Инвазионные болезни собак и кошек. Кровепаразиты у собак и кошек
Заражение происходит, как правило, орально с инфицированными каловыми массами, при контакте с инвазированными животными, предметами ухода, подстилками, а также внутриутробно от матери к плоду и при выкармливании молодняка молоком.
Многие насекомые могут выступать в качестве переносчиков гельминтов и .
Самым очевидным признаком нахождения гельминтов в организме питомца, безусловно, является их обнаружение в фекалиях. Это говорит о высокой степени инвазии.
Диагностика
Лечение
В идеале контроль лечения осуществляется повторной сдачей анализа кала до получения отрицательного результата по яйцам гельминтов и простейшим и хорошего общего анализа кала, по результатам которого врач сможет понять о степени переваривания корма, его усвояемости, наличии или отсутствии скрытой крови и т.д.
Профилактические меры
Профилактика заключается в систематической дегельминтизации питомца.
Собак, подбирающих предметы на улицы или , следует выгуливать в наморднике.
Питомцев, гуляющих на улице (выезжающих на дачу), питающихся кормами домашнего производства (натуральная диета), следует дегельминтизировать четыре раза в год (каждый квартал). Одна из обработок производится перед вакцинацией питомца.
Питомцев, не выходящих за пределы квартиры и питающихся кормам промышленного производства, следует дегельминтизировать минимум 2 раза в год. Одна из обработок проводится перед .
Проводить дегельминтизацию можно только клинически здоровым животным и в соответствии с рекомендациями по весу и возрасту. Если у собаки/кошки имеются гельминты, после приема препарата они в процессе гибели выделяют токсины и продукты своей жизнедеятельности, что может усугубить уже имеющиеся симптомы инвазии, поэтому в день приема противогельминтного препарата рекомендуется дать питомцу какой-либо сорбент (например, ).
Легочный гельминт кошек, распространен повсеместно. Взрослые особи имеют малые размеры (менее 1 см в длину) и обнаруживаются в бронхиолах. Яйца откладывают в узелках легочной паренихмы; личинки первой стадии откашливаются, проглатываются и выводятся наружу с фекалиями. Промежуточными хозяевами являются улитки; возможно, в заражении кошек участвуют дополнительные хозяева (мелкие млекопитающие и птицы). Характерно бессимптомное течение. При тяжелой инвазии воспаление основных воздухоносных путей приводит к образованию узелков в легких и на плевре, которые могут оставаться около 6 месяцев. Клинические признаки сходны с таковыми при «кошачьей астме» и варьируют от легкого кашля до тяжелых хрипов.
На рентгеновских снимках можно увидеть неопределенные узловые образования из мягких тканей, сходные с метастатическими или грибковыми поражениями. Иногда наблюдаются признаки смешанной бронхиальной, альвеолярной или интерстициальной пневмонии. Цитологическое исследование смывов из трахеи может показать эозинофильный воспалительный процесс, иногда видимый по клиническому анализу крови, хотя картину смешанного воспаления часто дают вторичные бактериальные инфекции. Окончательный диагноз ставят на основании обнаружения личинок первой стадии в смывах из трахеи или фекалиях; их можно идентифицировать по дорсальному и вентральному кутикулярным гребням на хвосте. Для всех кошек с клиническими проявлениями показано лечение.
Filaroides spp.
Кроме Oslerus osleri, в конечных бронхиолах и альвеолах собак иногда обнаруживаются другие филярии (Filaroides milksii, F.hirthi). Инвазия обычно протекает бессимптомно, хотя при вскрытии иногда обнаруживают милиарные узелки. В редких случаях F.hirthi вызывает одышку, кашель и респираторные нарушения, особенно у животных с пониженным иммунитетом. На рентгеновских снимках можно увидеть диффузные милиарные интерстициальные или одиночные узлы. Диагноз подтверждается обнаружением личинок или яиц, содержащих личинки, методом флотации в растворе сульфата цинка.
Crenosoma vulpus
Angiostrongilus vasorum и Dirofilaria immitis
Обитают в легочных артериях и правом предсердии. Могут вызывать респираторные симптомы.
При сильной инвазии миграция личинок Toxocara canis в легких может вызвать кашель и одышку у щенков (в возрасте менее 6 недель). Признаки выражены незначительно, и обычно лечения не требуется. Яйца в фекалиях на этой стадии не обнаруживаются, но может отмечаться эозинофилия. Ancylostoma caninum и Strongyloides stercoralis также мигрируют через легкие на определенном этапе их жизненного цикла, и могут вызывать кашель.
Paragonimus kellicotti
Инвазии Aerostrongilus abstructus, Filaroides hirthi и F.milksi часто проходят сами собой или протекают бессимптомно и обычно не требуют лечения. При клинических проявлениях животных можно лечить бензимидазолами (например, фенбендазолом).
Ян Рэмси, Даниелла Ганн-Мур и Сюзан Шоу
- потеря аппетита, вялость
- анемичность слизистых оболочек или желтушность
- повышение температуры тела
- гематурию (кровь в моче)
Одними из распространенных заболеваний у собак являются и гемобартонеллез. Кошки же чаще заражаются гемобартонеллезом.
Гемобартонеллез собак - болезнь, вызываемая гемотрофической микоплазмой Haemocanis. Микоплазмы заражают собак при укусах клещей и мух, питавшихся кровью зараженных животных. Также заражение происходит при драках, сопровождающихся ранениями, и реже - при переливании крови, когда кровь инфицированного животного переливается здоровому. У собак заболевание чаще всего протекает бессимптомно или проявляется тяжелой анемией. Если у собаки была удалена селезенка, то гемобартонеллез протекает тяжело со всеми перечисленными выше симптомами. Для определения микоплазмы в крови животного используют световую микроскопию, исследуют мазок крови, а также полимеразную цепную реакцию (ПЦР-диагностика), так как микоплазма достаточно мала.
Антипротозойные, или противопротозойные, средства применяют собакам и кошкам и другим животным против протозойных болезней (азидин, беренил, трипансинь и др.).
соблюдение правил содержания и кормления собак и кошек, хороший за ними уход;
уничтожение мышей и крыс, отлов и уничтожение бродячих собак и кошек - распространителей инвазии среди домашних животных и человека;
тщательные предупредительные меры против антропозоонов (трихинеллез, токсоплазмоз и др.;
проведение профилактических дегельминтизаций и химиопрофилактических обработок собак и кошек;
запрещение скармливание животным инвазированных (зараженных) мясных продуктов и их отходов;
изоляция собак и кошек, пораженных накожными и другими болезнями.
Гельминтозы
Гельминтозы являются заболеваниями наиболее многочисленными (более 60 %) и распространены повсеместно. Среди гельминтозов собак и кошек различают трематодозы, цестодозы, нематодозы. Их возбудители резко отличаются по строению и развитию. Скребни у этих животных не регистрируются.
Цестодозы - заболевания, возбудители которых принадлежат к ленточным червям - (тениоз гидатигенный, тениоз пизиформный, гидатигероз кошек, мультицептоз собак, эхинококкоз собак, альвеококкоз собак, дипилидиоз и дефиллоботриоз).
Нематодозы вызываются гельминтами из класса круглых червей - (токсокароз, токсаскаридоз собак, анкилостоматидозы собак и трихинеллез).
Геогельминты развиваются прямым путем без участия промежуточного хозяина (токсокара собак и др,), то есть жизненный цикл гельминта происходит в одном и том же животном. В развитии биогельминтов участвуют, кроме дефинитивного (основного) хозяина, промежуточный, а иногда и дополнительный хозяин (эхинококк, описторх и др.), в организме которых гельминт проходит определенную стадию развития - созревание.
Описторхоз
Этиология
Описторх кошачий имеет тело ланцетовидной формы длиной около 10 мм.
Жизненный цикл
Описторх является биогельминтом. Он развивается со сменой трех групп хозяев: дефинитивных (животных и человека), промежуточного (пресноводного моллюска битинии) и дополнительных (карповых рыб).
Собаки, кошки и человек заражаются при поедании рыбы, содержащей в мышцах мелкие инвазионные личинки - метацеркании (0,2 мм в диаметре). Животные и человек заражаются при поедании рыбы, выловленной в неблагополучном водоеме.
Эпизоотологические данные
Фактор передачи описторхозной инвазии - сырая, мороженая, малосольная и вяленая рыба, зараженная личинками (метацеркариями) описторха. Природные очаги этого трематодоза чаще создают водные пушные животные.
Признаки болезни
Признаками болезни являются расстройство пищеварения, исхудание, желтушность конъюнктивы).
Прижизненно описторх диагностируют в ветеринарной лаборатории при исследовании проб фекалий собак и кошек методом последовательного промывания и обнаружения яиц трематоды.
Первая помощь
Измерить температуру тела. Назначить легкоперевариваемую диету. Направить собаку в ветеринарную лечебницу, взять пробу фекалий для лабораторного исследования. Произвести тщательную уборку помещения, лежанки.
Для дегельминтации домашних и диких плотоядных применяют гексихол и гексахлорэтан, гексахлорпараксилол в тех же дозах, что и гексахлорэтан.
Гексихол назначают в дозе 0,2 г/кг, однократно, индивидуально, в смеси с небольшим количеством мясного фарша после 12-часового голодания. При тяжелом течении описторхоза гексихол применяют дробными дозами (0,1 г/кг на прием) два дня подряд.
Профилактика
Запрещается скармливание животным и человеку сырой, копченой или вяленой рыбы.
Причины болезни
Тения гидатигенная относится к наиболее крупным цестодам собак и кошек (до 5 м длины), с вооруженным сколексом (25–45 крючков), многочисленными семенниками (500–600), двухлопастным яичником в гермафродитных членниках и ветвистой матки (5–10 отростков с каждой стороны) в зрелых члениках.
Тения гидатигенная является биогельминтом. В развитии этой цестоды принимают участие основные хозяева (собаки, волки и др.) и промежуточные (домашние и дикие травоядные, свиньи и редко человек). Собаки и кошки заражаются при поедании сальников и других внутренних органов промежуточных хозяев, инварированных крупными тонкостенными пузыревидными личинками (до куриного яйца), называемыми «тонкошейными» цисцерками с одним сколексом внутри.
Эпизоотологические данные
Признаки болезни
При высокой интенсивности инвазии (более пяти экземпляров цестод в кишечнике) у больных собак наблюдается чередование поноса и запора, исхудание, извращенный аппетит, зуд в области ануса, судороги.
Наличие зрелых членников в выделяемых фекалиях собак может обнаружить владелец. Их надо собрать пинцетом во флакон и доставить в ветеринарное учреждение для определения вида.
Доврачебная помощь
Витаминная, молочная диета. При запоре необходимо назначить слабительное - касторовое масло в количестве от одной чайной ложки (кошкам и мелким собачкам) до 50 мл средним и до 100 мл - крупным собакам.
При тениозе гидатигенном, а также при других цестодозах для дегельминтизации собак применяют ареколин бромистоводородный и феносал. Ареколин бромистоводородный назначают в дозе 0,004 к/кг массы животного, разовая доза не должна превышает 0,12 г, через 12 часов после последнего кормления с молоком в хлебных болюсах, кусках мяса или порошке. Последнее кормление перед дачей антгельминтика не должно быть обильным, при этом корм дают в виде кашки.
Перед дегельминтизацией собакам не дают костей. При использовании ареколина собак выдерживают на привязи в течение 12 часов (до трех актов дефекации).
Семена тыквы очищают и перемалывают в порошок, который смешивают с 6 - частями воды. Смесь кипятят 1 час. После остывания с поверхности удаляют масло. Кашицу смешивают с равным количеством муки. Собакам натощак дают 100–200 г, затем через час слабительное.
Аназол 25 мг на 1 кг массы тела.
Дронцид 1 таблетка на 10 кг массы тела.
Феносал применяют в дозе 0,25 г/кг индивидуально, однократно в форме порошка в смеси с кормом, а также таблеток без выдержки собак на голодной диете и без применения слабительных средств.
Профилактика
Проваривание всех мясных отходов, идущих в корм собак. Собак старше 3-месячного возраста, находящихся при отарах и гуртах, дегельминтизируют через каждые 45 дней. В условиях выраженной сезонности их заражения - не реже одного раза в квартал. Собак, не имеющих контакта с общественным скотом, подвергают профилактическим обработкам два раза в год (весной и осенью). Отлов и уничтожение бродячих собак и кошек.
Тениоз пизиформный
Тения пизиформная по строению напоминает тению гидатигенную.
Данная цестода является биогельминтом. Дефинитивные хозяева заражаются тениозом при поедании сальников и других органов кроликов и зайцев (промежуточных хозяев), инвазированных мелкими гороховидными цистицерками.
Охотничьи собаки и волки являются главными источниками тениозной инвазии в природе. Интенсивнее заражаются молодые животные, особенно бродячие собаки и кошки.
Признаки болезни
При высокой интенсивности инвазии (более пяти экземпляров цестод в кишечнике) у больных собак наблюдается чередование поноса и запора, исхудание, судороги, зуд в области ануса, извращенный аппетит.
Наличие зрелых члеников в выделяемых фекалиях собак может обнаружить владелец. Их нужно собрать пинцетом во флакон и доставить в ветеринарное учреждение для определения вида.
Доврачебная помощь
Молочная, витаминная диета. При запоре назначают слабительное - касторовое масло в количестве от одной чайной ложки (кошкам и маленьким собачкам) до 50 мл средним и до 100 мл - крупным собакам.
Лечение такое же как и при тениозе гидатигенном.
Профилактика
С целью предупреждения заражения охотничьих собак тениозом нельзя им скармливать внутренние органы зайцев, которые бывают часто поражены гороховидными цистицерками. При подворном убое кроликов печень, сальники и брыжейки перед скармливанием собакам и кошкам подлежат проварке.
Гидатигероз кошек
Гидатигероз кошек представляет собой гельминтоз кошек, вызываемый цестодой.
Возбудителем гидатигероза домашних и диких кошек является специфическая для кошачьих цестода - гидатигера тениеформная, которая локализуется в их тонком кишечника.
Кроме домовых мышей и серых крыс, часто поражаются стробилоцерками лабораторные белые мыши и крысы. Основным фактором передачи гидатигенной инвазии лабораторным мышам и крысам является загрязненный яйцами гидатигеры корм (при доступе к нему зараженных кошек).
Признаки болезни
У кошек наблюдается угнетенное состояние, вздутие живота, длительный понос, исхудание, иногда рвота.
Методы диагностики те же, что и при ранее описанных тениозах.
Доврачебная помощь
При плохом аппетите кошке назначают молочную диету. Рекомендуется влажная уборка квартиры с использованием 2 %-ного раствора хлорамина. Область анального отверстия периодически протирают слабым раствором марганцовокислого калия.
Кошек, зараженных гидатигером, дегельминтизируют феносалом без предварительной голодной диеты (0,1 г/кг массы животного), бунамидином (0,05 г/кг) в смеси с мясным фаршем.
Профилактика
Главным профилактическим мероприятием против гидатигероза кошек считают разрыв биологической цепи: кошка - гидатигера - мышь или крыса. Уничтожение мышей и крыс предотвращает заражение кошек, а изоляция кормов для лабораторных животных от кошек исключает инвазирование мышевидных грызунов.
Мультицептоз собак
Причины и течение болезни
Цепень мозговой представляет собой средней длины цестоду (60–80 см).
Цепень мозговой развивается со сменой хозяев. Собаки, волки и лисицы являются дефинитивными хозяевами, а овцы и очень редко человек - промежуточными. Заражение собак и волков наблюдается при поедании овечьих голов, в головном мозгу которых содержится ценур, или личиночная стадия возбудителя мультицепса. Ценур представляет собой значительный по величине (до куриного яйца и больше) тонкостенный пузырь, содержащий жидкость и много сколексов на внутренней оболочке (300–500 штук). Локализация ценура - головной и реже спинной мозг овцы.
Распространяют мультицептозную инвазию главным образом приотарные (чабанские) собаки. Одна такая собака выделяет во внешнюю среду (пастбище) несколько миллионов яиц цепня мозгового.
Признаки болезни значительно не отличаются от симптомов тениоза гидатигенного.
Доврачебная помощь
До того как подвергнуть собаку дегельминтизации, ей необходимо улучшить условия содержания и кормления. Кости скармливать не следует. При наличии запора состояние больного животного облегчает очистительная клизма с использованием средней величины спринцовки. Для клизмы используют чистую воду комнатной температуры. Воду в кишечник животного во избежание боли, вливают медленно. В некоторых случаях для облегчения выделения фекалий в воду добавляют касторовое масло или небольшое количество детского мыла (столовую ложку стружек на 1 л воды).
Лечение и профилактика
Лечение и профилактика принципиально не отличаются от таковых при тениозе гидатигенном. Кроме того, необходимо надежно обеззараживать термическим путем инвазированные ценурами головы убитых овец.
Эхинококкоз собак
Половозрелый эхинококк зернистый представляет собой очень мелкую цестоду (2–6 мм длины), состоит из сколекса, вооруженного 30–40 крючьями, и 3–4 члеников. Последний членик заполнен мешковидной маткой, в которой находится 500–750 мелких яиц.
Развитие эхинококка зернистого происходит при обязательном участии основных хозяев (собак, волков, лисиц) и промежуточных (копытных животных и человека). Основные (дефинитивные) хозяева заражаются имагинальным эхинококком при поедании печени, а также других органов и тканей, инвазированных жизнеспособными эхинококковыми пузырями, содержащими дочерние и внучатые пузыри. Число сколексов в одном пузыре может колебаться от десятков до нескольких сотен или тысяч.
Эхинококкоз принадлежит к широко распространенным цестодозам домашних животных. При несоблюдении правил личной гигиены в общении с собаками человек может заразиться личиночной стадией эхинококка.
Признаки и течение болезни
У собак, больным зрелым эхинококкозом, обращают на себя внимание такие симптомы, как истощение, стойкий понос, иногда сменяющийся запором, увеличение живота, угнетение общего состояния животного. В такой период больная собака представляет большую опасность для человека. На шерсти разных участков тела и на морде концентрируются жизнеспособные яйца цестоды.
Мелкие членики эхинококка можно обнаружить только при исследовании проб фекалий собак методом последовательного промывания (предварительно облитый кипятком). При отрицательном анализе подозреваемую в заболевании эхинококкозом собаку можно подвергнуть диагностической дегельминтизации ареколином.
Необходимо помнить, что эхинококк зернистый, в отличие от возбудителей других тениидозов плотоядных, обладает максимальной устойчивостью к антгельминтикам, особенно в неполовозрелой стадии, поэтому рекомендуемые противоэхинококкозные средства следует применять в оптимальных терапевтических дозах собакам: феносал (0,25 г/ кг массы животного), ареколин бромистоводородный (0, 004 г/ кг), дронцит (0,005 г/ кг), втозол, фензол.
Профилактика
Профилактика должна быть направлена на предохранение заражения ларвальным эхинококкозом человека и сельскохозяйственных животных, с одной стороны, и на недопущение инвазирования собак и диких плотоядных имагинальным эхинококкозом - с другой.
Альвеококкоз собак
Причины болезни
По строению альвеококк напоминает эхинококка, отличаясь от него несколько меньшим размером стробилы, числом семенников в гермафродитном членике и круглой формой матки в зрелом членике.
Основную роль в развитии альвеококка многокамерного как дефинитивные хозяева играют дикие хищники - песцы и лисицы, а также волки и собаки и промежуточные - хлопковые крысы, ондатры, мыши-полевки, реже - человек. Дефинитивные хозяева заражаются имагинальным альвеококкозом при поедании инвазированной печени и других внутренних органов грызунов, пораженных личиночной стадией этой цестоды.
Человек заражается ларвальным альвеококкозом при поедании немытых ягод брусники, морошки, черники, собранных в местах, где обитают лисицы и песцы, а также при контакте со шкурками этих пушных зверей. Личинки альвеококка представляют собой конгломерат маленьких пузырьков без жидкости, но со сколексами. В промежутках между пузырьками развивается грануляционная ткань. На разрезе личиночной стадии данной цистоды заметная ячеистость.
Альвеококкоз в вид природных очагов часто регистрируется в зонах тайги, тундры и пустыни, заселенных песцами и лисицами, с одной стороны, и мышевидными грызунами - с другой.
Признаки болезни у животных не изучены.
У человека заболевание протекает очень тяжело. Необходимо срочное оперативное вмешательство, которое не всегда заканчивается благополучно.
У собак имагинальный альвеококкоз распознают теми же методами, что и эхинококкоз.
Доврачебная помощь и лечение проводят такими же методами как и при эхинококкозе.
Профилактика
Основных распространителей инвазии - песцов и лисиц - дегельминтизации не подвергают. Внутренние органы песцов и лисиц уничтожают.
Депилидиоз
Дипилидиоз регистрируется в разные периоды года. Основную роль в передаче инвазии играют блохи. Часто и интенсивно бывают заражены бродячие собаки и бездомные кошки.
Признаки болезни
При слабой степени инвазии (единичные экземпляры гельминтов) отмечают скрытую форму дипилидиоза. Тяжелая форма заболевания у собак и кошек характеризуется извращенным аппетитом, угнетением, исхуданием и нервными явлениями.
В домашних условиях владельцы могут обнаружить в свежевыделенных фекалиях больных собак или кошек микроскопические удлиненные зрелые членики огуречного цепня, а в ветеринарной лаборатории - яйцевые капсулы.
Доврачебная помощь
Тяжелобольным животным применяют молочную диету. При появлении запора собаке осторожно вливают в ротовую полость касторовое масло от одной чайной ложки до трех столовых, в зависимости от величины животного.
При дипилидиозе собак их дегельминтизируют, как при тениозе гидатигенном, а кошек - как при гидатигерозе.
Профилактика
Чтобы предохранить детей от заражения дипилидиозом следует следить за тем, чтобы кошки и собаки не имели доступа на кухню.
Дифиллоботриоз
Лентец широкий имеет максимальную длину 10 м и ширину до 1,5 см и огромное количество члеников (свыше 1 тысячи). Яйца трематодного типа средней величины, овальной формы, светло-желтого цвета, незрелые. Один лентец ежедневно выделяет несколько миллионов яиц.
Лентец широкий развивается сложным путем - со сменой дефинитивных хозяев (собак, кошек, лисиц и человека), промежуточных (веслоногих рачков-циклопов) и дополнительных (щук, окуней, ершей и др.). Дефинитивные хозяева заражаются при поедании сырой или малосольной рыбы, инвазированной небольшими личинками, или плероцеркоидами (до 6 мм длины). Плероцеркоиды обитают в мышцах, подкожной клетке и в икре.
Признаки болезни
У молодых животных, больных дифиллоботриозом, наблюдаются нервные расстройства (сонливость, конвульсии, припадки), извращение аппетита и анемия.
Дифиллоботриоз прижизненно диагностируют на основании эпизоотологических данных (кормление животных рыбой), клинических симптомов (нервные расстройства), лабораторных исследований проб фекалий собак и кошек методом последовательного промывания или флотации с применением насыщенного раствора натрия тиосульфата.
Собак и кошек дегельминтизируют теми же препаратами, которые рекомендуют при тениозе гидатигенном и гидатигерозе.
Профилактика
Нельзя допускать скармливания собакам и кошкам, а также диким пушным зверям (в зверохозяйствах) сырой пресноводной рыбы, полученной из неблагополучных водоемов. Проводить плановые дегельминтизации собак (весной и осенью), гельминтологическое обследование водоемов, а также санитарно-просветительную работу среди рыбаков.
Трихинеллез
Кишечная трихинелла является одной из самых мелких нематод (1,5–4 мм). У самцов нет спикул. Самки живородящие. Личинка (мышечная трихинелла) находится в капсуле лимоноподобной формы, микроскопической величины.
Жизненный цикл трихинелл осуществляется в одном организме, вначале в виде кишечного, а затем мышечного трихинеллеза. Животные и человек заражаются при поедании мяса, содержащего инвазионные личинки трихинелл.
Трихинеллез распространен очагово. Факторы передачи инвазии для собак и кошек - поедание мышевидных грызунов, боенских и кухонных отходов.
Признаки болезни
Симптомы заболевания изучены недостаточно. У собак и кошек наблюдается повышенная температура, понос; у человека - лихорадка, отеки лица, головная боль, болезненность группы мышц.
Диагностика собак и кошек не разработана.
Лечение животных при трихинеллезе не разработано.
Профилактика
Уничтожение крыс, мышей, бродячих собак и кошек. Все туши свиней и других восприимчивых животных обязательно подвергают трихинеллоскопии. Ветеринарные и медицинские работники противотрихинеллезные мероприятия в неблагополучных районах проводят совместно.
Анкилостоматидозы
Причины болезни
Анкилостоматиды - мелкие нематоды (6–20 мм длины), у одной из которых субтерминально расположенная ротовая капсула вооружена тройными зубами (анкилостома), а у другой - режущими хитиновыми пластинками (унцинария).
Возбудители анкилостоматидозов развиваются прямым путем. Во внешней среде из яиц нематод вылупляются личинки, которые два раза линяют и через 7 дней становятся инвазионными. Собаки и кошки заражаются двумя путями:
алиментарно (при заглатывании инвазионных личинок);
через кожу.
В организме животных личинки анкилостомы и унцинарии мигрируют по кровеносной системе до того, как достигнуть половой зрелости в тонком кишечнике.
Унцинариоз собак регистрируют повсеместною. Факторами передачи инвазии является вода и корм, а также почва и подстилка, загрязненные инвазионными личинками анкилостоматид.
Признаки анкилостоматидозов
Клинически эти нематоды протекают остро и хронически. При остром течении болезни, вызванной преимагинальными формами кривороток, наблюдают анемичность слизистых оболочек (нематоды питаются кровью), угнетение, рвоту, наличие в фекалиях слизи и крови. При хроническом - понос и исхудание.
Наряду с анамнезом, учетом эпизоотологических данных и клинических симптомов необходимо исследовать пробы фекалий собак и кошек на предмет выявления яиц стронгилидного типа.
Доврачебная помощь
Целесообразно измерить температуру тела. В зависимости от преобладания тех или иных симптомов заболеваний владельцы одним животным применяют слабительное при запорах, другим - слизистые отвары, третьим - тепло на область живота (при болях и рвоте) и др.
Для дегельминтизации больных собак и кошек применяют соли пиперазина (апидинат, сульфат и др.) в дозе 0,2 г/кг 3 дня подряд, нафтамон (0,3 г/кг), тетрамизол гранулят (0,08 г/кг) однократно с мясным фаршем или кашей.
Профилактика
Мероприятия, рекомендованные при токсаскаридозе собак, эффективны и при анкилостоматидозах. Поддержание в чистоте пола в будках, клетках и выгульных площадок в значительной степени предупреждает активное попадание через кожу инвазионных личинок кривоголовок в организме собак и кошек.
Токсаскаридоз собак
Токсаскарида представляет собой средней величины нематоду (4–10 см длины). На головном конце имеет три губы и узкие кутикулярные крылья.
Токсаскаридозом чаще болеют взрослые животные и молодняк собак старше шести месяцев. Факторами передачи инвазии являются корм и вода, загрязненные инвазионными яйцами токсаскариды, а также мышевидные грызуны.
Признаки болезни
Признаки болезни нехарактерные.
У больных собак угнетенное состояние; заметны расстройства деятельности органов пищеварительного аппарата (понос) и нервной системы - эпилептические судороги.
Основным методом диагностики токсаскаридоза собак считают исследование в ветеринарной лаборатории проб свежевыделенных фекалий. Клинические симптомы и эпизоотологические данные этого гельминтоза имеют второстепенное значение. Нередко отмечаются случаи выделения токсаскарид с фекалиями или рвотными массами.
Доврачебная помощь
При обнаружении выделившихся во внешнюю среду единичных токсаскарид можно в качестве антгельминтика использовать в домашних условиях пиперазина адипинат в дозе 0,2 г/кг массы животного, 3 дня подряд, ежедневно с кормом.
Применяют с кормом соли пиперазина (адипинат или сульфат) в указанной выше дозе; нафтамон (0,2 г/кг), однократно, индивидуально после 12-часового голодания. Применяют также фензол, ивомек и др. препараты. Необходимо иметь в виду, что некоторые породы собак (колли и др.) плохо переносят ивомек, поэтому одновременно применяют антигистаминные препараты - димедрол 1 %-ный раствор только внутримышечно.
Выделяемые в течение трех дней после лечения фекалии сжигают или глубоко закапывают в землю. Клетки и будки, где содержатся животные, обеззараживают огнем паяльной лампы или кипятком.
Профилактика
Против токсаскаридоза основным профилактическим мероприятием является ежедневная очистка собачьих будок, площадок, клеток, загонов (мест содержания животных) и периодическая их дезинвазация (уничтожение яиц гельминтов) термическими средствами.
Токсокароз собак и кошек
Токсокароз является инвазионным заболеванием молодняка собак и лисиц.
Причина болезни
Токсокары - нематоды значительного размера (самцы длиной до 10 см, самки - до 18 см).
Токсокароз является одним из самых распространенных гельминтозов плотоядных в молодом возрасте (до 3-х месячного возраста). Яйца этих возбудителей обладают очень высокой устойчивостью к химическим средствам (в 3 %-ном растворе формалина они сохраняют жизнеспособность в течение нескольких лет).
Признаки болезни
Клинические токсокароз протекает тяжело. Нередко у щенков отмечается рвота, нервные расстройства, понос или запор, возможны смертельные случаи.
Существенная роль таких эпизоотологических данных, как молодой возраст больных токсокарозом животных. Можно обнаружить макроскопически нематод в рвотных массах и фекалиях. В ветеринарной лаборатории делают исследования пробы фекалий и котят.
Доврачебная помощь
С целью облегчения тяжелого состояния больного животного в домашних условиях применяют слабительные (1–3 чайные ложки касторового масла) или ставят клизму при помощи небольшой спринцовки, назначают молочную диету. При уходе следует соблюдать правила личной гигиены и профилактики во избежание заболевания болезни «Larva migrans».
Лечение и профилактика в принципе не отличаются от лечения при токсаскаридозе.
2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.
2.1. ПРОТОЗООЗЫ ПЛОТОЯДНЫХ.
2.2. ГЕЛЬМИНТОЗЫ ПЛОТОЯДНЫХ.
3. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.
3.1. МАТЕРИАЛ И МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЙ.
3.2.5. Экстенсивность сочетанных инвазий.
3.4. ОБСЕМЕНЕННОСТЬ ПОЧВЫ ВЫГУЛЬНЫХ ПЛОЩАДОК ДЛЯ СОБАК И ТЕРРИТОРИЙ ДЕТСКИХ УЧРЕЖДЕНИЙ
3.6. ЛАБОРАТОРНЫЕ КОПРОЛОГИЧЕСКИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.
3.7. КАРТИНА КРОВИ ИНВАЗИРОВАННЫХ ЖИВОТНЫХ.
Задачи исследований:
2. Изучить экстенсивность инвазии отдельных половозрастных групп животных в разное время года.
7. Разработать систему лечебно-профилактических мероприятий при прото-зоозах и гельминтозах собак и кошек.
Объем и структура работы. Диссертационная работа состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований, обсуждения полученных результатов, выводов, практических предложений и списка использованной литературы. Диссертация изложена на 143 страницах машинописи, иллюстрирована 25 диаграммами и 8 таблицами. Список использованной литературы содержит 212 источников в том числе 89 иностранных.
4. Наибольшая экстенсивность инвазий наблюдается в октябре -63,0%, наименьшая - 28,6% в апреле. У собак ЭИ колеблется от 23,5% в апреле до 58,9 % в октябре. Динамика ЭИ кошек колебле тся от 31,6% в марте, до 67,0% в октябре.
6. Кроме моноинвазий регистрируются и микст-инвазии. У собак встречаются варианты: токсокароз - изоспороз 3,5%; токсокароз -дипилидиоз - 2,4%; токсокароз - токсаскаридоз - 1,2%; изоспороз - дипилидиоз, токсокароз - токсаскаридоз - унцинариоз по 0,4%. У кошек встречаются: токсокароз - изоспороз 3,2%; токсокароз дипилидиоз - 2,4%; токсокароз - токсаскаридиоз, токсокароз -дипилидиоз - изоспроз по 0,8%.
9. Установлено, что при токсокарозе и токсаскаридозе проявляется катаральный или катарально-геморрагический энтерит, недостаточность панкреатического сокоотделения и желчеотделения, холангиты. При цестодозах - катаральный гастроэнтерит, недостаточность желчеотделения, незначительное снижение панкреатического сокоотделения. При изоспрозе -катарально-геморрагический энтерит, недостаточность желчеотделения и панкреатического сокоотделения.
10.При дипилидиозе собак регистрируется увеличение содержания лейкоцитов до 12,7 ±1,1 Г/л, СОЭ увеличена до 10,8±0,6 мм/ч, эозинофилия - 16,8±0,6%, нейтрофилия с регенеративным сдвигом ядра. При дипилидиозе кошек наблюдается лейкоцитоз до 21,8±0,8 Г/л, СОЭ увеличина до 9,8+0,6, эозинофилия -16,2±0,37%, нейтрофилия с регенеративным сдвигом ядра влево. При токсокарозе собак отмечали снижение количества эритроцитов до 5,24±0,3 Т/л, увеличение СОЭ до 11,2±0,58 мм/ч, лейкоцитоз до 15,84+1,2 Г/л, увеличение процента эозинофилов до
20,5±0,86, появление юных нейтрофилов до 3,6±0,81, увеличение палочкоядерных нейтрофилов до 9,8±0,86. При токеокарозе кошек отмечается снижение количества эритроцитов до 6,58±0,29 Т/л, увеличение СОЭ до 10,6+0,51 мм/ч, эозинофилия до 19,3+0,4 %, увеличение палочкоядерных нейтрофилов до Г1,3±],05%, появление юных клеток - 2,2+0,49.
3. Дмитров В.К. Лисицы переносчики чесотки. // Ветеринария. 1964. - N3,- с.42-44.
5. Арнастаускене Т.В. Кокцидии и кокцидиозы домашних и диких животных Литвы. Вильнюс, 1985. с. 124-132.
7. Вейер! В. Цитологическое исследование различных стадии жизненного цикла кокцидий кролика // В сб. Вопросы цитологии и протистологии. Изд. АН СССР. М,-Л. 1960. с.277-284.
8. Бейер Т.В. О распространении сукциндегидразы в жизненном цикле Еппепа пЛезПпаНз. Цитология. N 4. 1962. с.232-237.
9. Белозеров Е.С., Шувалова Е.П. Описторхоз. Л., Медицина. Лен. отд-е. 1981. с. 10.
10. Берестов В. А. Арахнозы // Краткий справочник зверовода. Петрозаводск. 1974. - с.437-442.
11. Берестов В.А. Лабораторные методы оценки состояния пушных зверей // Петрозаводск. 1981. 151 с.1.1. Бессонов A.C. Трихинеллез диких и синантропных животных в СССР // Тр. ВИГИС. Т. XVI. 1 970. с.35-43.
12. Бобашинский А.И. Чесотка у сельскохозяйственных животных. М., 1944. 35 с.
15. Василевич Ф.И. Влияние ивомека на организм собак /7 Актуальные вопросы инфекционных и инвазионных болезней животных. М., 1994. с. 16-17.
16. Василевич Ф.И., Кириллов A.K. Демодекоз собак, (учебное пособие). Москва. 1997. 49с.
18. Величкин П.А. Радун Ф.Л., Гришин Г.С. Нилверм при токсокарозе собак // Ветеринария. N 1. 1972. с.60-61.
19. Герасимов Ю.А. Зудневая чесотка диких лисиц // Тр. Всесоюзного института охотничьего промысла. 1951. -N13. с. 116-134.
20. Герасимов Ю.А. Зудневая чесотка диких лисиц /7 Охота и охотничье хозяйство. 1970. N 12. - с. 14-15.
21. Гобзем В.Р. Кокцидиоз телят. Минск. Урожай. 1972. с.59.
22. Гончаров А.П. Клиническая картина, диагностика и лечение при отодектозе кошек // II акарологическое совещание. Киев. 1970. Ч. 1. - с.37.
23. Григорян Г.С., Манасян A.B., Адамян Ф.Б. Методические указания по вариационной статистике в ветеринарии с применением программируемых микрокалькуляторов. Ереван. 1988.
24. Гурьянова М.П. Новое о демодекозе собак и его терапии // Ветеринария. 1952. N 10. - с. 29-30.
25. Давлетшин А.Н. Эффективность неоцидола в борьбе с отодектозом пушных зверей в производственном опыте // Научн. тех. бюлл. ВНИИ вет.энтомологии и арахнологии. 1981. -Вып. 20. -с.77-81.
26. Давлетшин А.Н. Эффективность циодрина при отодектозе пушных зверей // Научн. тех. бюлл. ВНИИ вет.энтомологии и арахнологии. 1986. Вып. 18. с.49-56.
27. Давлетшин А.Н. Выживаемость клеща О. cynolis во внешней среде / Экология и география членистоногих Сибири. Новосибирск., Наука. 1987. с.218-21 9.
28. Данилов Е.ГГ. Болезни пушных зверей // Москва. 1964.ч - л.о с.
29. Демьянович М.ГТ. Чесотка//Медгиз. 1947. 137 с.
31. Дубинин В. Б. Семейство Demodecidae Мед. Железницы /7 Клещи фауны грызунов СССР. М.-Л. 1955.- с. 143-1 52.
32. Дубинин В.Б. Чесоточные клещи (Acariformes, Sarcoproidea) и чесоточные заболевания диких млекопитающих // Зоол. журн. 1955. Вып. 6. - Т. 34.с. 1 1 89-1 202.
34. Зорин М.И. Чесотка у серебристо-черных лисиц // Тр. Центр. П.И. лаборатории пушного звероводства. 1950. -Вып. 6.с.345-346.
35. Ильященко В.И. Некоторые особенности биологии клещей рода Psoroptes // Зоолог, журн. 1984. N 1. -с. 6 3 - 6 6.
36. Ильящснко В.И. Отодектоз плотоядных // Ветери пария. 1992. N 5. - с.41-44.
37. Калюс В.А. Трихинеллез человека. М., Медгиз. 1952. 248с.
38. Качаганов Х.Е. Арахноэнтомозы // Профилактика и лечение заразных болезней с/х животных. Алма-Ата. 1988. с.186-196.
39. Клиническая фармакология с терапией собак и кошек / Под ред. Соколова В.Д. СПб. 1994. с. 141-15 1.
40. Клочков С.Д. Основные гельминтозы городской и о п уля и и и собак, их санитарно-эпидемиологическое значение и меры борьбы с ними. Автореферат, дисс. . канд. вет. наук. Саратов. 1995. 18 с.
41. Колабский H.A., Пашкин П. И. Кокцидиозы сельскохозяйственных животных. Л., Колос. Лен. отд-е. 1974. с.73-80.
42. Красов В.М. Электрофоретические исследования белков сыворотки крови животных. Алма-Ата. Наука.i 969. 235с.
43. Крылов М.В. Возбудители протозойных болезней домашних животных и человека. Т. 1. СПб. 1994. с.2 18224, 27 1 .
45. Ларионов C.B. Демодекоз животных // Ветеринария. 1 990. N 8. - с.41-43.
46. Ларионов C.B. Морфобиологичеекие особенности клещей рода Demodex, профилактика и меры борьбы при демодекозе животных (крупный рогатый скот, собаки) // Автореф. дисс. . канд. сельхоз. наук. М., 1991. 17 с.
47. Ларионов C.B. Меры борьбы с демодекозом крупного рогатого скота // Актуальн. вопр. инф. и инвазионных болезней животных. М., 1993. с.41-43.
48. Левит A.B. К фауне споровиков кишечника домашних кошек в Казахстане // В кн. Мат. II Всес. съезда протозоологов. Ч.З. Киев. 1976. с.61-62.
49. Лсйкина К.С. ~ В кн.: Основы общей гельминтологии. М., 1976. с. 24-27.
50. Литвенкова Е. А. Некоторые данные о кокцидиях рода Isospora в Белоруссии // В кн.: Киш. простейшие. Вильнюс. 1982. с.82-83 .
51. Любашенко С.Л., Петров A.M. Ушная чесотка // Болезни пушных зверей. М., Колос. 1962. с. 146-149.
52. Любашенко СЛ. Арахноэнтомозы // Болезни пушных зверей. М., Колос, 1 973. с.205-2 17.
53. Майоров А.И. Лечение ушной чесотки у серебристо-черных лисиц и песцов // Советы звероводу. 1968. -Вып.З. с.34-37.
54. Майоров A.M. Опыт ликвидации зудневой чесотки среди серебристо-черных лисиц в Персиановском з/с
55. Ростовской области // Советы звероводу. 1969. Вып.2. -с.68-70.
56. Майоров А.И. Применение чардоны при ушной чесотке пушных зверей и кроликов // Тр. 1111И113К им.Афанасьева. 1984. Т.3 1. - с. 162-164.
57. Майоров А.И. Патогенез и клиническое проявление зудневой и ушной чесотки у пушных зверей и кроликов // Тр. НИИПЗК им.Афанасьева. 1986 (1987). Т.34. - с.95-99.
58. Майоров А.И. Научное обоснование лечебно-профилактических мероприятий при саркоптоидозах в пушном звероводстве и кролиководстве. Автореф. дисс. . док. вет. наук. Москва. 1989. 27с.
59. Мартынов В.Ф. Изучение некоторых лечебных препаратов при описторхозе /7 Работы по гельминтологии. Вып. 1. Москва. 1959. с. 11.0-1 14.
60. Матчанов I I.M. Парамонова С.Х. Испытание фенасала и дихлорофена при цестодозах собак // Тр. УзНИВИ. Ташкент. 1973. Т. XX. с.84-86.
61. Моисеенко К.Г. Состав белковых фракций крови при гельминтозах животных. Автореф. дисс. . канд. биол. наук. Алма-Ата. 1972. 24с.
64. Овсянников Н.Г. Песец острова Медного может исчезнуть // Природа. 1981. N 9. - с.21-24.
65. Озрецковская H.H. Зальнова Н.С., Тумольская Fl.И. Клиника и л е ч е I" i ие гельминтозов. JT., Медицина. Лен. отд-е. 1984.184 с.
67. Орлов Н.П. Профилактика и лечение чесотки сельскохозяйственных животных // Тр. 6 сессии Казахского филиала ВАСХ-НИЛ. Алма-Ата. 1949. -с.204-2 13.
68. Ошмарин Н.Г. О вреде гельминтов диких животных и перспективах борьбы с ними // Охрана природы на Дальнем Востоке. Вып. 1. Владивосток. 1959. с.99-106.
69. Павлов М.П. Массовые заболевания лисиц Крыма // Тр. Всес. НИИ охотничьего промысла. 1953. N 13. -с, 135-146.
71. Палимпестов М.А. Некоторые стороны биологического поведения чесот. клещей рода Psoroptes // Тр. Украинского ин-та экспер. ветерин. 1946. Т. 14. - с.35
72. Пал и vi пестов М.А. О диагностике зудневой (акарусной) чесотки // Ветеринария. 1956. N 2. - с.6770.
73. Пашкин П.И. Изучение иммунитета при кокцидиозе цыплят с целью изыскания наиболее эффективных методов профилактики. Дисс. . канд. вет. наук. Ленинград. 1966.
75. Петренко В. И. Жизненные циклы основных изоспор кошек и собак. Автореф. дисс. . канд. вет. наук. 1978. -I 8с.
76. Петренко В. И., Вершинин П. И. Биологические особенности изоспор собак и кошек // В кн.: Совр. проблемы протозоологии. Вильнюс. J982. с.284.
77. Подольский А.1\. Об уменьшении количества лисиц на Подол и и и о больных чесоткой // Украинский охотничий вестник. 1924. N 4-6. - с. 12-14.
78. Политов В.Ф., Качук М.В., Пропузо В.П. К вопросу0 чесотке // Тр. Белорус, науч.-исслед. кожно-венерол. ин-та. 1980. Вып. 24. - с. 102-105.
79. Прендель А. Р. Очерк гельминтофауны кошек г. Одессы // В сб. Работы по гельминтологии. Москва.1 937. с. 542-546.
80. Раевская З.А. Методы дегельминтизации собак при цестодозах // Тр. Всес. ин-та гельминтол. M.-J1. 1935. с. 132-137.
81. Руководство по зоонозам / Под ред. Покровского В.И. Л.: Медицина, 1983. с. 266-284.
82. Симецкий М.А. Проблемы ветеринарной санитарии. М., 1970. с.204-205.
83. Симецкий М.А., Удавлиев Д.И., Филиппов В.В. и др. Сравнительная характеристика эффективности ивомека и аверсекта (АС-1) // Ветеринария. 1994. N 1.с.40-4 2.
85. Смирнов А.М., Дугин Г.Л. Учебное пособие по лабораторным диагностическим исследованиям преджслудков и желудка, кала и мочи у животных. Ленинград. 1974. с. 18-42.
87. Соколовский H.A. Кожные болезни животных. М., Колос, 1968. с.296-302.
88. Солдатова P.E. О "власоеде" серебристо-черных лисиц // Каракулеводство и звероводство. 1 952. N 4.с.62-63.
90. Стамм Дж. У. Ветеринарный справочник для владельцев собак. 1992. с.41-50.
91. Степанова H.H., Крылов М.В., Хованских А.Е. и соавт. Рекомендации по борьбе с эймериозами и изоспорозами животных. Москва. 1992. 39 с,
92. Сухецки С. Ветеринарные препараты. Варшава. 1987. с,21 1 .
93. Сырникова Н.П. и соавт. Дезинфекция в зверохозяйствах// Ветеринария. 1980. N 6. - с.30-32.
94. Теплов В.П. О значении хищных млекопитающих в различных ландшафтных зонах // Тез. докл. III экологической конф. Киев. 1954. с.169-175.
95. Тимофеев Б. А. Профилактика протозойных заболеваний сельскохозяйственных животных. М., Россельхозиздат. 1986. с.22-26.
96. Титова С.Д., Сумароков Ф.С. Гельминтофауна домашних плотоядных в г. Томске // Работы по гельминтологии. Вып. 1. 1 959. с. 1 77-1 81 .
97. Токаревич КН. Зооантропонозы профессионального характера. Л., Медицина. Лен. отд-е. 1.969. с.213-246.
99. Филиппов В.В. Эпизоотология гельминтозов с/х животных. М., Агропромиздат. 1988. с. 160-186.
101. Фролов Б.А., Казакова И.К., Букштынов В.И. и соавт. Эффективность применения препаратов на основе синтетических и гжретроидов и ФОС при энтомозах и арахнозах животных // Ветеринария. 1994. N 7. - с.31о п
102. Хейсин Е.М. Влияние внешних факторов на споруляцию ооцист Isospora felis, Isospora rivolta // Тр. Пнет. им. Пастера. N 3. 1937а. с. 1 1-20.
103. Хейсин Е.М. Кокцидиоз кроликов. 1. Некоторые данные о влиянии диет на заражаемость кроликовкишечными кокцидиями и на смертность от кокцидиоза:"/ Тр. И HCl. им. Пастера. N 3. 19376. с.20-40.
104. Хейсин Е.М. Изменчивость ооцист Eimeria magna // Зоол. журн. N 26. 1947а. с. 17-29.
105. Хейсин Е.М. Кокцидии кишечника кролика // Уч. зап. Лен. гос. пед. инст. им. Герцена. N 51. 19476. с.22-29.
106. Хейсин Е.М. Жизненные циклы кокцидий домашних животных. Л. Лен. отд-е. Наука. 1967. с. 135-147.
107. МО. Христов Г., Михалков И. Проучвание върху демодикозата по кучетата от ловни породи // Ветер, сб. 1988. Г. 86. бр. 6. с.42-43.
108. Чиркова А.Ф. Распространение зудневой чесотки среди лисиц в СССР в связи с географическими факторами // Зоолог, журнал. 1957. Вып. 5. - с.773-7 86.
109. Шульц P.C. Гельминты плотоядных // В кн. Строительство гельминтологической науки и практики в СССР. М. 1969.
110. Шульц P.C., Гвоздев Б.В. Основы общей гельминтологии. М., Наука. 1972. 515 с.
111. Шульц P.C., Гвоздев Е.В. Основы общей гельминтологии. Москва. 1976. Т. 111.
113. Шумакович Е.Е. Общая эпизоотология гельм и птозов сельскохозяйственных животных. Автореф. дисс. . канд. вет. наук. Москва. 1949. 26 с.
114. Шустрова М.В. Биологические особенности клещей Otodectes cynotis и меры борьбы с отодектозом пушных зверей: автореф. дисс. . канд. вет. наук. 1990. - 17 с,
115. Шустрова М.В. Демодекоз собак в условиях города // Ветеринария. 1995. N 1. - с.54-55.
116. Элыде К., Майерх X., Штайнбах Г. Болезни молодняка с/х животных. М., Колос, 1977. 287 с.
117. Ярных B.C. Аэрозоли в ветеринарии. Москва. 1972. -3 2 с.
118. Andrews J.M. A factor in host-parasite specificity of coccidiosis 11 Anat. Rec. N 34. 1 926. p. 154.
119. Andrews J.M. Excystation of coccidial oocyst in vivo. Science, 71, 37. 1930. p.1827.
120. Arhan E.G., Runyan R.A., Estes S.A. Cross infestivity of sarcoptes scrabei // J. Amer. Acad. Derm. Vol. 10. N 6. 1984. p.979-985.
121. Arlian L.G., Vyszenski-Moher D.L. Eife cycle of Sarcoptes scrabei var. cams //J. Parasitol. Vol. 74. N 3. 1988. p.427-430.
122. Bacer E., Warton G. Introduction m acarology //Br. 1 955. p.383-386.
123. Bachman G.W. Serological studies in experimental coccidiosis of rabbits. Amer. J. Hyg., 12. 1930. p.624-640.
124. Becker E.R., Morehouse N.E. Modifying the quantitative character of coccidian infection through a dietary factor. J. Parasitol., 23. 1937. p.153-162.13 1. Binaghi R.B. Trichinellosis in France // Wiad. parasitol. 35. N 5. 1989. p.494-495.
125. Bracket S., Bliznik A. The relative susceptibility of chickens of different ages to coccidiosis caused by Eimeria uccai11A. Poulz. Sci. 31. 1952. p. 146.
126. Caelano S.A., Divino L.J., et al. Ocorrencia de belmmros gastnntestmalis e avaliacao de metodos de diagnostico, em caes de Belo Honzonte, Minas, Gérais // Rev. patol. trop. 23. N 1. 1994. p.6 1-68.
127. Chakrabarti A., Wisra S. Studies on the clinicotherapeutic aspects of democlecosis in canine // Indian Veter. J. Vol. 56. N 6. 1979. p.497-500.
128. Dubev J.P., Frenkel J.K. Cyst-induced toxoplasmosis in cats /7 J. Protozool. Vol. 19. 1 972. p. 155-177.
129. Dunbar M.R., Foreyt W.J. Prevention of coccidiosis in domestic dogs with sulfadimethoxine-ormetoprim combination // Am. J. Veter. Res. Vol. 46. N 9. 1985. p. 1899-1902.
130. Dvorakova L. Vyskyt parazitarmch onemocneni psu vJihoceskem kraji /7 Veterinarstvi. 1989. R.39. C.l l. p.504.
131. Eckert J. Behandlung des Parasitenbefalls von Hund und Katze H Merkbl. TH 1. Inst. f. Paras. Zurich. 1988.p.28-32.
132. Eckert J. New aspects of parasitic zoonozes // Vet. Parasitol. Vol. 32. N 1. 1 989. p.37-55.
133. Eslami A., Mohebali M. Parasitisme deschiens de bergers et implications en santé publque en Iran // Bull. Soc. pathol. exot. 81. N 1. 1988. p.94-96.
134. Fagasinscku A. Swierzb u lisov //Hodowca drobn. Invent. 26. N 12. 1978. p. 14-15.
135. Fisher M.A., Jacobs D.E., et al. Studies on the control of Toxocara canis in breeding kennels // Vet. Parasitol. 55. N 1-2. 1994. p.87-92.
136. Franc M.C., Dorchies P., Soubeyroux H. Essai de traitement de Fotacatiase du chat par les ivermectines // Rev. Med. Vet. Vol. 136. N 10. 1985. p.683-686.
137. Gaafar S.M. The incidence of Demodex sp. in skins of apparently normal dogs // J. Am. Vet. Assoc, 1958. N 133. p. 122-1 23.
138. Garfield R.A., Reedy L.M. The use of oral milbemycin 0X1111 (interceptor^ in treatment of chronic generalized canine demodecosis // Vet. Dermatology. N 3. 1 992. p.23 1-235.
139. Gill B.S. Speciation and viability of poultry coccidia in 120 faecal samples preserved in potassium dichromate solution. Ind. J. Veter. Sci. a. Animal Hiisb., 24. 1954. p.245-247.
140. Gowing G.M. Adwanced demodectic dermatitis in 4-day-okl dachshud puppies// Mod. Vet. Pract. N 45. 1964.p.70.
141. Grono L.R. The experimental production of otitis externa in the dog // Vet. Rec. Vol. 85. N 3. 1969. p.34-36.15 1. Hagg A. Use of ivermectin to ersdicate sarcoptic mange swine heard // Oregon st. Univ. Agricult. Experiment. Station. 1983. p.1-5.
142. Hall R. Watch for scrabies signs // Utah Fanner-Stockman. Vol. 93. N 5. 1978. p.38.
143. Hammond D.M., Anderson E.L., Miner M.L. The occurrence of a second asexual generation in the life cycle of e linen a. J. Parasitol. 49. 1963. p.428-435.
144. Havnleck B. Contribution a 1 etude de la demodecie canine: suivi immunitaire par mtradermoreaction a la phytohemagglutinine: Theese // Touluse. 167. N 4. 1988. p.5.
145. Higgins A.J. Observations on the incidence and control of Sarcoptes scrabei var. cameli in Arabican camel // Vet. Ree. Vol. 115. N 1. 1984. p. 15-1 6.
146. Hinaidy H.K. Trichinellosis in Austria // Wiad. parasitol. 35. N 5. 1989. p.493.
147. Hitchcock 13.J. The life cycle of Isospora felis in the kitten. J. Parasitol. 41. 1955. p.338-393.
148. Holland C.V., OLorcain P., et al. Seroepidemiology of toxocarosis in school children // Parasitology. 110. N 5. 1995. p.535-543.
149. Hol/. J. Untersuchungen über die Möglichkeit der Übertragung von Milben (Psoroptes und Notoedres) // Tierarzt 1.- Umschau. J. 1 0. 1955. p.248-249.
150. Horning B. Trichinellosis in Switzerland // Wiad. parasitol. 35. N 5. 1989. p.485-486.
151. Illescas-Gomez M.P., Rodrigues-Osorio M., et al. Parasitismo por helmintos eil el perro (Canis famil.) en la provincia de Granada // Rev. iber. parasitol. 49. N 1. 1989. p.3-9.
152. Jungmann R., Hiepe Th., Scheffler C. Zur parasitaren Intestinalfauna bei Hund und Katze mit einem speziellen Beitrag zur Giardia-Infection // Mh. Veter. Med. 1986. Jg.41. 11.9. p.309-311 .
153. Jungmann, R., Hiepe, Th. Proyozoen-Infectionen beim Hund diagnostische Möglichkeiten und Probleme mit einem Beitrag zur Kausaltherapie // Mh. Veter. Med. 1989. Jg.44, H.8. p.254-258.
154. Jurasek V. Results of the laboratory examinations of Parasitoses in the animals of Mozambique. V. Dogs and cats // Folia Veter. T.30. N. 1. 1986. p. 103-111.
155. Kaufmann W. Anricular scabies (psoroptic atasanasis) of rabbit // Am. J. Clin. Path. Vol. 12. 1942. p.601-605.
156. Kenriksen Sv.Aa. Trichmellosis in Denmark and
157. Greenland // Wiad. parasitol. 35. N 5. 1 989. p.486-487.
158. Knskinen T., Makela J.,Wandler A.J. Ravar-sjubbar-ravskabb // Finsk. Palstidskr. N 7-8. 1985.p.287.
159. Kober V. Zunahme der Krankheitsgefahren fur den Menschen durch Übertragung von Insecten und Parasiten // "Wild und Hund". J. 91. N 3. 1988. p.62-63.
160. Koulz F. Demodex follicullorum studies. Treatment methodes //North. Am. Vet. Vol. 36. 1955. p.129-136.
161. Kraiss A. Zur Proliferationsfahigkeit von Lymphozyten demodikozekranker Hunde dei immunzellstimulierender Therapie // Tierarztl. Praxis. J. 15. N 1. 1 978. p.63-66.
162. Kraiss A., Kraft W., Gothe R. Die Sarcoptes-Raude des Hundes // Tierarztl. Praxis. J. 15. N 3. 1987. p.31-317.
163. Kucharova M. Prehled parazitoz u psu a kocek v Praze se zamerenim na parazitarni zoonozy // Veterinarstvi. 1989. R.39. C.7. p.3 14-3 16.
164. Lamina J., Wagner J.A., Trank V. Trichinellosis in Federal Republic of Germany // Wiad. parasitol. 35. N 5. 1989. p.487-489.
165. Larsson C.E. Demodicose // Comunic. cient. Fac. Med. Veter. Zootech. Univ. San Paulo. Vol. 13. N 1. 1989. p. 1927.
166. Lee C.D. The pathology of coccidiosis m the dog. J. Artier. Vet. Med. Assoc., 85. 1934. p.760-781.
167. Leger N. Les larva migrans // Biologiste. 23. N 180. p. 103-106.
168. Lickfeld KG. Untersuchungen über das Katzencoccid Isospora felis // Arch. Protistenk. J. 103. 1959. p.427-456.
169. Lindstrom E., Monier T. The spreading of sarcoptes mange among Swedish red foxes (Vulpes vulpes L.) in relation to fox population dynamix // Terre Vie. VoE 40. N 2. 1985. p.21 1-216.
170. Loftsgaard G. Reve-seabben pa offensiven Norsk Pelsclvrbl. Arg. 53. N 4. 1979. p.207-209.
171. Marcus M.B. Terminology for invassive stages of protozoa of the subphylum Apicomplexa (Sporozoa) // S. Afr. J. Sei. Vol. 74. 1978. p. 105-106.
172. Miller W.H. Demodicosis. Proceedings 12,h EVSD Annual Congress. Barselona. 1995. p.89-92.
173. Morehouse N.F. The reaction of the immune intestinal epithelium of the rat to reinfection with E. meschulzi. J. Parasitol., 24. 1938. p.311-317.
174. Muriel K.D., Schantz P. Trichmellosis in the USA // Wiacl. parasitol. 35. N 5. 1989. p.489-492.
175. Nemeseri L. Beitrage zur Ätiologie cler Coccidiose der Munde. I. Isospora canis n. sp. Acta Vet. Acad. Sei. Hung., 10. 1960. p.95-99.
176. Ngo Huyen Thuy, Nhu Van Thu. Psant dous bhart nghiep // .and Food Ind. N 12. 1994. p.463-464.
177. Ngo Huyen Thuy, Nhu Van Thu. Nong nghiep cong nghiep time pham // Agr. and Food Ind. N 1 . 1995. p.37-38.
178. Nutting W.B., Kettle P.R., Tenquist L.D., Whitren E.K. Tair follicle mitecl (Demodex spp.) in New Zeland // N.Z.J. 7.ooI. N 2. 1975. p.219-222.
179. Ogata M., Suzuki T., Hagaki H., et al. Mites of household pet animals and their pathogenic effects of the owners // Jap. J. Sanit. /.ool. Vol. 29. N 3. 1978. p.35-41.
180. Olchewski C.H. Hat. jeder hautgesunde Hand Deinodexmilben // Berlin. 1988. p.140.
181. Parada L.,Cabrera P., et al. Echmococcus granulosus infections of dogs in the Durazno region of Urugvay // Vet. Rec, 136. N 15. 1995. p.389-391.
182. Pence P.B., Custer J.W., Carley C.J. Ectoparasites of wild canine from the Luif Coastal Prairies of Texas and Louisiana // J. Med. Entomol. Vol. 18. N 5. 1985. p.409
183. Perard E. Rechershes sur les coc-cidioses du lapin. Ann. Inst. Pasteur, 39. 1925. p.505-542.
184. PiotTowski F. Ectoparasites of dogs and cats, their importance and distribution in Europe // Wiadomosci parazyt. Vol.25. N 4. 1979. p.387-397.
185. Portas M. Riera C., Prats G. A serological survey of toxocariasis in patients and healthydonors in Barselona (Spam) // Eur. J. Epidemiol. 5. N 2. 1989. p.224-227.
186. Richterich R. Enzymopathologie. -Berlin. 1958. 227p.
187. Roncalli R.A. The history of scabies in veterinary and human medicine from biblical to modern times // Veter. Parasitol. Vol.25. N 2. 1987. p.193-198.
188. Samuel W.N. Attempted experimental transfer of sarcopnc mange (Sarcoptes scrabei, Acanna:
189. Sarcoptidae) among red fox, coyote, wold and dog /7 J. Wildlife Diseases. Vol. 17. N 3. 1981. p.343-347.
190. Schantz P.M. Toxocara larva migrans now //Am. J. Trop. Med. Hyg. No. 4. 1989. p.21-34.2 00. Schmidt M.N. Sarcoptes-Raude bei Fuchs Hund und Mensch // Dtsh. Tierarzt!. Wschr. Hanover. J. 49. Hf. 40. 1941. p.487-488.
191. Scott D.W., Miller W.H., Griffin C.E. Muller & Kirk"s Small Animal Dermatology. W.B. Saunders, Philadelphia. 1 995. p.417-432.
192. Smilh H.J. Bovine demodicoidosis its effect anhires and leather laned // J. Conp. Hed. Veter. Vol. 25. N 10. 1961. p.243-245.
193. Smith T.A. Protective reaction of the host in intestinal coccidiosis of the rabbit. J. Med. Res. 23. 1910.p.407-41 1.
194. Srinivasan S.R. Eficacy of blood transfusion in canine tick anaemia // Livestock Adviser. Vol.13. N 3. 1988. p. 3 1-32.
195. Stone W.B., Roscoe D.E., Weber B.L. Spontaneus and experimental transfer sarcoptic mange mites from red fox human us // N. Y. Fich. Game J. Vol.23. N 2. 1976. p.183-184.
196. Svoboda M., Hejlicek K. Vyskyt klinicke toxoplazmozy kocky a psa // Veterinarstvi. R. 39. N 7. 1989. p.312-314.142
197. Thomsett L.R. Mite infectations of man contracted from dogs and cats // Biol. Med. J. Vol. 3. N 5610. 1968. p.93-95.
198. TomesciL V., Gavrila I., Gavrila D. Zoonoze boll ale animalelor transmisibile la om. Bucuresti. 1979. p.237-281.
199. Tyzzer E.E. Coccidiosis in gallinaceous birds. Amer.J. Hyg.,10. 1929. p.269.
200. Vanparus O. Les parasitoses transnnssibles a l"homme// J. pharm. Belg. 49. N 44. 1994. p.328-332.
202. Диагностика иаразитозов собак и кошек, проводится комплексно, на основании эпизоотологических, клинических и копро-логических исследований. Для окончательной постановки диагноза используют следующие методы.
203. Лечение больных животных должно быть комплексным, направленным на уничтожение патогенных простейших, изгнание молодых и половозрелых гельминтов,
204. При цестодозах применяют дронцит, дронтал, азинокс. Дрон-цит или азинокс назначают животным в дозе 10 мг/кг массы животного, с небольшим количеством корма, однократно.
206. В местах содержания собак и кошек, должно быть чисто и сухо, Необходимо проводить качественное и полноценное кормление животных, что особенно важно для беременных самок и молод1 !■няка до;. месяцев.
208. Выгульные плошадки для собак необходимо не менее 1 раза в месяц дезинвазировать V. раствором каустической соды.
209. Департамент кадровой политики и образования
210. КОСТРОМСКАЯ ГОСУДАРСТВЕННАЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННАЯ АКАДЕМИЯ- # 9/
211. Kostroma Agricultural Academy Karavaevo Campus 157930, Kostroma RUSSIA Fax. (007-0942-) 54-34-23 Phone. (007-0942-) 54-12-631. В диссертационный совет
212. Д 120.20.02 при Санкт-Петербургскойгосударственной академииветеринарной медицины1. Справка.
Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.
