Síntomas de micosis de los pies. Diagnóstico de laboratorio de enfermedades fúngicas de la piel. No se utiliza en el diagnóstico de micosis superficiales.

Las escamas o pelos se colocan sobre un portaobjetos de vidrio (el vidrio debe estar desengrasado) y se llenan con una, dos o tres gotas de una solución al 30% de potasio cáustico o sosa cáustica y se cubren con un cubreobjetos. Durante 2-3 minutos, con un ligero calentamiento sobre la llama de un mechero de alcohol, presionar ligeramente la preparación con un cubreobjetos hasta que
Nube gris al examinar las escamas. El cabello no debe destruirse, sólo se hincha con tal calentamiento. El examen microscópico (aumento de 100 a 200 veces) con un diafragma oscurecido revela elementos fúngicos: esporas o hilos de micelio. Una condición necesaria para el éxito del examen microscópico es la minuciosidad en la obtención de escamas y pelos, que deben extraerse de las zonas afectadas con unas pinzas especiales (pinzas para pestañas). Es necesario prestar atención no sólo al pelo, las costras y las escamas claramente visibles, sino también a los restos de pelo apenas perceptibles (los llamados muñones) y los puntos negros, que se eliminan con un bisturí o una aguja histológica. Nunca hay que contentarse con señalar al paciente las zonas afectadas, el propio médico debe examinar cuidadosamente todo el cuero cabelludo.

En el cabello afectado por tricofitosis, las esporas de hongos están dispuestas en cadena. En la microsporia, las esporas son mucho más pequeñas que en la tiña, no forman cadenas y se encuentran en la parte exterior del cabello. Hay cordones de micelio septado que corren dentro del cabello. El pelo es como si estuviera vestido con una funda y una disputa. En la sarna se observan esporas polimórficas, hilos ásperos y variados y generalmente burbujas de aire (Fig. 48).

En este caso, los hongos no afectan completamente a todo el cabello, pero quedan zonas no afectadas.
Para obtener material de la piel suave, se raspan las escamas. áreas periféricas de la lesión con una cuchara afilada o un bisturí. Es más conveniente raspar las uñas con un bisturí médico afilado (bisturí), quitando secciones pequeñas pero profundas de la superficie interna de la placa ungueal o raspando el polvo de pitiriasis de las placas córneas de la uña.
El material de partida se hierve en un tubo de ensayo con álcali y luego se deja reposar en este tubo de ensayo durante 12 a 20 horas.
Después de esto, el contenido se centrifuga y el sedimento se examina al microscopio (método de N.A. Chernogubov).
Los hongos crecen bien en medios nutritivos artificiales que contienen carbohidratos y sustancias proteicas. Especialmente comunes son el llamado medio original de Sabouraud, el mosto de cerveza, el agar y las verduras.

2. Examen de laboratorio de material patológico.

2.1. Estudios microscópicos

Para detectar los elementos morfológicos del hongo (células de levadura, pseudomicelio, micelio, conidióforos, conidios, formas tisulares de micosis profundas), se examina el material patológico en preparaciones nativas y teñidas.

El material patológico líquido se examina sin teñir en los siguientes líquidos aclaradores: una mezcla de alcohol con glicerina (alcohol etílico 1 parte, glicerina 2 partes, agua destilada 2 partes), solución de Lugol (1 g de yodo cristalino, 2 g de yoduro de potasio, 150 ml de agua), así como en agua o solución salina. Para preparar preparaciones nativas, se aplica una gota de material a un portaobjetos de vidrio usando un asa o una pipeta, luego se aplican 1-2 gotas de líquido limpiador, se cubren con un cubreobjetos y se examinan al microscopio con un aumento bajo de 1:80 (ocular de 10x). y objetivo 8x), en el que se pueden observar cúmulos de células de levadura y pseudomicelio, micelio y otros elementos de los hongos. Con un gran aumento de 1:400, se pueden caracterizar células individuales.

El material patológico denso (piel, escamas de uñas) se coloca en una gota de solución de KOH al 10-20%, se calienta ligeramente sobre la llama de un quemador (para una mejor maceración) hasta que aparecen cristales alcalinos alrededor de la periferia de la gota. Luego se cubre la gota con un cubreobjetos, se presiona ligeramente y se examina al microscopio, primero con un aumento bajo para encontrar la escala y luego con un aumento alto.

En el material del cabello, el manto de esporas que rodea el cabello (ectotrix) o los elementos fúngicos dentro del cabello (endotrix) suelen ser muy claramente visibles. Las lesiones del cabello, así como el tamaño de las esporas, son específicas de diferentes tipos de dermatofitos. Es necesario el diagnóstico diferencial entre estructuras fúngicas y artefactos. Las posibles fuentes de resultados falsos positivos incluyen gotitas de lípidos, burbujas de aire, fibras textiles y el llamado "hongo mosaico". Las gotitas de lípidos pueden parecerse a células de levadura, un hallazgo más común en material mal aclarado. Las fibras textiles suelen estar separadas del material de la epidermis, el cabello o las uñas. Son más grandes que las hifas de los hongos, tienen un grosor desigual y no contienen septos. El “hongo mosaico” es un artefacto que se obtiene durante la cristalización del KOH debido al calentamiento excesivo de las preparaciones. A diferencia de los hongos, no existen divisiones claras en células.

Un paso importante en el diagnóstico de infecciones por hongos es la preparación de preparaciones coloreadas. Cualquier material patológico (frotis, huellas de órganos, centrifugados y, por supuesto, cortes histológicos) debe someterse a tres tipos principales de procesamiento: 1) tinción mediante el método PAS para identificar verdaderos hongos: eumicetos; 2) tinción según el método de Gram o con modificaciones según Gram-Weigert, según Bogolepov, según Brown-Brenna - para identificar la microbiota bacteriana acompañante, para identificar actinomicetos y nocardia; 3) tinción según el método Ziehl-Nielson o modificación según el método Kinyon: para identificar microorganismos resistentes a los ácidos, principalmente para indicación y diferenciación con Mycobacterium tuberculosis, para detectar agentes causantes de lepra, nocardia y levaduras formadoras de esporas.

El método PAS (ácido piódico de Schiff) consiste en identificar polisacáridos neutros en las paredes de los microorganismos. En las paredes de la mayoría de los eumicetos hay un complejo glucano-manano en concentraciones variables, por lo que se produce la coloración.

Los procariotas (bacterias) resultan PAS negativos, incluidos los actinomicetos y la nocardia de interés para el micólogo. Sin embargo, durante la formación de drusas actinomicóticas, se forma el llamado "cemento", que pega el micelio actinomicótico vegetativo en un gránulo, lo que también da una tinción PAS positiva. En este sentido, este método también es aplicable en el diagnóstico de actinomicosis.

La reacción PAS (y su modificación) es el método más importante para diagnosticar formas tisulares de infección por hongos. El método se basa en la oxidación de grupos glicólicos de carbohidratos con ácido periódico o crómico. El ácido periódico oxida 1,2 y 1,4 glicoles a aldehídos y rompe los enlaces entre los átomos de carbono que contienen grupos hidroxilo. Los grupos aldehído también se pueden detectar utilizando el reactivo aldehído de Schiff. In situ, en las paredes del hongo, el complejo de heteropolisacárido se tiñe intensamente de color rojo púrpura (metodología, ver apéndices).

Para suprimir el color de los tejidos circundantes, se utiliza un tratamiento (“contracolor”) con verde claro, amarillo metanilo, etc. En este caso, solo se detectan células fúngicas, lo que es muy útil en la etapa de indicación del patógeno en tejidos o en preparaciones de frotis. Al mismo tiempo, no es posible juzgar la respuesta del organismo y la alteración de los tejidos a dichos fármacos. Siempre es necesario teñir las preparaciones paralelas mediante el método PAS con tinción adicional con hematoxilina.

En la práctica, no solo se utiliza el método PAS en su versión clásica, sino también sus diversas modificaciones: oxidación con ácido crómico (en lugar de ácido yódico): esta es la reacción de Bauer, tinción de Gridley, impregnación con metenamina de plata según Gomory. Método de Grocott. Todos ellos se utilizan con éxito para detectar formas tisulares de hongos y se basan en el mismo principio (técnica; consulte el Apéndice). Tabla 3.

Tabla 3

Propiedades tintóreas de las formas tisulares de los hongos.

(en material patológico, en cortes histológicos)

Micosis oportunistas	Métodos de detección
Candidiasis	Tinción PAS o Gridley
aspergilosis	Hematoxilina y eosina, impregnación de Gomori-Grocott.
cigomicosis	Hematoxilina y eosina
criptococosis	Azul alcián (según el método de Mowry) + reacción PAS + hematoxilina
neumocistis	Tinción según el método Bauer, impregnación según Gomory-Grocott, tinción con tionina
fusarium	Tinción según el método Romanovsky-Giemsa, según el método Wright
escedosporiasis
Tricosporosis	Hematoxilina y eosina, tinción de Romanowsky-Giemsa
Feohifomicosis y cromomicosis.	Hematoxilina y eosina
Micosis patógenas primarias:	Métodos de detección
coccidioidosis	Reacción PAS + hematoxilina
histoplasmosis	impregnación según Gomory-Grocott, tinción según el método Bauer, tinción según el método Romanovsky-Giemsa
Blastomicosis norteamericana
paracoccidiosis	Reacción PAS, impregnación según Gomory-Grocott
Adiaspiromicosis	Hematoxilina y eosina, reacción RAS.
Pseudomicosis:	Métodos de detección
Actinomicosis	Hematoxilina y eosina, tinción de Gram-Weigert
nocardiosis	tinción según el método Ziehl-Neelsen, según el método Kinyon, según el método de Gram.

Si se asume un diagnóstico de criptococosis, es aconsejable utilizar métodos para la detección específica de material capsular. Cr.neoformans que contienen glucosaminoglicanos (polisacáridos ácidos). Para ello se utiliza la tinción con azul alcián (según el método de Mowry), marrón básico (según el método de Shubich) y tinción con mucicarmín. La triple tinción es muy útil: reacción PAS, luego tratamiento con azul alcián y luego hematoxilina. En este caso, es posible diferenciar entre criptococos y formas tisulares de otros hongos con morfología similar.

La descripción del material patológico (preparaciones histológicas) incluye datos sobre la morfología y el tamaño de las formas tisulares de los hongos, sus características tintoriales, la relación con los tejidos del huésped, la presencia de fagocitosis y la determinación de la microbiota que los acompaña.

2.2. Siembra de material patológico y recuento cuantitativo de células en micosis provocadas por hongos levaduras.

La obtención de cultivos de hongos es necesaria para su identificación y determinación de la sensibilidad a los fármacos antimicóticos.

Antes del examen, el esputo se homogeneiza durante 5 a 10 minutos agitándolo con perlas esterilizadas. Si el esputo contiene mucha mucosidad y está mal homogeneizado, se le pueden añadir 1-2 ml de solución salina estéril. El esputo se examina microscópicamente en preparaciones nativas o teñidas. Si la microscopía del esputo con gran aumento muestra elementos fúngicos en el campo de visión, entonces se debe sembrar en diluciones de 1:10, 1:100, 1:1000; si no se detectan elementos fúngicos, el esputo se siembra sin diluir. Las diluciones se preparan en un medio nutritivo líquido (mosto, Sabouraud, agua con peptona al 1%) o en solución salina estéril. De cada dilución se inoculan 0,1 ml con una espátula en 2 tazas de agar de mosto, agar Sabouraud o MPA con la adición de antibióticos antibacterianos: penicilina y estreptomicina, biomicina (100-200 unidades/ml de medio). El medio nutritivo se seca previamente en un termostato a +37 C, porque en presencia de condensado, el crecimiento de colonias puede ser confluente. Los cultivos se incuban en un termostato a + 37 o C durante 48 horas y luego, si hay crecimiento de colonias de levadura del mismo tipo, se cuentan cuantitativamente. El cálculo del número de células de levadura (n) en 1 ml o 1 g del material de prueba se realiza según la fórmula n = авс, donde a es el número promedio de colonias en una placa de Petri, b = 10 con un volumen de inóculo de 0,1 ml, c es el grado de dilución de la excreta (10,100,1000).

Ejemplo de cálculo: en placas con una dilución de 1:1000 crecieron una media de 60 colonias, mientras que 1 ml de excremento en estudio contiene 60 x 10 x 1000 = 600 000 células de levadura.

BAL, líquido de lavado de los bronquios, cavidades maxilares, bilis (porciones A, B, C), jugo gástrico, contenido duodenal y orina se transfieren a tubos de centrífuga y se centrifugan durante 10 a 15 minutos, después de lo cual el líquido sobrenadante se drena rápidamente. A partir del sedimento se preparan preparaciones nativas para microscopía. Si la microscopía revela células de levadura en cada campo de visión, entonces la siembra se realiza en diluciones de 1:100 y 1:1000, de 0,1 ml cada una, en un medio nutritivo sólido y se incuba a 37 C durante 48 horas. no revelar células de levadura, el sedimento sembrado sin dilución. La cantidad de flora de levadura se calcula por 1 ml de material patológico.

Las heces se toman con una cuchara dosificadora en una cantidad de 0,2 g, se colocan en 1,8 ml de mosto líquido y se mezclan bien con una varilla de vidrio. La dilución resultante (1:10) se deja reposar durante 5-10 minutos, se preparan diluciones 1:100, 1:1000 y se inoculan en un volumen de 0,1 ml en 2 placas de Petri con medio agar. La cantidad de flora de levadura se registra por 1 g de heces.

Fluido cerebroespinal. Caracterizar su apariencia (transparente o turbio, incoloro o coloreado, presencia de sangre, sedimento). Frotis microscópicos del sedimento del líquido cefalorraquídeo después de la centrifugación. Se preparan tres preparaciones: nativa - en una gota de solución salina estéril; nativa - en una gota de tinta y un frotis para teñir mediante el método PAS, Gram y azul Alcian según Mowry.

Microscopía fluido cerebroespinal en preparaciones nativas y coloreadas, nos permite determinar la presencia de células de levadura en ciernes y fragmentos de micelio de hongos, o bacterias que causan meningitis purulenta (meningococo, neumococo, Haemophilus influenzae, etc.). Se puede detectar un hongo capsular en la preparación de tinta. Criptococo neoformans. Al mismo tiempo, sobre el fondo gris de la tinta se ven células de levadura en ciernes, rodeadas por un halo claro de la cápsula. Las preparaciones de tinta también pueden contener formas de levadura. Candida albicans que no tienen un halo ligero de la cápsula alrededor de la célula.

Cr. neoformanos También se puede detectar mediante tinción con azul alcián (Mowry). La coloración se produce debido a la detección selectiva del heteropolisacárido capsular característico de Cr.neoformans. Si se detecta flora bacteriana en una preparación teñida de Gram, se realiza un examen más detallado del líquido cefalorraquídeo utilizando métodos bacteriológicos adecuados. Después de la microscopía del sedimento, el líquido se inocula en 3 tazas de agar de mosto seco recién preparado o agar Sabouraud, así como en mosto líquido o medio Sabouraud líquido. Aplicar 2-3 gotas de sedimento líquido en la superficie del agar nutritivo de las tazas 1 y 2 y frotarlo bien con una espátula, e inocular 1 gota en tres puntos de la superficie del agar de la taza 3 para detectar hongos filamentosos. El líquido restante se transfiere a 5 ml de mosto líquido o agar Sabouraud. Los cultivos se incuban en dos condiciones de temperatura: copa 1 - a +37 o C, y copas 2 y 3 y siembra en medio líquido - a +28 o C - +30 o C. Se examinan cultivos a una temperatura de +37 o C a los 2 y 5 días, y a 28 - 30 o C - los días 4, 7 y 10 de crecimiento. Si el quinto día a una temperatura de +37 o C y el décimo día a una temperatura de 28-30 o C no hay crecimiento, sembrar a partir de un medio nutritivo líquido en placas con mosto o agar Sabouraud. Si no hay crecimiento de la flora de levadura, el resultado de la inoculación del líquido se registra como negativo.

ALTA de fístulas. El estudio comienza con la microscopía del material en preparaciones nativas o teñidas. Luego se inocula el material en un medio de agar (mosto o Sabouraud), para lo cual se aplican 2-3 gotas de la secreción en una taza y se esparcen sobre la superficie del agar con una espátula. Los cultivos se incuban durante 48 horas a +37 o C.

DESCARGA de membranas mucosas.

1. Se coloca el tampón en un tubo de ensayo con 2 ml de medio líquido (mosto, medio de Sabouraud o MPB) y se agita durante 5-7 minutos sin empapar el tapón. Preparar diluciones de 1:10, 1:100 e inocular 0,1 ml de cada dilución en dos tazas de agar mosto, agar Sabouraud o MPA. Las inoculaciones en medio sólido y un tubo de ensayo con medio líquido con un hisopo (para enriquecimiento) se incuban a una temperatura de +37 C. Después de 48 horas, se cuenta el número de colonias y se toma el número de células de levadura con un hisopo. aproximadamente determinado. Para ello, se multiplica por 20 el número de colonias de levadura cultivadas y se diluye. Si no hay crecimiento de colonias en las placas, las diluciones tomadas se vuelven a sembrar del medio de enriquecimiento en una placa con agar de mosto.

2. La siembra se puede realizar moviendo un hisopo con rotación sobre la superficie del medio nutritivo. En este caso, no se tiene en cuenta el número de colonias de levaduras, sino que sólo se anota la presencia y la intensidad del crecimiento: colonias únicas, crecimiento significativo o continuo, falta de crecimiento de la microbiota.

SANGRE. Las muestras de sangre venosa para hemocultivo deben diluirse con medio de enriquecimiento al menos 1:5 para que las propiedades bactericidas de la sangre no inhiban el crecimiento de hongos. Inocular 5-10 ml de sangre recién extraída respectivamente en 50-100 ml de medio nutritivo (Sabouraud líquido con glucosa al 2% o medio Kitt-Tarozzi después de su regeneración). Para el cultivo, se puede extraer sangre con un anticoagulante (solución de citrato de sodio al 5% 1:10). Los cultivos se cultivan durante 10 días a +37 o C con siembra de control los días 5 y 10. Con una pipeta esterilizada, se toma el sedimento, del cual se esparcen 3 gotas con un asa bacteriológica sobre la superficie del agar de mosto en placas de Petri. Las copas sin semillas se colocan en un termostato con una temperatura de +37 o C durante 2 a 5 días. En caso de crecimiento de la flora de levadura, se da una respuesta preliminar sobre la presencia del hongo en la sangre y el cultivo se determina para el género y la especie.

Se describe otro método de hemocultivo para detectar micoflora (H. Rieth). En este caso, se inoculan 5-10 ml de sangre en gotas. Aplicar de 40 a 50 gotas de sangre a la superficie de un medio nutritivo denso en una placa de Petri con una pipeta esterilizada, a una distancia de 0,5 cm entre gotas. La siembra se realiza en dos placas de Petri, incubando en una placa a una temperatura de +37 o C y en la otra a temperatura ambiente durante 2-5 días.

PIEZAS de tejido de órganos. Con la pieza de tejido de prueba se imprime una impresión en la superficie de un medio nutritivo denso en una placa de Petri y luego se tamiza con un asa. El mismo trozo de tejido se coloca en 50 ml de medio nutritivo líquido (mosto, medio de Sabouraud). Los cultivos se incuban en un termostato a una temperatura de +37 o C durante 5 días.

Escamas de PIEL y uñas. La siembra de escamas se realiza independientemente de los resultados de la microscopía. Para ello, utilizando una espátula micológica estéril humedecida en el condensado del medio, las escamas se transfieren a un tubo de ensayo sobre agar de mosto inclinado en 2-3 puntos, presionándolas contra la superficie del medio. Dependiendo de la cantidad de material recibido para la investigación, la inoculación se realiza en 2-3 tubos de ensayo. Los cultivos se incuban en un termostato a una temperatura de 28-37 o C hasta por 5 días.

Los métodos de identificación rápida se utilizan ampliamente. C. albicans. Esta especie es capaz de formar tubos germinales y filamentos cortos de pseudomicelio en varias horas (2-4 horas a 37 o C) en suero sanguíneo, clara de huevo, medio de Eagle, medio 199, etc. En la práctica, los laboratorios utilizan suero humano (residuos de reacciones serológicas), donde a 37 o C se forman tubos germinales y después de 24 horas se forman ovillos de pseudomicelio. Por el bien de la apariencia C. albicans este fenómeno es típico en el 90% de los casos. Los brotes se forman con menos frecuencia. C. tropicalis.

2.3. Examen microscópico y cultivo de material patológico para detectar micosis sospechosas causadas por mohos.

El material patológico se puede examinar en preparaciones nativas y teñidas. Los portaobjetos y cubreobjetos destinados a la preparación de microobjetos deben almacenarse en una mezcla de alcohol y éter (1:1) para evitar la contaminación del aire con micobiota. Antes de su uso, los portaobjetos y cubreobjetos se esterilizan sobre la llama de un quemador.

Microscopía de material.

MICROSCOPÍA de esputo. Para preparar preparaciones nativas, el esputo se transfiere a una placa de Petri estéril y se examina sobre un fondo negro para detectar pequeñas partículas (grumos). Los bultos pueden ser purulentos, purulentos-mucosos, purulentos-sangrientos. El tamaño de los grumos varía entre 0,3 y 3 mm de diámetro, su color puede ser gris, amarillento o verdoso. Para preparar microportaobjetos nativos, los grumos individuales se transfieren con agujas de disección o un asa bacteriológica a una gota de alcohol con glicerina o a una gota de solución de KOH al 10%. Cubra con un cubreobjetos, aplique una ligera presión con una aguja de disección y el microscopio con aumentos de microscopio bajos (1:80, ocular de 10x y objetivo de 8x) y altos (1:400, ocular de 10x y objetivo de 40x).

Las preparaciones a partir de aguas de enjuague, exudados, así como bilis, orina, jugo gástrico y licores se preparan a partir de sedimentos nativos o de sedimentos obtenidos por centrifugación (a 1500 rpm durante 5 minutos). El sedimento se transfiere con un asa o una pipeta Pasteur a una gota de solución de KOH al 10% sobre un portaobjetos de vidrio, se cubre con un cubreobjetos y se examina con aumentos bajos y altos del microscopio.

Para preparar preparaciones teñidas, los grumos o gotas de sedimento que se van a examinar se distribuyen uniformemente con agujas de disección o un portaobjetos más pequeño sobre la superficie de un portaobjetos estéril hasta que se obtiene una muestra fina. El frotis resultante se seca al aire, se fija con alcohol metílico o una mezcla de Nikiforov (partes iguales de alcohol etílico al 96% y éter) durante 3 a 5 minutos, o se enciende tres veces sobre la llama de un mechero. El frotis fijado se tiñe mediante el método de Gram, el método PAS y blanco de calcoflúor. La muestra teñida se examina al microscopio utilizando un sistema de microscopio de inmersión (1:900, ocular de 10x, objetivo de 90x).

Material de siembra

Al examinar cualquier material patológico en busca de hongos filamentosos, se inocula en medio sólido de Sabouraud o en mosto con la adición de penicilina y estreptomicina (100-200 unidades/ml de medio). La siembra se realiza en dos repeticiones, teniendo en cuenta las diferentes condiciones de temperatura para el cultivo de hongos filamentosos (+37 o C y +28 o C), siempre en 3 puntos del centro de la copa. El tiempo de incubación es de 4-5 días.

El esputo (grumos seleccionados) se transfiere con un asa bacteriológica o una pipeta Pasteur a la superficie del medio o mosto de Sabouraud. El lugar de siembra está marcado con un lápiz en la parte posterior del fondo de la placa de Petri. Las placas de Petri sembradas se colocan en un termostato con la tapa hacia arriba.

Después de un cierto período de incubación, se examinan las placas sembradas y, si se detecta esporulación, se determina el cultivo del hongo. Si no hay esporulación, el hongo se subcultiva en el medio diferencial de Czapek para su posterior identificación.

El sedimento del agua de lavado de los bronquios, las cavidades maxilares, el exudado, la orina, el jugo gástrico (natural o después de la centrifugación) se toma con una pipeta y se inocula en un volumen de 0,1 ml. Las heces se diluyen 1:10 (1 g de heces y 9 ml de líquido) en medio líquido de Sabouraud o solución isotónica líquida estéril de cloruro de sodio, se emulsionan, se dejan reposar durante 10 minutos para que sedimenten las partículas grandes y el sobrenadante se inocula en un volumen de 0,1 ml. La secreción del conducto auditivo externo y la faringe, tomada con un hisopo, se inocula pasando con cuidado cada lado del hisopo sobre la superficie del medio nutritivo. Se pueden inocular hisopos de hisopos. Para ello, los tampones se colocan en 10 ml de medio Sabouraud líquido o mosto líquido con perlas de vidrio y se emulsionan durante 10 minutos, se inoculan con 0,1 ml de hisopo lavado con césped (según Leshchenko V.M., 1973), o en tres puntos.

Se colocan escamas de piel y uñas sobre la superficie del medio nutritivo, presionándolas con cuidado.

El sedimento de líquido cefalorraquídeo (centrifugar a 1500 rpm durante 5 minutos) se inocula en dos tazas de medio de 0,1 ml y el resto se inocula en un medio de enriquecimiento (medio líquido de Sabouraud o mosto líquido), vertido en tubos de 5 ml. Las placas inoculadas se incuban como de costumbre y los tubos inoculados en el medio de enriquecimiento se incuban a + 28 C durante 10 días.

Si hay crecimiento de un hongo filamentoso en medios sólidos, a partir de esta inoculación se determina su cultivo; si no hay crecimiento en agar Sabouraud o agar mosto, se estudia el hongo a partir del medio de enriquecimiento. Para ello, el cultivo fúngico se subcultiva nuevamente en el medio denso diferencial de Czapek y posteriormente se identifica.

A partir de un trozo de tejido orgánico (biopsia, autopsia) se imprime una impresión en la superficie de un medio sólido y se examina el lado cortado del trozo en tres puntos. Al mismo tiempo, se colocan trozos de tejido en 50 ml de medio nutritivo líquido (Saburo, mosto).

Si se sospecha fungemia, se examina la sangre en dos o tres repeticiones. Inocular 5 o 10 ml de sangre, respectivamente, en 50 o 100 ml de medio líquido Sabouraud con glucosa al 2%. Los cultivos se cultivan a +37 C y +28 C durante 10 días. La primera inspección de los cultivos se lleva a cabo después de 5 días, la segunda, después de 10 días. Al quinto día, se puede observar el crecimiento del hongo filamentoso en forma de un bulto de fieltro en el fondo y una película superficial. El micelio se subcultiva en medio diferencial de Czapek para determinar el género y tipo de hongo. Si no se observa crecimiento de hongos el día 5, los cultivos se conservan hasta por 10 días y si no hay crecimiento, los resultados de la prueba se registran como negativos.

Al sembrar en tres puntos, el crecimiento del hongo en dos y tres puntos se define como diagnósticamente significativo, en un punto, aleatorio. Si es necesario, es posible volver a sembrar.

Identificación de cultivos de moho aislados.

Después de aislar el cultivo, los hongos filamentosos se subcultivan en el medio diferencial de Czapek para determinar el género y, si es posible, la especie.

En la práctica, los laboratorios de diagnóstico suelen utilizar criterios de identificación cultural y morfológica: evalúan el patrón de crecimiento de un cultivo de hongos en medio agar (diagnóstico cultural, macromorfología) y la micromorfología del hongo.

En casos difíciles, se utilizan métodos de diagnóstico adicionales (estudio de la actividad enzimática, características de temperatura del crecimiento de algunos mohos).

El concepto de macromorfología (características culturales) incluye la estructura de la colonia (esponjosa, fieltro, aterciopelada, telaraña, lanuda, irregular, harinosa, etc.), superficie (plana, plegada, irregular, en forma de cúpula, en forma de núcleo, zonal , etc.), pigmentación de la colonia de hongos y del sustrato (varios tonos de verde, azul, violeta, negro, gris, etc.), presencia de exudado en la superficie de la colonia.

La micromorfología de un hongo a partir de un cultivo se estudia mediante preparaciones que, según el género del hongo, se preparan de la siguiente manera: se aplica a un vaso una gota de líquido para preparar las preparaciones (partes iguales de alcohol, glicerina y agua). deslizar; en él se coloca un trozo de micelio, cortado con una espátula micológica de la colonia en forma de triángulo, capturando las partes central y periférica, y el trozo cortado se endereza con dos agujas de disección con cuidado para evitar la formación de burbujas de aire. . En algunos casos (mucor y rhizopus), al preparar el fármaco, el micelio se extiende sobre un portaobjetos de vidrio seco, se le aplica una gota de líquido y se cubre con un cubreobjetos. Las preparaciones se observan bajo un microscopio con aumentos bajos y altos. Se estudia el sustrato y el micelio aéreo, se anota la presencia o ausencia de septos (septos) y se presta atención a la naturaleza de la esporulación: conidióforos con conidios y esporangios con esporangiosporas.

Los conidióforos varían en estructura: desde simples hifas portadoras de esporas hasta formaciones ramificadas parecidas a árboles. Los conidióforos se ubican solos o en grupos, se diferencian notablemente de las hifas vegetativas del micelio, incoloras o coloreadas, ascendentes, erectas, en cascada, rastreras. Pueden consistir en una celda y en un gran número de celdas de diferentes formas y tamaños, cada una de las cuales tiene su propio nombre. Por ejemplo, en el género Aspergillus, el conidióforo consta de las siguientes células: tallo, hinchazón vesicular, esterigmas, cadenas de conidios. En el género Penicillium, el conidióforo tiene la forma de pinceles simples o complejos, que también constan de varias células: ramas de ramio, métulas, fiálidos, cadenas de conidios.

Los hongos del moho Mucor y Rhizopus esporulan en forma de esporangios con endosporangiosporas. El esporangio se encuentra al final del esporangioforo. Los esporangios son esféricos o en forma de pera, la mayoría con una columna especial, que es una continuación del esporangioforo dentro del esporangio. Las esporangiosporas son redondas, incoloras o coloreadas.

Los conidios (esporas) de los hongos del moho son polimórficos (cilíndricos, esféricos, ovalados, elipsoidales, ovoides, en forma de pera, en forma de maza), unicelulares y multicelulares, varían en tamaño y color, solteros, en cadenas o agrupados en cabezas y dispuestos. en racimos. La superficie de los conidios puede ser lisa, rugosa, espinosa, verrugosa, erizada, etc.

Examen microscópico y cultivo de material patológico para micosis causadas por hongos dimórficos.

Con estas micosis, es necesario tener en cuenta el dimorfismo de los patógenos.

El material patológico para infecciones micóticas patógenas primarias (coccidioidosis, histoplasmosis, paracoccidioidosis, blastomicosis norteamericana), así como para cromomicosis, esporotricosis y micetomas, puede ser pus, esputo, raspados de lesiones ulcerosas en la piel y las membranas mucosas, líquido cefalorraquídeo, sangre, piezas biopsiadas de lesiones derrotas.

La dificultad para identificar los agentes causantes de estas micosis es que, debido a su dimorfismo, la microscopía del material patológico revelará formas tisulares del hongo, con mayor frecuencia células de levadura de diversas morfologías o esférulas con endosporas, completamente diferentes de los elementos del mismo. hongo extraído de su cultivo cultivado a una temperatura de +28 - +30 o C en agave Sabouraud normal, con un valor de pH más cercano al ácido. Sin embargo, hay que tener en cuenta que en algunos hongos dimórficos es posible obtener en cultivo una fase levaduriforme de crecimiento fúngico, que a menudo recuerda a su forma tisular, pero cuando se cultiva en medios ricos en proteínas con una reacción ligeramente alcalina (pH = 7,6 - 7,8 ), a una temperatura de 37 o C.

Lo anterior se aplica a las setas: Histoplasma capsulatum, Blastomyces dermatitidis, Paracoccidioides brasiliensis, Coccidioides immitis Y Sporothrix schenckii.

El diagnóstico de laboratorio de las micosis causadas por los hongos aquí mencionados se basa en la detección de formas tisulares en material patológico mediante microscopía, el aislamiento del cultivo del patógeno y su identificación mediante características culturales y morfológicas.

El examen microscópico se lleva a cabo en preparaciones sin teñir sobre un portaobjetos de vidrio en una gota de una solución al 10% de álcali cáustico o una mezcla de alcohol y glicerina en volúmenes iguales o en frotis teñidos (Tabla 3).

La inoculación del material patológico se realiza en los medios nutritivos antes mencionados en placas de Petri utilizando una espátula bacteriológica según el método generalmente aceptado.

2.5. Examen microscópico y cultivo de material patológico para dermatomicosis (queratomicosis y dermatofitosis).

El objeto del estudio son las micosis superficiales, que afectan únicamente a la capa de queratina de la epidermis, y los dermatofitos, que afectan la piel y sus apéndices (cabello, uñas), cuyos agentes causantes son hongos relacionados con el género. Trichophyton, Microsporum y Epidermophyton.

La investigación micológica en laboratorio incluye los mismos pasos que para otras micosis: microscopía del material y obtención de un cultivo puro al sembrarlo. La recolección adecuada de material influye en gran medida en el éxito de la microscopía y la adquisición de cultivos.

El material patológico se examina lo antes posible después de su recolección. Primero se divide en tres partes: para microscopía, cultivo y reexamen. La microscopía de material patológico es el método más sencillo y rápido para establecer la presencia de un hongo en los tejidos. El material triturado se coloca en el medio de un portaobjetos de vidrio en una gota de solución de KOH al 10-20% y se calienta ligeramente sobre la llama de una lámpara de alcohol hasta obtener un borde blanquecino a lo largo del borde de la gota, cubierto con un cubreobjetos. y se deja durante 5-10 minutos (pelo, escamas de piel) y 30 - 40 minutos (uñas) para maceración y clarificación; el material se puede procesar sin calentar, para ello se deja la preparación en una solución de KOH al 20% durante 30-60 minutos.

Microscopía primero con microscopio de bajo aumento y luego con alto aumento.

Es necesario realizar un cultivo para aislar e identificar el patógeno. El material inoculado se tritura lo más posible y se inocula en cantidades mínimas en agar inclinado en tubos de ensayo en 2-3 puntos a una distancia de 1-2 cm, al menos 2-3 tubos de ensayo (pelo) y 4-5 tubos de ensayo. (escamas de piel y uñas) se inoculan con el material de una muestra. Para el aislamiento primario de dermatofitos, es mejor utilizar medio de agar Sabouraud estándar con 2-4% de glucosa o agar de mosto que contenga antibióticos antibacterianos (penicilina 50 μg/ml + estreptomicina 50 μg/ml o biomicina 200 unidades/ml) y anti- antibiótico antimoho actidiona (cicloheximida) 0,1 - 0,5 mg/ml. Actidiona no afecta el crecimiento de dermatofitos e inhibe muchos mohos, así como especies de Candida y Cryptococcus.

Los cultivos se incuban a 22-30 o C (mejor a 28 o C). La aparición de crecimiento de dermatofitos se observa del 4 al 12 día de incubación en los puntos de siembra a lo largo de los bordes del material introducido. Si no hay crecimiento dentro de los 30 días, los resultados del cultivo se consideran negativos. En condiciones óptimas, los cultivos primarios de muchos dermatofitos se pueden identificar entre 7 y 10 días después de la siembra, pero los cultivos deben monitorearse durante 20 a 30 días. Los cultivos primarios crecen relativamente lentamente y cuando se utilizan medios sin antibióticos, los dermatofitos pueden ser suprimidos por bacterias o mohos de crecimiento más rápido. Cuando aparece crecimiento en la siembra primaria, es necesario tamizar desde el borde de la colonia a un medio diferencial nuevo para obtener un cultivo puro, que servirá como material para identificar el dermatofito aislado.

2.6. Métodos serológicos para el diagnóstico de micosis.

La importancia de los métodos serológicos consiste principalmente en lo siguiente: identificación de pacientes con probables micosis invasivas; confirmación de la naturaleza micótica de las enfermedades alérgicas; examen de detección de grupos con riesgo de desarrollar micosis.

Los resultados falsos positivos de las pruebas serológicas son posibles en caso de micotransporte y en personas sanas sensibilizadas con antígenos fúngicos; las pruebas negativas pueden ocurrir en casos de inmunodeficiencia incluso en el contexto de una micosis invasiva en curso.

Métodos de rutina generalmente aceptados para el diagnóstico serológico de micosis.
descrito con suficiente detalle / P.N. Kashkin, V.V. Lisin. "Práctico
guía de micología médica", Medicina, 1983/. Sin embargo, en los últimos tiempos
Durante décadas se han producido cambios notables en los enfoques metodológicos /Elinov N.P.,
2001/. Se propusieron procedimientos originales para detectar antígenos y anticuerpos.
algunos metabolitos de células fúngicas; Se han creado pruebas de diagnóstico especiales.
kits (“ballenas”), por ejemplo Pastorex ® Candida, para determinación en
Reacciones de "aglutinación de látex" de epítopos oligomanosos repetidos de antígenos.
estructuras/expresadas en un gran número de macromoléculas
champiñón; para la determinación del antígeno de Candida manano, p.e.
suero de un paciente con candidemia, se puede utilizar el kit Platelia ® Candida.
Usando el primer conjunto, el umbral para determinar estructuras antigénicas es 2,5 ng/ml, usando el segundo junto con el método _____________, el umbral para determinar - 0,5 ng/ml.

Los agentes causantes de las micosis identificados con mayor frecuencia durante las pruebas de laboratorio de diversos materiales clínicos.

Sangre

• cándida
• criptococo
• Los patógenos miceliales rara vez se detectan en los análisis de sangre, excepto fusarium

Fluido cerebroespinal

• cándida
• criptococo

Secreción de pus por abscesos, úlceras, etc.

• cándida
• criptococo
• fusarium
• Aspergilo
• Esporotrix

Secreciones respiratorias (esputo, líquido BAL, biopsia por cepillo bronquial, aspirado transtraqueal)

• Aspergilo
• cándida
• criptococo
• Mucor
• Scedosporio
• Rizopus
• Esporotrix

Alta, material de biopsia de heridas.

• Aspergilo
• cándida
• fusarium
• Rizopus

Otros biosustratos

• cándida
• criptococo

Material del tórax y de la cavidad abdominal; líquido sinovial

• Aspergilo
• cándida
• fusarium

Cuerpo vitrioso

• cándida
• Aspergilo

IV. Criterios para el diagnóstico de micosis sistémicas: parámetros clínicos y de laboratorio del diagnóstico final.

Esofagitis

• Presencia de cambios característicos durante la esofagoscopia.
• identificación del hongo durante el cultivo del material de biopsia
• presencia de pseudomicelio en frotis teñidos o signos de crecimiento fúngico invasivo en el material de biopsia

Neumonía

Neumonía debido a Candida spp.

• cambios infiltrativos agudos en una radiografía de tórax, que coinciden con manifestaciones clínicas de neumonía fúngica
• identificación Candida spp. Cuando se cultiva material del tracto respiratorio inferior obtenido de biopsia transtorácica, biopsia transbronquial, hallazgos de biopsia pulmonar o biopsia guiada toracoscópicamente
• identificación de pseudomicelio en material de biopsia adecuadamente teñido

Neumonía debido a Aspergillus spp., Fusarium spp., Scedosporium apiospermum

• Identificación de elementos fúngicos en tejidos y cultivo positivo.
• Infiltrados persistentes o progresivos en los pulmones, resistentes a la terapia con antibióticos.
• detección de uno de estos patógenos mediante cultivo de esputo o BAL
• signos clínicos de neumonía (tos, dificultad para respirar, dolor “pleural”, sibilancias, ruido de fricción pleural)
• cambios característicos en una radiografía o tomografía computarizada de los pulmones:

Cambios infiltrativos subpleurales, nodulares, de ángulo agudo o cavernosos.

Síntoma de “halo” en la tomografía computarizada de los pulmones

Progresión de cambios infiltrativos con formación de caries y aparición del síntoma “falciforme”.

• ausencia de otros patógenos al cultivar líquido BAL que podrían causar los cambios presentados en los pulmones

Sinusitis

• signos clínicos y radiológicos de sinusitis aguda
• signos microscópicos y culturales de micosis al examinar material de aspirado o biopsia

Infección del tracto urinario

• detección de >1x10 UFC/ml con cultivos repetidos de orina recolectada adecuadamente

fungemia

• Detección única de hongos durante el hemocultivo durante un período de aumento de la temperatura corporal > 38 o C

Micosis aguda diseminada

• Fungemia en combinación con signos culturales o histológicos de daño a tejidos profundos (incluido el tejido subcutáneo) o identificación del patógeno a partir de dos biosustratos normalmente estériles.

Endoftalmitis

• signos oftalmológicos de endoftalmitis
• identificación del patógeno en los ojos, la sangre u otros focos de diseminación

Absceso u osteomielitis

• signos radiográficos/CT/MRI de osteomielitis
• identificación del patógeno en material de aspirado o biopsia

Meningitis

• determinación de cambios en el LCR que confirman la presencia de inflamación y detección de hongos mediante microscopía del LCR
• Detección de hongos mediante cultivo de LCR o determinación de antígenos. Cr.neoformans, Candida y Aspergillus en el LCR

Candidiasis crónica diseminada (hepatolienal)

Posible

• Fiebre persistente o intermitente después del final de un período de neutropenia en combinación con signos característicos de daño hepático, bazo o renal.

Probado

• lo anterior en combinación con la siembra Candida spp. de la sangre antes de la aparición de signos de daño al hígado, el bazo o los riñones o con signos histológicos culturales de candidiasis en el material de biopsia de las lesiones

V. CAUSAS DE LAS INFECCIONES POR HONGOS

Existen diferentes principios para clasificar las infecciones por hongos y sus agentes causantes. Nos parece que prácticamente lo más sencillo y conveniente es dividir los hongos patógenos en 5 grupos principales:

1. Patógenos de micosis superficiales;

2. Patógenos de la dermatomicosis;

3. Patógenos de micosis subcutáneas;

4. Agentes causantes de micosis profundas (micromicetos patógenos primarios, agentes causantes de infecciones oportunistas).

5. Patógenos de la pseudomicosis.

* Cabe destacar que los patógenos de los tres primeros grupos en pacientes inmunodeprimidos pueden provocar fungemia y lesiones multiorgánicas.

En las siguientes secciones, damos una descripción de los agentes causantes de las micosis según un esquema único: su nombre según la nomenclatura aceptada, una lista de sinónimos, características macroscópicas de las colonias en medios nutritivos y características microscópicas de los elementos fúngicos visibles bajo un microscopio en preparaciones nativas y de colonias. También se proporcionan datos sobre la distribución de los hongos en la naturaleza y se enumeran las enfermedades que causan.

El diagnóstico de laboratorio de las enfermedades fúngicas se basa en la detección del hongo y la determinación de su género y tipo. Consta de dos etapas principales: estudios microscópicos y culturales.

Examinación microscópica

El examen microscópico es el primer e importante eslabón para confirmar el diagnóstico preliminar.

El éxito del examen microscópico depende en gran medida de la correcta recogida del material patológico. Para el examen microscópico, es necesario seleccionar cabello que tenga signos visibles de daño fúngico (opaco, roto, engrosado). El vello que ha cambiado de apariencia se elimina con unas pinzas de depilación. Para detectar pelos individuales afectados por microsporia, puede utilizar una lámpara fluorescente con filtro Wood (brillo azul verdoso).

Al seleccionar el cabello afectado, se pueden utilizar una serie de características adicionales. El cabello afectado por microsporums tiene una vaina gris de esporas ubicadas externamente en la base. En el caso de la tricofitosis crónica, en el folículo se encuentran pelos cortos, grises y afectados, curvados en forma de “comas” y “signos de interrogación”, así como “puntos negros” (pelos negros engrosados ​​y rotos en la boca del folículo). espesor de las escamas. En caso de tricofitosis infiltrativa-supurativa, para el examen microscópico, además del cabello afectado, se puede utilizar pus y costras de la lesión.

De las lesiones cutáneas con microsporia, tricofitosis y micosis de los pliegues inguinales, se deben raspar las escamas de la zona periférica de la lesión, donde el hongo se encuentra en mayores cantidades. El vello se raspa junto con las escamas de piel.

Al examinar el cabello afectado con microsporia y tricofitosis, se presta atención a la ubicación de las esporas (dentro o fuera del cabello) y a su tamaño. Estos datos permiten en algunos casos aclarar el diagnóstico, la forma clínica de la micosis y la epidemiología.

En la forma interdigital de micosis de los pies, para el examen microscópico se utilizan escamas de piel y restos del estrato córneo macerado. El área de la uña que se debe tomar para un examen microscópico depende de la forma de onicomicosis. Con una forma superficial, es necesario raspar la superficie de la placa ungueal.

En la forma distal-lateral más común, se raspa el lecho ungueal, debajo de la placa (hiperqueratosis subungueal) con una parte cortada de la placa ungueal alterada. Para la forma subungueal proximal, se utilizan métodos especiales para recolectar material (perforación de ventanas con un taladro, biopsia de uñas).

En la forma escamosa-hiperqueratósica de micosis de los pies, las escamas se desprenden de la superficie plantar. En la forma Dishidrótica de micosis de los pies, se cortan las cubiertas de las ampollas para examinarlas.

Técnica de preparación de material para el examen microscópico del cabello. . Se aplica una pequeña gota de KOH al 30% a un portaobjetos de vidrio y se coloca en él el cabello afectado con una aguja de disección. La gota con el cabello se calienta ligeramente sobre la llama de una lámpara de alcohol hasta que aparece vapor sobre la superficie del líquido o cae un borde de cristales a lo largo del borde de la gota de álcali. Después de cubrir con un cubreobjetos, se elimina el exceso de álcali con papel de filtro. El fármaco se examina primero con un microscopio de aumento bajo y luego con un aumento alto (x 400).

Escamas de piel y uñas . Se colocan finas escamas de uñas para examen microscópico en un portaobjetos de vidrio en una gota de KOH al 30% y se calientan, agregando álcali a medida que se evapora. La muestra enfriada y sin teñir se cubre con un cubreobjetos y se examina al microscopio.

Se colocan escamas gruesas de piel y uñas en un tubo de centrífuga y se llenan con unas gotas de KOH al 30%. El tubo de ensayo se calienta hasta que hierva y se deja durante 20 a 30 minutos. Parte del material ablandado se transfiere a un portaobjetos de vidrio con una varilla de vidrio, presionando con una cerilla hasta que aparece una "nube", después de lo cual se examina bajo un microscopio.

Pus . Se mezcla una gota de pus con una gota de alcohol y mitad y mitad de glicerina y se examina en una preparación nativa.

Diagnóstico cultural

Se realizan diagnósticos culturales para aclarar definitivamente el diagnóstico y aclarar la epidemiología. Implica la obtención de un cultivo del hongo seguido de un examen microscópico.

El cabello afectado, las escamas (piel y uñas), las ampollas o el pus se inoculan en un medio nutritivo artificial. Por la aparición de colonias gigantes en placas de Petri, uno puede hacerse una idea del género del patógeno (Microsporum, Trichophyton, Epidermophyton), su tipo (L. canis o ferrugineum, T. violaceum, verrucosum o gypseum). La aclaración final del género y especie del hongo sólo es posible mediante un examen microscópico del cultivo resultante.

Diagnóstico de laboratorio de candidiasis superficial.

Para las pruebas de laboratorio de hongos similares a las levaduras, se requiere material fresco. Para el examen microscópico, dependiendo de las manifestaciones clínicas y la localización de las lesiones, se pueden utilizar descamaciones de la piel, raspaduras de las uñas, una gota de pus debajo del pliegue ungueal, depósitos blanquecinos de las zonas afectadas de la mucosa oral y genitales externos, paredes vaginales, Se pueden tomar raspados de las membranas mucosas de la uretra, así como lavados del borde rojo de los labios, áreas afectadas de la piel de pliegues grandes y pequeños.

Dependiendo de la ubicación de la lesión y la naturaleza de las manifestaciones clínicas, el material para la investigación se toma con un hisopo de algodón, bisturí, asa, etc. Se preparan escamas de piel y uñas, restos de epidermis y raspados de mucosas. tratado con KOH al 30%. El material patológico se examina en preparaciones teñidas o sin teñir.

En el primer caso, el material se mezcla con una cantidad igual de alcohol y glicerina. Cuando se tiñen con Gram, las células de levadura y el pseudomicelio aparecen de color púrpura oscuro, con Ziehl-Neelsen, con azul y con Romanovsky-Giemsa, con color rosa violeta. En este caso, una característica distintiva de una célula de levadura está en ciernes: el descubrimiento de una figura de "reloj de arena". La toma de material de la membrana mucosa de la cavidad bucal, los genitales, de la piel del borde rojo de los labios, de las comisuras de la boca, de la piel de los pliegues grandes y pequeños se realiza con un hisopo esterilizado. Después de tomar el material, el hisopo se coloca en otro tubo esterilizado con mosto líquido. El tubo de ensayo con el hisopo se envía al laboratorio de microbiología. El aislamiento de un cultivo puro de hongos levaduriformes del género Candida se lleva a cabo según métodos microbiológicos generalmente aceptados.

Según los científicos, el 70% de la población mundial presenta síntomas de micosis en los pies. Esta enfermedad afecta los pliegues interdigitales y la piel de las plantas de los pies. La causa de la enfermedad es un hongo que inicialmente se encontraba sólo en áreas limitadas del sudeste asiático y África. La Primera Guerra Mundial, que provocó migraciones masivas de personas y el deterioro de las condiciones sanitarias, provocó la propagación de la enfermedad por todo el mundo.

¿Qué causa la micosis de los pies?

El principal agente causante de la enfermedad es Trichophyton rubrum. La infección puede ser causada por T. mentagrophytes y Epidermophyton floccosum. Los hongos del género Candida y los microorganismos del moho pueden convertirse en microbios patógenos con mucha menos frecuencia.

Los factores de riesgo más importantes de la enfermedad:

• diabetes;
• estado de inmunodeficiencia (SIDA);
• pie plano;
• aterosclerosis de arterias periféricas;
• Venas varicosas de las extremidades inferiores.

Condiciones externas que favorecen el desarrollo de la infección:

• zapatos cerrados no absorbentes;
• lesiones en los pies (callos, abrasiones);
• hacer deporte.

Los síntomas del pie de atleta ocurren con mayor frecuencia en hombres adultos. Los niños rara vez se enferman.

Síntomas de micosis de los pies.

A medida que la enfermedad avanza, aparece descamación y sequedad en la piel, picazón y ardor, especialmente en los espacios entre los dedos, y aparición de grietas dolorosas debajo de los dedos. En ocasiones, los primeros síntomas de la micosis del pie son ampollas que estallan con la formación de erosiones. A menudo, la enfermedad se presenta en forma borrada, que se manifiesta solo por una ligera descamación, que recuerda a la harina, en los pliegues entre los dedos.

Hay 4 formas clínicas de la enfermedad.

La variante interdigital o intertriginosa es la más común. La piel entre los dedos se enrojece, se agrieta, la capa superficial se moja y se pela. Estos signos se extienden a la planta del pie y van acompañados de picazón y ardor intensos. A menudo se asocia inflamación bacteriana.

La variante escamosa-hiperqueratósica se asocia con un engrosamiento y agrietamiento severo de la piel. La suela se pone roja y se pela. En la zona del talón aparecen grietas profundas y dolorosas; el picor suele ser poco característico. Suele ser una lesión bilateral y también se denomina “pie de mocasín”.

La variante Dishidrótica se acompaña de la aparición de múltiples pequeñas ampollas dolorosas y que pican. Se fusionan entre sí formando grandes burbujas. Las cubiertas de las ampollas estallan, dejando al descubierto una superficie brillante, vulnerable y dolorosa: la erosión. Las manifestaciones externas se parecen al eczema.

La inflamación microbiana a menudo se asocia con agrandamiento de los ganglios linfáticos inguinales, fiebre, dolor en las piernas, náuseas, dolor de cabeza y otros signos de intoxicación. En la forma Dishidrótica, a menudo se produce una alergia a los hongos: el eccema micótico. Se acompaña de erupciones en zonas del cuerpo que no están infectadas con el hongo, por ejemplo, en las manos.

La versión borrada suele pasar desapercibida. Se acompaña de una ligera descamación de la piel entre los dedos mayor, índice y/o anular y meñique del pie. No hay picazón.

Signos de micosis de los pies.

Los diferentes tipos de micosis de los pies pueden ser enfermedades independientes o ocurrir como parte de una infección fúngica general del cuerpo. A veces, el signo "dos pies, una mano" ocurre con la participación de estos órganos. Puede producirse onicomicosis, una destrucción fúngica de la uña. A veces, los pliegues inguinales se ven afectados al mismo tiempo.

Los principales síntomas y tratamiento de la micosis del pie se presentan en la foto:

Peladura de piel

Piel seca y agrietada

Burbujas y erosiones

Diagnóstico

Un dermatólogo experimentado podrá reconocer los diferentes tipos de micosis de los pies durante el primer examen. Sin embargo, es necesario un examen microscópico para confirmar el diagnóstico. Para ello se utilizan escamas de la lesión, se raspan con una espátula y se tratan con una solución alcalina. El material resultante se examina bajo un microscopio y se detectan patógenos.

La microscopía directa es rápida, barata y fácil de realizar, pero no puede determinar qué tipo de hongo está causando la enfermedad. Por lo tanto, el material se inocula en un medio nutritivo, seguido de un examen cultural del material resultante. Sin embargo, obtener un cultivo del hongo después de detectarlo al microscopio solo es posible en un 20-6% de los casos.

Tipos de tratamiento para la micosis de los pies.

Los medicamentos para el tratamiento de enfermedades fúngicas deben ser recetados por un dermatólogo. Por lo general, el tratamiento de la micosis del pie se realiza con medios externos.

Uno de los fármacos eficaces para esta enfermedad es el clotrimazol. En nuestra tienda podrás comprarlo a bajo coste. Un medicamento en forma de loción, clotrimazol para uñas y piel, suprime la proliferación de hongos en el espesor del estrato córneo del epitelio. Si los pliegues interdigitales están afectados, la loción se aplica diariamente sobre la piel limpia y seca de los pies durante una semana, o más si es necesario.

En caso de queratinización severa y agrietamiento de la piel, primero es necesario eliminar los depósitos de piel muerta. Esto requiere el uso de medicamentos exfoliantes. Por ejemplo, se prescriben ungüentos salicílicos, cremas con ácido láctico o urea. Después de eliminar los depósitos córneos, la loción se usa 1 o 2 veces al día.

En la variante Dishidrótica, el primer paso es reducir el llanto. Para ello se utilizan lociones con tanino o ácido bórico. En casos graves, se añaden glucocorticoides al tratamiento. Luego aplique la loción de Clotrimazol según el régimen habitual.

Si el pie está desgastado, trátelo con loción una vez al día durante 7 a 10 días, pero la duración del tratamiento es individual y la determina el médico.

Terapia sistémica

El pie de atleta prolongado o recurrente puede requerir medicamentos antimicóticos orales. Pasan del tracto gastrointestinal al torrente sanguíneo y luego a la piel, donde destruyen los hongos. Se utilizan tres medicamentos principales:

• fluconazol;
• itraconazol;
• terbinafina

La duración de la toma de estos medicamentos es de al menos un mes. Su precio es bastante elevado. Por tanto, prevenir la micosis del pie siempre es más fácil y rentable que curarla.

Los medicamentos sistémicos se recetan especialmente si el hongo ha afectado no solo a la piel, sino también a las uñas. En este caso, los medicamentos se acumulan en la parte en crecimiento de la placa ungueal y una uña sana vuelve a crecer gradualmente. Para mejorar el efecto, la uña se puede extirpar quirúrgicamente por completo, después de lo cual se restaura sin hongos.

En pacientes de edad avanzada suele ser necesaria una combinación de extracción de uñas y tratamiento antimicótico local y sistémico. En este grupo de pacientes, las uñas a menudo crecen lentamente y la circulación sanguínea en los pies se ve afectada, por lo que se requiere una gran dosis de medicamentos y un tratamiento prolongado para lograr el efecto.

Tratamiento con remedios caseros.

Usar únicamente recetas de medicina tradicional no ayudará a eliminar el hongo. Sin embargo, tal adición a la terapia convencional acorta el curso del tratamiento y acelera la recuperación.

Es útil tomar baños de pies tibios todas las noches durante 10 minutos, luego acariciar bien los pies con una toalla, especialmente entre los dedos, y aplicar una loción medicinal de clotrimazol para las uñas y la piel. Ingredientes de baño útiles que alivian la inflamación y reducen la picazón:

• celidonia y hierba de San Juan;
• raíces de bardana;
• hierba de ajenjo;
• hojas de eucalipto;
• agujas de abeto;
• posos frescos de café molido preparado;
• sal;
• una mezcla de jabón para lavar rallado, bicarbonato de sodio, permanganato de potasio y mostaza en polvo.

Las zonas afectadas se pueden lubricar con alquitrán de abedul o con una pomada preparada por uno mismo a base de 100 gramos de mantequilla mezclada con una cabeza de ajo machacada. También es útil el propóleo, que se puede vendar en las uñas doloridas.

Es útil hacer compresas a partir de remedios naturales. Primero se dejan entre 1 y 2 horas y, si se tolera, toda la noche. Se utilizan los siguientes ingredientes:

• pulpa de calabaza;
• semillas de rábano negro trituradas;
• menta, molida con sal;
• Hojas de bardana o serbal, ligeramente suavizadas con un rodillo.

Es eficaz lubricar las zonas afectadas con los jugos de algunas plantas y otros remedios naturales:

• solución alcohólica de propóleo;
• jugo de cebolla o ajo;
• jugo de celidonia;
• aceite de árbol de té.

La prevención de enfermedades

Para evitar la micosis o prevenir su recaída es necesaria una prevención sencilla pero constante:

• en verano, use zapatos transpirables hechos de material natural;
• al visitar piscinas, baños, duchas públicas, use pantuflas de goma individuales;
• no use zapatos de otra persona, por ejemplo, cuando esté de visita;
• Utilice únicamente su propio equipo de higiene: tijeras, piedra pómez, lima de uñas.

Para evitar una reinfección, las plantillas y las superficies internas de los zapatos deben tratarse periódicamente con desinfectantes. Una receta popular muy conocida es una solución de esencia de vinagre, pero tiene un olor acre y desagradable.

Los médicos recomiendan usar el medicamento Mikospray, que no solo tiene un efecto antifúngico sino también antibacteriano. Mycospray es excelente no solo para tratar los zapatos, sino también para aplicarlo en los pies antes de visitar lugares públicos para protegerlos.

Los residentes de Moscú y sus regiones pueden comprar medicamentos para el tratamiento de la micosis del pie y su prevención en nuestra tienda en línea. Tienen eficacia y seguridad comprobadas. Se recomienda su uso a todas las personas que no quieran infectarse con hongos en los pies o deshacerse de ellos rápidamente.

Diagnóstico de precisión de micosis invasivas. no es fácil. Esto se explica no sólo por las dificultades para obtener un cultivo de hongos, sino también para interpretar los resultados de la investigación, ya que los hongos, tanto levaduriformes como filamentosos, pueden colonizar las mucosas y contaminar las muestras estudiadas. En este sentido, el diagnóstico de micosis invasivas se basa en un enfoque integrado, que incluye no solo los resultados de los estudios micológicos (culturales) y serológicos (determinación del antígeno fúngico), sino también los síntomas clínicos de la infección por hongos, datos de métodos de investigación auxiliares ( computadora o resonancia magnética, ultrasonido).

Grupo de Cooperación Europeo-Americano para el estudio de micosis invasivas Se han desarrollado criterios para el diagnóstico de micosis invasivas en pacientes inmunocomprometidos. Fueron presentados en 2001 en la Conferencia Internacional sobre Antimicrobianos y Quimioterapia (ICAAC, Chicago) y en 2002 en forma impresa. Se han definido criterios de micosis invasiva comprobada, probable y posible, que se recomiendan para su uso en estudios clínicos y epidemiológicos.

Micosis invasiva comprobada causada por hongos filamentosos: detección de micelio fúngico en biopsias o aspirados durante un examen histológico o citológico o aislamiento de un cultivo a partir de muestras obtenidas en condiciones asépticas de una lesión normalmente estéril, que, según los resultados de estudios clínicos y radiológicos, se asocia con infección, con la excepción de los estudios de orina y mucosas.

Micosis invasiva comprobada causada por hongos de levadura: detección de células de levadura (los hongos del género Candida pueden formar pseudomicelio o micelio verdadero) en biopsias o aspirados, con excepción de muestras de mucosas, o aislamiento de cultivos a partir de muestras obtenidas en condiciones asépticas de una lesión normalmente estéril, que según a los resultados de los exámenes clínicos y radiológicos relacionados con la infección, con excepción de la orina, las muestras de los senos nasales y las mucosas, o la detección mediante microscopía y tinción específica (en una gota de tinta china, tinción de mucicarmín) de células de levadura o una Antígeno positivo de Cryptococcus spp. en el líquido cefalorraquídeo.

Fungemia causada por hongos filamentosos.: aislamiento de hemocultivos de hongos, a excepción de Aspergillus spp. y Penicillium spp., incluido Penicillium marneffei, en combinación con síntomas clínicos de un proceso infeccioso compatible con el patógeno aislado.

Fungemia causada por hongos de levadura.: aislamiento en hemocultivo de Candida u otros hongos levaduriformes de pacientes con signos clínicos de infección asociados con este patógeno.

Complejo de estudios de diagnóstico de micosis invasivas.

Biomaterial en estudio	Indicaciones, medios utilizados, significado.
Sangre	Indicaciones: fiebre persistente (4-5 días o más) durante el tratamiento con antibióticos de amplio espectro; Segunda "ola" de fiebre durante la terapia con antibióticos. Recoger sangre de una vena en viales para bacterias aeróbicas* o en un medio selectivo para hongos, repetido (2-3 veces al día con un intervalo de 1 hora) Importancia diagnóstica: aislamiento de hongos levaduriformes, interpretación cuidadosa al aislar hongos filamentosos, a excepción de Fusarium spp.
catéter venoso	Indicaciones: aislamiento de hongos de levadura de la sangre El catéter venoso central o periférico se retira en todos los casos de aislamiento de levadura de la sangre. Para la investigación micológica se utiliza un tramo distal del catéter extraído asépticamente de 5-6 cm de largo, el estudio se realiza de forma semicuantitativa (método Maki) o cuantitativo en medio de Sabouraud. Importancia diagnóstica: aislamiento de levaduras en un estudio semicuantitativo de 15 UFC o más, en un estudio cuantitativo - 103 UFC/ml o más para confirmar el diagnóstico de infección asociada al catéter o infección del catéter
Secreción del tracto respiratorio superior, esputo, lavados de tráquea, bronquios, líquido de lavado broncoalveolar.	Indicaciones: sospecha de micosis causadas por hongos filamentosos o Cryptococcus neoformans; fiebre prolongada durante la terapia con antibióticos de amplio espectro y neutropenia Microscopía de muestras con blanco de calcoflúor (detección de micelio o pseudomicelio); siembra en medio de Sabouraud; determinación del antígeno de Aspergillus en el líquido de lavado broncoalveolar en presencia de lesiones en los pulmones características de la aspergilosis invasiva Importancia diagnóstica: aislamiento de hongos filamentosos o Cryptococcus neoformans
Fluido cerebroespinal	Indicaciones: síntomas de meningitis; detección de una lesión en el cerebro mediante tomografía computarizada o resonancia magnética; Síntomas "cerebrales" debido a fiebre y neutropenia. Microscopía con blanco de calcoflúor, en una gota de tinta; determinación de Aspergillus, antígeno de Cryptococcus; siembra el miércoles de Sabouraud Importancia diagnóstica: detección de hongos, tanto levaduriformes como filamentosos; antígeno positivo
Biopsias, aspirados, líquido peritoneal, líquido pleural.	Indicaciones: signos clínicos y/o radiológicos de micosis invasiva; Fiebre durante el tratamiento con antibióticos de amplio espectro. Microscopía con blanco de calcoflúor, cultivo en medio de Sabouraud. Importancia diagnóstica: Detección de hongos, tanto levaduriformes como filamentosos.

* La frecuencia del aislamiento de hongos de la sangre fue idéntica cuando la sangre inicial se extrajo en ambos viales con medio de cultivo bacteriano y con medio fúngico selectivo. El estudio se realizó utilizando un analizador bacteriológico VASTES 9240.

Posible micosis invasiva diagnosticado basándose en la combinación de los siguientes criterios:
un signo de la categoría de criterios microbiológicos;
un signo de la categoría de síntomas clínicos "significativos" o dos del grupo de síntomas clínicos "menos significativos" del proceso infeccioso.

Posible micosis invasiva diagnosticado basándose en una combinación de los siguientes criterios:
la presencia de al menos un factor de riesgo que induzca el desarrollo de micosis invasiva;
un signo de la categoría de criterios microbiológicos o un signo de la categoría de síntomas clínicos “significativos” (dos del grupo de “menos significativos”) del proceso infeccioso.

El concepto " posible micosis invasiva» No se recomienda su uso en ensayos clínicos que estudien la eficacia de los medicamentos antimicóticos. Puede utilizar este término al analizar la terapia antifúngica empírica, los estudios epidemiológicos y el estudio de farmacoeconomía.

En investigación micológica Los aspirados o biopsias estériles tienen en cuenta no sólo el aislamiento de cultivos de hongos, sino también la detección de micelio o pseudomicelio mediante microscopía. En preparaciones histológicas, Aspergillus es difícil de diferenciar de Fusarium spp., Sceclosporium apiospermum y algunos otros hongos filamentosos. Para el diagnóstico diferencial se debe realizar un estudio inmunohistoquímico con anticuerpos contra Aspergillus.

Aislamiento de hongos de levadura. de la sangre en al menos un estudio pertenece a la categoría de micosis invasiva "probada" y es una indicación absoluta para la prescripción de antimicóticos sistémicos en pacientes con neutropenia. La frecuencia de detección de levaduras en la sangre es baja, incluso con candidiasis diseminada es del 35-50%.
llevando a cabo hemocultivos repetidos aumenta la probabilidad de obtener resultados positivos.

Otro interpretación resultados en caso de detección de hongos filamentosos en la sangre. Una alta frecuencia de aislamiento de hongos filamentosos es característica de Fusarium spp. y asciende al 40-60%. Aspergillus se detecta muy raramente y en la mayoría de los casos se considera contaminación, a excepción de Aspergillus terreus.

Selección Aspergillus terreus de la sangre de pacientes con hemoblastosis puede indicar una verdadera aspergilemia y, en presencia de síntomas clínicos de infección, es la base para prescribir antimicóticos.

Criterios para micosis invasiva.

Índice	Criterios
Factores que inducen la aparición de micosis invasiva (macroorganismo)	Neutropenia (< 0,5*109/л в течение 10 дней) Fiebre persistente durante más de 96 horas durante la terapia con antibióticos de amplio espectro. Temperatura corporal superior a 38 °C o inferior a 36 °C y cualquiera de los siguientes signos predisponentes: neutropenia prolongada (más de 10 días) durante los 60 días anteriores, terapia inmunosupresora intensiva en los últimos 30 días, micosis invasiva comprobada o probable en los últimos 30 días. neutropenia menstrual o SIDA Presencia de síntomas de EICH, principalmente casos de curso grave (grado II) o curso extenso de enfermedad crónica. Uso prolongado (más de 3 semanas) de glucocorticoides en los últimos 60 días
Signos microbiológicos	Aislamiento por cultivo de hongos filamentosos (incluidos Aspergillus spp., Fusaruim spp., Sceclosporium spp. y zigomicetos) y Cryptococcus neqformans a partir de esputo o líquido de lavado broncoalveolar. Resultados positivos del examen cultural o citológico (microscopía directa) para la detección de hongos filamentosos en aspirados de los senos paranasales. Detección de hongos filamentosos o Cryptococcus neoformans mediante citología/microscopía directa a partir de esputo o líquido de lavado broncoalveolar Antígeno de Aspergillus positivo en líquido de lavado broncoalveolar, líquido cefalorraquídeo y muestras de sangre (al menos dos) Antígeno criptocócico positivo en muestras de sangre. Detección de elementos fúngicos mediante examen citológico o microscopía directa en muestras de fluidos normalmente estériles (por ejemplo, Cryptococcus spp. en líquido cefalorraquídeo) Dos resultados positivos de estudios sobre la detección de cultivos de levadura en orina en ausencia de catéter urinario Cristales de Candida en orina sin catéter urinario Aislamiento de Candida spp. de hemocultivos
Signos clínicos Tracto respiratorio inferior	Debe estar asociado con el lugar del que se toman muestras para la investigación microbiológica. Cualquiera de los siguientes tipos de nuevos infiltrados pulmonares según TC: signo del halo, signo de la media luna, cavidad con áreas de consolidación* Síntomas de infección del tracto respiratorio inferior (tos, dolor torácico, hemoptisis, disnea), roce pleural, cualquier nueva infiltración no incluida en los signos de alta significación; Derrame pleural
Tracto respiratorio superior Signos de gran importancia. Signos de menor importancia	Signos radiológicos de infección invasiva en los senos nasales (erosión de la pared o propagación de la infección a estructuras adyacentes, destrucción extensa de los huesos del cráneo) Secreción nasal, congestión nasal, ulceración nasal, epistaxis, edema periorbitario, dolor en la mandíbula superior, ulceración necrótica negra o perforación del paladar duro.
sistema nervioso central Signos de gran importancia. Signos de menor importancia	Signos radiológicos de sospecha de infección del SNC (mastoiditis u otro foco parameníngeo, empiema extradural, múltiples lesiones en la sustancia del cerebro o de la médula espinal) Síntomas y signos neurológicos focales, incluidas convulsiones focales, hemiparesia; trastornos de la conciencia, síntomas meníngeos, alteraciones en la composición bioquímica del líquido cefalorraquídeo y su composición celular (en ausencia de otros patógenos, según cultivo y microscopía, en ausencia de células tumorales)

*En ausencia de infección causada por microorganismos que puedan provocar un cuadro radiológico similar, incluyendo la formación de caries (Mycobacterium spp., Legionella spp., Nocardia spp.).

En detección en sangre u otros biosustratos estériles de hongos de levadura, es necesario realizar la identificación de la especie y determinar la sensibilidad a los medicamentos antifúngicos, al aislar hongos filamentosos (moho), solo la identificación de la especie, no se determina la sensibilidad.

en clínica práctica La sensibilidad de los hongos filamentosos no se estudia debido a estándares imperfectos para determinar la sensibilidad de dichos hongos a los antimicóticos. Además, sólo un estudio demostró una correlación entre la susceptibilidad de Aspergillus spp. y los resultados del tratamiento de la aspergilosis invasiva en pacientes con neoplasias hematológicas. Ninguno de los estudios posteriores encontró resultados similares.

Recientemente, han comenzado a aparecer informes aislados sobre la formación de resistencia adquirida de los hongos A. fumigatus al itraconazol y voriconazol.

Identificación de hongos por especie., especialmente los obtenidos de loci estériles, es necesario principalmente para elegir un antimicótico y realizar una terapia antifúngica adecuada. Por tanto, Candida krusei es resistente al fluconazol y menos sensible que otras especies de levadura a la anfotericina B; Aspergillus terreus, Scedosporium apiospermum (Pseudallescheria boydii), Trichosporon beigelii, Scopulariopsis spp. resistente a la anfotericina B; Los mucorales son resistentes al itraconazol, voriconazol, Candida glabrata presenta sensibilidad dosis dependiente al fluconazol, y cuando se aísla este tipo de hongo, incluso en cepas sensibles, se debe aumentar la dosis de fluconazol (a los adultos se les prescriben 800 mg en lugar de 400 mg); Candida lusitaniae es resistente a la anfotericina B.

Identificación de hongos por especie. También es importante realizar análisis epidemiológicos en un hospital: identificar los agentes causantes de los brotes de infección y, si es posible, la fuente de infección. Se han descrito brotes de infección causados ​​por hongos tan raros como C. lusitaniae, C. krusei, C. lipolytica.

Basado identificación de especies de hongos Se puede suponer una micosis invasiva o una colonización fúngica de las membranas mucosas. Por ejemplo, Aspergillus niger tiene significativamente menos probabilidades que Aspergillus fumigatus de causar aspergilosis invasiva en pacientes con leucemia aguda. El aislamiento de Aspergillus niger del líquido del lavado broncoalveolar se considera con mayor frecuencia como colonización del tracto respiratorio y del esputo como contaminación del aire y requiere investigación adicional para confirmar el diagnóstico de aspergilosis invasiva.

Basado secreciones de hongos filamentosos a partir de esputo, líquido broncoalveolar y aspirado de los senos paranasales, sólo se puede suponer una micosis invasiva, sin incluirla en la categoría "probada". Sin embargo, siempre se debe tener en cuenta la detección de Aspergillus en el esputo, especialmente Aspergillus fumigatus o Aspergillus flavus, en pacientes neutropénicos que reciben médula ósea alogénica. Esto requiere un examen micológico repetido y una tomografía computarizada de los pulmones. Así, con la neutropenia, la probabilidad de detectar aspergilosis invasiva en el caso de un cultivo positivo de Aspergillus spp. en el esputo es del 80%.

Selección Criptococo neoformans en pacientes inmunocomprometidos del tracto respiratorio (lavados, lavados) tiene importancia diagnóstica. Si la identificación de levaduras a partir de fluidos obtenidos del tracto respiratorio (lavados traqueales, bronquiales, lavados broncoalveolares) de pacientes inmunodeprimidos no requiere investigación, entonces es necesario realizar pruebas de detección para identificar Cryptococcus neoformans a partir de estas muestras.

Detección de Candida en orina. en pacientes con neutropenia y fiebre, generalmente se considera una manifestación de infección por Candida diseminada.

De una manera oportuna diagnóstico Invasiva utiliza con éxito una prueba comercial para detectar la circulación de un antígeno específico de Aspergillus spp. galactoman (componente polisacárido soluble en agua de la pared celular del hongo).

galactomano se puede determinar mediante dos métodos: el método de aglutinación de látex (Pastorex Aspergillus, BioRAD) y el método de inmunoensayo enzimático (Platelia Aspergillus, BioRAD).

Ventaja método de inmunoensayo enzimático hay un umbral de sensibilidad más bajo para determinar el nivel de galactomano en la sangre - 1 ng/ml o menos, y mediante aglutinación de látex - 15 ng/ml. La determinación de galactomano en sangre (al menos 2 muestras), líquido cefalorraquídeo y lavado broncoalveolar tiene valor diagnóstico. La sensibilidad del método de inmunoensayo enzimático es de aproximadamente el 90%, la especificidad es del 90-99%, en los receptores de médula ósea alogénica estos indicadores son más bajos y equivalen al 60-70% y al 80-90%, respectivamente, debido a la profilaxis. uso de medicamentos antimicóticos (los antimicóticos reducen el nivel umbral de galactoman).

En el 40% de los casos, la detección galactomano en la sangre está por delante de las manifestaciones de aspergilosis invasiva, determinadas mediante examen informático de los pulmones, y en un 70% está por delante de los síntomas clínicos de la infección.

Valor diagnóstico de la prueba de detección de antígenos. Aspergilo Este es el caso si el estudio se realiza repetidamente. La determinación del antígeno de Aspergillus en sangre debe realizarse durante la fiebre durante el tratamiento con antibióticos de amplio espectro en pacientes con neutropenia 2 veces por semana; para la neumonía que ocurre o persiste durante la terapia con antibióticos; cuando se detectan lesiones en el tejido pulmonar (tomografía computarizada).