400 გრ იხსნება 1 ლიტრ წყალში, ადუღებამდე აცხელებს და ფილტრავენ ბამბის მატყლის ან მარლის ფენით; ხსნარი გამოიყენება ცივი: ხვედრითი წონა 1.2). ხსნარს ემატება თანდათან, სანამ ერთგვაროვანი სუსპენზია არ მიიღება და დამატებული ხსნარის საერთო რაოდენობა უნდა იყოს დაახლოებით 20-ჯერ. მეტი რაოდენობითგანავალი. განავლის შერევისთვის, Fulleborn გირჩევთ გამოიყენოთ ჩაის ჭიქები, მაგრამ უფრო მოსახერხებელია სუსპენზიის მომზადება მალამოების ქილებში 50-100 მლ ტევადობით, თითოეული ანალიზისთვის ორი ქილის გამოყენებით (ან 100 მლ ტევადობის ჭიქებში).

სუსპენზიის მომზადებისთანავე, ზედაპირზე ამოსული დიდი ნაწილაკები ამოღებულია ზედაპირიდან სპატულით, ლითონის სკუპით ან სუფთა ქაღალდის ნაჭერით ( მცენარეული წარმონაქმნები, რჩება მოუნელებელი საკვები და ა.შ.), რის შემდეგაც ნარევს ტოვებენ 1-1,5 საათის განმავლობაში. ამ დროის გასვლის შემდეგ, მთლიანი ფილმი ამოღებულია ნარევის ზედაპირიდან მავთულის ან პლატინის მარყუჟის (ბრტყელი) შეხებით, რომლის დიამეტრი არ აღემატება 1 სმ, მოხრილი მარჯვენა კუთხით; ფილმი შეირყევა მინის სლაიდზე და დაფარულია საფარით. მოათავსეთ 3-4 წვეთი თითოეული საფარის ქვეშ (18x18 მმ). ჯამში უნდა მომზადდეს არანაკლებ 4 პრეპარატი (თითო საფარიანი ჭიქა თითოეულ პრეპარატზე). მარყუჟი თბება ცეცხლზე და ყოველი ანალიზის შემდეგ ირეცხება წყლით.

Fulleborn მეთოდის გამოყენებით, ყველა ნემატოდის კვერცხები (გარდა გაუნაყოფიერებელი მრგვალი ჭიის კვერცხებისა) და ჯუჯა ლენტის ჭიის კვერცხები სწრაფად და მარტივად ვლინდება.

ბერმანის მეთოდი გამოიყენება განავლის შესამოწმებლად ჰელმინთის ლარვაზე (სტრონგილოიდიოზისთვის). ეს მეთოდი ასეთია: 5გრ განავალს ლითონის ბადეზე (ამისთვის მოსახერხებელია რძის საწური) ათავსებენ სამფეხზე დამაგრებულ მინის ძაბრზე. ძაბრის ქვედა ბოლოზე მოთავსებულია რეზინის მილი დამჭერით.

ბადე ფეკალიებთან ერთად აწია და დაახლოებით 50°-მდე გახურებული წყალი შეედინება ძაბრში ისე, რომ ბადის ქვედა ნაწილი განავლით ჩაიძიროს წყალში. ლარვები აქტიურად გადადიან წყალში და გროვდებიან რეზინის მილის ქვედა ნაწილში. 2-4 საათის შემდეგ იხსნება დამჭერი და სითხე იშლება ერთ ან ორ ცენტრიფუგა მილში.

ცენტრიფუგაციის შემდეგ 1-2 წუთის განმავლობაში ზედა ნაწილისითხე სწრაფად იწურება და ნალექი წვეთებად იდება შუშის სლაიდებზე და ათვალიერებს საფარქვეშ ან ავრცელებს. თხელი ფენა 2-3 დიდ ჭიქაზე და შემდეგ შეამოწმეთ სათვალეების გარეშე.

ბერმანის მეთოდი ასევე გამოიყენება ნიადაგის შესამოწმებლად ანკილის ჭიის ლარვების არსებობისთვის.

Stoll მეთოდი

სტოლის მეთოდი გამოიყენება შეჭრის ინტენსივობის დასადგენად. კაუსტიკური სოდას დეცინორმალური ხსნარი ასხამენ სპეციალურ შუშის კოლბაში 56 სმ 3 ნიშნულამდე და შემდეგ უმატებენ განავალს, სანამ სითხის დონე არ მიაღწევს 60 სმ 3-ს, ანუ 4 სმ 3-ს. მინის მარცვლებით შერყევის შემდეგ 0,075 მლ ნარევი იღება გამოსაკვლევად და იკვლევენ ერთი ან ორი ჩვეულებრივი საფარის ქვეშ. მიღებული რაოდენობა მრავლდება 200-ზე, რათა მივიღოთ კვერცხების რაოდენობა, რომელიც შეიცავს 1 სმ 3 განავალს.

თორმეტგოჯა ნაწლავის შიგთავსის შესწავლა

თორმეტგოჯა ნაწლავის წვენი და შარდის ბუშტის ნაღველი, მიღებული ჩვეული წესით გამოკვლევით (და ნაღვლის ბუშტის ნაღველი და ნაღვლის ბუშტის რეფლექსის შემდეგ), საფუძვლიანად არის შერეული თანაბარი მოცულობით. ეთილის ეთერი; ნარევი ცენტრიფუგირდება, რის შემდეგაც ნალექი იკვლევება მიკროსკოპის ქვეშ. ნალექის გარდა, მიკროსკოპული გამოკვლევასითხეში მცურავი ფანტელები, რომლებიც შეიძლება შეიცავდეს ჰელმინთის კვერცხებს, აუცილებლად გამოფენილია. კუჭის წვენისა და ღებინების ტესტირებისას ჰელმინთის კვერცხებზე, შეგიძლიათ გამოიყენოთ იგივე ტექნიკა.

ეჭვის არსებობის შემთხვევაში უნდა ჩატარდეს თორმეტგოჯა ნაწლავის წვენისა და კუჭის შიგთავსის გამოკვლევა ჰელმინთური დაავადებებიღვიძლი, ნაღვლის ბუშტი (ოპისტორქიაზი, ფასციოლიაზი, დიკროცელიოზი) და თორმეტგოჯა ნაწლავი(სტრონგილოიდოზი).

ნახველის გამოკვლევა

ნახველი იფქვება შუშის თეფშზე, მჭიდროდ იფარება სხვა შუშის ფირფიტით და ათვალიერებენ შეუიარაღებელი თვალით მსუბუქ და შავ ფონზე, ასევე გამადიდებელი შუშის ქვეშ გადამცემ შუქზე. ნახველის ცალკეული ნაჭრები („ჟანგიანი“ აკუმულაციები, ქსოვილის ნამსხვრევები და ა.შ.) თხელ ფენად წაისვით შუშის სლაიდზე, მჭიდროდ იფარება გადასაფარებლით და ათვალიერებენ დაბლა და მაღალი გადიდებამიკროსკოპი

ა) კანის ცისტიცერკოზის დიაგნოსტიკისთვის, კანქვეშა ქსოვილიან კუნთი, შესაბამისი ქსოვილის ასეპტიკურად ამოკვეთილი ნაჭერი პირველად იკვლევება შეუიარაღებელი თვალით. ქსოვილის უბნები ერთმანეთისგან შორდება გამჭრიახ ნემსების გამოყენებით ხილული გამოსავლენად შეუიარაღებელი თვალითვეზიკულა - ცისტიცერკი (ფოტო A); მისი სიგრძე 6-20 მმ, სიგანე 5-10 მმ. ცისტიცერკუსზე საეჭვო ვეზიკულის აღმოჩენისას, მას აჭედებენ ორ შუშის სლაიდს შორის და იკვლევენ მიკროსკოპის ქვეშ. ცისტიცერკუსი (Cistycercus cellulosae) განისაზღვრება სკოლექსის არსებობით ოთხი საწოვრით და კაუჭების გვირგვინით (ფოტო B).

ფოტო. A - ცისტიცერციები სკოლექსით გარეგნულად გადაბრუნებული; ბ - ღორის ლენტის ჭიის თავი.

ბ) ტრიქინოზის დიაგნოზის დასადგენად, კუნთის ასეპტიურად ამოკვეთილი ნაწილი (ბიცეპსი ან გასტროკნემიუსი) საგულდაგულოდ იშლება 50%-იან გლიცერინის ხსნარში საუკეთესო ბოჭკოებად გასანაწილებელი ნემსების გამოყენებით. დამსხვრეული კუნთები შეკუმშულია შუშის ორ სლაიდს შორის და განიხილება დაბალი სიმძლავრის მიკროსკოპის ქვეშ ჩაბნელებულ ხედვაში. რეკომენდებულია ტრიქინოზზე კუნთების ტესტირება არა უადრეს დაავადების მე-8 დღეს. ტრიქინელას ლარვები კუნთებში გვხვდება დახვეულ მდგომარეობაში: ისინი ჩასმულია ლიმონის ფორმის კაფსულებში.

ფოტო. A - ტრიქინელას ლარვები კუნთებში; B - ტრიქინელას კალციფიცირებული კაფსულები.

რენტგენი

ყველაზე ხშირად, ფლუოროსკოპია გამოიყენება ექინოკოკოზის და ნაკლებად ხშირად ცისტიცერკოზის დიაგნოსტიკისთვის. ცისტიცერკები ფლუოროსკოპიით ვლინდება მხოლოდ კალციფიკაციის შემდეგ (შემთხვევებში ხანგრძლივი ავადმყოფობა). ბოლო წლებში ფლუოროსკოპია ასევე გამოიყენება ასკარიოზის დიაგნოსტირებისთვის როგორც ადრეულ ლარვის სტადიაზე, ასევე ნაწილობრივ ნაწლავის სტადიაზე.

მრგვალი ჭიის (და ანკილის) მიგრაციის პერიოდში ფილტვებში ვლინდება არასტაბილური, ზოგჯერ მრავლობითი ანთებითი კერები; ამავდროულად, სისხლში ჩნდება მნიშვნელოვანი ეოზინოფილია.

სქესობრივად მომწიფებული მრგვალი ჭიები აშკარად ჩანს დაზარალებული პირების ნაწლავების ფლუოროსკოპიით. ეს მეთოდი, მიუხედავად მისი სირთულისა და უხერხულობისა, უნდა იქნას გამოყენებული, როგორც დამატებითი მეთოდი ასკარიაზის დიაგნოსტიკისთვის უარყოფითი სკატოლოგიური ანალიზის დროს. ე.

ჰელმინთოლოგიური კვლევის მეთოდები. ჰელმინთური ინფექციების დიაგნოსტიკის მეთოდები იყოფა უშუალოდ, რომელიც ეფუძნება თავად ჰელმინთების ან მათი ფრაგმენტების უშუალო გამოვლენას, ასევე ჰელმინთების ლარვას და კვერცხებს (განავლის, შარდის, ნაღვლისა და თორმეტგოჯა ნაწლავის შინაარსის, ნახველის, სისხლისა და ქსოვილების, მასალის გამოკვლევის მეთოდები. მიღებული პერიანალური მიდამოებიდან და კანქვეშა სივრცეებიდან გამოფხეკით) და არაპირდაპირი, რისი დახმარებითაც ვლინდება მეორადი ცვლილებებიადამიანის ორგანიზმში წარმოქმნილი ჰელმინთების სასიცოცხლო მოქმედების შედეგად (სისხლის მორფოლოგიური შემადგენლობის შესწავლა, იმუნოლოგიური მეთოდებიჰელმინთოზის დიაგნოსტიკა, რენტგენოლოგიური გამოკვლევა და ა.შ.). პირდაპირი მეთოდებიდან ყველაზე გავრცელებულია სკატოლოგიური, რომლებიც იყოფა მაკრო- და მიკროჰელმინთოსკოპურად. ზოგიერთ შემთხვევაში გამოიყენება სპეციალური მეთოდები.

მაკროჰელმიტოსკოპიური კვლევის მეთოდებიმიზნად ისახავს ჰელმინთების ან მათი ფრაგმენტების ძიებას (სკოლექსი, სეგმენტები, კესტოდების სტრობილას ნაწილები). ისინი გამოიყენება იმ ჰელმინთოზების დიაგნოსტირებისთვის, რომლებშიც კვერცხები არ გამოიყოფა პაციენტის ექსკრემენტით ან გამოიყოფა მცირე რაოდენობით და არა ყოველთვის (მაგალითად, ენტერობიაზით, ჭიები გვხვდება განავალში, ტენიაზით - სეგმენტები).

განავალში ჭიების ან ცესტოდების სეგმენტების გამოსავლენად განავალს ათვალიერებენ შეუიარაღებელი თვალით. ამისთვის დიფერენციალური დიაგნოზიტაენიაზი, რეკომენდებულია წყლით განზავებული განავლის დათვალიერება ცალკეულ მცირე ნაწილებში შავ ფოტოგრაფიულ კუვეტებში ან პეტრის ჭურჭელში მუქ ფონზე. დიდი წარმონაქმნები, რომლებიც საეჭვოა ჰელმინთების ფრაგმენტებისთვის, განიხილება გამადიდებელი შუშის ქვეშ ორ სლაიდს შორის. თუ მიხედვით კლინიკური ჩვენებებიგვთავაზობენ მკურნალობის შემდეგ მცირე ჰელმინთების ან ცესტოდების თავების აღმოჩენას, შემდეგ საეჭვო ნაწილაკების გამოკვლევა ხდება გამადიდებელი შუშის ქვეშ გლიცერინის წვეთში და, საჭიროების შემთხვევაში, მიკროსკოპის ქვეშ.

მიკროჰელმინთოსკოპიული კვლევის მეთოდები(ხარისხობრივი) მიმართულია ჰელმინთის კვერცხებისა და ლარვების იდენტიფიცირებაზე. გამოიყენება სქელი ნაცხის მეთოდი კატოს მიხედვით ცელოფნის საფარით. კატო ნარევი შედგება 6 მლმალაქიტის მწვანე 3%-იანი წყალხსნარი, 500 მლგლიცერინი და 500 მლ 6% ფენოლის ხსნარი. კატო თეფშები (ჰიდროფილური ცელოფანი იჭრება 20' 40 ზომით მმ) ჩაეფლო 24 თშევიდა კატოს ნარევში ისე, რომ ისინი ერთმანეთის მიმდებარედ იყვნენ (3-5 მლკატოს ხსნარი 100 თეფშზე). 100 მგგანავალს სვამენ შუშის სლაიდზე, აფარებენ კატოს მიხედვით ცელოფნის საფარის ფირფიტას და დაჭერით ისე, რომ ცელოფნის თეფშის საზღვრებში განავლით შეიზილოთ შუშის სლაიდზე. ნაცხი ტოვებენ ოთახის ტემპერატურაზე 40-50-ით გასანათებლად წთ,შემდეგ კი მიკროსკოპით შეისწავლეს. ცხელ სეზონზე, რომ პრეპარატი არ გამოშრეს, მომზადებული პრეპარატის თეფშზე დადეთ ნესტიანი ღრუბელი.

ყველა ტიპის ჰელმინთების სრული გამოვლენისთვის, კატოს სქელი ნაცხის მეთოდი ცელოფნის საფარით უნდა იქნას გამოყენებული გამდიდრების ერთ-ერთ მეთოდთან ერთად. მათგან ყველაზე გავრცელებულია კალანტარიანის მეთოდი და ფულბორნის მეთოდი.

კალანტარიანი მეთოდი: ფართო პირის ბოთლებში 100 მოცულობით მლკარგად აურიეთ შუშის ღეროთი 5 გგანავლით, თანდათანობით ემატება ნატრიუმის ნიტრატის გაჯერებული ხსნარი (1 კგნატრიუმის ნიტრატი 1 ლწყალი ადუღებისას) ჭიქის კიდემდე. დიდი ნაწილაკები, რომლებიც ზედაპირზე ცურავს, ამოღებულია ქაღალდის სკუპით. ფიზიოლოგიური ხსნარის ზედაპირზე გამოიყენება მინის სლაიდი (ფიზიოლოგიური ხსნარი ემატება მანამ, სანამ ნარევი სრულ კონტაქტში მოვა შუშის სლაიდთან). 20-30-ში წთსლაიდი ამოღებულია და ფილმი განიხილება მიკროსკოპის ქვეშ. ამ მარილის არარსებობის შემთხვევაში, შეგიძლიათ გამოიყენოთ სუფრის მარილის გაჯერებული ხსნარი Fholleborn-ის მიხედვით (400 გმარილი 1-ში ლმდუღარე წყალი).

იმის გამო, რომ დიდი ხვედრითი სიმძიმის მქონე კვერცხები (მრგვალი ჭიების გაუნაყოფიერებელი კვერცხები, ტრემატოდების კვერცხები და დიდი კესტოდები) არ ცურავს, გარდა სითხის ზედაპირული ფენის გამოკვლევისა, ფულბორნის მეთოდის გამოყენებისას აუცილებელია გამოკვლევა. 2-4 პრეპარატი ნალექიდან მიკროსკოპის ქვეშ.

სპეციალური ლაბორატორიული მეთოდები სხვადასხვა ჰელმინთოზების შესამოწმებლად.

7.7. ჰელმინთის კვერცხებისა და ლარვების სიცოცხლისუნარიანობის განსაზღვრის მეთოდები

ჰელმინთის კვერცხების სიცოცხლისუნარიანობა განისაზღვრება გარეგნობასასიცოცხლო საღებავებით შეღებვით, კულტივირებით ქ ოპტიმალური პირობებიდა ბიოლოგიური ნიმუშის დაყენება.

7.7.1. ჰელმინთის კვერცხების ან ლარვების სიცოცხლისუნარიანობის განსაზღვრა გარეგნულად

ჰელმინთის კვერცხებს მიკროსკოპით ათვალიერებენ ჯერ დაბალი, შემდეგ კი მაღალი გადიდებით. დეფორმირებული და მკვდარი ჰელმინთის კვერცხებში, ნაჭუჭი დახეულია ან მოხრილია შიგნით, პლაზმა მოღრუბლული და გაფხვიერებულია. სეგმენტურ კვერცხებს აქვთ არათანაბარი ზომის გამანადგურებელი ბურთულები (ბლასტომერები), არარეგულარული ფორმა, ხშირად გადაინაცვლებს ერთ პოლუსზე. ზოგჯერ არის პათოლოგიური კვერცხუჯრედები, რომლებიც, მიუხედავად გარეგანი დეფორმაციებისა, ნორმალურად ვითარდება. მრგვალი ჭიის ცოცხალ ლარვებში, წვრილი მარცვლოვნება გვხვდება მხოლოდ სხეულის შუა ნაწილში, როდესაც ისინი იღუპებიან, ის ვრცელდება მთელ სხეულზე, ჩნდება დიდი მბზინავი ჰიალინის ვაკუოლები, ე.წ.

მრგვალი ჭიების, მათრახის ჭიების და ჭიების მომწიფებული კვერცხების სიცოცხლისუნარიანობის დასადგენად, უნდა დარეკოთ აქტიური მოძრაობებილარვები პრეპარატის მსუბუქად გაცხელებით (არაუმეტეს 37 °C ტემპერატურამდე). უფრო მოსახერხებელია მრგვალი ჭიისა და ჭიის ჭიის ლარვების სიცოცხლისუნარიანობაზე დაკვირვება კვერცხის ნაჭუჭიდან მათი იზოლირების შემდეგ პრეპარატის საფარის შუშაზე გასაშლელი ნემსით ან პინცეტით დაჭერით.

მრგვალი ჭიის ინვაზიურ ლარვებში ხშირად ჩანს გარსი, რომელიც იშლება თავის ბოლოში, ხოლო ჭიის ჭიის ლარვებში, რომლებმაც დაასრულეს განვითარება კვერცხუჯრედში, ამ ადგილას დიდი გადიდებით გვხვდება სტილეტი. მკვდარი ჰელმინთის ლარვებში, განურჩევლად მათი მდებარეობისა (კვერცხუჯრედში ან მის გარეთ), სხეულის დაშლა შეინიშნება. ამ შემთხვევაში, ლარვის შიდა სტრუქტურა ხდება ბლოკირებადი ან მარცვლოვანი, ხოლო სხეული ხდება მოღრუბლული და გაუმჭვირვალე. ვაკუოლები გვხვდება სხეულში, ნაპრალები კი კუტიკულაზე.

ტაენიიდული ონკოსფეროების (მსხვილფეხა რქოსანი, ღორის ლენტის ჭია და ა.შ.) სიცოცხლისუნარიანობა განისაზღვრება ემბრიონების მოძრაობით მათთან ზემოქმედებისას. საჭმლის მომნელებელი ფერმენტები. კვერცხები მოთავსებულია საათის მინაზე ძაღლის კუჭის ან ხელოვნური თორმეტგოჯა ნაწლავის წვენით. ამ უკანასკნელის შემადგენლობა: პანკრეატინი - 0,5 გ, ნატრიუმის ბიკარბონატი - 0,09 გ, გამოხდილი წყალი - 5 მლ. საათის ჭიქები კვერცხებით მოთავსებულია თერმოსტატში 36 - 38 ° C ტემპერატურაზე 4 საათის განმავლობაში. ამ შემთხვევაში ცოცხალი ემბრიონები თავისუფლდებიან მემბრანებისგან. ცოცხალი ონკოსფეროების გარსები ასევე იხსნება მჟავიან პეპსინში და შიგნით ტუტე ხსნარიტრიპსინი 6 - 8 საათის შემდეგ თერმოსტატში 38 ° C ტემპერატურაზე.

თუ ტენიდის კვერცხებს მოათავსებთ ნატრიუმის სულფიდის 1%-იან ხსნარში ან ნატრიუმის ჰიპოქლორიდის 20%-იან ხსნარში, ან ქლორის წყლის 1%-იან ხსნარში 36-38 °C ტემპერატურაზე, მწიფე და ცოცხალი ემბრიონები გამოიყოფა გარსებიდან და არ იცვლება 1 დღის განმავლობაში. მოუმწიფებელი და მკვდარი ონკოსფეროები იკუმშება ან შეშუპება და მკვეთრად გადიდდება, შემდეგ კი „იხსნება“ 10 წუთიდან 2 საათამდე. ცოცხალი ტაენიიდის ემბრიონები ასევე აქტიურად მოძრაობენ 1% ნატრიუმის ქლორიდის ხსნარის, 0,5% ნატრიუმის ბიკარბონატის ხსნარისა და ნაღვლის ნარევში 36 - 38 °C ტემპერატურაზე.

მცენარეებსა და წყლის ობიექტების სხვა ობიექტებზე შეგროვებული Adolescaria fascioli-ის სიცოცხლისუნარიანობა მოწმდება მათი შესწავლით ფიზიოლოგიურ ხსნარში მინის სლაიდზე მიკროსკოპის ქვეშ გათბობის სტადიით. როდესაც ტრემატოდის ლარვები თბება, ისინი იწყებენ მოძრაობას.

ჯუჯა ლენტის კვერცხების სიცოცხლისუნარიანობის დასადგენად ყველაზე მარტივი მეთოდია ნ. 45°. მკვდარ კვერცხებში, გვერდითი წყვილები ქმნიან კუთხეს მედიანურ წყვილთან ძირზე 45°-ზე მეტი, ან კაკვები შემთხვევით მიმოფანტულია (მათი დაწყვილებული განლაგება იკარგება); ზოგჯერ ემბრიონი მცირდება და წარმოიქმნება გრანულები. უფრო ზუსტი მეთოდი ემყარება ონკოსფეროს მოძრაობების გამოჩენას ტემპერატურის მკვეთრი ცვლილების დროს: 5 - 10 ° -დან 38 - 40 ° C -მდე.

უმწიფარი ნემატოდის კვერცხების სიცოცხლისუნარიანობის დადგენა უნდა შესწავლილ იქნას ტენიან კამერაში (პეტრის ჭურჭელი), მრგვალი ჭიის კვერცხების მოთავსება 3% ფორმალდეჰიდის ხსნარში, რომელიც მომზადებულია იზოტონურ ნატრიუმის ქლორიდის ხსნარში 24 - 30 ° C ტემპერატურაზე, ჭიის კვერცხები 3% ხსნარი მარილმჟავა 30 - 35 °C ტემპერატურაზე; ჭიის კვერცხები ნატრიუმის ქლორიდის იზოტონურ ხსნარში 37 °C ტემპერატურაზე. უკეთესი აერაციისთვის პეტრის ჭურჭელი უნდა გაიხსნას კვირაში 1-2-ჯერ და ფილტრის ქაღალდი ხელახლა დაასველოთ. სუფთა წყალი.

ჰელმინთის კვერცხების განვითარებაზე დაკვირვება ტარდება კვირაში მინიმუმ 2-ჯერ. განვითარების ნიშნების არარსებობა 2-3 თვეში მიუთითებს მათ არასიცოცხლისუნარიანობაზე. ჰელმინთის კვერცხუჯრედების განვითარების ნიშნებია, პირველ რიგში, დაქუცმაცების ეტაპები, კვერცხუჯრედის შიგთავსის დაყოფა ცალკეულ ბლასტომერებად. პირველ დღეებში ვითარდება 16-მდე ბლასტომერი, რომლებიც გადადიან მეორე სტადიაში - მორულა და ა.შ.

ანკილის ჭიის კვერცხები კულტივირებულია მინის ცილინდრში (50 სმ სიმაღლე და 7 სმ დიამეტრი) დახურულ საცობით. ნარევი თანაბარი მოცულობებისტერილური ქვიშა, ნახშირიდა განავალი ანკილის ჭიის კვერცხებით, წყლით განზავებული ნახევრად თხევადი კონსისტენციამდე, ფრთხილად ასხამენ ცილინდრის ძირზე მინის მილის გამოყენებით. სიბნელეში 25 - 30 ° C ტემპერატურაზე 1-2 დღის განმავლობაში, რაბდიტისებრი ლარვები გამოიჩეკება კვერცხებიდან და 5-7 დღის შემდეგ ხდება ფილარიფორმები: ლარვები ცოცვიან ცილინდრის კედლებზე, სადაც არიან. შეუიარაღებელი თვალითაც კი ჩანს.

ტრემატოდების კვერცხები, რომლებიც ბუნებრივად ვითარდება წყალში, მაგალითად, ოპისტორხი, დიფილობოთრიიდა, ფასციოლა და სხვა, ათავსებენ საათის მინაზე, პეტრის ჭურჭელზე ან სხვა ჭურჭელზე და ასხამენ ჩვეულებრივი წყლის მცირე ფენას. ფასციოლას კვერცხების გაშენებისას გასათვალისწინებელია, რომ ისინი უფრო სწრაფად ვითარდება სიბნელეში, ხოლო ცოცხალ კვერცხებში 22 - 24 ° C ტემპერატურაზე მირაციდიუმი წარმოიქმნება 9 - 12 დღეში. განვითარებადი ტრემატოდური კვერცხების მიკროსკოპირებისას, მირაციდიუმის მოძრაობები აშკარად ჩანს. Miracidium fasciola კვერცხის ნაჭუჭიდან მხოლოდ შუქზე გამოდის.

Fulleborn მეთოდი. ჭიაყელა და სტრონგილიდის ლარვები კულტივირებულია აგარზე პეტრის ჭურჭელში ცხოველური ნახშირით. თერმოსტატში 25 - 30 ° C ტემპერატურაზე 5 - 6 საათის განმავლობაში შენახვის შემდეგ, ლარვები დაცოცავს აგარზე და ტოვებს ბაქტერიების გზას.

ჰარადა და მორის მეთოდი. თაროში მოთავსებულ სინჯარებს დაამატეთ 7 მლ გამოხდილი წყალი. ხის ჯოხის გამოყენებით აიღეთ 0,5 გრ განავალი და გააკეთეთ ნაცხი ფილტრის ქაღალდზე (15 x 150 მმ) მარცხენა კიდიდან 5 სმ (ეს ოპერაცია ტარდება ქაღალდის ფურცელზე ლაბორატორიის სკამების ზედაპირის დასაცავად). შემდეგ ნაცხის შემცველი ზოლი ჩასმულია სინჯარაში ისე, რომ ნაცხისგან თავისუფალი მარცხენა ბოლო მიაღწიოს სინჯარის ძირს. ზედა ბოლოს დააფარეთ ცელოფნის ნაჭერი და მჭიდროდ შემოახვიეთ ელასტიური ზოლით. სინჯარაზე იწერება გამოკვლევის ქვეშ მყოფი პირის ნომერი და გვარი. ამ მდგომარეობაში მილები ინახება 8-10 დღის განმავლობაში 28 °C ტემპერატურაზე. ლარვების შესასწავლად ამოიღეთ ცელოფნის საფარი და ამოიღეთ ფილტრის ქაღალდის ზოლი პინცეტით. სიფრთხილეა საჭირო, როდესაც ამას აკეთებთ, რადგან მცირე რაოდენობის ინფექციური ლარვები შეიძლება გადავიდეს ფილტრის ქაღალდის ზედა ბოლოში ან მილის გვერდზე და შეაღწიოს ცელოფნის ზედაპირის ქვეშ.

საცდელი მილები მოთავსებულია ცხელ წყლის აბაზანა 50 °C ტემპერატურაზე 15 წუთის განმავლობაში, რის შემდეგაც მათი შიგთავსი შეირყევა და სწრაფად ასხამენ 15 მლ სინჯარაში ლარვების დასალექად. ცენტრიფუგაციის შემდეგ ზედნატანი ამოღებულია და ნალექი გადადის შუშის სლაიდზე, დაფარულია საფარით და მიკროსკოპული გამოკვლევა დაბალი გადიდების ქვეშ.

ამისთვის დიფერენციალური დიაგნოზი filariform larvae, თქვენ უნდა გამოიყენოთ მონაცემები ცხრილში 3.

ცხრილი 3

A. DUODENALE, N. AMERICANUS, S. STERCORALIS, TRICHOStrONGYLUS SP. ფილარიოიდური ლარვების დიფერენციალური დიაგნოსტიკა.

ლარვები	ზომები	დამახასიათებელი ნიშნები
A. duodenale	სხეულის სიგრძე დაახლოებით 660 მკმ, გარსის სიგრძე - 720 ნმ	ქუდის ზოლები ნაკლებად გამოხატულია, პირის ღრუს გამონაყარი ნაკლებად შესამჩნევია, სხეულის წინა ბოლო (მაგრამ არა ქუდი) ბლაგვია, ნაწლავის მილის დიამეტრი საყლაპავის ბოლქვზე მცირეა, კუდის ბოლო ბლაგვია.
N. americanus	სხეულის სიგრძე დაახლოებით 590 მიკრონი, გარსის სიგრძე - 660 ნმ	ქუდი შესამჩნევად ზოლიანია, განსაკუთრებით სხეულის კუდიან ნაწილში, პირის ღრუს გამონაყარი მუქი ჩანს, სხეულის წინა ბოლო (მაგრამ არა ქუდი) ვიწრო ბოლოსავით მომრგვალებულია. ქათმის კვერცხინაწლავის მილის წინა ნაწილს აქვს იგივე დიამეტრი, როგორც საყლაპავის ბოლქვი, კუდის ბოლო მკვეთრად წვეტიანია.
S. stercoralis	სხეულის სიგრძე დაახლოებით 500 მიკრონი	ლარვა გარსის გარეშეა, საყლაპავი სხეულის სიგრძის დაახლოებით ნახევარია, კუდი ბლაგვი ან დატოტვილი.
Trichostrongylus sp.	სხეულის სიგრძე დაახლოებით 750 მკმ	ნაწლავის სანათური არ არის სწორი, მაგრამ ზიგზაგისებური, კუდის ბოლო მომრგვალო და ღილაკის ფორმისაა.

7.7.2. ჰელმინთის კვერცხებისა და ლარვების შეღებვის მეთოდები

მკვდარი ქსოვილები უმეტეს შემთხვევაში საღებავს უფრო სწრაფად აღიქვამენ, ვიდრე ცოცხალი. ეს თვისებები გამოიყენება ჰელმინთოლოგიაში ჰელმინთის კვერცხებისა და ლარვების სიცოცხლისუნარიანობის დასადგენად. თუმცა, ზოგიერთ შემთხვევაში, ზოგიერთი საღებავი უკეთესად აღიქმება ცოცხალი ქსოვილებით, ვიდრე მკვდარი.

ცოცხალი და მკვდარი კვერცხებისა და ლარვების განსხვავების მიზნით გამოიყენება შემდეგი საღებავები და მეთოდები.

ლეიკობაზა მეთილენის ლურჯი ხშირად გამოიყენება ცოცხალი და მკვდარი ქსოვილების შესაღებად. ცოცხალი უჯრედიან ქსოვილი ამცირებს მეთილენის ლურჯს უფერო ლეიკობაზად, მკვდარ ქსოვილს არ აქვს ეს უნარი, ამიტომ იძენს ფერს.

კვერცხუჯრედის მდგომარეობის კრიტერიუმია ემბრიონის შეღებვა, მაგრამ არა ნაჭუჭი. ეს უნარი დაკავშირებულია იმ პირობებთან, რომლებშიც კვერცხუჯრედი კვდება. იმ შემთხვევებში, როდესაც მკვდარი კვერცხუჯრედის ბოჭკოვანი გარსი არ კარგავს ნახევრად გამტარ თვისებებს, ის არ დაუშვებს საღებავების გავლას, შესაბამისად, მკვდარი ემბრიონი არ შეიღებება. ფერადი ემბრიონი ყოველთვის მიუთითებს კვერცხუჯრედის სიკვდილზე.

მრგვალი ჭიის კვერცხების შესაღებად შეგიძლიათ გამოიყენოთ მეთილენის ლურჯი რძემჟავას ხსნარში კაუსტიკური ტუტე (0,05 გ მეთილენის ლურჯი, 0,5 გ ნატრიუმის ჰიდროქსიდი, 15 მლ რძემჟავა). ცოცხალი კვერცხები ფერს არ აღიქვამს; შეღებილია ლურჯიმკვდარი კვერცხების ემბრიონები. მრგვალი ჭიის ლარვების შეღებვა ბრილიანტკრესილის ლურჯი საღებავის ძირითადი ხსნარით 1:10000 კონცენტრაციით ხდება შემდეგნაირად: ჭიის კვერცხებით სითხის წვეთი და ძირითადი საღებავის ხსნარის წვეთი გამოიყენება შუშის სლაიდზე. პრეპარატი დაფარულია გადასაფარებლით, რომელიც მჭიდროდ არის დაჭერილი სლაიდზე, მსუბუქად დაჭერისას გასაკვეთი ნემსით. აღმოცენებული ლარვების რაოდენობა და მათი შეღებვის ხარისხი შეინიშნება მიკროსკოპით; რის შემდეგაც იგივე პრეპარატი განმეორდება 2-3 საათის შემდეგ. ცოცხლად ითვლება მხოლოდ არადეფორმირებული ლარვები, რომლებიც არ შეღებილა 2 საათის განმავლობაში. მკვდარი ლარვები ან არ გამოდიან კვერცხებიდან, ან იღებენ ფერს, როდესაც ნაჭუჭი ტყდება (ნაწილობრივ ან მთლიანად).

ფრინველის მრგვალი ჭიის კვერცხების სიცოცხლისუნარიანობის დადგენისას შესაძლებელია პრეპარატების შეღებვა 5%-ით. ალკოჰოლური ხსნარიიოდა. როდესაც იგი გამოიყენება პრეპარატზე, ასკარიდიის მკვდარი კვერცხების ჩანასახები ჩნდება 1-3 წამში. შეღებილია ნარინჯისფრად.

მკვდარი ოპისტორხის კვერცხები და მსხვილფეხა რქოსანი ლენტის ჭიის ონკოსფეროები შეღებილია ტოლუიდინის ლურჯი ხსნარით (1:1000), ხოლო მკვდარი მსხვილფეხა რქოსანი ლენტის ონკოსფეროები ბრწყინვალე კრესილის ლურჯის ხსნარით (1:10000). ამავდროულად, როგორც მკვდარი, ისე ცოცხალი კვერცხების ემბრიონები და ნაჭუჭები ფერს იძენს. ამიტომ, შეღებვის შემდეგ, კვერცხები და ონკოსფეროები ირეცხება სუფთა წყალიდა დამატებით შეღებეთ ისინი საფრანინით (განზავებული 1:10000 სპირტში 10 °C). ალკოჰოლი შლის საღებავს ჭურვიდან, ხოლო საფრანინი მას წითლად აქცევს. შედეგად ცოცხალი კვერცხები წითლდება; კვერცხები მკვდარი ემბრიონებით ცისფერი ხდება, მაგრამ ნაჭუჭი წითელი რჩება. მსხვილფეხა რქოსანი ლენტის ჭიის მკვდარი ემბრიონები სწრაფად, რამდენიმე წუთში იჭრება ნათელ წითლად ან ვარდისფერისაფრანინი ან ცისფერი ბრწყინვალე კრესილი ლურჯი განზავებით 1:4000, ან ინდიგო კარმინი 1:1000 - 1:2000 განზავებით. ცოცხალი ემბრიონები ამ საღებავების ზემოქმედებით 2-7 საათის შემდეგაც არ იცვლება.

ჯუჯა ლენტის ჭიის კვერცხების სიცოცხლისუნარიანობის დასადგენად რეკომენდებულია შემდეგი საღებავების გამოყენება:

1. ბრილიანტკრეაზილის ლურჯი (1:8000) - 1 საათის შემდეგ მკვდარი კვერცხების ონკოსფერო ხდება განსაკუთრებით მკვეთრად შეფერილი, რომელიც მკვეთრად გამოირჩევა დანარჩენი კვერცხის ფერმკრთალი ან უფერო ფონზე.

2. საფრანინი (1:8000 2 საათის განმავლობაში ექსპოზიციისას და 1:5000 3 - 5 საათის განმავლობაში).

3. პიროგალის მჟავას 50% ხსნარი 1:2 განზავებით - 1 საათის განმავლობაში 29 - 30 ° C ტემპერატურაზე (რაც უფრო დაბალია ტემპერატურა, მით უფრო გრძელია შეღებვის პროცესი).

7.7.3. ლუმინესცენტური მეთოდი ჰელმინთის კვერცხებისა და ლარვების შესასწავლად

ფლუორესცენტური მიკროსკოპით შესაძლებელია ცოცხალი და მკვდარი საგნების განსხვავება კვერცხუჯრედის დაზიანების გარეშე. არ გამოიყენება ფლუორესცენტისთვის ულტრაიისფერი სხივები, და ხილული სინათლის ლურჯი-იისფერი ნაწილი, ჩვეულებრივი მიკროსკოპით და მინის სლაიდებით; დაემატა OI-18 illuminator სპეციალური ნაკრებიფერადი ფილტრები.

მრგვალი ჭიების, ქინძისთავების, ჯუჯა ჭიების, მსხვილფეხა რქოსანი ჭიების, ფართო ლენტის ჭიების და სხვა ჰელმინთების ცოცხალი და მკვდარი კვერცხები ფლუორესირებს განსხვავებულად. ეს ფენომენი შეინიშნება როგორც პირველადი ლუმინესცენციის დროს საღებავების გამოყენების გარეშე, ასევე ფტოროქრომებით შეღებვისას (აკრიდინის ფორთოხალი, კორიფოსფინი, პრიმულინი, აუროლინი, ბერლერინის სულფატი, ტრიპაფლავინი, რივანოლი, აკრინი და ა.შ.).

უფერული, ცოცხალი, გაუნაწილებელი მრგვალი ჭიის კვერცხები კაშკაშა მწვანედ ანათებენ მოყვითალო ელფერით; მკვდარ კვერცხებში ნაჭუჭი ასხივებს მწვანე შუქიგაცილებით ნათელი ვიდრე მუქი მწვანე ემბრიონის ნაწილი; მრგვალი ჭიის კვერცხებში ლარვასთან ერთად მხოლოდ ნაჭუჭი ჩნდება, ხოლო მკვდარ კვერცხებში ნაჭუჭიც და ლარვაც კაშკაშა ყვითელია.

ქინძისთავებისა და ჯუჯა ჭიების უპიგმენტური და უნაყოფო ცოცხალი კვერცხები ასხივებენ მომწვანო-მოყვითალო შუქს, მუქი მწვანე ემბრიონული მასის ფონზე მკვდარი კვერცხების გარსი ინტენსიურად ანათებს.

მეორადი ლუმინესცენციით (აკრიდინის ფორთოხლის შეღებვისას 1:10,000 და 1:50,000 განზავებით 30 წუთიდან 2 საათამდე), ცოცხალი და მკვდარი ნემატოდების, ტრემატოდებისა და კესტოდების გარსი განსხვავებულად ანათებს.

მრგვალი ჭიების, ტოქსოკარას, ქინძისთავების, ჯუჯა ლენტის ჭიების, ვირთხის ჭიების, ხარის ლენტის ჭიების, ხარის ჭიების და ჭიების ჭიების ნაჭუჭები შეღებილია ნარინჯისფერ-წითელ ფერში. მრგვალი ჭიების, ტოქსაკარისის, ვირთხის ჭიების, ფართო ლენტის ჭიების და მსხვილფეხა რქოსანი ჭიების ცოცხალი კვერცხების ემბრიონები ფლუორესირებს მუქი მწვანე ფერის ან რუხი-მწვანე ფერი. ამ ჰელმინთების მკვდარი ემბრიონული კვერცხები ასხივებენ „დამწვრ“ ნარინჯისფერ-წითელ ფერს. ცოცხალი ქინძისთავები და ტოქსოკარა ლარვები (კვერცხის ნაჭუჭები გათავისუფლდა) ასხივებენ მოსაწყენ ნაცრისფერ-მწვანე შუქს, როდესაც ისინი იღუპებიან, ფერი იცვლება "დამწვარი" ღია მწვანემდე, შემდეგ ყვითელი, ნარინჯისფერი და ბოლოს კაშკაშა ნარინჯისფერი.

ფტოროქრომებით შეღებვისას - კორიფოსფილუმი, პრიმულინი, მრგვალი ჭიების და ჭიების მკვდარი კვერცხები ავლენენ ბზინვარებას იასამნისფერ-ყვითელიდან სპილენძის-წითელამდე. სიცოცხლისუნარიანი კვერცხები არ ანათებს, მაგრამ ფერადია მუქი მწვანე ფერი.

ტრემატოდების ცოცხალი კვერცხები (პარაგონიმუსი და კლონორქისი) არ ანათებს აკრიდინის ფორთოხლის შეღებვისას, მაგრამ მკვდარი კვერცხები მოყვითალო-მომწვანო შეფერილობას იძლევა.

ლუმინესცენციის მეთოდი ასევე შეიძლება გამოყენებულ იქნას ჰელმინთის ლარვების სიცოცხლისუნარიანობის დასადგენად. ამრიგად, სტრონგილატი და რაბდიტატის ლარვები ფტოროქრომირებულია აკრიდინის ფორთოხლის ხსნარით (1:2000) ანათებენ: ცოცხალი - მწვანე (ელფერით), მკვდარი - კაშკაშა ნარინჯისფერი შუქით.

ჭურვიდან გამომავალი ცოცხალი მირაციდიები ასხივებენ მკრთალ მოლურჯო შუქს წამწამების ძლივს შესამჩნევი ღია ყვითელი გვირგვინით, მაგრამ სიკვდილიდან 10-15 წუთის შემდეგ ისინი ჩნდებიან კაშკაშა „დამწვარი“ ღია მწვანე, შემდეგ კი ნარინჯისფერ-წითელი შუქით.

7.7.4. ბიოლოგიური ნიმუშის მეთოდი

მაგალითად, ასკარიდის კვერცხების სიცოცხლისუნარიანობის დასადგენად (ღორის მრგვალი ჭია, ადამიანის მრგვალი ჭია, ტოქსოკარა, ტოქსასკარისი და ა. ასკარისის კვერცხები ნატრიუმის ქლორიდის იზოტონურ ხსნარში პიპეტირდება თაგვის ან ზღვის გოჭის პირით. 6-7 დღის შემდეგ ცხოველს კლავენ, ხსნიან მის ღვიძლს და ფილტვებს და ცალ-ცალკე იკვლევენ ასკარიდატის ლარვების არსებობას. ამისათვის ღვიძლს და ფილტვებს ჭრიან მაკრატლით პატარა ნაჭრებად და ათვალიერებენ ბერმანის ან სუპრიაგას მეთოდით (ნაწილი 6.1.2).

თუ ცხოველები დაინფიცირდნენ ცოცხალი ინვაზიური კვერცხებით, მაშინ გაკვეთის შემდეგ ღვიძლში და ფილტვებში აღმოჩენილია მიგრირებადი ასკარიდის ლარვები.

ინფექციის შემთხვევაში, ფასციოლას კვერცხები ლაბორატორიული ცხოველების განავალში შეიძლება გამოვლინდეს კურდღლებში 2 თვის შემდეგ, ზღვის გოჭები- 50 დღის შემდეგ, თაგვებში - 35 - 40 დღის შემდეგ.

პასუხის უფრო სწრაფად მისაღებად ლაბორატორიულ ცხოველებს ხსნიან 20-30 დღის შემდეგ და ღვიძლს ამოწმებენ ახალგაზრდა ფასციოლების არსებობაზე.

ჯუჯა ლენტის ჭიის კვერცხების სიცოცხლისუნარიანობის დასადგენად, ასევე რეკომენდებულია მათი მიტანა ადრე არაინფიცირებულ თეთრ თაგვებთან, რასაც მოჰყვება ცხოველების გახსნა 92-96 საათის შემდეგ და ცისტიცერკოიდების იდენტიფიცირება ნაწლავის ჯირკვალში ან კესტოდების ნაწლავის სანათურში.

ოპისტორქისის კვერცხების სიცოცხლისუნარიანობის დასადგენად რეკომენდებულია მეთოდი (გერმანული S.M., Baer S.A., 1984), რომელიც დაფუძნებულია მირაციდიუმის გამოჩეკვის ჯირკვლის ფიზიკურ-ქიმიურ აქტივაციაზე და სტიმულაციაზე. საავტომობილო აქტივობალარვები, რაც იწვევს კვერცხის ქუდის გახსნას და მირაციდიუმის აქტიურ გამოყოფას ექსპერიმენტულ პირობებში.

ოპისტორქისის კვერცხების შეჩერება წყალში წინასწარ გაცივდება 10 - 12 °C-მდე (ყველა შემდგომი ოპერაცია ტარდება ოთახის ტემპერატურაზე 19 - 20 °C). 1 წვეთი სუსპენზია, რომელიც შეიცავს 100-150 კვერცხს, ემატება ცენტრიფუგის მილში. სინჯარა მოთავსებულია სადგამში 5 - 10 წუთის განმავლობაში. ამ დროის განმავლობაში ყველა კვერცხი ახერხებს ძირში ჩაძირვას. შემდეგ ზედმეტ წყალს საგულდაგულოდ იწოვება ფილტრის ქაღალდის ზოლით და საცდელ მილაკში ემატება სპეციალური საშუალების 2 წვეთი. გარემო მზადდება 0,005 M Tris-HCl ბუფერში; ბუფერს ემატება 12 - 13% ეთანოლის ხსნარი და საღებავი (ფუქსინი, საფრანინი, ეოზინი, მეთილენის ლურჯი და ა.შ.). სინჯარა შეირყევა, მისი შიგთავსი პიპეტირდება შუშის სლაიდზე და ტოვებს 10 წუთის განმავლობაში, ოდნავ შერხევით. შემდეგ დაამატეთ 2 წვეთი მითითებული საშუალო. პრეპარატი მზად არის მიკროსკოპისთვის ჩვეულებრივი სინათლის მიკროსკოპის ქვეშ 20x გადიდებით.

ამ დროის განმავლობაში, სიცოცხლისუნარიანი ლარვების სახურავი იხსნება და მირაციდიუმი აქტიურად გამოდის მითითებულ გარემოში. მასში ეთანოლის არსებობის წყალობით, ისინი იმობილიზაციას უკეთებენ 2-5 წუთის შემდეგ და შემდეგ ღებავენ საღებავით. მათი ადვილად აღმოჩენა და დათვლა შესაძლებელია მიკროსკოპით.