Проучва се бактериологичната лаборатория. Бактериологична лаборатория - лаборатории, параклиники

Въведение

Подобно на общата част от всяка друга наука, общата бактериология не се занимава с конкретни въпроси (да речем идентифицирането на отделни видове бактерии), а с проблеми като цяло; неговата методология обхваща основни процедури, които се използват широко в голямо разнообразие от лабораторни изследвания. Това учебно помагало не е насочено към идентифициране на група микроорганизми. Това е задачата на следващите публикации - по частна и санитарна микробиология. Въпреки това, методите, представени тук, могат да бъдат полезни във всяка област, където участват бактерии, и могат да бъдат приложени към практически проблеми, включващи изолирането и типизирането на бактерии.

Бактериологията стана наука едва след като бяха разработени уникални техники, чрез които тя продължава да влияе и да прониква в по-късни научни области като вирусология, имунология и молекулярна биология. Техниката за използване на чисти култури, разработена от R. Koch, както и имунологичните реакции и химичният анализ, използвани за първи път от L. Pasteur, не са загубили своето значение.

Методологията на общата бактериология е отразена в тази публикация с помощта на структура, която е типична за стандартните учебници по тази дисциплина. Въпреки това, за разлика от лабораторните семинари по курса по микробиология за университети, той е представен по-подробно в някои раздели и е само за справка. Тази структура отчита специфичното обучение и специализация на бактериолозите и ветеринарните експерти. Често материалът е представен произволно, така че някои методи се споменават няколко пъти, поради желанието да се демонстрира тяхната взаимовръзка.

Бактериологична лаборатория

Бактериологичните лаборатории като структурни звена са организирани като част от регионални, областни, междуобластни ветеринарни лаборатории, както и в структурата на зонални ветеринарни лаборатории. Те се организират и в центрове за санитарен и епидемиологичен надзор, в инфекциозни болници, многопрофилни болници, някои специализирани болници (например по туберкулоза, ревматология, дерматовенерология) и в поликлиники. Бактериологичните лаборатории са част от специализирани изследователски институции. Постоянно се използват бактериологични лаборатории за потвърждаване или установяване на оценка за годността на месото за хранителни цели съгласно VSE.

Обектите на изследване в бактериологичните лаборатории са:

1. Изхвърляния от тялото: урина, изпражнения, храчки, гной, както и кръв, патологичен и трупен материал.

2. Обекти на външната среда: вода, въздух, почва, измиване от оборудване, фураж, технологични суровини, получени от клането на селскостопански животни.

3. Хранителни продукти, проби от месо и месни продукти, мляко и млечни продукти, които трябва да бъдат оценени за годност за хранителни цели.

Бактериологични лабораторни помещения и оборудване на работното място

Спецификата на микробиологичната работа изисква помещението, предназначено за лабораторията, да бъде изолирано от дневни, хранителни блокове и други неосновни производствени помещения.

Бактериологичната лаборатория включва: лабораторни помещения за бактериологични изследвания и битови помещения; автоклав или стерилизация за дезинфекция на отпадъчни материали и замърсени прибори; перално помещение, оборудвано за миене на съдове; бактериологична кухня – за приготвяне, бутилиране, стерилизиране и съхранение на хранителни среди; вивариум за отглеждане на опитни животни; материал за съхранение на резервни реактиви, съдове, оборудване и домакинско оборудване.

Изброените битови помещения, като самостоятелни структурни единици, са част от големи бактериологични лаборатории. В малките лаборатории бактериологичната кухня и стерилизационната кухня са обединени в едно помещение; Няма специално помещение за отглеждане на опитни животни.

Помещенията на микробиологичните лаборатории са разделени на 2 зони според степента на опасност за персонала:

I. “Инфекциозна” зона - помещение или група от лабораторни помещения, в които се манипулират и съхраняват патогенни биологични агенти, персоналът е облечен в подходящ тип защитно облекло.

II. „Чиста“ зона - помещения, в които не се работи с биологичен материал, персоналът е облечен в лично облекло.

Най-светлите, най-просторни стаи са разпределени за лабораторни помещения, в които се извършват всички бактериологични изследвания. Стените в тези помещения до височина 170 см от пода са боядисани в светли цветове с блажна боя или покрити с плочки. Подът е покрит с релин или линолеум. Този тип покритие ви позволява да използвате дезинфекционни разтвори при почистване на стаята.

Във всяка стая трябва да има мивка с течаща вода и рафт за бутилка с дезинфекционен разтвор.

Едно от помещенията е оборудвано със стъклен бокс - изолирано помещение с вестибюл (предбокс) за извършване на работа при асептични условия. В кутията са поставени маса за сеитба и столче, а над работното място са монтирани бактерицидни лампи. В преддверието е поставен шкаф за съхранение на стерилен материал. Прозорците и вратите на помещенията в "заразната" зона трябва да бъдат запечатани. Съществуващата изпускателна вентилация от "инфекциозната" зона трябва да бъде изолирана от други вентилационни системи и оборудвана с фини въздушни филтри.

Лабораторията е оборудвана с лабораторни маси, шкафове и рафтове за съхранение на оборудване, прибори, бои и реактиви, необходими за работа.

Правилната организация на работното място за бактериолога и лаборанта е много важна за работата. В близост до прозорците са монтирани лабораторни маси. Когато ги поставяте, трябва да се стремите светлината да пада отпред или от страната на работещия, за предпочитане от лявата страна, но в никакъв случай отзад. Препоръчително е помещенията за анализ, особено за микроскопия, да имат прозорци, ориентирани на север или северозапад, тъй като работата изисква равномерна, дифузна светлина. Осветеността на повърхността на масите за работа трябва да бъде 500 лукса. За по-лесна дезинфекция повърхността на лабораторните маси е покрита с пластмаса или тапицирана с желязо. За всеки лаборант се обособява отделно работно място с размери 150 х 60 см.

Всички работни места са оборудвани с предмети, необходими за ежедневната бактериологична работа, списъкът на които е даден в таблица 1.

Маса 1.

Необходими предмети за бактериологична работа

Име на предмета	Приблизително количество
1. Комплект бои и реактиви за боядисване
2. Стъклени слайдове	25-50
3. Покривни стъкла	25-50
4. Чаши с дупки	5-10
5. Поставка за епруветки
6. Бактериална примка
7. Стъклени шпатули
8. Метални шпатули
9. Буркан от памучна вата
10. Пипети, градуирани до 1, 2, 5, 10 ml	25 от всеки том
11. Пастьорови пипети	25-50
12. Пинсета, ножица, скалпел	до 1
13. Контейнери с дезинфекционни разтвори
14. Микроскоп с осветител
15. Лупа 5´
16. Масленка с имерсионно масло
17. Филтърна хартия	3-5 листа
18. Буркан с дезинфекционен разтвор за пипети
19. Алкохолна или газова горелка
20. Инсталация за оцветяващи препарати
21. Пясъчен часовник за 1 или 2 минути	до 1
22. Круша с гумена тръба
23. Молив върху стъкло
24. Буркан с алкохолна вата
25. Необходими стерилни прибори	-

Дезинфекция

Дезинфекцията е унищожаване на микроорганизми в обекти на околната среда.

В микробиологичните лаборатории мерките за дезинфекция се използват много широко. При завършване на работа с инфекциозен материал служителите на бактериологичните лаборатории извършват превантивна дезинфекция на ръцете и работното място.

Отработеният патологичен материал (изпражнения, урина, храчки, различни видове течности, кръв) се дезинфекцира преди изхвърлянето му в канализацията.

Градуирани и пастьорови пипети, стъклени шпатули и метални инструменти, замърсени с патологичен материал или култура от микроби, веднага след употребата им се спускат в стъклени буркани с дезинфекционен разтвор, разположени на масата на всяко работно място.

Предметните стъкла и покривните стъкла, използвани в работата, също подлежат на задължителна дезинфекция, тъй като дори фиксирана и оцветена намазка понякога задържа жизнеспособни микроорганизми, които могат да бъдат източник на вътрелабораторно замърсяване. Само тези съдове, в които са отглеждани микроорганизми, не се третират с дезинфектанти. Поставя се в метални резервоари или контейнери, запечатва се и се предава за автоклавиране.

Изборът на дезинфектант, концентрацията на неговия разтвор, съотношението между количеството дезинфектант и дезинфекцирания материал, както и продължителността на периода на дезинфекция се определят в зависимост от конкретните условия, като се отчита преди всичко стабилността на дезинфекцираните микроби, степента на очакваното замърсяване, състава и консистенцията на материала, в който се намират.

Дезинфекция на ръцете след работа със заразен материал и при контакт с кожата.След приключване на работа със заразен материал ръцете се дезинфекцират профилактично. Памучен тампон или марлева салфетка се навлажнява с 1% разтвор на хлорамин, първо лявата, след това дясната ръка се избърсва в следната последователност: гърба на ръката, палмарната повърхност, междупръстните пространства, нокътните легла. Така първо се третират най-малко замърсените участъци, след което се преминава към най-силно замърсените участъци от кожата. Избършете ръцете си в продължение на 2 минути с два последователни тампона. Когато ръцете се замърсят с култура от патогенен микроб или патологичен материал, замърсените участъци от кожата първо се дезинфекцират. За целта те се покриват за 3-5 минути с памучна вата, навлажнена с 1% разтвор на хлорамин, след което памучната вата се изхвърля в резервоар или кофа с отпадъци и ръцете се третират с втори тампон в същата. начин, както при превантивна дезинфекция. След третиране с хлорамин измийте ръцете си с топла вода и сапун. При работа с бактерии, които образуват спори, обработката на ръцете се извършва с 1% активиран хлорамин. Ако инфекциозен материал влезе в контакт с ръцете, експозицията на дезинфектанта се увеличава до 5 минути.

Стерилизация

Стерилизацията, за разлика от дезинфекцията, включва унищожаване на всички вегетативни и спороносни, патогенни и непатогенни микроорганизми в обекта, който се стерилизира. Стерилизацията се извършва по различни начини: пара, сух горещ въздух, кипене, филтриране и др. Изборът на един или друг метод на стерилизация се определя от качеството и свойствата на микрофлората на обекта, който се стерилизира.

Подготовка и стерилизация на лабораторно оборудване

Преди стерилизация лабораторната стъклария се измива и подсушава. Епруветки, флакони, бутилки, дюшеци и колби се затварят с памучно-марлени запушалки. Поставете хартиени капачки върху запушалките на всеки съд (с изключение на епруветките).

Гумените, корковите и стъклените запушалки се стерилизират в отделен плик, завързан на гърлото на съда. Петриевите блюда се стерилизират опаковани в хартия по 1-10 бр. Пастьорови пипети 3-15 бр. увити в опаковъчна хартия. В горната част на всяка пипета се поставя парче памучна вата, за да се предотврати навлизането на материала в околната среда. При опаковането на пипетите трябва да се внимава много, за да не се отчупят запечатаните краища на капилярите. По време на работа пипетите се изваждат от торбата за горния край.

В горната част на градуираните пипети, както при пипетите на Пастьор, се поставя предпазен памук и след това се увива в дебела хартия, предварително нарязана на ленти с ширина 2-2,5 см и дължина 50-70 см. Лентата се поставя на масата, левия край е сгънат и обвит върха на пипетата, след това, като завъртите пипетата, увийте лента хартия върху нея. За да не се разгъне хартията, противоположният й край се усуква или залепва. Обемът на увитата пипета е написан на хартията. Ако има моливи, в тях се стерилизират градуирани пипети.

Лабораторната стъклария се стерилизира:

а) суха топлина при температура съответно 180°C и 160°C за 1 час и 150 минути.

б) в автоклав при налягане 1,5 atm. за 60 минути, за унищожаване на споровата микрофлора - 90 минути при 2 atm.

Стерилизация на спринцовки. Спринцовките се стерилизират в разглобена форма: отделно цилиндър и бутало в 2% разтвор на натриев бикарбонат за 30 минути. При работа със спороносна микрофлора стерилизацията се извършва в автоклав при 132±2°C (2 atm.) за 20 минути, при 126±2°C (1,5 atm.) - 30 минути. Стерилизираната спринцовка се сглобява, след като се охлади, в цилиндъра се вкарва бутало, поставя се игла, като първо се отстрани дорникът от нея. Иглата, цилиндърът и буталото се вземат с пинсети, които се стерилизират заедно със спринцовката.

Стерилизация на метални инструменти. Металните инструменти (ножици, скалпели, пинсети и др.) се стерилизират в 2% разтвор на натриев бикарбонат, което предпазва от ръжда и загуба на острота. Препоръчва се остриетата на скалпелите и ножиците да се увият с памук преди да се потопят в разтвора.

Стерилизация на бактериални бримки. Бактериалните бримки, изработени от платинена или нихромова тел, се стерилизират в пламъка на алкохолна или газова горелка. Този метод на стерилизация се нарича калциниране или фламбиране.

Примката се поставя в хоризонтално положение в долната, най-студена част на пламъка на горелката, за да се предотврати пръскането на изгорелия патогенен материал. След като изгори, примката се премества във вертикално положение, като първо долната, а след това горната част на телта се нагрява до червено и държачът на примката се изгаря. Калцинирането обикновено отнема 5-7 секунди.

Препарат за стерилизация и стерилизация на хартия, марля и вата. Памучна вата, марля, филтърна хартия се стерилизират в сушилня при температура 160 ° C в рамките на един час от момента, в който термометърът отчита тази температура или в автоклав при налягане 1 atm. в рамките на 30 минути.

Преди стерилизация хартията и марлята се нарязват на парчета, а памучната вата се навива на топки или тампони с необходимия размер. След това всеки вид материал поотделно, един или няколко парчета, се увива в плътна хартия. Ако опаковката се счупи, стерилизираният материал трябва да се стерилизира отново, тъй като неговата стерилност е нарушена.

Стерилизация на ръкавици и други каучукови изделия. Каучукови изделия (ръкавици, тръби и др.), замърсени с вегетативна форма на микроби, се стерилизират чрез варене в 2% разтвор на натриев бикарбонат или на пара за 30 минути; при замърсяване със спороносна микрофлора, в автоклав при налягане 1,5-2 atm. за 30 или 20 минути. Преди стерилизация гумените ръкавици се поръсват с талк отвътре и отвън, за да не залепнат. Между ръкавиците се поставя марля. Всеки чифт ръкавици се увива отделно в марля и в този вид се поставя в кутии.

Стерилизация на патогенни микробни култури. Епруветки и чаши, съдържащи микробни култури, които не са необходими за по-нататъшна работа, се поставят в метален резервоар, капакът се запечатва и се предава за стерилизация. Култури от патогенни микроби, вегетативни форми, се убиват в автоклав за 30 минути при налягане 1 atm. Предаването на резервоари за стерилизация в автоклава се извършва от специално назначено лице срещу подпис. Режимът на стерилизация се записва в специален дневник. При унищожаване на култури от микроби от групи на патогенност I и II, както и материали, замърсени или съмнителни за заразени с патогени, причислени към тези групи, резервоарите с отпадъчен материал се прехвърлят върху метални тави с високи стени в присъствието на придружаващо лице, упълномощено да работа с инфекциозен материал.

Видове стерилизация

Стерилизация чрез варене. Стерилизирането чрез варене се извършва в стерилизатор. В стерилизатора се налива дестилирана вода, тъй като чешмяната вода образува котлен камък. (Стъклените предмети се потапят в студена вода, металните в гореща вода с добавка на натриев бикарбонат). Предметите за стерилизация се варят на тих огън 30-60 минути. За начало на стерилизация се счита момента, в който водата заври в стерилизатора. В края на варенето инструментите се вземат със стерилни пинсети, които се варят заедно с други предмети.

Стерилизация със суха топлина. Стерилизацията със суха топлина се извършва в пещ на Пастьор. Подготвеният за стерилизация материал се поставя върху рафтовете, така че да не влиза в контакт със стените. Шкафът се затваря и след това се включва отоплението. Продължителността на стерилизацията при температура 150°C е 2 часа, при 165°C – 1 час, при 180°C – 40 минути, при 200°C – 10-15 минути (при 170°C хартията и памукът се обръщат жълто, а при по-високи температури овъглено). За начало на стерилизация се счита моментът, в който температурата във фурната достигне желаната височина. В края на периода на стерилизация фурната се изключва, но вратите на шкафа не се отварят, докато не се охлади напълно, тъй като студеният въздух, навлизащ в шкафа, може да причини пукнатини върху горещите съдове.

Парна стерилизация под налягане. Парна стерилизация под налягане се извършва в автоклав. Автоклавът се състои от два котела, поставени един в друг, корпус и капак. Външният котел се нарича водно-парна камера, вътрешният котел се нарича стерилизационна камера. Парата се генерира във водно-парен котел. Материалът за стерилизация се поставя във вътрешния котел. В горната част на стерилизационния котел има малки отвори, през които преминава парата от камерата вода-пара. Капакът на автоклава е херметически завинтен към корпуса. В допълнение към изброените основни части, автоклавът има редица части, които регулират работата му: манометър, водомерно стъкло, предпазен клапан, изпускателен, въздушен и кондензен клапани. Манометърът се използва за определяне на налягането, създадено в стерилизационната камера. Нормалното атмосферно налягане (760 mm Hg) се приема за нула, следователно в неактивен автоклав стрелката на манометъра е на нула. Съществува определена връзка между показанията на манометъра и температурата (Таблица 2).

Таблица 2.

Връзка между показанията на манометъра и температурата на кипене на водата

Червената линия на скалата на манометъра определя максималното допустимо работно налягане в автоклава. Предпазният клапан служи за защита от прекомерно натрупване на налягане. Настроено е на дадено налягане, тоест налягането, при което трябва да се извърши стерилизация; когато стрелката на манометъра пресече линията, вентилът на автоклава автоматично се отваря и изпуска излишната пара, като по този начин забавя по-нататъшното повишаване на налягането.

На страничната стена на автоклава има водомерно стъкло, показващо нивото на водата във водопарния котел. Върху водомерната стъклена тръба има две хоризонтални линии - долна и горна, указващи съответно допустимите долни и горни нива на водата в пароводокамерата. Въздушният клапан е предназначен да отстранява въздуха от камерите за стерилизация и водна пара в началото на стерилизацията, тъй като въздухът, като лош топлопроводник, нарушава режима на стерилизация. В долната част на автоклава има кондензационен кран за освобождаване на стерилизационната камера от кондензат, образуван по време на периода на нагряване на стерилизирания материал.

Правила за работа с автоклав. Преди да започнете работа, проверете автоклава и контролното оборудване. В автоклавите с автоматичен контрол на парата стрелките на електрическия вакуумен манометър на камерата за водна пара се настройват в съответствие с режима на стерилизация: долната стрелка е настроена на 0,1 atm. долна, горна - с 0,1 атм. над работното налягане водно-парната камера се напълва с вода до горната маркировка на мерителното стъкло. По време на пълнене с вода, клапата на тръбата, през която влиза парата в камерата, се държи отворена, за да може въздухът да излиза свободно от котела. Стерилизационната камера на автоклава се зарежда с материала за стерилизация. След това капакът (или вратата) на автоклава се затваря, плътно закрепен с централна ключалка или болтове; за да избегнете изкривяване, завийте болтовете напречно (по диаметъра). След това включете източника на топлина (електрически ток, пара), като затворите вентила на тръбата, свързваща източника на пара със стерилизационната камера. С началото на образуването на пара и създаването на налягане в камерата за вода и пара се извършва продухване (отстраняване на въздух от стерилизационния котел). Методът на отстраняване на въздуха се определя от конструкцията на автоклава. Първоначално въздухът излиза на отделни порции, след това се появява гладка, непрекъсната струя пара, което показва, че въздухът е напълно изместен от стерилизационната камера. След отстраняване на въздуха, кранът се затваря и започва постепенно повишаване на налягането в стерилизационната камера.

За начало на стерилизация се счита моментът, в който стрелката на манометъра покаже зададеното налягане. След това интензивността на нагряване се намалява, така че налягането в автоклава да остане на същото ниво за необходимото време. В края на времето за стерилизация нагряването се спира. Затворете клапана в тръбопровода, подаващ пара към стерилизационната камера, и отворете клапана на кондензационната (надолу) тръба, за да намалите налягането на парата в камерата. След като стрелката на манометъра падне до нула, бавно разхлабете затягащите устройства и отворете капака на автоклава.

Температурата и продължителността на стерилизацията се определят от качеството на стерилизирания материал и свойствата на микроорганизмите, с които е заразен.

Контролът на температурата в стерилизационната камера се извършва периодично с помощта на бактериологични тестове. Биотестовете се произвеждат от бактериологичните лаборатории на Центъра за чувствителни науки. Ако тези тестове не са преминали, се проверява техническото състояние на автоклава.

Стерилизация с течаща пара. Стерилизирането с течаща пара се извършва в апарат с течаща пара на Кох или в автоклав с отвинтен капак и отворен изходен клапан. Апаратът на Кох е метален кух цилиндър с двойно дъно. Пространството между горната и долната долна плоча се запълва 2/3 с вода (има кран за източване на останалата вода след стерилизация). Капакът на уреда има отвор в центъра за термометър и няколко малки отвора за излизане на парата. Материалът за стерилизация се зарежда свободно в камерата на устройството, за да се осигури максимален контакт с парата. За начало на стерилизация се счита времето от момента, в който водата заври и парата влезе в стерилизационната камера. В апарат с течна пара основно се стерилизират хранителни среди, чиито свойства се променят при температури над 100°C. Стерилизацията с течаща пара трябва да се повтори, тъй като еднократното нагряване при температура 100°C не гарантира пълна дезинфекция. Този метод се нарича фракционна стерилизация: стерилизираният материал се обработва с течаща пара в продължение на 30 минути всеки ден в продължение на 3 дни. В интервалите между стерилизациите материалът се поддържа при стайна температура, за да покълнат спорите във вегетативни форми, които умират при последващо нагряване.

Тиндализация. Тиндализацията е фракционна стерилизация при използване на температури под 100°C, предложена от Tyndall. Материалът за стерилизация се нагрява на водна баня с термостат за един час при температура 60-65°С за 5 дни или при 70-80°С за 3 дни. В интервалите между нагряването обработеният материал се поддържа при температура 25°C, за да покълнат спорите във вегетативни форми, които умират при последващо нагряване. Тиндализацията се използва за обезторяване на хранителни среди, съдържащи протеин.

Механична стерилизация с бактериални ултрафилтри. Бактериалните филтри се използват за освобождаване на течността от съдържащите се в нея бактерии, както и за отделяне на бактерии от вируси, фаги и екзотоксини. Вирусите не се задържат от бактериални филтри и затова ултрафилтрацията не може да се счита за стерилизация в общоприетия смисъл на думата. За производството на ултрафилтри се използват фино порести материали (каолин, азбест, нитроцелулоза и др.), които могат да улавят бактерии.

Азбестовите филтри (Seitz филтри) са азбестови плочи с дебелина 3-5 mm и диаметър 35 и 140 mm за филтриране на малки и големи обеми течност. У нас азбестовите филтри се произвеждат в две марки: “F” (филтриращи), които задържат суспендираните частици, но пропускат бактериите, и “SF” (стерилизиращи), по-плътни, задържащи бактерии. Преди употреба азбестовите филтри се монтират във филтърни устройства и заедно с тях се стерилизират в автоклав. Азбестовите филтри се използват еднократно. Мембранните ултрафилтри са изработени от нитроцелулоза и представляват бели дискове с диаметър 35 mm и дебелина 0,1 mm.

Бактериалните филтри се различават по размер на порите и са обозначени със серийни номера (Таблица 3).

Таблица 3.

Бактериални филтри

Непосредствено преди употреба мембранните филтри се стерилизират чрез кипене. Филтрите се поставят в дестилирана вода, загрята до температура 50-60°С, за да се предпазят от усукване и се варят на тих огън 30 минути, като водата се сменя 2-3 пъти. За да се избегнат повреди, стерилизираните филтри се изваждат от стерилизатора с фламбирани и охладени пинсети с гладки върхове.

За филтриране на течности бактериалните филтри се монтират в специални филтърни устройства, по-специално филтър Seitz.

Състои се от 2 части: горна, оформена като цилиндър или фуния, и долна носеща част на апарата, с така наречената филтърна маса, изработена от метална мрежа или чиста керамична плоча, върху която има мембрана или азбест. е поставен филтър. Носещата част на апарата има формата на фуния, чиято заострена част е разположена в гумената запушалка на гърлото на Бунзенова колба. В работно състояние горната част на устройството е фиксирана към долната част с винтове. Преди да започне филтрирането, връзките на различните части на инсталацията се пълнят с парафин, за да се създаде уплътнение. Изходната тръба на колбата е свързана с дебелостенна гумена тръба към водоструйна, маслена или велосипедна помпа. След това филтрираната течност се излива в цилиндъра или фунията на апарата и помпата се включва, създавайки вакуум в приемния съд. В резултат на получената разлика в налягането филтрираната течност преминава през порите на филтъра в приемника. По повърхността на филтъра остават микроорганизми.

Приготвяне на цитонамазки

За изследване на микроорганизми в оцветена форма се прави намазка върху предметно стъкло, изсушава се, фиксира се и след това се оцветява.

Тестовият материал се разпределя на тънък слой върху повърхността на добре обезмаслено предметно стъкло.

Натривки се приготвят от микробни култури, патологичен материал (храчки, гной, урина, кръв и др.) И от органи на трупове.

Техниката за приготвяне на намазки се определя от естеството на изследвания материал.

Изготвяне на намазки от микробни култури с течна хранителна среда и от течен патологичен материал (урина, цереброспинална течност и др.). Малка капка от тестовата течност се нанася с бактериална примка върху предметно стъкло и с кръгови движения примките се разпределят на равномерен слой под формата на кръг с диаметър на монета от стотинка.

Изготвяне на кръвни натривки. Капка кръв се нанася върху предметното стъкло, по-близо до единия му край. Върху първото под ъгъл 45° се поставя второто - шлифовано стъкло, което трябва да е по-тясно от предметното стъкло и се довежда до капка кръв до съприкосновение с нея. След като кръвта се разтече по полирания ръб, се прави плъзгащо движение със стъклото отдясно наляво, като кръвта се разпределя равномерно на тънък слой по цялата повърхност на стъклото. Дебелината на щриха зависи от ъгъла между стъклата: колкото по-остър е ъгълът, толкова по-тънък е щрихът. Правилно приготвената намазка има светлорозов цвят и еднаква дебелина навсякъде.

Приготвяне на гъста капка. Капка кръв се нанася в средата на предметното стъкло с помощта на пипета на Пастьор или стъклото се нанася директно върху изпъкналата капка кръв. Кръвта, нанесена върху стъклото, се намазва с бактериална бримка, така че диаметърът на полученото петно ​​да съответства на размера на монета от пени. Стъклото се оставя в хоризонтално положение, докато кръвта изсъхне. Кръвта в „дебелата капка“ се разпределя неравномерно, образувайки неравен ръб.

Приготвяне на намазка от вискозен материал (храчка, гной). Храчките или гнойта, нанесени върху предметното стъкло по-близо до тесния ръб, се покриват с друго предметно стъкло. Стъклата са леко притиснати една към друга.

След това свободните краища на стъклото се хващат с пръсти 1 и 2 на двете ръце и се движат в противоположни посоки, така че при движение двете стъкла да прилягат плътно едно към друго. Резултатът е петна с равномерно разпределен материал, заемащ голяма площ.

Приготвяне на намазки от култури от твърди хранителни среди. В средата на чисто, добре намазнено предметно стъкло се поставя капка вода и в нея се вкарва бактериална примка с малко количество от изследваната микробна култура, така че капката течност да стане леко мътна. След това излишният микробен материал върху примката се изгаря на пламък и намазката се приготвя съгласно описания по-горе метод.

Приготвяне на цитонамазки от органи и тъкани. С цел дезинфекция повърхността на органа се обгаря с нагорещени челюсти на пинсети, на това място се прави разрез и с остри ножици се изрязва малко парче тъкан от дълбочината, което се поставя между две предметни стъкла. . След това продължете по същия начин, както при приготвянето на намазка от гной и храчки. Ако тъканта на органа е плътна, тогава се прави изстъргване от дълбочината на разреза със скалпел. Полученият чрез остъргване материал се разпределя на тънък слой върху повърхността на стъклото със скалпел или бактериална примка.

За изследване на взаимното разположение на тъканните елементи и микроорганизмите в него се правят петна от пръстови отпечатъци. За целта се хваща с пинсета малко парче тъкан, изрязано от средата на органа, и се нанася последователно няколко пъти с изрязаната повърхност върху предметно стъкло, като по този начин се получават серия петна-отпечатъци.

Изсушаване и фиксиране на петна. Намазката, приготвена върху предметно стъкло, се суши на въздух и се фиксира след пълно изсъхване. Когато се фиксира, намазката се фиксира върху повърхността на предметното стъкло и следователно при последващо оцветяване на препарата микробните клетки не се отмиват. Освен това убитите микробни клетки се оцветяват по-добре от живите.

Има физичен метод на фиксиране, който се основава на ефекта на висока температура върху микробната клетка и химични методи, които включват използването на агенти, които предизвикват коагулация на протеини. Не записвайте върху пламък петна, съдържащи патогени от групи на патогенност I–II.

Физически метод на фиксиране. Стъклото с препарата се взема с пинсети или пръсти I и II на дясната ръка за ребрата с удар нагоре и плавно се премества 2-3 пъти над горната част на пламъка на горелката. Целият процес на фиксиране трябва да отнеме не повече от 2 секунди. Надеждността на фиксирането се проверява чрез следната проста техника: върху задната повърхност на лявата ръка се нанася незацапана повърхност на предметно стъкло. Когато намазката е правилно фиксирана, стъклото трябва да е горещо, но да не предизвиква усещане за парене.

Метод на химическа фиксация. За фиксиране на петна се използват и химикалите и съединенията, изброени в таблица 4.

Таблица 4.

Вещества за химична фиксация

Стъклото с изсъхналото петно ​​се потапя в бутилка с фиксиращ агент и след това се суши на въздух.

Оцветяване на щрихи

Техника на рисуване с петна. За оцветяване на петна се използват разтвори на боя или оцветяваща хартия, както е предложено от A.I. Синев. Простотата на приготвяне, лекотата на използване, както и възможността за съхраняване на хартия с мастило за неопределено дълго време бяха основата за широкото им използване в различни методи за оцветяване.

Оцветяване на щрихи с хартия с мастило. Върху изсъхналия и фиксиран препарат се нанасят няколко капки вода и се поставят цветни парчета хартия с размери 2´2 см. През цялото време на оцветяване хартията трябва да остане влажна и да приляга плътно към повърхността на стъклото. При сушене хартията се навлажнява допълнително с вода. Продължителността на оцветяване на намазката се определя от метода на оцветяване. В края на оцветяването хартията се отстранява внимателно с пинсети, а петното се измива с чешмяна вода и се изсушава на въздух или с филтърна хартия.

Оцветяване на петна с багрилни разтвори. Върху изсушения и фиксиран препарат с пипета се нанася багрилото в такова количество, че да покрие цялата намазка. При оцветяване на намазки с концентрирани разтвори на багрила (Ziehl carbol fuchsin, карболова тинтява или кристално виолетово), оцветяването се извършва през филтърна хартия, която задържа частиците на багрилото: лента от филтърна хартия се поставя върху фиксирана намазка и върху нея се излива разтвор на багрилото .

За микроскопско изследване се оцветяват приготвени петна, изсушени и фиксирани. Оцветяването може да бъде просто или сложно. Обикновеното боядисване включва нанасяне на една боя върху петно ​​за определен период от време. Най-често за просто оцветяване се използва алкохол-вода (1:10) фуксин на Pfeiffer, метиленово синьо на Leffler и сафранин. Еозинът, подобно на киселинна боя, се използва само за оцветяване на цитоплазмата на клетките и оцветяване на фона. Киселинният фуксин е напълно неподходящ за оцветяване на бактерии.

снимка от сайта lentachel.ru

Само преди сто години замърсяването по време на научни изследвания се смяташе за почти неизбежно. Много учени излагат телата си на смъртен риск, като изучават микроби и бактерии, за природата на които са знаели малко. Днес повечето от опасните микроорганизми, които ни заобикалят, са описани и проучени, освен това са предоставени специални медицински продукти за бактериологични лаборатории, използването на които с 99% вероятност предпазва изследователите от всякакви професионални рискове.

Всички предмети, с които работят служителите на бактериологичната лаборатория, са наситени с патогенна микрофлора. За поддържане на здравословна вътрешна среда и избягване на директен контакт със замърсен материал се използват мебели, дрехи и прибори с подобрени бариерни и антимикробни свойства.

Херметически затворени стъклени и метални шкафове и кутии, лабораторни маси, удобни за дезинфекция, стерилизация и оборудване за автоклавиране, както и заключен хладилник са елементи, които гарантират безопасността на хората, извършващи изследвания на заразени проби.

Всички контейнери, използвани за съхранение на проби: колби, градуирани чаши са херметически затворени, за да се избегне разпространението на микроби във въздуха на лабораторията.

За производството на контейнери се използва специално нечупливо стъкло или пластмаса с висока якост. Двойните стени, специалната стабилна форма на дъното, гумените елементи на капаците, тавите и кюветите създават най-добрите условия за изолиране на такива опасни съседи като менингококи, стрептококи, стафилококи, бацили и клостридии.

Преди да започне изследването, персоналът облича специално облекло: предпазна рокля, маска, очила. За работа с много опасни вещества се използват гумирани престилки или специални рокли с влагоотблъскваща импрегнация.

Правилната навременна обработка на въздуха с ултравиолетови облъчватели и бактерицидни лампи, използването на доказани модификации на пералното помещение, снабдяването на всички служители с пълен комплект защитно облекло е общоприет стандарт, отклонението от което е административно, а в случай на тежки последици , наказателно наказуемо.

Цялостното оборудване и прилагането на всички предпазни мерки помагат за запазване здравето на служителите, намаляване на професионалната заболеваемост и осигуряване на висока производителност на изследванията: беше отбелязано, че използването на надеждни, доказани предпазни средства намалява безпокойството и насърчава по-бързи и по-ефективни действия.

Бактериологична лаборатория

Бактериологичната лаборатория е обособена като самостоятелно поделение през 1996г.

Ръководител - кандидат на медицинските науки, бактериолог от най-висока категория Поликарпова Светлана Вениаминовна

ПРИОРИТЕТНИ НАПРАВЛЕНИЯ НА ДЕЙНОСТ

В бактериологичната лаборатория се извършват следните видове анализи:

Бактериологично изследване на кръв (хемокултура) и цереброспинална течност;
- бактериологично изследване на храчка, трахеален аспират, бронхиална промивна вода;
- бактериологично изследване на отделяне от различни огнища на възпаление: тонзилит, фарингит, отит, синузит и др.;
- бактериологично изследване на пунктати, изливи, ексудати;
- бактериологично изследване на изхвърляне от лигавицата на фаринкса и носа за условно патогенна микрофлора;
- бактериологично изследване на урина за определяне на степента на бактериурия;
- бактериологично изследване на генитален секрет за условно патогенна микрофлора;
- бактериологично изследване на конюнктивален секрет;
- изследване на изпражнения за патогенна чревна флора;
- бактериологично изследване на изпражненията за дисбактериоза;
- бактериологично изследване на кърма;
- качествено определяне на стрептококов антиген от група В;
- качествено определяне на антиген Helicobacter pylori в човешки изпражнения;
- качествено определяне на антигена на токсините А и В Clostridium труден в човешки изпражнения;
- оценка на чувствителността/резистентността на изолирани микроорганизми към антибиотици.

ПОСТИЖЕНИЯ

В бактериологичната лаборатория се провеждат изследвания за изолиране, идентифициране и определяне на чувствителността към антибиотици на патогенни и условно патогенни микроорганизми, изолирани от различни биоматериали.

В работата на лабораторията, базирана на принципите на класическата клинична микробиология, са въведени нови методи за изследване, които се основават на най-новите постижения на молекулярно-генетичните технологии.

Бактериологичната лаборатория извършва микробиологични изследвания, които отговарят на съвременните руски и международни стандарти.

Ежегодно служителите на лабораторията извършват бактериологични изследвания на повече от 10 000 пациенти, хоспитализирани в болнични отделения, 6 000 пациенти и новородени в родилния дом, над 5 000 пациенти от ЦРБ и клиниките на Източен административен район, като извършват над 45 000 микробиологични изследвания на година.

На базата на лабораторията е разработена и постоянно се модернизира „Автоматизирана работна станция за микробиолог, епидемиолог и химиотерапевт“, която включва две програми: MICROB-AUTOMAT и СИСТЕМА ЗА МИКРОБИОЛОГИЧЕН МОНИТОРИНГ „MICROB“ (SMM). Програмите ни позволяват да решаваме основните задачи на болничната микробиологична служба: непрекъснат мониторинг на микробния пейзаж и нивото на неговата антибиотична резистентност за предписване на адекватна антибиотична терапия и своевременно откриване на случаи на инфекции, свързани със здравни грижи (HAI).

За осигуряване на добро качество на микробиологичните изследвания в лабораторията се въвеждат:

• Система за управление на качеството по стандарт GOST R ISO 15189 -15

„Медицински лаборатории. Особени изисквания за качество и компетентност”;

• Основи ПОСТНОтехнологии (Lean manufacturing) - подходи за управление на лабораторията, насочени към подобряване на качеството на работа чрез намаляване на загубите: материални, финансови, времеви;
• Система 5S- инструмент за щадящо производство - организиране на работно пространство с цел създаване на оптимални условия за извършване на операции, поддържане на ред, чистота, изрядност, спестяване на време и енергия.

От 2014 г. лабораторията участва в международната програма за мониторинг на антибиотичната резистентност в страните от Централна Азия и Източна Европа, организирана от СЗО(UK NEQAS) Лабораторията участва във външна оценка на качеството на лабораторните изследвания като експертна лаборатория в секция „Клинична микробиология” (ФСВОК).

В продължение на много години бактериолозите провеждат цикли за подобряване на сертифицирането „Съвременни методи на изследване в клиничната микробиология“ в болницата за работници със средно медицинско образование от медицински институции в Москва.

ВИСОКА ТЕХНОЛОГИЯ

• Въвеждане на молекулярно-генетичните методи в диагностиката на инфекциозните заболявания – методът на полимеразна верижна реакция (PCR) в реално време;

• определяне на основните механизми на развитие и разпространение на бактериална резистентност към антибактериални лекарства с помощта на фенотипни и генотипни методи;

• използването на имунохроматографски експресни методи (IMCT) за етиологична диагностика на патогени на инфекциозни и възпалителни заболявания;

• създаване и внедряване на електронен модул за експертни становища за бактериолози, лекуващи лекари, клинични фармаколози за интерпретиране на резултатите от определяне на чувствителността на микроорганизмите към антимикробни лекарства и идентифициране на механизми на резистентност.

НАУЧНА ДЕЙНОСТ

За времето на съществуване на катедрата в лабораторията са изработени 2 кандидатски дисертации. Служителите на отдела редовно правят презентации на международни, всеруски, градски конгреси, конференции, симпозиуми и семинари, редовно публикуват в научни и практически публикации.

Бактериологичната лаборатория сътрудничи на:

• FSBI "Федерален изследователски център по епидемиология и микробиология"

тях. Почетен академик Н. Ф. Гамалея от Министерството на здравеопазването на Руската федерация“;

• FGAU "Научен център за детско здраве" на Министерството на здравеопазването на Руската федерация;
• Федерална държавна бюджетна институция "Медико-генетичен изследователски център" на Руската академия на медицинските науки;
• Федерална бюджетна институция Централен изследователски институт по епидемиология на Роспотребнадзор;
• FBUN Московски изследователски институт по епидемиология и микробиология на името на. Г. Н. Габричевски Роспотребнадзор;
• Катедрата по репродуктивна медицина и хирургия на Московския държавен медицински и стоматологичен университет на име A.I. Evdokimov (MGMSU);

Научната работа се извършва в следните области:

• микробиологична диагностика и профилактика на инфекции, свързани със здравни грижи (HAI). Микробна екология в лечебните заведения.
• особености на микробиологичната диагностика на инфекции на долните дихателни пътища при пациенти с кистозна фиброза;
• изучаване на механизмите на резистентност на ентеробактериите към антимикробни лекарства;
• разработване на алгоритми за бърза диагностика на носителството на стрептококи от група В при бременни и новородени.

СТАТИИ, КОНФЕРЕНЦИИ

2016 г

ЛАБОРАТОРНО ОБОРУДВАНЕ

В момента бактериологичната лаборатория е оборудвана с модерно оборудване:

• Автоматичен анализатор за хемокултура VersaTREК(TREK Diagnostic Systems) - възможност за диагностициране на сепсис в най-кратки срокове - 90% от положителните резултати се откриват в рамките на първите 24 часа. Максималното време за протокол за изследване е 5
• Бактериологичен анализатор за идентифициране и определяне на чувствителността на микроорганизми Феникс 100(BD) - средното време за получаване на резултати за идентификация е 6-8 часа, средното време за получаване на резултати за антимикробна чувствителност е 12-16 часа.
• Полуавтоматичен анализатор iEMSЧитател(ThermoLabsystems), което позволява не само да се идентифицират и определят чувствителността на микроорганизмите, но и да се решат много практически и научно-практически проблеми: определяне на микробното замърсяване на урината и други биоматериали, извършване на лабораторен мониторинг на ефективността на антибактериалната терапия, оценка на бактерицидната активност на кръвния серум, както и изследване на кинетични модели на микробен растеж.

В работата на лабораторията е въведена лабораторна информационна система ALISA, всяко работно място на бактериолог е компютъризирано.

КОЛЕКТИВЕН

Пивкина Надежда Василиевна

Лекар-бактериолог от най-висока категория, има професионална преквалификация по специалността "Бактериология". Член на Международната асоциация на клиничните микробиолози и антимикробни химиотерапевти (IACMAC), член на Федерацията по лабораторна медицина (FLM). Съавтор е на множество научни статии по проблемите на клиничната микробиология. Трудов стаж по специалността от 1992г.

Тимофеева Олга Генадиевна

Бактериолог от най-висока категория, завършила е стаж по специалността „Бактериология” и е преминала усъвършенствано обучение по темата „PCR анализ в клинико-диагностични лаборатории”. Член на Федерацията по лабораторна медицина (FLM). В момента работи по писане на докторска дисертация. Има публикации по проблеми на клиничната микробиология. Трудов стаж по специалността от 1996г.

Бондаренко Наталия Александровна

Бактериолог от първа категория, член на Федерацията по лабораторна медицина (FLM). Съавтор е на множество научни статии по проблемите на клиничната микробиология. Трудов стаж по специалността от 1988г.

Балина Валерия Владимировна

Бактериолог, лекар по клинична лабораторна диагностика. Завършила е стаж по специалност „Клинична лабораторна диагностика” и има професионална преквалификация по специалност „Бактериология”. Преминал повишаване на квалификацията по темата „Молекулярно-генетични методи в диагностиката на инфекциозни заболявания“. Член на Федерацията по лабораторна медицина (FLM). Трудов стаж по специалността от 2013г.

Медицински персонал

В лабораторията работят:

• 1 медицински технолог
• 1 медицински лаборант
• 5 медицински лаборанти
• 1 лаборант
• Всички служители имат най-висока квалификационна категория.

Страница 5 от 91

За провеждане на микробиологични изследвания има бактериологични лаборатории в болници и клиники или независимо от тях. Те получават за изследване различни материали, получени от болни хора (храчка, урина, гной, изпражнения, кръв, цереброспинална течност и др.). Освен това има санитарни и бактериологични лаборатории, в които водата, въздухът и хранителните продукти се подлагат на бактериологичен контрол.
Ролята на бактериологичните лаборатории също е голяма в профилактиката на инфекциозните заболявания. Някои хора, след прекарани инфекциозни заболявания (коремен тиф, дизентерия, дифтерия и др.), Продължават да отделят патогенни микроби в околната среда. Това са така наречените бактерионосители. Бактерионосителите се срещат и сред здрави хора. Като идентифицират такива бактериологични носители, бактериологичните лаборатории помагат на здравните власти да извършат редица превантивни мерки.
Водата и хранителните продукти, замърсени с патогенни микроорганизми, могат да причинят епидемии (масови заболявания) от коремен тиф, холера и др., Ето защо ежедневният санитарен и бактериологичен контрол върху качеството на питейната вода, млякото и други продукти е толкова важен.
Бактериологичната лаборатория трябва да разполага с най-малко три стаи: 1) малка стая - стая за регистрация за получаване и издаване на тестове; 2) средно готвене и измиване - за приготвяне на хранителни среди и измиване на съдове; 3) лаборатория за бактериологични изследвания. Препоръчително е да има помещение за отглеждане на опитни животни (вивариум). Всяка стая трябва да има подходящо обзавеждане (кухненски и лабораторни маси, различни шкафове, табуретки и др.).
Следва списък на най-важните елементи, необходими в ежедневната лабораторна работа. Целта на тяхното използване, начинът на работа с тях, както и принципът на тяхното устройство са описани в съответните раздели на курса.
Оптични устройства. Биологичен микроскоп с имерсионна система, лупи, аглутиноскоп.
Уреди за стерилизация и нагряване. Автоклав, апарат с течна пара, сушилен шкаф, Seitz филтри, термостати, стерилизатори за инструменти.
Оборудване за готварска среда. Фуния за горещо филтриране, фуния за наливане на среди, водна баня, тенджери с различни размери, тарирани везни с тежести, месомелачка, метални и дървени стойки за филтриране.
Инструменти. Скалпели с различни форми и видове: ножици, прави, извити, с тъп връх, чревни ножици, анатомични и хирургически пинсети, спринцовки.
Стъклени предмети. Предметни стъкла, предметни стъкла с ямка, покривни стъкла, бактериологични епруветки, къси епруветки за серологични реакции (аглутинация), центрофуги, съдове на Хайдепрейх*, стъклени епруветки и пръчици, градуирани пипети от 1, 2, 5, 10 ml, пипети на Пастьор, стъклени бутилки за боя с пипети, стъклени чаши и колби с различни размери, цилиндри с различни размери, фунии за филтриране и др.

*Досега сред повечето микробиолози и в учебниците съдовете за получаване на изолирани колонии от микроби се наричат ​​блюда на Петри, а не на Хайденрайх, което не отговаря на истинското състояние на нещата. Чашите са въведени за първи път в лабораторната практика от руския микробиолог Хайденрайх.

Различни предмети. Бактериална примка, платинена тел, гумени тръби, ръчни рогови везни с тежести, стелажи (дървени, метални) за епруветки, термометри, клетки за животни, приспособления за фиксиране на животни, центрофуга.
Химикали, бои, материали за медии и др. Агар-агар, желатин, бял на листове, масло за потапяне, филтърна хартия, абсорбираща и обикновена вата, марля, етилов алкохол, анилинови багрила (магента, генциан и кристално виолет, везувин, метилен синьо, неутрален, сафранин и др.), боя Гимза, киселини (азотна, солна, сярна, карболова, фосфорна, пикринова, оксалова и др.), алкали (калиев каустик, сода каустик, амоняк, сода), соли (калиев нитрат , калиев перманганат, натриев сулфид, натриев хлорид и др.).

Лабораторна маса

За провеждане на микробиологични изследвания лаборантът трябва да разполага с подходящо оборудвано работно място. Лабораторната маса трябва да има определена височина, за да може лесно да се микроскопира, докато седите на нея (фиг. 9). По възможност масата трябва да бъде покрита с линолеум, а всяко работно място да бъде покрито с поцинкована тава или огледално стъкло. Работното място трябва да бъде оборудвано с микроскоп, стойки за епруветки и бои, платинена бримка и игла за инокулация, чаша с мост за препарати, шайба, пясъчен часовник, предметни и покривни стъкла, пипети, набор от бои, филтърна хартия, спиртна или газова горелка и буркан с дезинфекционен разтвор (лизол, карболова киселина, сублимат, хлорамин или лизоформ), в който се поставят за дезинфекция използвани предметни стъкла и покривни стъкла, пипети, стъклени пръчици и др. които се отглеждат микроби не могат да се дезинфекцират с химикали. Следи от дезинфектанти върху такива съдове впоследствие ги правят неподходящи за растеж и размножаване на микроорганизми. След използване съдовете се поставят в метални резервоари или кофи с капак, запечатват се и се стерилизират в автоклав. След употреба малките инструменти (пинсети, скалпели, ножици) се поставят в стерилизатор и се варят в продължение на 30-60 минути или се потапят в 3-5% разтвор на сапун-карболов хлорамин за 30-60 минути.

Ориз. 9. Техника за микроскопиране на бактериологични обекти.

Работното място трябва да се поддържа абсолютно чисто. Недопустимо е масата да е замърсена с изследвания инфекциозен материал (урина, изпражнения, гной и др.). В последния случай инфекциозният материал от масата може да се разпространи в други околни предмети и тогава е възможно вътрелабораторно заразяване. След приключване на работа лаборантът трябва да подреди работното място, за което отговаря, и за превенция да избърше стъклото на работното място с парче памук, навлажнено с 5% разтвор на карболова киселина или хлорамин.

Правила за работа и поведение в лабораторията

Когато работят с инфекциозен материал, лабораторните работници трябва да помнят възможността сами да се заразят и да пренесат инфекциозното заболяване в семейството, апартамента и т.н. Следователно те трябва да бъдат внимателни, внимателни, спретнати и педантични в работата си.
При работа в лаборатории трябва да се спазват следните правила:

1. Задължително е да сте в лабораторията и още повече да работите в нея с халат и забрадка или каскет.
2. Не се местете без необходимост от едно лабораторно помещение в друго и използвайте само определеното работно място и оборудване.
3. Не яжте и не пушете в лабораторията.
4. Когато работите с инфекциозен материал и живи култури, използвайте подходящи инструменти: пинсети, куки, шпатули и други предмети, които трябва да бъдат унищожени или обезвредени след употреба (обгаряне на пламък на горелка, кипене и др.). Изсмуквайте течния инфекциозен материал в пипети не с устата си, а с помощта на балони, луковици, изсипвайте течност с инфекциозен материал от един съд в друг само върху някакъв приемник (тава, леген), в който се налива дезинфекционна течност (разтвор на карболова киселина, лизол). ) се излива.. Засяването и повторното засяване се извършва чрез изгаряне на епруветки, шпатули, платинени бримки, пипети и др. върху пламък на горелка.
5. Ако съдовете се счупят или се разлее течност, съдържаща инфекциозен материал или живи култури, незабавно старателно дезинфекцирайте замърсеното работно място, роклята и ръцете. Всичко това трябва да се извършва в присъствието или под наблюдението на ръководителя на лабораторията, който трябва незабавно да бъде уведомен за инцидента.
6. Ако е възможно, унищожете всички използвани и ненужни предмети и материали (най-добре е да ги изгорите или старателно да ги неутрализирате в машини за стерилизация или дезинфекционни течности).

Всички предмети, подлежащи на дезинфекция, се събират вътре в лабораторията в специални приемници, резервоари, кофи с капаци и др. и се прехвърлят затворени в автоклав, където ще бъдат дезинфекцирани в същия ден. Доставянето на инфекциозен материал в автоклава и неговата стерилизация трябва да се контролират от специално назначени отговорни лабораторни работници.

1. Поддържайте стриктна чистота и изрядност. Дезинфекцирайте и измивайте ръцете си възможно най-често през работния ден и след приключване на работа.
2. Лаборантите подлежат на задължителна ваксинация срещу основни инфекциозни заболявания (предимно срещу чревни заболявания).
3. Задължително е ежедневното количествено отчитане на всички живи култури и заразени животни със записи в специални дневници и счетоводни книги.
4. След работа оставете всички материали и култури, необходими за по-нататъшна работа, в заключен хладилник или сейф и приведете работното място в пълен ред.
5. Ежедневното основно почистване на лабораторните помещения трябва да се извършва мокро с дезинфектант.

Наличието на различни бактерии в червата се счита за нормално. Тези бактерии участват в процесите на преработка и усвояване на храната. Правилното храносмилане и функциониране на червата се доказва от изпражненията, състоящи се от малки безструктурни частици, наречени детрит.

За изследване на микробния състав на изпражненията се извършва анализ на резервоара. Ако броят на бактериите се увеличи, тогава човек изпитва чревни патологии, болки в корема от различни видове и в изпражненията се появяват парчета несмляна храна. Това изследване ни позволява да идентифицираме причинителите на много заболявания.

Класификация на чревните бактерии

Но при подробно проучване те се класифицират в следните групи:

1. Здрави бактерии: лакто- и бифидобактерии, Eschecheria. Тези микроорганизми активират функционирането на червата.
2. Опортюнистични: ентерококи, кандида, клостридии, стафилококи. Тези микроорганизми стават патогенни в резултат на определени обстоятелства и са способни да провокират развитието на различни патологии.
3. Патогенни: бацили, клебсиела, протей, салмонела, шингела, сарцинус. Тази група бактерии провокира развитието на сериозни заболявания.

Има различни методи за изследване на изпражненията. Един от често срещаните методи е бактериалният анализ.

Какво представлява изследването на изпражненията?

Бактериологичното изследване на изпражненията ви позволява да изследвате неговия микробен състав, както и да определите наличието на патогени на последващи заболявания:

• шигелоза;
• дизентерия;
• салмонелоза;
• Коремен тиф;
• холера и други заболявания.

Анализът на изпражненията отнема доста време. Проучването се провежда преди предписване на антибиотична терапия.

Показания за изследването

Основните причини за провеждане на тест за изпражнения трябва да бъдат подчертани:

Скатологичните изследвания ни позволяват да идентифицираме патологиите, възникващи в чревната кухина:

Също така се предписва тест за резервоар за диагностициране на патологии на храносмилателните органи.

Как се взема проба от изпражнения?

Преди да се подложи на изследването, пациентът трябва да се подложи на специална подготовка в продължение на няколко дни.

• зеленина;
• цвекло;
• червена риба;
• домати.

Освен това месните продукти могат да повлияят на резултатите от изследването.

В периода на подготовка за вземане на тестове е необходимо да спрете приема на антибиотици, противовъзпалителни лекарства и лекарства, съдържащи ензими и желязо.

Събирането на материал за изследване трябва да се извършва сутрин. За събиране на изпражнения използвайте стерилен контейнер, който можете да закупите в аптеката. Продължителността на съхранение на биоматериала в хладилника е не повече от 10 часа.

Как се провежда изследването?

Бактериологичното изследване на изпражненията позволява да се определи физико-химичният състав на материала, неговите свойства и наличието на патологии. Това изследване помага за откриване на бактерии в тялото и промени в биобаланса.

Скатологичният анализ на изпражненията се счита за допълнение към бактериалния анализ. Това изследване ни позволява да оценим наличието на специфична миризма на изпражненията, тяхната консистенция и плътност, общия външен вид и наличието или отсъствието на микроорганизми.

Проучването включва 2 етапа:

1. Макроскопски анализ.
2. Микроскопичен.

Микроскопското изследване разкрива слуз, протеини, повишени нива на билирубин, кръвни съсиреци и йодофилна флора в изпражненията. Последният се образува благодарение на активни вещества, които превръщат нишестето в глюкоза. Откриването на йодофилна флора не показва инфекция във всички случаи. Развитието на заболяването се показва от натрупването на йодни бактерии, причинени от ферментацията.

Тъй като тялото на детето не се бори добре с патогенната флора, такива бактерии много често се диагностицират в изпражненията на децата.

Днес се използва методът за засяване на изследвания биоматериал в специална среда с определени условия. Експертите определят способността на бактериите да се размножават и да образуват колонии. За да получите точни резултати, всички използвани инструменти, както и контейнерите със събран биоматериал трябва да бъдат стерилни.

Патогенните микроорганизми се изследват за чувствителност към различни антибактериални лекарства. Изследването се характеризира с високо точни резултати, според които лекарят може да предпише лекарства.

Само 10% от общото количество на изследвания материал може да бъде патогенна микрофлора.

Декодиране на резултатите

Изследването на изпражненията ви позволява да идентифицирате и определите броя на всякакви бактерии. Въз основа на получените резултати лекарят поставя диагноза и предписва лечение.

Видове патогенна микрофлора, която може да се открие в изпражненията:

1. E. coli. Те пречат на усвояването на калций и желязо от организма и обикновено показват наличието на глисти.
2. Enterobacteriaceae. Най-често тези бактерии причиняват развитието на дизентерия и чревни инфекции.
3. E. coli с намалена ензимна активност показват образуването на дисбактериоза.
4. Лактоза-отрицателни бактерии. Те причиняват смущения в храносмилателния процес и предизвикват метеоризъм, киселини, често оригване, чувство на тежест.
5. Хемолитични бактерии. Те образуват токсини, които влияят негативно на нервната система и червата. Предизвиква образуването на алергии.
6. Дрождоподобни гъбичкипровокира развитието на млечница.
7. Клебсиела, провокира образуването на гастроентерологични патологии.
8. Ентерококи, провокират появата на инфекциозни патологии на гениталните органи, отделителните пътища и пикочно-половата система.

Тълкуването на анализа на резервоара е посочено във формулярите, които също показват нормалните показатели на бактериите.

Чревната дисбиоза е много опасна патология, която унищожава здравата микрофлора. Това състояние води до развитие на дизентерия и стафилококи. За да се избегне това, се препоръчва поне веднъж годишно да се прави изследване на изпражненията за проследяване на чревния биобаланс.

Анализът на резервоара се счита за надеждно изследване, което предоставя информация за функционирането на важните му вътрешни органи: червата и стомаха. Изследването позволява своевременно идентифициране на патогенни микроорганизми, които засягат нормалната микрофлора. Предписва се както за възрастни, така и за деца.