O prowadzeniu seromonitoringu w celu badania stanu odporności populacji na polio. Jak badać przeciwciała przeciwko polio Serologiczne monitorowanie odporności stadnej

O prowadzeniu seromonitoringu w celu badania stanu odporności populacji na polio

Przyjęty Ministerstwo Zdrowia regionu Orenburg,
Biuro Rospotrebnadzor dla regionu Orenburg

1. Badania serologiczne mające na celu badanie stanu odporności swoistej we wskaźnikowych grupach populacji są obowiązkowym elementem nadzoru epidemiologicznego nad polio i prowadzone są w celu kontroli organizacji i realizacji szczepień ochronnych przeciwko tej chorobie.
2. W związku z ciągłym rozprzestrzenianiem się wirusa polio w szeregu krajów Afryki i Azji oraz utrzymującym się realnym zagrożeniem wprowadzenia do regionu dzikiego szczepu tego patogenu, niezwykle ważne jest uzyskanie obiektywnych danych na temat stanu zdrowia populacji odporność na polio.
3. Zgodnie z przepisami sanitarno-epidemiologicznymi SP 3.1.1.2343-08 „Zapobieganie polio w okresie pocertyfikacyjnym” oraz Planem Działań na lata 2006 - 2008. utrzymanie statusu regionu Orenburg wolnego od polio

4. Zamawiamy:

5. 1. Do naczelnych lekarzy Centralnego Szpitala Miejskiego Buzuluk i Centralnego Szpitala Miejskiego Buguruslan, Centralnego Szpitala Rejonowego Gayskaya i Centralnego Szpitala Rejonowego Nowoorska:
6. 1.1. Zorganizować pobieranie krwi do badań serologicznych w kierunku poliomyelitis w grupach wskaźnikowych populacji zgodnie z załącznikiem nr 1: w miastach. Buzuluk i Buguruslan w maju 2008 r., w obwodach gajskim i nowoorskim – we wrześniu 2008 r.
7. 1.2. Zapewnienie przestrzegania zasad pobierania, transportu i przechowywania surowicy krwi zgodnie z Załącznikiem nr 2.
8. 1.3. Zapewnij dostawę surowicy krwi do laboratorium wirusologicznego Federalnej Instytucji Państwowej „Centrum Higieny i Epidemiologii w regionie Orenburg” z miast. Buguruslan i Buzuluk do 23 maja 2008 r., Obwody Gaisky i Nowoorsky - do 21 września 2008 r.
9. 1.4. Zadbaj o to, aby wyniki badań serologicznych w kierunku polio znalazły się w odpowiedniej dokumentacji medycznej.
10. 2. Kierownicy wydziałów terytorialnych Wschodniego, Północno-Wschodniego, Zachodniego, Północno-Zachodniego mają obowiązek zapewnić kontrolę nad prawidłowym tworzeniem się grup ludności podlegających badaniom serologicznym w kierunku polio, organizacją i prowadzeniem pobierania krwi oraz przestrzeganiem terminów dostarczania krwi. materiał do laboratorium wirusologicznego Federalnej Instytucji „Centrum Higieny i Epidemiologii w regionie Orenburg”.
11. 3. Do głównego lekarza Federalnej Państwowej Instytucji Zdrowia „Centrum Higieny i Epidemiologii w regionie Orenburg” N.N. zapewnić badanie surowic krwi w ciągu 7–10 dni od momentu ich otrzymania wraz z przesłaniem wyników badań do Urzędu Rospotrebnadzor dla regionu Orenburg i Instytucji Państwowej „Regionalne Centrum Zapobiegania i Kontroli AIDS i Chorób Zakaźnych w Orenburgu” „.
12. 4. Kontrolę nad wykonaniem niniejszego zarządzenia sprawuje Pierwszy Wiceminister V.N. Averyanov. i zastępca szefa biura Rospotrebnadzor na region Jakowlew A.G.
13. Minister Zdrowia
14. Region Orenburga
15. N.N. KOMAROW
16. Kierownik
17. Kierownictwo
18. Rospotrebnadzor
19. w regionie Orenburga
20. N.E.VYALTSINA

Procedura kwalifikowania dzieci do badań serologicznych w celu określenia stanu odporności na wirusy polio

1. Monitoring serologiczny stanu zbiorowej odporności na polio należy prowadzić w następujących grupach wskaźnikowych populacji:
2. - Grupa I - dzieci w wieku 3-4 lat, które otrzymały pełny zakres szczepień stosownie do wieku (szczepienie i dwie doszczepienia).
3. - Grupa II - dzieci w wieku 14 lat, które otrzymały pakiet szczepień zgodny ze swoim wiekiem.
4. Do grup wskaźnikowych nie można włączać osób, które przeżyły poliomyelitis; dzieci, którym brakuje informacji na temat szczepień; nieszczepiony przeciwko polio; którzy przeszli jakąkolwiek chorobę w okresie 1 – 1,5 miesiąca przed badaniem, ponieważ niektóre choroby mogą prowadzić do przejściowego spadku miana swoistych przeciwciał.
5. Każda grupa wskaźnikowa musi reprezentować jednorodną populację statystyczną, co wymaga wyselekcjonowania osób z tą samą liczbą szczepień i okresem od ostatniego szczepienia. W takim przypadku okres ten musi wynosić co najmniej 3 miesiące. Liczba każdej grupy wskaźnikowej musi wynosić co najmniej 100 osób.
6. Optymalnie do badania należy wybrać 4 grupy z tej samej grupy wiekowej (2 grupy z dwóch placówek medycznych), po minimum 25 osób w każdej grupie. W przypadku mniejszej liczby dzieci z grupy wskaźnikowej w grupach dziecięcych osiągnięcie reprezentatywności badań osiąga się poprzez zwiększenie liczby placówek przedszkolnych, w których badania te będą prowadzone.
7. W grupach dziecięcych przed badaniem serologicznym pracownicy medyczni muszą przeprowadzić z rodzicami rozmowę wyjaśniającą na temat konieczności zapobiegania polio i ustalenia odporności poszczepiennej na nie.
8. Okres pobierania surowic i dostarczania ich do laboratorium wirusologicznego Federalnej Instytucji Państwowej „Centrum Higieny i Epidemiologii w regionie Orenburg” nie powinien przekraczać 7 dni.

Zasady pobierania, transportu i przechowywania surowicy krwi

1. 1. Technika pobierania i pierwotnego oczyszczania krwi
2. Przy przeprowadzaniu badań serologicznych wymagana jest tylko jedna próbka krwi od każdej osoby wchodzącej w skład obserwowanej grupy. Minimalna ilość surowicy krwi wymagana do badania wynosi co najmniej 0,2 ml, lepiej użyć 1 ml. Dlatego minimalna objętość próbki krwi powinna wynosić co najmniej 0,5 ml; optymalnie 2 ml. Lepiej jest pobrać krew z żyły, ponieważ ta metoda jest najmniej traumatyczna i pozwala uzyskać wymagane objętości przy minimalnym poziomie hemolizy.
3. Krew z żyły w ilości 5 ml pobiera się jednorazową sterylną strzykawką do jałowej probówki w warunkach aseptycznych.
4. Jeżeli z jakiegoś powodu nie można pobrać krwi z żyły, krew pobiera się poprzez ukłucie palca. W ten sposób możliwe jest uzyskanie wystarczającej ilości krwi do badań serologicznych. Krew w objętości 1,0 - 1,5 ml pobiera się bezpośrednio przez krawędź sterylnej jednorazowej probówki wirówkowej z korkiem (lub do specjalnych mikroprobówek do pobierania krwi włośniczkowej). Przed pobraniem krwi dłoń pacjenta ogrzewa się gorącą wodą, a następnie wyciera do sucha czystym ręcznikiem. Palec leczy się sterylnym wacikiem nasączonym 70% alkoholem i przekłuwa sterylnym jednorazowym wertykulatorem. Nakłucie wykonuje się nieco dalej od linii środkowej, bliżej bocznej powierzchni palca (miejsca, przez które przechodzą duże naczynia). Krople krwi wystające w miejscu nakłucia zbiera się krawędzią suchej, sterylnej probówki wirówkowej tak, aby krople spływały po ściance na dno. Aby uzyskać dużą ilość krwi zaleca się delikatny masaż boków falangi. U bardzo małych dzieci próbkę krwi można pobrać poprzez nakłucie pięty.
5. Po pobraniu krwi miejsce wstrzyknięcia smaruje się sterylnym wacikiem zwilżonym 5% roztworem jodu.
6. Probówkę z krwią zamyka się sterylnym gumowym korkiem, do probówki przykleja się pasek taśmy klejącej, na którym zapisany jest numer osoby badanej, zgodny z numerem porządkowym w dokumencie towarzyszącym, nazwisko i inicjały, i datę zbioru. Przed wysłaniem do laboratorium krew można przechowywać w temperaturze +4 - +8 stopni. Nie dłużej niż 24 godziny.
7. W laboratorium, w celu uzyskania surowicy, probówkę z krwią pozostawia się w pozycji pochylonej (pod kątem 10 - 20 stopni) w temperaturze pokojowej na 30 minut. utworzyć skrzep; po czym probówkę z krwią wytrząsa się w celu oddzielenia skrzepu od ścianki probówki i pozostawia na noc w lodówce w temperaturze +4 - 8 stopni. Z.
8. Po usunięciu surowicy ze skrzepu (probówki okrąża się pipetą Pasteura po wewnętrznej powierzchni) odwirowuje się ją przy 1000 - 1200 obr./min. przez 15 - 20 minut. Następnie surowicę ostrożnie nalewa się lub aspiruje pipetą z gruszką do sterylnych probówek wirówkowych (plastikowych) lub probówek Eppendorfa z obowiązkowym przeniesieniem etykiety z odpowiedniej probówki na nie.
9. Jeżeli laboratorium nie posiada wirówki, pełną krew należy pozostawić w lodówce do czasu całkowitego wycofania skrzepu (oddzielenia się skrzepu krwinek czerwonych od surowicy). Ostrożnie, ostrożnie, unikając uszkodzenia czerwonych krwinek, przenieś surowicę do innej sterylnej probówki wyposażonej w etykietę. Surowica powinna być przezroczysta, jasnożółta, bez znaczącej hemolizy.
10. Surowicę otrzymaną do laboratorium (bez skrzepu) można przechowywać do czasu badania w domowych lodówkach w temperaturze 4 stopni. C w ciągu 7 dni. W celu dłuższego przechowywania serwatkę można zamrozić w temperaturze -20 stopni. Z.
11. 2. Transport próbek surowicy (krwi).
12. Przed transportem pobranego materiału bardzo ważne jest zachowanie środków ostrożności: sprawdzenie dostępności zebranych informacji, szczelne zamknięcie probówek, ułożenie próbek według ich numeracji, umieszczenie surowic w plastikowej torbie.
13. Do transportu krwi (surowicy) należy używać pojemników termicznych (torby termoizolacyjne, termosy). Jeżeli stosowane są elementy chłodnicze (należy je zamrozić) należy je ułożyć na dnie i bokach pojemnika, następnie włożyć do środka woreczek foliowy z próbkami surowicy i ponownie umieścić zamrożone elementy na wierzchu. Dokumenty towarzyszące, zawierające datę i godzinę wyjazdu, należy umieścić w plastikowej torbie i umieścić pod pokrywą pojemnika termicznego.
14. Podczas prowadzenia seromonitoringu do próbek krwi (surowicy) dołączany jest starannie wypełniony dokument towarzyszący – „Wykaz osób poddawanych badaniom serologicznym na obecność specyficznych przeciwciał przeciwko wirusowi polio” (w załączeniu).
15. Po zakończeniu przygotowań do wysyłki należy poinformować odbiorcę o czasie i sposobie transportu, liczbie próbek itp.
16. Próbki dostarczane są do laboratorium wirusologicznego Federalnej Instytucji Państwowej „Centrum Higieny i Epidemiologii w regionie Orenburg” (Orenburg, ul. Let Oktyabrya 60, 2/1, tel. 33-22-07).
17. W miejscu pobrania próbek surowicy krwi duplikaty wykazów osób badanych i wyników badań surowicy należy przechowywać przez okres co najmniej 1 roku.
18. Wyniki wpisywane są także do formularzy księgowych (historia rozwoju dziecka, karta ambulatoryjna pacjenta).
19. Lista osób
20. podlega badaniu serologicznemu na obecność
21. swoiste przeciwciała przeciwko wirusowi polio (seromonitoring)
22. (pre) W _____________ w ______ roku miasto, powiat Nazwa placówki służby zdrowia ___________ Nazwa placówki ___________________ N Przedszkole (grupa), szkoła (klasa) itp. (/pre)

MU 3.1.2943-11

INSTRUKCJE METODOLOGICZNE

3.1. ZAPOBIEGANIE CHOROBOM ZAKAŹNYM

Organizacja i prowadzenie monitoringu serologicznego stanu odporności zbiorowej na zakażenia kontrolowane za pomocą profilaktyki specyficznej (błonica, tężec, krztusiec, odra, różyczka, świnka, polio, wirusowe zapalenie wątroby typu B)

1. OPRACOWANE przez Federalną Służbę Nadzoru Ochrony Praw Konsumentów i Dobrobytu Ludności (E.B. Ezhlova, A.A. Melnikova, G.F. Lazikova, N.A. Koshkina); FBUZ „Federalne Centrum Higieny i Epidemiologii” Rospotrebnadzor (N.Ya. Zhilina, O.P. Chernyavskaya); Federalna Państwowa Instytucja Budżetowa „Moskiewski Instytut Badawczy Epidemiologii i Mikrobiologii im. G.N. Gabrichevsky’ego” z Rospotrebnadzor (N.M. Maksimova, S.S. Markina, T.N. Yakimova, N.T. Tichonowa, A.G. Gerasimova, O.V. Tsvirkun, N.V. Turaeva, N.S. Kushch); Federalna Państwowa Instytucja Budżetowa „Centralny Instytut Badawczy Epidemiologii” Rospotrebnadzor (wiceprezes Czulanow, N.N. Pimenow, T.S. Selezneva, A.I. Zargaryants, I.V. Mikheeva); Instytucja Państwowa „Instytut Poliomyelitis i Wirusowego Zapalenia Mózgu im. posła Czumakowa” RAMS (V.B. Seybil, O.E. Ivanova), Instytucja Państwowa „Moskiewski Instytut Badawczy Szczepionek i Surowic im. I.I. Miecznikowa RAMS (N.V. Yuminova, R.G. Desyatskova); Omsk Państwowa Akademia Medyczna (V.V. Dalmatov); Biuro Rospotrebnadzor dla obwodu nowosybirskiego (N.I. Shulgina); Biuro Rospotrebnadzor dla Moskwy (I.N. Lytkina);

2. OPRACOWANO w celu zastąpienia wytycznych MU 3.1.1760-03 „Organizacja i prowadzenie monitorowania serologicznego stanu odporności zbiorowej przeciwko infekcjom, którym można zapobiegać poprzez szczepienia (błonica, tężec, odra, różyczka, świnka, polio).”

3. ZATWIERDZONE 15 lipca 2011 r. i wprowadzone w życie przez Głównego Państwowego Lekarza Sanitarnego Federacji Rosyjskiej G.G. Oniszczenko.

1 obszar zastosowania

1 obszar zastosowania

1.1. Wytyczne określają podstawowe zasady organizacji i realizacji monitorowania serologicznego stanu odporności zbiorowej na zakażenia kontrolowane poprzez profilaktykę swoistą (błonica, tężec, krztusiec, odra, różyczka, świnka, polio, wirusowe zapalenie wątroby typu B).

1.2. Niniejsze wytyczne przeznaczone są dla specjalistów z organów sprawujących państwowy nadzór sanitarno-epidemiologiczny oraz specjalistów z organizacji medycznych i profilaktycznych.

2. Postanowienia ogólne

2.1. Prowadzenie monitoringu serologicznego pozwala na ciągły proces obiektywnej oceny stanu swoistej odporności poszczepiennej na czynniki zakaźne kontrolowanej za pomocą profilaktyki specyficznej w grupach populacji „wskaźnikowych” i grupach ryzyka i jest obowiązkowym elementem nadzoru epidemiologicznego błonicy, tężca , krztusiec, odra, różyczka, świnka, polio i wirusowe zapalenie wątroby typu B, ponieważ dobrostan epidemiologiczny w związku z tymi zakażeniami zależy od stanu odporności poszczepiennej.

2.2. Celem monitoringu serologicznego jest ocena poziomu rzeczywistej ochrony przed zakażeniami jednostek, grup i populacji jako całości, a także ocena jakości pracy szczepień na konkretnym terytorium i w konkretnej organizacji opieki zdrowotnej.

2.3. Monitoring serologiczny obejmuje:

wyselekcjonowanie „wskaźnikowych” grup populacji, których stan odporności swoistej pozwala na ekstrapolację uzyskanych wyników na populację badanego terytorium jako całości;

organizowanie i prowadzenie badań serologicznych surowicy krwi osób zaszczepionych (w grupach populacji „wskaźnikowej”);

ocena skuteczności szczepień.

Procedurę pobierania, transportu i przechowywania surowicy krwi do badań przeprowadza się zgodnie z Załącznikiem nr 1.

2.4. Populacje „wskaźnikowe” obejmują osoby z udokumentowaną historią szczepień. W takim przypadku okres od ostatniego szczepienia do badania na obecność przeciwciał błonicy i tężca, aglutynin krztuśca, przeciwciał przeciwko wirusom odry, różyczki, świnki, polio i wirusowemu zapaleniu wątroby typu B musi wynosić co najmniej 3 miesiące.

Wprowadzenie grup „wskaźnikowych” pozwala ujednolicić formy i metody analizy prac szczepieniowych.

2.5. Organizacją i prowadzeniem monitoringu serologicznego stanu odporności zbiorowej ludności zajmują się organizacje opieki zdrowotnej oraz organy sprawujące państwowy nadzór sanitarno-epidemiologiczny.

2.6. Prowadzenie monitorowania serologicznego stanu odporności zbiorowej formalizowane jest uchwałą Głównego Państwowego Lekarza Sanitarnego podmiotu Federacji Rosyjskiej, w której w porozumieniu z władzami sanitarnymi określa się terytoria, czas (harmonogram), kontyngenty i ustala się liczbę grup populacji podlegających badaniu, ustala laboratoria mikrobiologiczne do prowadzenia badań oraz osoby odpowiedzialne za organizację i prowadzenie tych prac.

W wykonaniu uchwały Głównego Państwowego Lekarza Sanitarnego dla podmiotu wchodzącego w skład Federacji Rosyjskiej, zarządzenie wydaje organ zarządzający opieką zdrowotną podmiotu wchodzącego w skład Federacji Rosyjskiej.

Prowadzenie monitoringu serologicznego jest corocznie uwzględniane w planach pracy organów terytorialnych Rospotrebnadzoru i organizacji opieki zdrowotnej.

3. Materiały i metody

3.1. Materiałem do badań jest surowica krwi, w której zidentyfikowane przeciwciała stanowią źródło informacji o poziomie odporności na czynniki zakaźne kontrolowanej poprzez profilaktykę swoistą.

3.2. Metody badania surowic muszą być nieszkodliwe, swoiste, czułe, standardowe i dostępne do badań masowych.

3.3. Do prowadzenia badań serologicznych surowicy krwi w Federacji Rosyjskiej stosuje się:

bierna reakcja hemaglutynacji (RPHA) – w celu wykrycia przeciwciał przeciwko wirusowi odry, toksoidom błoniczym i tężcowym;

reakcja aglutynacji (RA) – w celu wykrycia aglutynin drobnoustroju krztuśca;

enzymatyczny test immunoenzymatyczny (ELISA) - w celu wykrycia przeciwciał przeciwko odrze, różyczce, śwince, wirusom zapalenia wątroby typu B, a także czynnikowi wywołującemu krztusiec;

reakcja neutralizująca cytopatyczne działanie wirusa w hodowli komórek tkankowych (metoda makro i mikro) - w celu wykrycia przeciwciał przeciwko wirusom polio.

3.4. Do prowadzenia badań serologicznych należy stosować zestawy diagnostyczne i systemy testowe zarejestrowane w Federacji Rosyjskiej.

4. Metodologiczne podejścia do selekcji grup ludności

4.1. Tworząc „wskaźnikowe” grupy populacji podlegające badaniom serologicznym należy kierować się poniższymi zasadami.

4.1.1. Jednolitość miejsca przyjmowania szczepień (organizacja służby zdrowia, placówka przedszkolna, szkoła i inne organizacje, w których przeprowadzano szczepienia).

Ta zasada tworzenia grup pozwala zidentyfikować organizacje o niskiej jakości pracy związanej ze szczepieniami, a po późniejszym dokładnym zbadaniu zidentyfikować jej konkretne niedociągnięcia (naruszenie zasad przechowywania i transportu szczepionek, fałszowanie szczepień, ich niezgodność z terminem i schematy obowiązującego kalendarza szczepień zapobiegawczych, błędy techniczne itp.).

4.1.2. Jedność historii szczepień.

Badana populacja musi być jednorodna, co wymaga doboru osobników o tej samej liczbie szczepień i okresie od ostatniego szczepienia.

4.1.3. Podobieństwo sytuacji epidemiologicznej, w jakiej kształtują się grupy badawcze.

Aby spełnić wymogi tej zasady, grupy tworzy się z grup, w których od roku lub dłużej nie odnotowano żadnego przypadku błonicy, krztuśca, odry, różyczki, świnki ani wirusowego zapalenia wątroby typu B.

4.2. Wybór kontyngentów do badania rozpoczyna się od identyfikacji terytoriów.

Granice terytorium wyznacza zakres usług danej organizacji opieki zdrowotnej. Może to być wydzielona zorganizowana grupa dzieci i dorosłych, okręg lekarski, osiedle przypisane do stacji ratownictwa medycznego-położnego lub obszar obsługi jednej przychodni.

4.3. Wskazane jest prowadzenie monitoringu serologicznego przede wszystkim na dużych terytoriach administracyjnych podmiotów Federacji Rosyjskiej (w miastach, ośrodkach regionalnych) - raz w roku. Co roku badaniem powinny zostać objęte różne dzielnice i przychodnie miasta (centrum dzielnicy). Częstotliwość ich badań powinna wynosić 6-7 lat (zgodnie z harmonogramem).

4.4. Aby utworzyć grupę „wskaźnikową”, należy wybrać 4 grupy osób w tym samym wieku (2 grupy z 2 zakładów opieki zdrowotnej), w każdej grupie co najmniej 25 osób, czyli każda grupa „wskaźnikowa” powinna liczyć co najmniej 100 osób ludzie.

4,5. Przed przeprowadzeniem badania serologicznego osób wybranych do grupy „wskaźnikowej” (dzieci i dorosłych) pracownicy medyczni muszą przeprowadzić prace wyjaśniające, w tym z rodzicami badanych dzieci, w celu sprawdzenia ich siły odporności poszczepiennej na zakażenia kontrolowane za pomocą specyficznej profilaktyki.

4.6. Surowicę krwi osób dorosłych do badań można pobierać w stacjach transfuzji krwi.

Procedurę pobierania, transportu i przechowywania surowicy krwi określa Załącznik nr 1.

5. Grupy populacji „wskaźnikowej” podlegające badaniu serologicznemu na obecność swoistych przeciwciał

5.1. Monitoring serologiczny stanu odporności zbiorowej zapewnia wielozadaniowe badanie serologiczne na każdym terytorium „wskaźnikowych” grup populacji.

Uniwersalne badania serologiczne obejmują określenie w jednej próbce surowicy krwi maksymalne spektrum przeciwciał przeciwko patogenom badanych infekcji.

5.2. Do grup „wskaźników” nie zaliczają się:

osoby, które chorowały na krztusiec, błonicę, tężec, odrę, różyczkę, świnkę, polio i ostre zapalenie wątroby typu B, a także pacjenci z przewlekłym wirusowym zapaleniem wątroby typu B i nosiciele wirusa zapalenia wątroby typu B;

dzieci, którym brakuje informacji na temat szczepień;

nieszczepione przeciwko tym infekcjom;

którzy przeszli jakąkolwiek chorobę 1-1,5 miesiąca przed badaniem, ponieważ niektóre choroby mogą prowadzić do przejściowego spadku miana swoistych przeciwciał.

5.3. Stan zbiorowej odporności na błonicę, tężec, świnkę, polio i wirusowe zapalenie wątroby typu B u dorosłych określa się bez uwzględnienia danych dotyczących szczepień. Stan odporności na odrę i różyczkę – bez uwzględnienia danych dotyczących szczepień – określa się u osób dorosłych wyłącznie w grupie wiekowej 40. roku życia i starszej.

5.4. Błonica i tężec.

Na podstawie wyników badań serologicznych dzieci w wieku 3-4 lat ocenia się kształtowanie odporności podstawowej w wieku 16-17 lat, ocenia się jakość szczepień przeprowadzanych w szkołach i placówkach oświatowych.

Wyniki badań serologicznych dorosłych w wieku 18 lat i więcej (w podziale na grupy wiekowe) bez uwzględnienia ich szczepień pozwalają ocenić rzeczywisty poziom ochrony przed błonicą i tężcem osób dorosłych w każdej grupie wiekowej oraz zidentyfikować grupy ryzyka w pod względem częstości występowania i ciężkości choroby.

5.5. Krztusiec.

Na podstawie wyników badań serologicznych dzieci w wieku 3-4 lat ocenia się kształtowanie się odporności podstawowej.

5.6. Odra, świnka, różyczka.

Na podstawie wyników badań serologicznych dzieci w wieku 3-4 lat oraz 9-10 lat ocenia się poziom odporności przeciw odrze, śwince i różyczce po szczepieniu i szczepieniu przypominającym.

Badanie serologiczne dzieci w wieku 16-17 lat pozwala ocenić długoterminową skuteczność szczepień przypominających, a także poziom warstwy odpornościowej na te zakażenia w nowo tworzonych grupach szkół średnich i wyższych.

Wyniki badania ankietowego osób dorosłych w wieku 25-29 lat i 30-35 lat zaszczepionych przeciwko odrze, różyczce i śwince charakteryzują stan odporności swoistej wśród populacji młodych dorosłych, w tym różyczki – kobiet w wieku rozrodczym.

Na podstawie wyników badania ankietowego przeprowadzonego wśród osób dorosłych w wieku 40 lat i starszych (dawców, z wyłączeniem historii szczepień) ocenia się faktyczną ochronę populacji osób dorosłych przed odrą, różyczką i świnką.

5.7. Paraliż dziecięcy.

Na podstawie wyników badań serologicznych dzieci w wieku 1-2 lat, 3-4 lat i 16-17 lat ocenia się poziom odporności na poliomyelitis w bezpośrednim okresie po szczepieniu i ponownym szczepieniu szczepionką przeciwko polio u dorosłych aktualny stan odporności na poliomyelitis w grupach wiekowych 20-29 lat, 30 lat i więcej.

5.8. Zapalenie wątroby typu B.

Na podstawie wyników badań serologicznych dzieci w wieku 3-4 lat i 16-17 lat oraz dorosłych i pracowników medycznych w wieku 20-29 lat, 30-39 lat i 40-49 lat ocenia się poziom odporności na wirusowe zapalenie wątroby Ocenia się B.

5.9. Za zgodą specjalistów prowadzących państwowy nadzór sanitarno-epidemiologiczny badanie serologiczne w kierunku przedmiotowych zakażeń można przeprowadzić w innych grupach wiekowych i zawodowych.

Zalecane grupy „wskaźnikowe” do serologicznego monitorowania stanu zbiorowej odporności na błonicę, tężec, krztusiec, odrę, różyczkę, świnkę, polio i wirusowe zapalenie wątroby typu B przedstawiono w Załączniku 2 (tab. 1, 2).

6. Ocena skuteczności i jakości wykonywanych szczepień

6.1. Ocena stanu swoistej odporności populacji na błonicę, tężec, krztusiec, odrę, różyczkę, świnkę, polio i wirusowe zapalenie wątroby typu B przeprowadza się na podstawie wyników badania serologicznego „wskaźnikowych” grup populacji.

6.2. Aby ocenić skuteczność szczepień i ochronę dzieci i dorosłych przed błonicą i tężcem, bada się surowicę krwi równolegle z zestawami do diagnostyki antygenu błonicy i tężca. Przed tymi zakażeniami chronione są osoby, u których w surowicy krwi wykryto przeciwciała antytoksyczne w mianie 1:20 lub wyższym.

6.3. Oceniając poziom poszczepiennej odporności przeciw krztuścowi, chronionymi przed krztuścem są osoby, których surowica krwi zawiera aglutyniny w mianie 1:160 lub wyższym.

6.4. Seropozytywne wobec wirusów odry, różyczki i świnki to osoby, u których w surowicy krwi stwierdzono przeciwciała swoiste na poziomie określonym w odpowiednich instrukcjach systemów testowych.

6,5. Oceniając poziom odporności poszczepiennej na wirus zapalenia wątroby typu B, chronionymi są osoby, u których w surowicy krwi znajdują się przeciwciała przeciwko HBsAg w stężeniu 10 IU/l i większym.

6.6. Siłę zbiorowej odporności na polio i jakość szczepień można ocenić na podstawie trzech wskaźników:

odsetek osób seropozytywnych w kierunku wirusów polio typu 1, 2 i 3(surowice, w których miano przeciwciał jest równe lub wyższe niż 1:8, uważa się za seropozytywne; proporcję wyników seropozytywnych oblicza się dla całej grupy badanych surowic);

odsetek osób seronegatywnych w kierunku wirusów polio typu 1, 2 i 3(surowice uważa się za seronegatywne, jeśli nie zawierają przeciwciał przeciwko jednemu z typów wirusa polio w rozcieńczeniu 1:8; proporcję wyników seronegatywnych oblicza się dla całej grupy badanych surowic);

odsetek osób seronegatywnych(brak przeciwciał przeciwko wszystkim trzem typom wirusa) uważa się za osoby, których surowica nie posiada przeciwciał przeciwko żadnym trzem typom wirusa polio.

Wskaźnikiem intensywności zbiorowej odporności na polio jest średnia geometryczna miana przeciwciał, które oblicza się tylko dla grupy surowic, które mają przeciwciała przeciwko odpowiedniemu serotypowi wirusa polio w mianie 1:8 lub wyższym (Załącznik 3).

6.7. Wyniki badania serologicznego kontyngentów zapisuje się w zeszytach laboratoryjnych, podając lokalizację, organizację, nazwisko, inicjały, wiek badanego i miano przeciwciał. Wyniki wpisywane są także do formularzy księgowych (historia rozwoju dziecka (druk N 112/u), karta ambulatoryjna pacjenta (druk N 025/u), karta szczepień profilaktycznych (druk N 063/u), karta szczepień i inne formularze księgowe .

6.8. Wykrycie w każdej grupie dzieci i młodzieży nie więcej niż 5% osób z mianem przeciwciał przeciw błonicy i tężcowi poniżej 1:20 i nie więcej niż 10% osób bez ochronnych mian przeciwciał błonicy i tężca w grupa dorosłych służy jako wskaźnik wystarczającej ochrony przed błonicą i tężcem.

6.9. Za kryterium dobrostanu epidemiologicznego w przypadku krztuśca należy uznać stwierdzenie, że w badanej grupie dzieci nie więcej niż 10% osób ma poziom przeciwciał mniejszy niż 1:160.

6.10. Za kryteria dobrostanu epidemiologicznego w przypadku odry i różyczki uważa się identyfikację nie więcej niż 7% osób seronegatywnych w każdej grupie „wskaźnikowej”.

6.11. Wśród osób zaszczepionych przeciwko śwince odsetek osób seronegatywnych nie powinien przekraczać 10%.

6.12. Wykrycie w każdej badanej grupie nie więcej niż 10% seronegatywnych przeciwciał dla każdego z trzech serotypów wirusa polio służy jako wskaźnik wystarczającej ochrony przed polio.

6.13. Wśród zaszczepionych przeciwko wirusowemu zapaleniu wątroby typu B odsetek osób ze stężeniem przeciwciał poniżej 10 IU/l nie powinien przekraczać 10%.

6.14. Jeżeli poniżej określone wskaźniki zostaną wykryte w dowolnej grupie „wskaźników”:

u ponad 5% osób wśród dzieci i młodzieży oraz u ponad 10% osób wśród dorosłych miano przeciwciał przeciw błonicy i tężcowi jest poniżej poziomu ochronnego;

u ponad 10% osób z mianem przeciwciał przeciw krztuścowi poniżej poziomu ochronnego;

ponad 7% osób seronegatywnych w kierunku wirusa odry i różyczki;

wśród zaszczepionych przeciwko śwince ponad 10% jest seronegatywnych;

ponad 10% osobników seronegatywnych w stosunku do każdego z trzech serotypów wirusa polio;

u ponad 10% osób seronegatywnych w kierunku wirusa zapalenia wątroby typu B, ze stężeniem przeciwciał przeciwko HBsAg mniejszym niż 10 IU/l

niezbędny:

przeprowadzić analizę dokumentacji szczepień zidentyfikowanych osób seronegatywnych w celu ustalenia faktu szczepienia - porównać informacje o szczepieniach we wszystkich formularzach rejestracyjnych (karta szczepień zapobiegawczych (druk N 063/u), historia rozwoju dziecka (druk N 112/u), karta ambulatoryjna pacjenta (formularz N 025/u), dzienniki pracy i inne);

oceniać warunki przechowywania i transportu szczepionek, procedurę szczepień;

dodatkowo sprawdzić stan odporności na błonicę, tężec, krztusiec, odrę, różyczkę, świnkę, polio i wirusowe zapalenie wątroby typu B u osób w tym samym wieku w liczbie co najmniej 100 osób, ale w 2 innych zespołach tej samej placówki służby zdrowia , gdzie występuje wysoki odsetek osób seronegatywnych;

szczepić zidentyfikowane osoby seronegatywne zgodnie z obowiązującymi przepisami.

6.15. Jeżeli po dodatkowym badaniu liczba osób niezabezpieczonych na te zakażenia przekroczy podane kryteria, należy sprawdzić dostępność szczepień u osób w tych samych grupach wiekowych z wysokim odsetkiem seronegatywnych, nad którymi opiekę medyczną sprawuje niniejsza organizacji opieki zdrowotnej w celu stwierdzenia fałszowania szczepień. Zidentyfikowane osoby nieszczepione należy zaszczepić zgodnie z obowiązującymi przepisami.

6.16. Materiały serologicznego monitorowania stanu odporności zbiorowej podsumowano dla różnego rodzaju organizacji, klinik, okręgów, miast (ośrodków powiatowych) i podmiotu wchodzącego w skład Federacji Rosyjskiej jako całości (załącznik 2, tabele 3, 4, 5, 6 ). Następnie dla każdego zakażenia wyniki badania serologicznego porównuje się ze współczynnikami zachorowalności i poziomem zaszczepienia, co potwierdzi oficjalne dane o wyszczepieniu populacji lub wykryje rozbieżności w wyszczepieniu z poziomem odporności zbiorowej.

6.17. Dynamiczne monitorowanie stanu odporności populacji na zakażenia kontrolowane za pomocą profilaktyki specyficznej pozwala na szybką identyfikację oznak problemów epidemiologicznych. Prognozę sytuacji epidemiologicznej dla każdego z zaobserwowanych zakażeń uznaje się za niezadowalającą, jeżeli występuje tendencja do zwiększania się odsetka zakażeń seronegatywnych.

6.18. Kiedy na jakimkolwiek terytorium zostaną zidentyfikowane pierwsze objawy prognostyczne, wskazujące na zbliżające się pogorszenie sytuacji epidemiologicznej w przypadku którejkolwiek z rozważanych infekcji, podejmowane są decyzje zarządcze mające na celu zwiększenie poziomu warstwy odpornościowej wśród populacji.

Załącznik nr 1. Procedura pobierania, transportu i przechowywania surowicy krwi

Aneks 1

1. Technika pobierania i pierwotnego oczyszczania krwi

Krew kapilarna pobierana jest z palca w warunkach aseptycznych. Przed pobraniem krwi dłoń pacjenta ogrzewa się gorącą wodą, a następnie wyciera do sucha czystym ręcznikiem. Palec po przetarciu alkoholem 70° przekłuwa się sterylnym jednorazowym wertykulatorem. Krew w objętości 1,0-1,5 ml pobiera się bezpośrednio przez krawędź sterylnej jednorazowej probówki wirówkowej z korkiem (lub do specjalnych mikroprobówek do pobierania krwi włośniczkowej). Po pobraniu krwi miejsce wstrzyknięcia smaruje się 5% roztworem jodu.

Probówkę należy ponumerować i przymocować do niej etykietę zawierającą numer rejestracyjny, nazwisko, inicjały i datę pobrania krwi.

Aby otrzymać surowice, probówkę z krwią umieszcza się w pomieszczeniu, w którym pobierano krew, w pozycji pochylonej (pod kątem 10-20°) w temperaturze pokojowej na 20-30 minut w celu wytworzenia skrzepu, po czym probówkę z krwią wstrząsa się w celu oddzielenia skrzepu od ścianki probówki.

Sporządza się listę osób badanych, która wskazuje miasto (powiat), numer placówki przedszkolnej, grupę, szkołę, klasę, numer średniej placówki specjalistycznej, grupę, nazwę uczelni, wydział, grupę, numer rejestracyjny, nazwisko , imię pacjenta, data urodzenia, data szczepień przeciwko błonicy, tężcowi, odrze, różyczce, śwince, polio i wirusowemu zapaleniu wątroby typu B, data pobrania krwi, podpis osoby odpowiedzialnej.

Probówki wraz z listami przesyłane są do laboratorium diagnostyki klinicznej szpitala, gdzie probówki z krwią pozostawia się na noc w lodówce w temperaturze 4-8°C.

Po oddzieleniu surowicy od skrzepu (probówki okrąża się po wewnętrznej powierzchni sterylną pipetą Pasteura), surowicę odwirowuje się przy 1000-1200 obr/min przez 15-20 minut. Następnie surowicę ostrożnie nalewa się lub aspiruje pipetą z gruszką do sterylnych probówek wirówkowych (plastikowych) lub probówek Eppendorfa z obowiązkowym przeniesieniem etykiety z odpowiedniej probówki na nie.

W laboratorium surowicę (bez skrzepu) można przechowywać w lodówce w temperaturze (5 ± 3)°C przez 7 dni przed badaniem. W celu dłuższego przechowywania serwatkę należy zamrozić w temperaturze -20°C. Ponowne zamrażanie rozmrożonej serwatki nie jest dozwolone. Po zebraniu wymaganej ilości surowic są one wysyłane do laboratorium Federalnej Budżetowej Instytucji Zdrowia „Centrum Higieny i Epidemiologii” Rospotrebnadzor w jednostce wchodzącej w skład Federacji Rosyjskiej w celu przeprowadzenia badań.

2. Transport próbek surowicy (krwi).

Przed transportem pobranego materiału z terenu badań należy zachować środki ostrożności: sprawdzić dostępność zebranych informacji, szczelnie zamknąć probówki, ułożyć próbki według ich numeracji itp. Listy osób badanych należy przechowywać w miejscu miejsce zbiórki. Pojemniki termiczne (worki chłodnicze) służą do transportu surowicy krwi. Podczas transportu i przechowywania krwi zimą należy stworzyć warunki, w których nie zamarznie.

Przesyłając próbki koleją lub samolotem, należy powiadomić laboratorium (telefonicznie, telegramem) o numerze pociągu (lotu), dacie i godzinie odjazdu i przyjazdu, liczbie próbek itp.

Dodatek 2. Tabele

Załącznik 2

Tabela 1

Grupy „wskaźnikowe” do serologicznego monitorowania stanu zbiorowej odporności na błonicę, tężec, krztusiec, odrę, różyczkę, świnkę, polio i wirusowe zapalenie wątroby typu B

Grupy „wskaźnikowe”.	Błonica	Tężec		Różyczka	Epidemia- świnka chelic	Paraliż dziecięcy- zapalenie rdzenia kręgowego	Zapalenie wątroby typu B
1-2 lata

Badanie krwi pod kątem siły odporności jest jednym ze skutecznych wskaźników w diagnozowaniu chorób związanych z upośledzoną odpornością. Stan, w którym układ odpornościowy jest znacznie osłabiony, nazywany jest niedoborem odporności. Ten stan może być pierwotny, to znaczy wrodzony lub wtórny. Pierwotny niedobór odporności występuje na skutek obecności defektu genetycznego w rozwoju układu odpornościowego. W większości przypadków jest to ustalane dość szybko. Dzieci ze słabym układem odpornościowym od urodzenia zwykle nie żyją dłużej niż 6 lat.

Wtórny niedobór odporności jest konsekwencją negatywnych zmian w układzie odpornościowym, który jest prawidłowy od urodzenia. Przyczyną osłabienia odporności może być złe odżywianie; jeśli dana osoba nie spożywa pokarmów ważnych dla prawidłowego funkcjonowania organizmu, immunoglobulina nie będzie miała z czego powstać. Przyczynę tę najczęściej stwierdza się u wegetarian i dzieci.

Zmiany w układzie odpornościowym można wykryć wykonując badanie krwi w celu określenia siły układu odpornościowego. Choroby wątroby są najczęstszą przyczyną niedoborów odporności u dorosłych. To właśnie w wątrobie powstają przeciwciała zwane „immunoglobulinami”. Na przykład w przypadku uszkodzenia wątroby spowodowanego spożyciem alkoholu lub wirusowym zapaleniem wątroby funkcja ta jest upośledzona.

Kiedy należy sprawdzić swój układ odpornościowy?

Niedobór odporności zawsze objawia się w jakiś sposób. Jeśli dana osoba bardzo często cierpi na ostre infekcje wirusowe dróg oddechowych, które często przebiegają z powikłaniami, lub jego opryszczka zbyt często się nasila, tworzą się czyraki, a na błonach śluzowych pojawia się pleśniawka, warto sprawdzić stan układu odpornościowego. Trudne do wyleczenia choroby weneryczne mogą również wskazywać na spadek odporności. Aby zrozumieć stan układu odpornościowego, należy skontaktować się z immunologiem i przejść badanie.

Immunogram służy do badania odporności. Jest to analiza odzwierciedlająca stan, w jakim znajduje się ludzki układ odpornościowy.

Obecnie ten układ organizmu ludzkiego nie został wystarczająco zbadany; wiadomo, że spełnia on tak ważne zadanie, jak eliminacja czynników, które dostały się do organizmu (substancje chemiczne, bakterie, wirusy).

Istnieją dwa rodzaje odporności uważane za podstawowe:

• humoralny, reagujący na przenikanie obcych organizmów, których zniszczenie przeprowadzają specjalne białka - immunoglobuliny;
• komórkowy, zapewniający ochronę organizmu za pomocą leukocytów.

Przed sprawdzeniem siły odporności należy przestudiować możliwości, jakie daje immunogram. Wskaźniki uzyskane w wyniku takiej analizy pozwalają zdiagnozować obie odporności.

Wróć do treści

Co to jest immunogram?

Analiza, służąca sprawdzeniu siły układu odpornościowego, pozwala oszacować liczbę leukocytów, zarówno ogółem, jak i w podziale na podtypy (limfocyty, granulocyty, monocyty). Uwzględnia się także poszczególne subpopulacje limfocytów, np. komórek CD.

Immunogram jest metodą określania aktywności fagocytarnej leukocytów.

Aktywność ta odnosi się do zdolności komórek ochronnych (limfocytów) do niszczenia bakterii. Pobrany biomateriał poddaje się badaniu w celu uzyskania informacji o liczbie immunoglobulin i krążących kompleksów immunologicznych.

W niektórych przypadkach pobiera się krew w celu sprawdzenia siły odporności. Immunogram wykonuje się po wykryciu następujących warunków:

• infekcje, które występują z nawrotami;
• onkologia;
• choroby autoimmunologiczne;
• choroby alergiczne;
• choroby, które charakteryzują się przewlekłym i mają postać przewlekłą;
• podejrzenie obecności AIDS.

Jest ona potrzebna w okresie badań pacjentów, którzy przeszli przeszczepienie narządu i są w trakcie tej operacji. Procedura ta jest również wymagana w celu monitorowania stanu pacjenta podczas przyjmowania leków cytostatycznych, immunomodulatorów i leków immunosupresyjnych. Proces określania stanu odporności składa się z dwóch etapów. Najpierw wykonuje się ogólne badanie krwi i ogólne badania kliniczne, które podczas wizyty u lekarza przepisywane są każdemu, niezależnie od jego problemu.

W przypadku wykrycia infekcji przenoszonej drogą płciową immunogram nie jest procedurą obowiązkową, ponieważ u tych pacjentów zwykle nie występują zaburzenia w funkcjonowaniu układu odpornościowego. Absolutnie zdrowa osoba może zostać zarażona infekcją przenoszoną drogą płciową. Niektórzy lekarze uważają jednak, że sprawdzenie mechanizmów obronnych organizmu jest podstawą ustalenia prawidłowego schematu leczenia.

Wróć do treści

Kto powinien poddać się badaniu, jak ono przebiega?

Analizę siły odporności zaleca się osobom podatnym na przeziębienia w przypadkach, gdy występuje duża częstotliwość ich występowania i długi przebieg. Po wykryciu poziomu, na którym doszło do naruszenia, przepisuje się kompetentną korektę stanu, w którym znajduje się pacjent, mającą na celu poprawę zdrowia i poprawę jakości życia.

Materiałem do badań jest krew pobrana z żyły. Jej spożycie obejmuje rzucenie palenia, unikanie ciężkich ćwiczeń i trening na dzień przed zabiegiem. Przed przystąpieniem do badania nie należy jeść; badanie wykonuje się rano, pod warunkiem, że od ostatniego posiłku minęło więcej niż osiem godzin. Zabrania się nawet picia nie tylko herbaty czy kawy, ale także zwykłej wody.

Odporność dziecka sprawdza się tylko wtedy, gdy istnieją ku temu odpowiednie wskazania. Nie powinniśmy zapominać, że układ odpornościowy nie kształtuje się natychmiast; jego ukończenie następuje po pięciu latach.

Pacjenci z chorobami przewlekłymi poddawani są dokładniejszym badaniom, co wymaga więcej czasu. Podczas testu wyświetlane są określone parametry odporności. Badanie takie jest konieczne w przypadku często nawracających zapaleń płuc, zatok i oskrzeli. Wskazaniem do zabiegu są także krostkowe choroby skóry i infekcje wywołane przez grzyby.

Immunogram może wyświetlać wskaźniki wskazujące na pewne nieprawidłowości. U małych dzieci takie zmiany nie są uważane za patologię. Częste infekcje wywołane wirusami są dla dziecka raczej normą niż patologią. W końcu organizm musi najpierw rozpoznać wirusy i nauczyć się z nimi walczyć. I w takich sytuacjach nie należy ingerować w funkcjonowanie układu odpornościowego, ponieważ może to zaszkodzić zdrowiu.

Wyniki analizy ocenia specjalista. Immunolog posiada wiedzę, która pozwala mu prawidłowo zinterpretować dane uzyskane z materiału pobranego do badań. Ocenia wartości cyfrowe biorąc pod uwagę ogólny stan zdrowia pacjenta i aktualny obraz kliniczny.

Osobę uważa się za chronioną przed chorobą wywołaną przez określony typ wirusa polio, jeśli wytworzyły się u niej przeciwciała neutralizujące specyficzne dla danego typu wirusa. Jednakże miano przeciwciał neutralizujących surowicę, które zapewniałyby ochronę przed infekcją, nie zostało jeszcze ostatecznie ustalone. Doświadczenia na zwierzętach wykazały, że bierny transfer przeciwciał, któremu towarzyszy pojawienie się przeciwciał w umiarkowanych mianach (1:20 i powyżej), zapewnia ochronę przed chorobą. Jednakże wyników tych nie można ekstrapolować na populacje ludzkie, w których krążą dzikie lub szczepionkowe szczepy wirusa polio.

Badania przeprowadzone w latach pięćdziesiątych XX wieku wykazały, że osoby z niskim mianem przeciwciał neutralizujących w surowicy mogą zostać ponownie zakażone dzikim wirusem polio. Zostało to potwierdzone obserwacją 237 osób z naturalną odpornością na polio i mianem przeciwciał neutralizujących wynoszącym 1:40 lub niższym podczas rodzinnych ognisk polio w Luizjanie w latach 1953-1957. Przypadki reinfekcji, potwierdzone czterokrotnym wzrostem miana przeciwciał w surowicy, odnotowano u 98% badanych. Natomiast spośród 36 osób, u których miano przeciwciał neutralizujących wynosiło 1:80 powyżej, przypadki reinfekcji odnotowano jedynie u 33% badanych.

Niedawne badania przeprowadzone w Japonii i Wielkiej Brytanii wykazały, że u osób z niskim mianem przeciwciał neutralizujących w surowicy po szczepieniu może rozwinąć się ponowna infekcja po zakażeniu szczepem szczepionkowym wirusa polio. W Japonii, obserwując 67 dzieci szczepionych dwiema dawkami trójwalentnego PPV przez 5 lat, u 19 dzieci miano przeciwciał przeciwko wirusowi polio typu 1 wynosiło 1:8 lub mniej. Po podaniu permisywnej dawki PPV u 18 z 19 dzieci w tej grupie doszło do ponownej infekcji, na co wskazuje uwolnienie wirusa polio z kałem. Badanie w Wielkiej Brytanii przeprowadzono w grupie 97 dzieci, którym podano nową („rozwiązującą”) dawkę tej samej szczepionki 8–16 lat po trzech dawkach trójwalentnej szczepionki PPV we wczesnym dzieciństwie. U 17 dzieci z tej grupy przed wprowadzeniem nowej dawki szczepionki miano przeciwciał przeciwko wszystkim trzem serotypom wirusa polio było niskie (średnie geometryczne miano przeciwciał mieściło się w przedziale od 1:9 do 1:36). Choć liczba dzieci w tej grupie jest zbyt mała, aby można było wyciągnąć statystycznie wiarygodne wnioski, należy zauważyć, że spośród 8 dzieci, u których nie wystąpiła odpowiedź immunologiczna na nową dawkę szczepionki, u 7 stwierdzono miano przeciwciał neutralizujących wynoszące 1:32 lub wyższe. Jednocześnie u dzieci, które zareagowały serokonwersją na podanie nowej dawki, miano przeciwciał przed szczepieniem było niskie.

Dane te są zgodne z wcześniejszymi badaniami wykazującymi, że dzieci z niskim mianem przeciwciał w surowicy mogą zostać ponownie zakażone szczepem szczepionkowym wirusa polio. Badania te sugerują, że u osób z niskim, ale wykrywalnym mianem przeciwciał w surowicy nie występuje zwiększone ryzyko rozwoju klinicznych postaci polio. Mogą jednak zostać ponownie zakażone wirusem polio i stać się źródłem infekcji dla osób, które nie zostały zaszczepione.

Lokalną barierę dla wirusów polio zapewniają wydzielnicze przeciwciała IgA. Poziom wydzielniczych przeciwciał IgA zapewniający ochronę przed infekcją pozostaje nieznany. Nieznane są również związki pomiędzy mianem przeciwciał w surowicy i wydzielniczymi. Dzieci mogą być odporne na ponowne zakażenie wirusem polio nawet przy braku przeciwciał w surowicy, jeśli mają przeciwciała wydzielnicze w wystarczająco wysokim mianie.
W 1955 r. J. Salk sformułował koncepcję „zwiększonej reaktywności immunologicznej”, która może zapobiegać zgonom z powodu polio nawet po zastosowaniu szczepionek niskiej jakości. W miarę rozwoju tej koncepcji zaproponowano, że nawet po spadku miana przeciwciał neutralizujących poniżej minimalnych wykrywalnych poziomów, pamięć immunologiczna będzie się utrzymywać przez nieokreślony okres czasu, w wyniku czego powtarzana stymulacja immunologiczna szczepionką lub ponowną infekcją skutkowała szybkim i znaczącym wzrostem w mianach przeciwciał. Sugerowano, że ta wtórna odpowiedź immunologiczna na infekcję rozwija się wystarczająco szybko, aby chronić pacjenta przed rozwojem porażennej postaci choroby.

JSalk zasugerował, że odporność na polio na całe życie można wywołać już po podaniu pojedynczej dawki inaktywowanej szczepionki przeciwko polio (IPV), którą należy podać dziecku w wieku od 5 do 7 miesięcy. Jednakże od czasu tej publikacji pojawiły się doniesienia o przypadkach porażenia poliomyelitis u osób, które otrzymały jedną lub więcej dawek IPV o zwiększonej mocy (uIPV). Ponadto stwierdzono, że skuteczność ochronna pojedynczej dawki uIPV (39%) jest prawie równa poziomowi przeciwciał neutralizujących indukowanych przez pojedynczą dawkę tej szczepionki.

notatka
Konsultacja z lekarzem jest kluczem do Twojego zdrowia. Nie zaniedbuj swojego bezpieczeństwa osobistego i zawsze skonsultuj się z lekarzem w odpowiednim czasie.

Poliomyelitis to ostra choroba wirusowa, która może prowadzić do śmierci lub ciężkiego uszkodzenia ośrodkowego układu nerwowego. Masowe szczepienia poczyniły znaczne postępy w walce z tą chorobą. Jednak nadal pozostaje endemiczny w kilku krajach Afryki i Azji. W ostatnich latach w państwach graniczących z Rosją notowano ogniska tej choroby.

Odporność na polio

Posiadanie odporności na polio zmniejsza prawdopodobieństwo zachorowania do minimum. Szczepienia pozwalają organizmowi wykształcić odporność na infekcje. Jednak nawet jeśli zostaną podjęte wszystkie środki, z czasem obrona immunologiczna organizmu może osłabnąć. Odporność trwała rozwija się u osób, które przebyły tę chorobę lub zostały zaszczepione żywą szczepionką.

Aby dowiedzieć się, czy dana osoba ma przeciwciała przeciwko wirusowi polio, wykonuje się serologiczne badanie krwi. Badanie to pozwala określić ryzyko infekcji w przypadku kontaktu z wirusem. Zazwyczaj przed podróżą do regionów, w których zgłaszano przypadki polio, przeprowadza się badanie na obecność przeciwciał.

Gdzie mogę wykonać test na przeciwciała?

Testowanie przeciwciał przeciwko wirusowi polio przeprowadza się w laboratoriach rządowych i komercyjnych. Badanie nie cieszy się dużą popularnością, dlatego nie jest przeprowadzane we wszystkich ośrodkach medycznych. Aby dowiedzieć się, gdzie dokładnie w Twoim mieście można wykonać badanie, skonsultuj się z lokalnym lekarzem lub specjalistą stacji sanitarno-epidemiologicznej.

W instytucjach rządowych badanie wykonuje się we wskazanych przypadkach. Skierowanie na bezpłatne badanie może wystawić specjalista chorób zakaźnych w lokalnej przychodni. W płatnych ośrodkach koszt oznaczenia przeciwciał przeciwko polio waha się od 1000 do 3000 rubli.

Jak wykonać test na obecność przeciwciał przeciwko polio

Do jakościowego i ilościowego oznaczania przeciwciał przeciwko wirusowi polio stosuje się metodę immunoenzymatyczną. Przeciwciała wykrywa się w surowicy lub osoczu. Wynik mieści się w zakresie od 0 do 150 U/ml. Jeśli miano przekracza 12 U/ml, możemy mówić o obecności odporności na infekcję.

Na badanie lepiej przyjść rano, przed pierwszym posiłkiem. U pacjenta z żyły. Uważa się, że do postawienia diagnozy wystarczy 0,5-1 ml krwi. Analiza płatna realizowana jest w ciągu 1-2 dni roboczych, analiza bezpłatna w ciągu dwóch tygodni.