Smear cilt lezyonunu işaretlemede etkili midir? Sitolojik araştırma için materyalin elde edilmesi ve işlenmesi

lekeli baskı

cam bir slaytın incelenen doku veya organa dokundurulması, ardından kurutulması, sabitlenmesi ve boyanması yoluyla hazırlanan mikroskopi preparatı.

1. Küçük tıp ansiklopedisi. - M .: Tıp ansiklopedisi. 1991-96 2. İlk yardım. - M .: Büyük Rus Ansiklopedisi. 1994 3. Ansiklopedik Tıbbi Terimler Sözlüğü. - M .: Sovyet Ansiklopedisi. - 1982-1984.

Diğer sözlüklerde "leke izi" nin ne olduğunu görün:

Dokulardan veya daha az sıklıkla katı ortamda büyüyen bakterilerden hazırlanan mikroskop preparatı (bkz. Mikroskobik preparatlar), organdan bir parça doku kesilir ve kesiğine bir veya birkaç kez (!) dokunulur. bir cam slayt, bir leke... ... Mikrobiyoloji sözlüğü

Cam bir slaytın incelenecek doku veya organa dokundurularak kurutulması, sabitlenmesi ve boyanması ile hazırlanan mikroskopi preparatı... Büyük tıp sözlüğü

Papanicolaou smear, Papanicolaou testi veya sitolojik smear (İngilizce Papanicolaou testi, Pap testi veya Pap smear) vajina ve rahim ağzındaki kanser öncesi veya kanserli hücreleri tanımlamak için kullanılabilecek bir test (bkz. Malign ... ... Wikipedia

Laboratuvar hayvanlarına yapay uygulama (bkz.) araştırma. Ry mikroorganizmaları, toksinler, araştırma. mikropları veya bunların toksinlerini içermesi beklenen malzeme. Mikrobiyolojide Z. e. hastalığı veya hastalığını yeniden üretmek için kullanılır... Mikrobiyoloji sözlüğü

- (histolojik situs hücresi + Yunan logoları doktrini), normal koşullarda ve patolojik süreçlerde hücrelerin yapısal özelliklerinin, doku organlarının hücresel bileşiminin, insan ve hayvanların vücut sıvılarının mikroskobu kullanılarak yapılan çalışmaya dayanmaktadır. Ts. ve... ... Tıp ansiklopedisi

- (eski Yunanca'dan: βίος yaşam ve ὄψις görünüm) teşhis amacıyla vücuttan hücre veya dokuların intravital numunesinin alındığı bir araştırma yöntemi. Biyopsi, aşağıdaki durumlarda tanıyı doğrulamak için zorunlu bir yöntemdir: ... Vikipedi

Biyopsi (Yunanca "βίος" yaşam ve "όψη" görünüm/görünüş kelimelerinden gelir), hücrelerin veya dokuların vücuttan intravital olarak alındığı ve daha sonra mikroskopik olarak incelendiği bir araştırma yöntemidir. Biyopsi zorunludur... ... Vikipedi

İşareti, küçüklüğü, sonucu görün ve iz gitti, ize saldırın, iz yok... Rusça eşanlamlılar ve anlam bakımından benzer ifadeler sözlüğü. altında. ed. N. Abramova, M.: Russian Dictionarys, 1999. iz işareti, damga, damga; baskı, baskı, yansıma, ... ... Eş anlamlılar sözlüğü

Laboratuvar örneklerinde, patolojik materyallerde veya dış ortamdan alınan örneklerde bakterilerin (mikroplar) morfolojik ve renksel özelliklerinin mikroskopi kullanılarak tespit edilmesi ve incelenmesi için bir dizi yöntem. Enfeksiyon tanısını koymak için kullanılır... ... Mikrobiyoloji sözlüğü

Miami polisi için adli kan sıçraması uzmanı olarak çalışan kurgusal seri katil Dexter Morgan'ı konu alan Dexter televizyon dizisinin bölümlerinin listesi. Dizinin ilk altı sezonu 72 bölümden oluşuyor. Rusya'da gösteri... ... Vikipedi

Şaka kelimesi modern Rusça'da çok yaygındır. Konuşma dilinin üslup izlerini taşır. Temel anlamı şu şekilde tanımlanabilir: İnsanın kendi icatlarından başka hiçbir şeye, kendi hevesine, dayanmadığı... ... Kelimelerin tarihi

Hastanın hangi durumda olduğunu, hangi hastalıktan muzdarip olduğunu belirlemek için doktor sıklıkla parmak izi yaymasını kullanabilir. Bu yöntem tıbbın çeşitli alanlarında yaygın olarak kullanılmaktadır. Dermatologlar, jinekologlar, ürologlar, onkologlar - hepsi buna farklı sıklıkta başvuruyor. Smear muayenesi, patolojiyi hızlı bir şekilde belirlemenize ve yetkili bir tedavi yöntemi önermenize olanak tanır.

Smear izi tıbbi bir preparattır; dokunun bir cam slayt üzerine bastırılmasıyla kullanıma hazırlanır. Güvenli bir şekilde sabitlenen ve renkli baskı mikroskop altında incelenir.

Parmak izi yayması çeşitli sorunları çözmek için kullanılır. Çoğu zaman aşağıdakiler için kullanılır:

Swap almanın genel bir yolu yoktur. Doktorun kullanacağı yöntem hastanın sorununa ve çalışmanın amacına göre farklılık gösterecektir.

Vücudun farklı yerlerinden alınan biyolojik materyal smear için kullanılabilir. Eğer meme kanseri teşhisinden bahsediyorsak o zaman doktor tarafından hastanın meme uçlarından örnek alınacaktır. Bir enfeksiyon tespit edilirse, vücudun iltihaptan zarar gören kısmından bir smear için irin alınacaktır. Smear için en sık kullanılanı karın içi organlardan gelen salgılardır.

Sorunlu bölge sadece cildin yüzeyinde değil aynı zamanda altında da bulunabilir. Doktorun benzer bir durumla karşılaşması durumunda parmak izi almak için deriyi açması gerekecektir. Ulaşılması zor yerlerden leke almak için özel cihazlar kullanılır - tamponlar, fırçalar. Deşarj üzerlerinde kalır ve daha sonra dikkatlice bir cam slayt üzerine dağıtılır.

Ülserden cinsel organlardaki leke lekesi

Ürologlar, zührevi doktorlar ve jinekologlar çoğu zaman hastalarının cinsel organlarından parmak izi almak zorunda kalıyorlar. Genellikle enfeksiyonun doğasını üretrayı veya üretrayı kazıyarak değerlendirebilirsiniz. Hastanın hafif bir rahatsızlığı varsa bu yeterli olabilir. Ancak enfeksiyon her zaman üretrayı etkilemez.

Cinsel yolla bulaşan hastalıklar, yani cinsel yolla edinilen hastalıklar öncelikle üretrayı değil mukoza zarını etkiler. Bu, sifiliz ve genital herpesin yanı sıra bir dizi benzer hastalık için tipiktir. Zührevi sorunlar yaşayan bir hastada perine mukozasında ülserler oluşur ve etkilenen bu bölgeden doğrudan bir sürüntü izi alınır.

Uzmanlar ülserden alınan smear'ı incelemek için karanlık alan mikroskobu kullanır. Bazı durumlarda hastalığı mutlak doğrulukla tespit edemeyecektir. Ancak parmak izlerinin incelenmesi sonucunda treponemler tespit edilirse doktor şüphesiz hastaya frengi teşhisini koyacaktır.

Ayrıca karanlık alan mikroskobu, herpes ile ortaya çıkan ülserleri diğer hastalıklardan ayırmanıza olanak tanır.

Penis başının smear izi

Bir erkeğin glans penisi sıklıkla lekeleme nesnesi olarak kullanılır. Bunun nedeni, başın kendisinin veya onu kaplayan sünnet derisinin iltihaplandığı balanopostit olabilir.

Kafadan alınan bir smear, bir takım sorunları tanımlamanıza olanak sağlar. Kok, E. coli, mantar enfeksiyonlarını ve diğer birçok hastalığı tespit edebilir.

Doktorun şüphesine göre balanopostit herpetik kökenli ise, sadece baştan değil aynı zamanda ciltte görünen keseciklerden de parmak izi smear alınacaktır. Veziküllerde Tzanck hücreleri bulunursa hasta genital herpes hastası demektir. Ortaya çıkan biyolojik materyal inceleme sırasında boyanır. Bu prosedür yalnızca veziküller göründüğünde mümkündür.

Sitolojik inceleme için baskı yayması

Parmak izlerinin sitolojik incelemesi onkologlar tarafından smear sonrası elde edilen biyolojik materyalde hastanın kanser hastası olduğunu gösteren atipik hücreleri tespit etmek için gerçekleştirilir. Bu durumda, sadece cinsel organlarda değil aynı zamanda cildin diğer bölgelerinde de bulunabilen tümörden parmak izi smear alınır.

Sitolojik inceleme sırasında tüm hücresel bileşim değerlendirilir: çekirdeklerin ve hücrelerin boyutları ölçülür.

Teknik, yalnızca kanseri değil aynı zamanda onkolojiyle ilgili olmayan diğer süreçleri de teşhis etmeyi mümkün kılıyor.

Smear almaya hazırlanıyorum

Hasta hastaneye gelip hemen bu işlemi yaptıramaz. Uzun bir hazırlık gerektirir. Hastanın enfeksiyon şüphesi varsa, smear almadan önce antiseptik ve antibiyotik almamalıdır çünkü bunlar klinik tabloyu bozabilir ve hatta enfeksiyonu maskeleyebilir.

Hasta smear alınacak bölgeyi yıkamamalıdır. Hijyenik nedenlerden dolayı gerekliyse sabun veya başka temizlik ürünleri kullanmadan bölgeyi normal akan su ile durulayabilirsiniz.

Ciltte görünen plak, veziküller ve diğer oluşumlar smear alınmasını engelleyebilir. Bu durumda işlem başlamadan önce çıkarılırlar.

Smear izini nasıl incelersiniz?

Alınan yaymayı incelemek için mikroskop gerekir. Biyolojik materyalin konulduğu kaydırak mutlaka temiz ve kuru olmalıdır.

İlaç çeşitli yöntemler kullanılarak sabitlenebilir. Fiksasyon için tipik olarak ısı, %95 etil, metil veya süblimasyon alkol ve asetik asit buharı kullanılır. Seçilen yöntem araştırmanın yürütüleceği laboratuvara bağlıdır. Günümüzde fiksasyon amacıyla çok sayıda kimyasalın karışımı olan özel geliştirilmiş preparatlar aktif olarak kullanılmaktadır.

Sabitleyici, tüm prosedürün etkinliği açısından kritik öneme sahiptir. Bir uzmanın yeterince yüksek kaliteli bir çözüm kullanması durumunda, bu, yaymadaki hücrelerin yapısı üzerinde zararlı bir etkiye sahip olacak ve muhtemelen yanlış negatif sonuç verecektir. Analiz sonuçlarına göre hastaya kesinlikle sağlıklı olduğu bilgisi verilecektir ancak gerçekte durum böyle değildir. Yalnızca yüksek kaliteli bir sabitleme çözümü, yaymadaki tüm hücrelerin doğru konumunu koruyabilir ve aralarındaki bakteri oluşumlarını tanımlayabilir.

Sabit malzeme gösterge niteliğinde veya diferansiyel olabilen lekelenmeye maruz kalır.

Yazarlar): Jan Rybniček, MVDr, Diplomat Avrupa Veteriner Dermatoloji Koleji
Kuruluş(lar): Dermatoloji ve Dermatopatoloji Servisi, Çek Cumhuriyeti
Dergi: №2 - 2013

Çoğu cilt hastalığının benzer bir klinik tablosu vardır, ancak dokuz ana karakteristik dermatolojik bozukluk grubu ayırt edilebilir:

– alopesi

– pullanma/kabuklanma/sebore oluşumu

– maküller/papüller/açılan püstüller

– düğümler/tümörler

– pigmentasyondaki değişiklikler

Klinisyen her hastayı yukarıda listelenen kategorilerden birine sınıflandırmaya başladığında, ayırıcı tanıların bir listesini formüle etmesi ve bir tanı planı geliştirmesi onun için çok daha kolay hale gelecektir. Hastanın mevcut durumda ana tanıyı zorlaştıracak eşlik eden hastalıklarının olabileceği unutulmamalıdır. .

Hızlı teşhis, pratisyen hekim için sıklıkla önemli zorluklar yaratır; bu nedenle, minimum zaman ve para gerektiren mevcut laboratuvar araştırma yöntemlerinden de bahsedeceğiz. Pratikte kullanılan en basit ve en hızlı tanı testleri:

– Deri kazıntıları

– Trikoskopi

– Tarak veya fırça ile taramak

– İskoç testi

– Dermatofit testi

– Cilt sitolojisi

Deri kazıntıları

Bu çalışma her durumda yapılmalıdır! Deri kazıma işlemini gerçekleştirmek için aşağıdaki ekipman ve malzemelere ihtiyaç vardır: mineral yağ, cam slaytlar, neşter bıçağı veya spatula (küret), mikroskop.

Bir Wood lambasının ışınlarındaki inceleme son derece spesifik değildir, ancak floresans tespit edildiğinde, etkilenen tüyler koparılır ve daha ileri bir incelemeye tabi tutulur (ilacın alkali bir çözelti ile işlenmesinden sonra mikroskopi, bir dermatofit kültürünü tanımlamak için kültür). Bir cam slayta %10'luk KOH çözeltisi uygulanır, çıkarılan yün yerleştirilir, alev üzerinde ısıtılır ve önce bir kapak camı ile kapatılarak, önce düşük büyütmede (10x objektif), ardından yüksek büyütme altında mikroskopi gerçekleştirilir ( 40x objektif). Daha iyi görselleştirme için klorolaktofenol boyama kullanılabilir.

İskoç testi

Sitoloji materyali elde etmek için seçilen bölgedeki saçların kısa kesilmesi, bant şeridinin sıkıca bastırılması, ardından tek tek boya solüsyonlarına batırılıp bir cam slayta yapıştırılması ve mikroskopi yapılması gerekir. Bu yöntem, cinsin maya mantarlarını kolayca tanımlar. Malassezia"matryoshka" formunda, cinsin bakterileri Simonsiella(yalama sırasında tükürüğün girişini gösterir) vb.

Trikoskopi

Mikroskopi sırasında saç tellerinin yapısına ve pigmentasyonuna dikkat edilir, saç uçları incelenir ve trikogram değerlendirilir (folikül döngüsünün farklı evrelerindeki saçların oranı: anajen/telojen). Anajen büyüme aşamasıdır, çıkarılan saçın kökü yumuşaktır ve yuvarlak bir şekil alır (“şemsiye sapı”). Katajen bir ara aşamadır, saç büyümesi durur, kök camsı bir zarla çevrelenmiş bir fırça şeklindedir. Telogen, saç folikülünün dinlenme aşamasıdır, saç kökü pigmentini kaybeder, uçlara doğru “sanat fırçası” şeklinde incelir ve “mızrak” görünümüne bürünür. Birincil ve ikincil kıllar vardır (normalde). Primer saç kaybı bazı alopesilerin (örneğin alopesi X) tanı kriterlerinden biri olabilir. Birincil kıl gövdelerinin çapı daha büyüktür ve medulla her zaman korteksten daha kalındır. İkincil kılların çapı daha küçüktür, genellikle dalgalıdır, medulla korteksten daha incedir.

Trichogramma için katı standartlar yoktur, ancak bazı köpeklerde anajen/telojen oranının kışın 1:9, yazın ise 1:1 olduğunu açıklayan gözlemler vardır. Cins özellikleri vardır - sürekli büyüyen saçları olan köpeklerde (örneğin kanişlerde), anajen aşamasındaki foliküller, yılın zamanından bağımsız olarak baskındır ve kuzey cins köpeklerde, foliküllerin belirgin telojenizasyonu gözlemlenebilir.

Çoğu durumda telojen aşamasında saçın %100'ünün bulunması norm değildir; bunun nedeni yanlış örnekleme, hormonal bozukluklar, alopesi X, telogen effluvium olabilir. Hormonal faktörler saç folikül döngüsünü etkiler ve buna saç folikül döngüsündeki gecikme nedeniyle telojenizasyon eşlik eder, saç yavaş yavaş yaşlanma sürecine girer (siyah yün kırmızımsı hale gelir, kızıl saç rengi değişir, uçlar ayrılabilir). Birincil tüyler kaybolur ve tutulan astar, köpek yavrusu tüyü görünümüne sahip olur. Bu tür alopesilerin endokrin nedenleri hipotiroidizm, hiperöstrojenizm, hiperkortizolizm olabilir. Endokrin olmayan bir neden, ciddi hastalık veya stresin neden olduğu tüm telojen kılların senkronizasyonudur. Saçlar yeniden büyümeye başladığında 1-2 ay sonra iyileşme gerçekleşir. Alopesi X etiyolojisi belirsiz bir hastalıktır.

Saç köklerinin yapısal bozuklukları foliküler distrofi veya displaziye bağlı olarak ortaya çıkar. Nadir durumlarda bu, pigment granüllerinin neden olduğu hasardan kaynaklanabilir. Saç kökleri ayrıca alopesi areata ve sitotoksik ilaçlara maruz kalma (nadiren) nedeniyle de zarar görür.

Saç uçlarına dikkat edin: Normalde sivri bir şekle sahiptirler, ancak yalamaya bağlı alopesi ile saç uçlarında travma belirtileri görülür (kırılabilirler). Yapısal değişiklikler nedeniyle artan kırılganlık nedeniyle saç uçları zarar görebilir. Örneğin Golden Retriever'larda trikofitoz nedeniyle çatallı saç uçlarının ortaya çıktığı kaydedildi. Saç uçlarındaki patolojik değişiklikler, kürkün aşırı agresif yıkanması ve taranmasının yanı sıra sürtünmenin arttığı alanlarda mekanik hasarın sonucu olabilir.

Saç gövdesini değerlendirirken dermatofit sporları tespit edilebilir. Doğru yapıldığında trikoskopi dermatofitoz vakalarının %60-70'inde olumlu sonuç verir. Floresan saçların bir Wood lambası altında incelenmesi tercih edilir. Saç gövdesinin yapısı sadece dermatofitozla değil aynı zamanda kemoterapi (nadir), mekanik ve kimyasal travma (agresif bakım), besin eksikliği, kalıtsal hastalıklar (nodüler trikoreksis vb.) gibi diğer bazı durumlarda da bozulur. .). Yetişkin köpeklerde kendini gösteren Alman çobanların medüller trikomalazisinde kıl gövdesinin yapısında karakteristik değişiklikler gözlenir. Ceket vücut, kuyruk ve omuz-skapular bölgede kesilmiş gibi görünüyor. Trikoskopi sırasında saç diplerinde uzunlamasına çatlaklar ve kırılmalar görülür. Melanin üretiminin bozulmasıyla ilişkili alopeside karakteristik değişiklikler gözlenir - "zayıflamış" renkli alopesi ve siyah saçın foliküler displazisi. Mavi ve açık kahverengi köpekler "ağartıcı alopesi"ye karşı hassastır. Bu hastalıkta rengi zayıflamış saçlarda büyük pigment granülleri bulunur, bu da saç kırılganlığının artmasına neden olur ve bu da alopesiye yol açar. Siyah kıl foliküler displazisi iki ve üç renkli köpeklerde meydana gelir ve yalnızca siyah kıl foliküllerini etkiler. Yavru köpekler normal doğarlar ancak daha sonra koyu renkli tüylerin olduğu alanlar yavaş yavaş alopesiye uğrar. Trikoskopi saç gövdesinde anormal melanin kümelerini ortaya çıkarır.

Trikoskopi, saç gövdesindeki saç folikülleri şeklindeki keratin birikimlerini kolaylıkla tespit edebilir. Keratinizasyon kusurlarının (cocker spaniellerin primer seboreleri, A vitamini eksikliğine bağlı dermatoz, yağ bezlerinin adeniti, leishmaniasis, demodikoz) ve ayrıca bakteriyel folikülit gibi diğer foliküler hastalıkların bir sonucu olarak ortaya çıkarlar.

Cilt sitolojisi

Deri sitolojisi hızlı, invaziv olmayan ve büyük tanısal değere sahip bir yöntemdir. Bu tür bir çalışma özellikle nodüler, eksüdatif, püstüler lezyonların, kabuk oluşumu ve sebore ile orta kulak iltihabının teşhisi için değerlidir. Nodüler lezyonlar için, 21G, 24G iğneli 10 ml'lik bir şırınga kullanılarak ince iğne aspirasyonu yoluyla materyalin elde edilmesi tercih edilir. Sızıntı yapan lezyonlar için parmak izi smearları incelenebilir. Ayrıca yapışkan bant preparatları ve tabii ki derin kazımalar sitolojik incelemeye tabi tutulur. Preparasyonlar havada kurutulur; metanol ile fiksasyon kullanılabilir. Modifiye edilmiş bir Wright boyası (Diff-Qick) kullanıyorum ve laboratuvarlarda ayrıca özel boyalar ve immünositokimya ile boyama yapılıyor. Hazırlıklar 4x, 10x, 40x, 100x lensler (immersiyon yağlı) kullanılarak sırayla görüntülenir.

Normal deriden alınan kazımalarda korneositler baskındır; diğer keratinositler ve tek fibroblastlar da mevcuttur. İltihaplı bölgelerden alınan materyalin sitolojik incelemesi yapılırken aşağıdaki hücrelere dikkat edilir:

– Nötrofiller (dejeneratif ve dejeneratif olmayan);

– Makrofajlar;

– Lenfositler/plazma hücreleri;

– Eozinofiller ve mast hücreleri;

– Akantolitik hücreler (yuvarlak keratinositler, süreçlerden yoksun);

– Neoplastik hücreler.

Mikroorganizmalar (bacillus, cocci, Malassezia, diğer mantarlar, Leishmania vb.) da tespit edilebilir.

Sitolojik ayırıcı tanı için aşağıdaki ana kriterleri kullanıyorum:

– Bakteriler ve epitel hücreleri – bakteriyel aşırı büyüme;

– Dejeneratif nötrofiller ve bakteriler – piyoderma;

– Çok sayıda dejeneratif olmayan nötrofiller + akantolitik hücreler – pemfigus foliaseus, eritematöz pemfigus, vb. (ek olarak + histopatoloji);

– Nötrofiller + makrofajlar – pyogranüloma/granülom (mantar, atipik bakteriyel enfeksiyon);

– Lenfositler, plazma hücreleri – kronik inflamasyon, plazmasitik pododermatit, lenfoma (ek olarak + lenfoblastlar);

– Malassezia sp. ve epitel hücreleri – Malassezia dermatiti.

Hücre morfolojisini değerlendirirken, aşağıdaki malignite belirtilerini değerlendirmek gelenekseldir:

– Sitoplazmik kriterler (anizositoz, makrositoz, farklı boyama yoğunluğu (bazofili derecesi), atipik inklüzyonlar/vakuolizasyon, spesifik granüllerin yokluğu, büyük nükleer sitoplazmik oran ve ayrıca bu parametrede önemli ölçüde farklılık gösteren hücrelerin hazırlanmasında varlığı) ;

– Nükleer kriterler (anizokaryoz, makrokaryoz, nükleer şekil değişiklikleri, seyrek kromatin veya hiperkromazi, anizokromazi, yüksek mitotik indeks, düzensiz mitozlar, çoklu nükleoller, dev nükleoller, nükleollerin patolojik şekli).

Nodüler lezyonların sitolojik preparatlarını incelerken aşağıdaki soruların yanıtlanması gerekir:

– İltihap/tümör;

– Neoplazi – iyi huylu/kötü huylu;

– Neoplazinin kaynağı;

– Doku kökenli: epitelyal, mezenkimal, hematopoietik (yuvarlak hücreli) tümörler.

Uygulamada tümör cilt lezyonlarının en yaygın sitolojik ayırıcı tanısı şunlardır:

– Epitelyal tümörler (keratoakantom, skuamöz hücreli karsinom ve diğerleri);

– Mezenkimal tümörler (fibrosarkom, melanom vb.);

– Yuvarlak hücreli tümörler (mastositoma, histiyositom, lenfoma);

Son yıllarda histopatolojinin artan kullanılabilirliği nedeniyle çeşitli dermatolojik patolojileri teşhis etme yeteneği önemli ölçüde artmıştır. Buna rağmen, bilgilendirici olmayan sonuçlar alma olasılığı nedeniyle histobiyopsi örneklerinin alınmasına başvurulması hala oldukça nadirdir. Bu nedenle, cilt histobiyopsisi alma ihtiyacının değerlendirilmesi, histolojik inceleme için cilt alanının doğru seçilmesi, doğru örnek toplanması, patolog seçimi ve histolojik raporun yorumlanması konularında daha fazla bilgi ayrılmıştır. Ancak tüm bu koşulların karşılanması durumunda doğru bir teşhis konulabilir.

1) Kronik kaşıntısı olan köpeklerde tanı için histobiyopsi rutin olarak kullanılmamaktadır. Çoğu durumda biyopsi sonuçları, dermatoloğun klinik muayene sırasında elde edebileceği bilgilerin aynısını sağlamaz.

2) Deri histobiyopsisi aşağıdaki durumlarda faydalı olabilir:

– Alopesi, “hızlı” tanı yöntemleri (ör. trikoskopi, deri kazıma, sitoloji...) kullanılarak tanı konulmasının mümkün olmadığı durumlarda

– “Hızlı” testlerle tanı konulamadığında peeling

– “Hızlı” testlerle tanı konulamadığında lekeler, papüller, yırtılmış püstüller

– İyileşmeyen erozyonlar, ülserler, fistüller

– Uzun süreli düğümler, sıkışmalar, tümörler

– Depigmentasyon ve olağandışı hiperpigmentasyon

– Otoimmün hastalıklar şüphesi

– Teşhisin yalnızca histolojik olarak doğrulanmasının mümkün olduğu cilt hastalıkları şüphesi (örneğin, yağ bezlerinin adeniti)

– Hayatı tehdit eden bir tanıdan şüphelenilen durumlar (dermatomiyozit vb.)

– Tamamen akılcı tedaviye yanıt alınamayan durumlar

Yüksek kaliteli cilt histobiyoptatları nasıl elde edilir

Açık ve doğru bir histolojik tanı elde etmek için aşağıdaki adımlar izlenmelidir:

1) Biyopsi için yer seçimi

Patoloğa uygun örnekler sunulmalı, dolayısıyla klinisyen uygun cilt bölgesini seçmeye özen göstermelidir. Çoğu durumda, doğru tanıya ulaşabilmek için bir hastadan en az 3-5 deri örneği alınmalıdır. Biyopsi bölgesinin seçimi bulunan lezyonun tipine bağlıdır:

– Alopesi: Biyopsiler patoloğun yardımcı olabilmesi için tamamen kel bir deri alanından (tercihen 2), normal deri sınırında ve alopesi bölgesinden (1) ve normal saçlarla kaplı deriden (varsa) alınmalıdır. Bu hastanın patolojik süreç alanındaki fizyolojik saç köklerini ve foliküllerini karşılaştırın.

– Pullu lezyonlar (“seboreik” cilt): Etkilenen bölgeden 2-3 biyopsi ve normal deri örneği (1) alınır, böylece bu bölgelerdeki epidermis, özellikle stratum korneumun karşılaştırılması mümkün olur. Örnek almak için biyopsi iğnesi kullanılabilir.

– Maküller, papüller, püstüller: Biyopsi, biyopsinin merkezinde yer alması gereken en az üç primer lezyon bölgesinden örnekler almalıdır. Örnek almak için biyopsi iğnesi kullanılabilir.

– Ülserli alanlar: Bu biyopsi yapılması en zor lezyon türüdür. En büyük hata, ülserin merkezinden patoloğa biyopsi gönderilmesi ve sonrasında herhangi bir spesifik tanı konulmadan “ülser” cevabının alınmasıdır. Malzemenin büyük bir ülserin merkezinden alındığı bir durumda, histolojik tablo bulaşıcı bir sürecin karakteristik özelliği olacaktır. Patologun ülserde ve normal ciltte meydana gelen süreçleri karşılaştırabilmesi için birkaç örnek almak da gereklidir. Küçük ülserler mevcutsa, sağlıklı doku kenarı da dahil olmak üzere alanın tamamı incelemeye gönderilebilir.

– Fistüller: Genellikle patolojik süreç dermisin derinliklerinde ve sıklıkla derinin altında bulunur, bu nedenle patolojik sürecin doğasını belirlemek için çok derin bir biyopsiye ihtiyaç vardır. Bu gibi durumlarda neşter bıçağı kullanılarak kama şeklinde bir biyopsi çıkarılır; bu tür lezyonlarda biyopsi iğnesi kullanılarak bilgilendirici bir örnek elde etmek imkansızdır. Aynı zamanda biyopsi materyalinin bakteriyolojik ve mikolojik araştırmalar için gönderilmesi de mantıklıdır.

– Contalar ve bileşenler: Yine, tüm düğümün komşu normal dokuyla birlikte cerrahi olarak çıkarılması tercih edilen tedavi yöntemidir. Belirlenen kurallara göre bu işlem ancak ince iğne aspirasyonu ve sitolojik inceleme yapılarak mastositoma ekarte edildikten sonra yapılabilir.

– Depigmentasyon: histobioptatlar tamamen depigmente alanlardan (minimum 2), normal ve depigmente cilt arasındaki sınır bölgesinden (1) ve ayrıca normal deriden bir örnek elde edilir.

– Hiperpigmentasyon: histobiyoptatlar pigmentli alanlardan (minimum 2) ve normal deriden bir örnekten elde edilir.

2) Histolojik raporun yorumlanması

Tipik olarak dermatohistopatolog aşağıdaki bölümleri içermesi gereken bir rapor düzenler:

1. Doku örneğinin tanımı

2. Morfolojik tanı

3. Etiolojik tanı (nedeni belirlemek mümkünse)

4. Yorumlar

Histolojik açıklama patoloğun preparasyonlarda gördüğü bilgiyi temsil eder. Histolojik açıklama, teşhiste büyük önem taşıyan çeşitli terimlerin kullanıldığı değerli bilgiler içerir. Ancak gözlenen bu değişiklikleri açıklamak için hatırı sayılır bir deneyim gerekmektedir, dolayısıyla klinisyen patolog raporunun yorumuna her zaman güvenmemelidir. Laboratuvar bulgularının doğru yorumlanması için temel terminoloji bilgisi önemlidir. Ne yazık ki çoğu klinisyen anlatıyı hiç okumuyor.

Morfolojik tanı, histolojik örnekteki patolojik değişikliklerin tek cümlelik bir özetidir (örneğin: kabuklanma ile belirgin hiperplazi ve stratum korneumda uyuz akarları ile perivasküler eozinofilik infiltrasyon). Morfolojik tanı, histopatolojik örneğin tanımında kullanılan terimlere dayanmaktadır.

Histopatoloji bir hastalığa spesifik olduğunda etiyolojik tanı mümkündür. Örneğin yukarıda anlatılan vakada etiyolojik tanı “sarkoptoz”dur. Etiyolojik tanı konulamazsa patolog ayırıcı tanıların bir listesini ve muhtemelen daha ileri tanı önerilerini sunar.

Klinisyen rapora asla körü körüne güvenmemelidir; klinisyenin klinik tablo ile histopatolojik bilgiyi birbirine bağlaması önemlidir. Histolojik olarak teşhis edilebilecek çok sayıda hastalık vardır, ancak bunların çoğundan karakteristik özelliklere göre şüphelenilebilir.

En sık görülen histopatolojik bulgular aşağıda verilecektir.

Epidermal bozukluklar

2. Hiperplazi- Bu, kaşıntının eşlik ettiği birçok inflamatuar süreçte gözlenen, epidermisin kronik inflamasyona veya yaralanmaya karşı spesifik olmayan bir tepkisidir.

3. Subkorneal ve intraepidermal püstüller– genellikle yüzeysel piyodermada, ayrıca pemfigus foliaseusta ve bazı nadir steril püstüler hastalıklarda bulunur.

4. Subepidermal püstüller ve veziküller- Bu, örneğin pemfigus vulgaris gibi kalıtsal ve otoimmün hastalıklarda bulunan çok nadir bir semptomdur.

5. Nekroz ve ülserler– genellikle yanıklarda, kontakt dermatitte, piyotravmatik dermatitte (“sıcak noktalar”), kedilerin baş ve boyun kaşıntı sendromunda, kedilerin eozinofilik kompleksinde görülür. Daha nadir görülen nedenler ise hepatokütanöz sendrom, eritema multiforme/toksik epidermal nekroliz, bazı ilaç reaksiyonları, kedilerin viral hastalıkları (inek çiçeği virüsü, herpes virüsü), kedilerde timomadır. Ülserler vaskülit gibi ciddi cilt hastalıklarına bağlı ikincil lezyonlar olabilir.

Dermal lezyonlar

1. Dermisin yüzeysel lezyonları– oldukça nadir, mukokutanöz alanların piyoderması, lupus, eritema multiforme, epiteliyotropik lenfoma, timoma (kedilerde), dermatomiyozit ile görülebilir.

3. Folikülit/furunküloz– çoğu durumda, örneğin stafilokoklar, dermatofitler veya demodekslerin neden olduğu bulaşıcı nitelikte bir cilt lezyonunu gösterir. Diğer nedenler eozinofilik furunküloz, pemfigus foliaseus ve epitelyotropik lenfoma olabilir.

5. Pannikülit– bu işaret derin deri altı bakteriyel, mikobakteriyel ve mantar enfeksiyonlarında, steril nodüler, idiyopatik pannikülit, pansteatit, lupusun yanı sıra enjeksiyonlara ve yaralanmalara karşı lokal reaksiyonlarda da görülebilir. Pankreatitin bir sonucu olabilir.

6. Vaskülit- bu işaret kan damarlarına doğrudan zarar verildiğini gösterir. Vaskülit, septik vaskülit, immün aracılı hastalıklar ve ilaca maruz kalma gibi çok çeşitli durumlarda mevcut olabilir.

7. Atrofi– Endokrin hastalıklarında gözlenen, vücudun yan yüzeyindeki mevsimsel alopesi, paraneoplastik sendrom ve iskemik dermatopati gibi bazı spesifik alopesiler.

Özetlemek gerekirse, alopesi, soyulma ve kabuklanma, makül, papül, püstül belirtileri olan hayvanlarda yukarıdaki hızlı testlerin hepsini yaparak tanı koyamıyorsam histobiyopsi yapmaya başvurduğumu söyleyebiliriz. Bazı durumlarda histolojik incelemenin çok bilgilendirici olmadığı unutulmamalıdır (örneğin, kronik kaşıntısı olan hayvanlarda), bu nedenle bu hastalarda hızlı testlerin son derece önemli olmasının yanı sıra klinik değerlendirme ve tedavi ihtiyacının da altını çizmek isterim. anamnestik verilerin bir veteriner uzmanı tarafından dikkatli bir şekilde analiz edilmesi.

Edebiyat

1. Cowell R.L., Tyler R.D., Meinkoth J.H., DeNicola D.B. Köpek ve Kedinin Tanısal Sitolojisi ve Hematolojisi, 3. baskı, Mosby Elsevier, 2008.

2. Raskin R.E., Meyer D.J. Köpek ve Kedi Sitolojisi, Saunders Elsevier, 2. baskı, 2010.

3. Mc. Cullough S., Brinson J. Küçük Hayvan Uygulamalarında Klinik Teknikler, Cilt.14, Sayı.4, Kasım, 1999.

4. Taylor S.M. Küçük Hayvan Klinik Teknikleri, Saunders Elsevier, 2010.

Renkli preparatın hazırlanması aşağıdaki adımlardan oluşur:

1) smearların hazırlanması;

2) smearın kurutulması;

3) yaymanın sabitlenmesi;

smear boyama.

Preparatı hazırlamak için, yağsız bir cam slayta bir damla su veya salin uygulanır; burada test materyali bir halka halinde yerleştirilir ve yaklaşık 1 m2'lik bir alan üzerinde cam üzerinde ince, düzgün bir tabaka halinde dağıtılır. cm2 . İncelenen materyal sıvı bir ortamda ise, doğrudan bir halka ile bir cam slayta uygulanır ve bir smear hazırlanır. Lekeler, damlanın kaynamasına izin verilmeden, havada veya bir alkol lambasının alevi üzerinde sıcak hava akışında kurutulur.

Lekeyi düzeltmek için, bir cam slayt (yukarı doğru) bir alkol lambasının alevinden 3-4 kez yavaşça geçirilir. Mikroorganizmalar sabitlendiğinde ölür, camın yüzeyine sıkıca bağlanır ve sonraki işlemler sırasında yıkanmaz. Daha uzun ısıtma hücresel yapıların deformasyonuna neden olabilir.

Kimyasallarla sabitlemede krom bileşikleri, formalin, ozmik asit ve aseton kullanılır. Yaygın fiksasyon yöntemlerinden biri, preparatın metil veya etil alkol veya Nikiforov karışımı (eşit hacimde etil alkol ve eter) ile işlenmesidir. Bu durumda ilaç 5-20 dakika batırılır. Sabitleme sıvısının içine.

Mikrobiyolojide kullanılan smear ve boyaların boyanma yöntemleri.

Var olmak basit ve karmaşık boyama yöntemleri . Basit renklendirme için boyalardan birini kullanın, örneğin sulu fuksin (1-2 dakika), metilen mavisi (3-5 dakika). Bir lekeyi boyarken ilaç, ilaç tutucusuna yerleştirilir. Smere birkaç damla boya uygulanır. Boyama süresi dolduktan sonra preparat su ile yıkanır, filtre kağıdı ile fazla suyu alınır, havayla kurutulur ve mikroskobik olarak incelenir.

Karmaşık boyama için, kimyasal bileşim ve renk bakımından farklılık gösteren bazı boyalar preparasyona sırayla uygulanır. Bu, belirli hücre yapılarını tanımlamayı ve bazı mikroorganizma türlerini diğerlerinden ayırmayı mümkün kılar. Bunlar Gram boyama yöntemleri, Ziehl-Neelsen boyama ve Ozheshka yöntemini kullanan spor boyamadır.

Ayrışma sırasında hidrojen iyonları açığa çıkaran ve boyaya asidik bir karakter veren boyalara denir. ekşi. Bazik nitelikteki maddeleri (anyon formunda) renklendirirler. Ayrışma sırasında hidroksil iyonlarını serbest bırakan boyalar - ana olanlar.

Mikrobiyolojik uygulamada asit ve bazlarla reaksiyona girebildikleri için tuz formunda asidik ve bazik boyalar kullanılır. Bazik boyalar sıklıkla hidroklorik tuzlar, daha az sıklıkla asetik ve sülfürik asitler formunda kullanılır; asit boyaları - sodyum veya potasyum tuzları formunda.

Temel doğa boyaları

Kırmızı mor

nötr kırmızı yılan otu menekşesi

pironin kristal menekşe

safranin metil menekşe

fuksin metil yeşili

hematoksilen malakit yeşili

Mavi Kahverengi

Victoria Vezivin

metilen mavisi krisoidin.

Yeşil siyah

Janus yeşil indulin

Asidik yapıdaki boyalar

Kırmızı ve pembe Siyah Sarı

ekşi fuksin nigrosin Kongo

eritrosin pikrik asit

floresan

Boyanın renklendirme yeteneğinin yoğunluğu, ortamın pH'ına bağlıdır: bazik boyalar, ortam ne kadar alkali olursa, bir nesneyi o kadar yoğun renklendirir, asidik boyalar ise o kadar asidiktir.

Boyalar aşağıdakilere ayrılabilir: olumlu ve olumsuz. Pozitif boyalar doğrudan mikrobiyal hücreleri boyar. Hücreleri oda sıcaklığında 30-60 saniye boyunca boyarlar. Negatif boyalar mikroorganizmaların hücrelerini çevreleyen alanı renklendirir. Sonuç olarak hücreler, boyanın arka planına karşı silüetler halinde görünür.

Basit boyama yöntemi

Hazırlanan ve sabitlenen smear'a birkaç damla sulu fuksin solüsyonu uygulayın. 1-2 dakika boyayın. Boyayı suyla yıkayın, preparatı filtre kağıdıyla kurutun, havayla kurutun ve mikroskopla kurutun.

Gram boyama.

Bir filtre kağıdı şeridi aracılığıyla sabit smear'a yılan otu karbolik-alkol solüsyonu uygulayın. 1-2 dakika sonra kağıdı çıkarın ve boyayı boşaltın.

Lugol solüsyonunu 1-2 dakika uygulayın.

Mor boya yapılarının çıkması durana kadar 30-60 saniye boyunca etil alkolle rengi giderilir.

Suyla durulayın.

5. Sulu fuksin solüsyonuyla 1-2 dakika tamamlayın, suyla durulayın, filtre kağıdıyla, havayla ve mikroskopla kurutun.

Gram pozitif bakteriler koyu mor renkte boyanırken, gram negatif bakteriler kırmızı renkte boyanır.

Bakterilerin Gram boyamaya karşı tutumu, boyama işlemi sırasında oluşan yılan otu menekşesi kompleksini iyotla tutma yetenekleriyle belirlenir. Bu, gram pozitif ve gram negatif bakterilerin hücre duvarının kimyasal bileşimi ve geçirgenliğindeki farklılıklara bağlıdır. Peptidoglikan çok katmanlıdır ve teikoik asitler bununla ilişkilidir.

Gram negatif bakterilerde peptidoglikan tek katmanlıdır, fosfolipidler, lipoproteinler, proteinler ve kompleks mepopolisakkarit (LPS) içeren bir dış zar vardır. Dış zarın tamamı, çeşitli bileşiklerin difüzyonunu sağlayan proteinler - porinler tarafından nüfuz eder. Böylece, boyanın güçlü bir şekilde sabitlenmesi ve alkolle ağartmaya karşı direnç için gram pozitif bakteriler için en uygun koşullar yaratılır.

Gram pozitif bakteriler arasında stafilokok, streptokok, corynebacteria difteri, mikobakteri tüberkülozu vb. yer alır ve gram negatif bakteriler arasında gonokok, meningokok, E. coli vb. yer alır. Bazı bakteri türleri yaşa, ekime bağlı olarak Gram değişkeniyle boyanabilir. Hücre duvarının yapısını etkileyen özellikler ve diğer faktörler. Bu nedenle renklendirme için daima 1 günlük genç kültürleri almalısınız.

Gram'a göre boyama sırasında yapılan ana hata, smearın etil alkolle "yeniden ağartılmasıdır". Bu durumda, Gram-pozitif bakteriler orijinal yılan otu rengini kaybedebilir ve smearın daha sonra gram-negatif bakterilerle boyanması sonucunda kırmızı bir renk (gram-negatif bakterilerin karakteristiği) elde edebilir; yılan otu menekşesinin mavi-mor rengi. Doğru renklendirme için ağartma tekniğine kesinlikle uyulmalıdır.

Normalde emzirmeyen bir kadının memesinden akıntı olmaz. Meme bezinden akan sıvı (eksüda), parmak izi smear alınarak analiz edilir. Kistlerin ve cilt ülserlerinin içerikleri de incelenir.

Test neden yapılıyor - meme smear'ı?

Bu yöntemle meme bezlerinden akıntının ortaya çıkmasına neden olan hastalık belirlenir. Hücresel bileşimi belirlemek için sıvının sitolojik analizi yapılır. Kötü huylu tümörlerde yaymada atipik (kanserli) hücreler tespit edilir. Parmak izi lekelerinin yardımıyla teşhis ediyorlar:

• meme kanseri
• mastopati ve mastit;
• galaktore - hormonal dengesizliğe bağlı olarak bezlerinden süt salgılanması;
• meme tüberkülozu;
• iyi huylu oluşumlar;
• kanalların tıkanması ve genişlemesi;
• kistlerin içeriği ve yara yüzeyleri

Meme muayenesi nasıl yapılır?

Meme uçlarından gelen akıntı ve ciltteki yaralar bir cam parçasına sürülerek kurutulur ve laboratuvara gönderilir.

Kistlerin içeriğini incelemek için sıvı toplamak amacıyla bir delik açılır. Enjeksiyon ince bir iğne ile yapıldığı için anesteziye gerek duyulmaz. Test yapıldıktan sonra hasta evine gider. Bir kadın evde delinme bölgesine buz uyguluyor. Nokta cama uygulanır ve test için gönderilir.

İşlem ayaktan tedavi bazında gerçekleştirilir ve hastaneye kaldırılmayı gerektirmez. İşlemden önce kanın pıhtılaşmasını değiştiren ilaçları almamalısınız. Çalışmanın yapılacağı gün göğüs ve koltuk altı bölgesine krem, sprey veya deodorant uygulanması yasaktır.

Meme smear sonuçları

Laboratuvarda materyal boyanır ve mikroskop altında incelenir:

• meme bezlerinin yaralanmaları ve malign olmayan hastalıkları durumunda sıvıda kan ve lökositler bulunur. İyi huylu tümör hücreleri tespit edilebilir. Bu durumda kadın ayrıca muayene edilir;
• Meme kanseri durumunda, akıntıda atipik (kanserli) hücreler bulunur - büyük, düzensiz şekilli ve birkaç küçük "nükleol". Analizin doğruluğu %100'e yakındır. Çalışma sırasında malign tümörün tipi belirlenir;
• Meme kanserinin başlangıç ​​evrelerinde smearde değişen hücreler her zaman tespit edilemeyebilir. % 15'inde onkolojik süreç diğer yöntemlerle tespit edilir - Doppler ultrason, MRI. Sonuç şüpheli ise kadın tekrar muayene edilecektir.

Meme bezinden parmak izi smear almak, kanser ve meme bezinin diğer patolojilerini teşhis etmek için düşük travmatik ve bilgilendirici bir yöntemdir.